Name: הערכת נכסים איתות של Ectodermal epithelia במהלך פיתוח Craniofacial (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-24T11:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 25 s
Description: חקור שיטת השתלת רקמה ליצירת עוברים כימריים לחקר תכונות האיתות של אקטודרם צפאלי בפיתוח קרניו-פאציאלי. טכניקה זו מאפשרת ניתוח מולקולרי ומורפולוגי של תפקוד הרקמה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

עבודה זו מומנה על ידי R01-R01 DE018234 ו-DE019638.

1. הכנת רקמות התורם <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן התקשורת לתרבות, לחדד סיכות זכוכית, לחדד מחטים טונגסטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף העובר מן המעטפת, להתרחץ קר כקרח PBS. <ol class="lalpha" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מזרק 10 מ"ל ו - 18 מחט מד להסיר 1.0 מ"ל של אלבומין מהקצה המחודד של מעטפת הביצית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עושים חור קטן בחלק העליון של הקליפה באמצעות נקודת מספריים, ולאחר מכן לחתוך פתח עגול לחשוף את העובר </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הראש אל המקום DMEM (נסיוב בחינם, בטמפרטורת החדר) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח תהליכים Frontonasal מעובר (או לאתר תורם אחרים, כגון תהליך לסתי או mandibular) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקציר ב 2.4U / mL dispase ב PBS על הקרח עבור 20mins </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כיסוי רקמות עם DMEM עם BSA 1% כדי לעצור העיכול </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במחט טונגסטן חידד את האאקטודרם mesenchyme נפרד, ו neuroectoderm </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חנות רקמת שתל ב BSA DMEM 1% על הקרח עד מארח מוכן להשתלה </li></ol> 2. הכנת מארח <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחשוף את העובר <ol class="lalpha" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מזרק 10 מ"ל ו - 18 מחט מד להסיר 1.0 מ"ל של אלבומין מהקצה המחודד של מעטפת הביצית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עושים חור קטן בחלק העליון של הקליפה באמצעות נקודת מספריים. מניחים נייר דבק על החור, ולאחר מכן לחתוך פתח עגול לחשוף את העובר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש 2 זוגות מלקחיים, לתפוס את amnion בעדינות דמעה לעשות חור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סובב את ראשו על ידי הנחת זוג מלקחיים על עין ימין ועל הפעלת לחץ. בעוד מחזיק את הראש יציב, להשתמש במחט טונגסטן להסיר את האאקטודרם לארח כדי להתאים את השתל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את השתל לארח בעזרת פיפטה מזכוכית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיקום השתל להחליף את האאקטודרם הוסרו. הכנס סיכה זכוכית בכל פינה של הרקמה מורכבים להצמיד את השתל במקום. כדי להפוך את סיכות זכוכית, למשוך צינור microcapillary לנקודה קנס על אש אלכוהול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום קלטת בחוזקה מעל החור ולהחזיר העובר אל האינקובטור לאורך זמן מתאים לניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראה גם: 9 </li></ol> 3. נציג תוצאות: כדי להעריך מפלצות, עוברים יש לאסוף ולעבד לניתוח ההתפלגות של המארח רקמות התורם. עבור זיהוי של תאים שליו, אימונוהיסטוכימיה באמצעות נוגדן QcPN (המתואר: 3) הוא מועסק, וכן עבור זיהוי של תאים בעכבר, ב הכלאה באתרו על סעיפים פרפין משמש 6. תאים התורם צריך להיות מוגבל האפיתל, ולא צריך להיות שום עדות של רקמות התורם mesenchymal (איור 1). נוכחות של תאים מתורם בודד mesenchyme מצביע על נוכחות של תאים עצביים לפסגה זיהום אשר לבלבל כל פרשנות מורפולוגיים בשל השפעתם של תאים אלה על היבטים רבים של פיתוח פנים (למשל, 10). לאחר משוכנע כי הטכניקה שתל ללא זיהום mesenchyme, מדדי התוצאה מורפולוגי נוסף או מולקולרית ניתן להשתמש כדי להעריך את מפלצות. לענייננו, זיהינו את נוכחותו של סחוסים ועצמות מחוץ לרחם כי תאמו כפילויות של הלסת העליונה שהיו המושרה על ידי רקמות להשתלה (איור 2), ואת השינויים המולקולריים ברקמות mesenchymal בתגובה האאקטודרם מורכבים (איור 3) 5,6. <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig1.jpg" alt="איור 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 1"> באיור 1. הערכת chimerism (א) נגד QcPN מכתים משמש כדי לזהות תאים שלווים שלווים, חומוס מפלצות. אין ראיות של מכתים ב mesenchyme. (ב) הכלאה באתרו משמש כדי לזהות את הביטוי של תעתיקים B2 סינוס ב עכבר חומוס מפלצות. הביטוי מוגבל האאקטודרם המרכיבים את השתל. <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig2.jpg" alt="איור 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 2"> איור 2. מכתים Trichrome מראה שכפול של השלד הלסת העליונה הכימרה (א) שליו, חומוס, ו (ב) עכבר חומוס מפלצות. <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig3.jpg" alt="איור 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 3"> איור 3. האאקטודרם regultes ביטוי גנים mesenchyme. (א) הביטוי רגיל Bmp7 ב mesenchyme של עובר אפרוח (רדיואקטיביים הכלאה באתרו עם אדום אות חיובי פסאודו בצבע ב Adobe Photoshop). (ב) הוא ביטוי Bmp7 המושרה mesenchyme הסמוך השתל (חץ) בעוברים chimeric.

<ol><li>Noden, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Role+of+the+Neural+Crest+in+Patterning+of+Avian+Cranial+Skeletal%2C+Connective%2C+and+Muscle+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The Role of the Neural Crest in Patterning of Avian Cranial Skeletal, Connective, and Muscle Tissues.</a> Developmental Biology. 96, 144-144 (1983).</li>
<li>Bronner-Fraser, M., Stern, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Mesodermal+Tissues+on+Avian+Neural+Crest+Cell+Migration%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Effects of Mesodermal Tissues on Avian Neural Crest Cell Migration.</a> Developmental Biology. 143, 213-213 (1991).</li>
<li>Schneider, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+crest+can+form+cartilages+normally+derived+from+mesoderm+during+development+of+the+avian+head+skeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Neural crest can form cartilages normally derived from mesoderm during development of the avian head skeleton.</a> Developmental Biology. 208, 441-441 (1999).</li>
<li>Couly, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+between+Hox-negative+cephalic+neural+crest+cells+and+the+foregut+endoderm+in+patterning+the+facial+skeleton+in+the+vertebrate+head%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Interactions between Hox-negative cephalic neural crest cells and the foregut endoderm in patterning the facial skeleton in the vertebrate head.</a> Development. 129, 1061-1061 (2002).</li>
<li>Evans, D. J., Noden, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+relations+between+avian+craniofacial+neural+crest+and+paraxial+mesoderm+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Spatial relations between avian craniofacial neural crest and paraxial mesoderm cells.</a> Dev Dyn. , (2006).</li>
<li>Hu, D., Marcucio, R., Helms, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+zone+of+frontonasal+ectoderm+regulates+patterning+and+growth+in+the+face%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A zone of frontonasal ectoderm regulates patterning and growth in the face.</a> Development. 130, 1749-1749 (2003).</li>
<li>Hu, D., Marcucio, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+organization+of+the+frontonasal+ectodermal+zone+in+birds+and+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Unique organization of the frontonasal ectodermal zone in birds and mammals.</a> Dev Biol. 325, 200-200 (2009).</li>
<li>Le Lièvre, C. S., Le Douarin, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+derivatives+of+the+neural+crest%3A+analysis+of+chimaeric+quail+and+chick+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Embryology+and+Experimental+Morphology%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos.</a> Journal of Embryology and Experimental Morphology. 34, 125-125 (1975).</li>
<li>Bollag, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+repetitive+mouse+B2+element+to+identify+transplanted+mouse+cells+in+mouse-chick+chimeras%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Use of a repetitive mouse B2 element to identify transplanted mouse cells in mouse-chick chimeras.</a> Exp Cell Res. 248, 75-75 (1999).</li>
<li>Korn, M. J., Cramer, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Windowing+chicken+eggs+for+developmental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Windowing chicken eggs for developmental studies.</a> J Vis Exp. , (2007).</li>
<li>Eames, B. F., Schneider, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quail-duck+chimeras+reveal+spatiotemporal+plasticity+in+molecular+and+histogenic+programs+of+cranial+feather+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Quail-duck chimeras reveal spatiotemporal plasticity in molecular and histogenic programs of cranial feather development.</a> Development. 132, 1499-1499 (2005).</li>
<li>Odent, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+Sonic+hedgehog+%28SHH+%29+gene+during+early+human+development+and+phenotypic+expression+of+new+mutations+causing+holoprosencephaly%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">Expression of the Sonic hedgehog (SHH ) gene during early human development and phenotypic expression of new mutations causing holoprosencephaly.</a> Hum Mol Genet. 8, 1683-1683 (1999).</li>
<li>Szabo-Rogers, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+skeletogenic+patterning+roles+for+the+olfactory+pit%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Novel skeletogenic patterning roles for the olfactory pit.</a> Development. 136, 219-219 (2009).</li>
</ol>

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

באמצעות שיטה זו השתלת אפשרה לנו לקבוע כי האאקטודרם מכיל מידע איתות המווסת את הקוטביות dorsoventral והסיומת proximodistal של הלסת העליונה. הדמיון של תוצאות בעת שימוש שליו או האאקטודרם העכבר השימור של אותות מולקולריים ברקמה זו בקרב מינים רבים 6,11 מציין כי מדובר במרכז איתות שמור ביותר בקרב בעלי החוליות. יתר על כן, חוקרים אחרים השתמשו בטכניקות דומות כדי לבדוק את המאפיינים של איתות באזורים שונים של פני השטח האאקטודרם cephalic ו חשפו את נוכחותו של מרכזי איתות מרובים הממוקמים...

<table><tbody><tr><td>1x PBS</td><td>Tektronix, Inc.</td><td>TEKZR114</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>University of California - San Francisco</td><td>CCFDA003</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>Dispase</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>17105-041</td><td></td></tr><tr><td>צלחת פטרי 35x10 mm</td><td>Falcon BD</td><td>1008</td><td></td></tr><tr><td>פינצטה Dumont מס' 5</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-20</td><td></td></tr><tr><td>מספריים</td><td>Fine Science Tools</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>מספרי קפיץ</td><td>Fine Science Tools</td><td>15010-11</td><td></td></tr><tr><td>מחזיק מחט</td><td>Fine Science Tools</td><td>26016-12</td><td></td></tr><tr><td>מחט טונגסטן</td><td>Fine Science Tools</td><td>26000</td><td></td></tr><tr><td>צינור מיקרו-קפילרי</td><td>Drummond Scientific</td><td>3-000-225-G</td><td></td></tr><tr><td>פיפטות פסטור</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-6B</td><td></td></tr><tr><td>מספרי קפיץ</td><td>Fine Science Tools</td><td>15010-11</td><td></td></tr><tr><td>מחזיק להב</td><td>Fine Science Tools</td><td>10052-11</td><td></td></tr><tr><td>להב תער</td><td>Fine Science Tools</td><td>10050-00</td><td></td></tr></tbody></table>

הערכת נכסים איתות של ectodermal epithelia במהלך פיתוח craniofacial

Assessing Signaling Properties of Ectodermal Epithelia During Craniofacial Development

הנגישות של עוברי העופות סייע embryologists ניסיוני להבין את גורלם של תאים במהלך ההתפתחות ואת תפקידו של אינטראקציות רקמות המווסתים דפוסים המורפוגנזה של בעלי חוליות (לדוגמה: 1, 2, 3, 4). כאן, אנו ממחישים שיטה זו מנצלת את הנגישות כדי לבדוק את איתות ותכונות דפוסים של רקמות ectodermal במהלך התפתחות הפנים. בניסויים אלו, אנו יוצרים שליו, חומוס 5 או עכבר חומוס 6 מפלצות ידי השתלת האאקטודרם משטח cephalic המכסה את הלסת העליונה של שליו או בעכבר על אזור או באותו אזור או מחוץ לרחם של עוברים חומוס. השימוש שליו כמו רקמות התורם להשתלה לתוך אפרוחים פותחה על מנת לנצל את הסמן nucleolar נוכח שליו אך לא תאים חומוס, ובכך מאפשר לחוקרים להבחין מארח ורקמות תורם 7. בדומה לכך, מרכיב חוזרות נמצא גנום העכבר, והוא הביע בכל מקום בגוף, אשר מאפשר לנו להבחין המארח רקמות התורם אפרוח ועכבר מפלצות 8. השימוש האאקטודרם עכבר כמו רקמות התורם יהיה מאוד להרחיב את ההבנה שלנו של האינטראקציות הללו רקמות, כי זה יאפשר לנו לבחון את המאפיינים של איתות האאקטודרם שמקורם בעוברים מוטנטיים שונים.

מאמר זה מתאר השתלת רקמות טכניקה שנועדה לבדוק את איתות ותכונות של דפוסים האאקטודרם משטח cephalic במהלך הפיתוח craniofacial.

הערכת נכסים איתות של Ectodermal epithelia במהלך פיתוח Craniofacial

הנגישות של עוברי עופות סייעה לאמבריולוגים ניסיוניים להבין את גורלן של תאים במהלך ההתפתחות ואת תפקידם של רקמות...

המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא ליצור עוברים כימריים על ידי השתלת אקטודרמה מעוברים תורמים ללסת העליונה המתפתחת של עוברים של אפרוח. דבר זה מושג תחילה על ידי הסרת הדֶרמה של התורם לצורך השתלה, ולאחר מכן הכשרת אתר המאחס להשתלה.השלב הסופי של הפרוצדורה הוא הנחת רקמת התורם באתר המאחס וקיבוע השתל במקומו. בסופו של דבר, ניתן להשיג תוצאות המראות קליטה בלעדית של אקטודרמה של תורם, ובאמצעות ניתוח מולקולרי ומורפולוגי, ניתן לקבוע את התפקוד של ה-recod derm של התורם. שיטה זו יכולה לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בביולוגיה של ההתפתחות, כגון זיהוי תפקידן של רקמות שונות במהלך המורפוגנזה.את הפרוצדורה תדגים ד"ר Diane, חוקרת בכירה מהמעבדה שלנו. לפני תחילת הפרוצדורה, הכינו את המצעים וודאו שכל התמיסות הדרושות זמינות ובטמפרטורה הנכונה. לאחר מכן, תוך כדי ענידה של הגנה מתאימה לעיניים, משכו צינורות מיקרו-קפילריות לנקודה דקה מעל להבת אלכוהול.כדי להכין סיכות זכוכית, השחילו מחטי טונגסטן על ידי החזקתם בלהבה של מבער פרופאן. התחילו בחילוץ העובר התורם מהקליפה על ידי הנחת פיסת סרט דביק מעל קצה הביצה. לאחר מכן, השתמשו בחוד של מחט דיסקציה כדי ליצור חור קטן במרכז הסרט.החדירו מזרק של 10 מיליליטר ומחט היפודרמית במידה 18 לתוך החור, ושאבו מיליליטר אחד של אלבומין מהביצה. לאחר מכן, באמצעות מחט דיסקציה, צרו חור קטן בחלק העליון של הק

assessing-signaling-properties-ectodermal-epithelia-during

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

הסחוסים Craniofacial לפתח בקשר הדוק עם רקמות אחרות וקשה לתפעל חיות לחיות. אנחנו משתמשים electroporation לספק כלים מולקולריים במהלך הצמיחה של השלד craniofacial תוך עקיפת תופעות העוברית המוקדמת. גישה זו תאפשר לנו לבחון ביעילות מולקולות...

Electroporation של Mesenchyme Craniofacial

Mesenchyme הגולגולת עובר תנועות morphogenic דרמטיות שעשויים מספקת כוח מניע לגובה של הקפלים...

Assay Explant להערכת התנהגות ניידת של mesenchyme הגולגולת

פרוטוקול להפרדה של אקטודרם וmesenchyme פן עובר מתואר. אנו משתמשים Dispase השני לטיפול בעוברים שלמים ראשון, לנתח בליטות פן שלמות, ואז להפריד אקטודרם וmesenchyme הפנים.

הפרדת אקטודרם עכבר העוברי פן וmesenchyme

טכניקה להשתלה "אקסטרים Anterior דומיין" רקמות פנים בין Xenopus laevis עובר כבר מפותחת. רקמה ניתן להעביר מהרקע ביטוי גנים אחת לאחרת, ומאפשרת הלימוד של דרישות מקומיות לפיתוח craniofacial ולאיתות אינטראקציות בין אזורי פנים.

השתלת פנים ב<em&gt; Laevis Xenopus</em&gt; עוברים

פרוטוקול זה מתאר כיצד לנתח פסגת premigratory גולגולת עצבית (NC) מneurulas laevis Xenopus. יכול להיות מצופה explants אלה בפיברונקטין ותרבית במבחנה, או מורכב בחזרה לעוברי מארח. טכניקה זו מאפשרת חקר המנגנונים של מעבר NC האפיתל לmesenchyme, הגירה, ובידול.

Dissection של<em&gt; Laevis Xenopus</em&gt; העצבי קרסט עבור<em&gt; במבחנה</em&gt; Explant תרבות או<em&gt; In vivo</em&gt; השתלות

confocal הדמיה זמן לשגות היא טכניקה רבת עוצמה שימושית לאפיון התפתחות עוברית. כאן, אנו מתארים את המתודולוגיה ולאפיין המורפוגנזה craniofacial בסוג פראי, כמו גם PDGFRA, smad5, וSMO עוברים שעברו מוטציה.

ניתוח Craniofacial המורפוגנזה בדג הזברה שימוש 4D מיקרוסקופיה confocal

מאמר זה מתאר שיטה ליצירת עוברי chimeric שנועדו לבחון את תרומתם מינים ספציפיים של רכס עצבי ו / או רקמות אחרות לפיתוח craniofacial.

הערכת תרומות מינים ספציפיות כדי Craniofacial פיתוח באמצעות מפלצות שליו-ברווז

מתוארים פרוטוקולים המשתמשים במחסומים אטומים לחסימת אירועי אינדוקציה בין רקמות ציר הגוף הראשי והצד בעובר הגוזל הנדרשים להיווצרות גפיים. חרוזים ספוגים באותות אינדוקטיביים מועמדים משמשים להתגברות על ההשפעה של מיקום מחסום וניתוח ביטוי גנים מאשר זאת.

יישום של חסמים בלתי חדירים בשילוב עם חרוזים ספוגים פקטור מועמד ללמוד איתותי אינדוקטיבי של צ&#39;יק

כאן, אנו מציגים פרוטוקול מפורט כדי לזהות ולכמת את רמות החלבון במהלך הגולגולת מורפולגנזה/פתוגנזה על ידי מכתים באמצעות העכבר ברקמות הגולגולת כמו דוגמאות. בנוסף, אנו מתארים שיטה להכנה והקפאה של רקמות קשות בלתי מתויטות מעכברים צעירים לצורך חיסוני.

הכנה לרקמה וכתמים של רקמות הגולגולת והעצמות הבלתי מתויטות

מאמר זה מתאר טכניקת השתלת רקמות שנועדה לבחון את תכונות האיתות והדפוס של המוח הקדמי הבסיסי במהלך התפתחות הגולגולת.

יצירת כימרות במוח הקדמי של העופות להערכת התפתחות הפנים

הפרוטוקול מציג שיטה לבידוד ליזאטים של חלבונים של תאים שלמים מתהליכי פנים של עוברי עכברים שנותחו או מתאי מזנכים עובריים של עכברים שעברו תרבית, וביצוע כתמים מערביים לאחר מכן כדי להעריך את רמות החלבון שעבר זרחן.

בידוד של חלבון של תאים שלמים ליסאטים מתהליכי פנים של עכברים ותאי מזנכיים פאלטליים בתרבית לניתוח פוספופרוטאין לניתוח פוספופרוטאין

חקור שיטת השתלת רקמה ליצירת עוברים כימריים לחקר תכונות האיתות של אקטודרם צפאלי בפיתוח קרניו-פאציאלי. טכניקה זו מאפשרת ניתוח מולקולרי ומורפולוגי של תפקוד הרקמה.

הערכת נכסים איתות של Ectodermal epithelia במהלך פיתוח Craniofacial

גלה סרטונים נוספים