14 באוגוסט 2011
חלבונים אינטראקציה בדיקה הכרחית לנתיחה של פונקציונליות חלבון. הנה, אנחנו מציגים במבחנה חלבונים assay מחייב בדיקה קרום משותקת חלבון עם חלבון מסיס. Assay זה מספק שיטה אמינה לבדיקת האינטראקציה בין חלבון מסיס לבין חלבון בתמיסה.
בדיקת חלבון. אינטראקציה עם חלבון היא הכרחית לדיסקציה של פונקציונליות החלבון. סרטון זה מציג בדיקת קשירת חלבון במבחנה כדי לבדוק את האינטראקציה בין ממברנה וחלבון משותק עם חלבון מסיס.
ראשית, חלבוני היתוך משובטים, מבוטאים ומופקים. החלבון הבלתי מסיס המתויג משותק על קרום הניטרוצלולוז ומטופל לקיפול מחדש לאישורו המקורי. לאחר מכן בודקים את הממברנה עם חלבונים מסיסים מתויגים ומבוצעת ספיגה חיסונית כדי לזהות את החלבונים.
אם החלבונים המתויגים מקיימים אינטראקציה, הם נלכדים על ידי החלבון המשותק על הממברנה, והאות מהכתמים החיסוניים ייצפה. לפיכך, בדיקה זו מספקת שיטה אמינה לבדיקת אינטראקציה בין חלבון בלתי מסיס לחלבון בתמיסה. היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני כלים קיימים כמו GST pull down, הוא שאתה יכול להעריך באופן אמין את הקישור בין חלבון בלתי מסיס לחלבון מסיס במבחנה.
השלב הראשון בהליך זה הוא יצירת חלבונים מתויגים גנטית לזיהוי. התחל בשיבוט החלבון שישתקע על הממברנה. התייחס כאן כ-pro Im עבור חלבון משותק לווקטור ביטוי, המקודד תג גדול כגון GST, וקטור הביטוי הריק, המקודד רק עבור התג ישמש כבקרה שלילית של חלבון משותק, ומכונה pro IM nc.
לאחר מכן, שכפל את החלבון שישמש כבדיקה מסיסה לווקטור ביטוי, המקודד תג אחר כגון סטרפטוקוקוס שתיים. זה ייקרא פרוסול לחלבון מסיס כבקרה שלילית, שיבוט, חלבון מסיס בקרה שלילית לאותו וקטור ביטוי. זה ייקרא פרוסול NC לשליטה שלילית בחלבון מסיס.
לאחר מכן, השתמש במערכת ביטוי חלבון כגון קולי או נגיף באלו כדי לבטא את החלבונים המתויגים מערכת הביטוי המשמשת יש לבחור בקפידה על סמך הדרישה לשינויים לאחר התרגום. חלץ את החלבונים המבוטאים מהאורגניזם הנבחר. עבור פרו IM ופרו אני mnc Resus.
השעו את התאים במאגר טעינת דפי SDS המכיל קוקטייל מעכב פרוטאז. לאחר מכן הרתיחו את התאים במשך חמש דקות, ואז צנטריפוגה אותם כדי להסיר את המשקעים כדי לחלץ פרוסול ופרוסול NC. השתמש בהליכים סטנדרטיים. ניתן לחלץ את ה-pro IMS בתנאי דנטורציה מכיוון שהחלבונים יקופלו מחדש לאחר קיבוע בקרום הניטרוצלולוזה.
עם זאת, יש לחלץ פרוסול כדי לתת אישור מקורי מכיוון שהם יתווספו למאגר הקישור לאחר מיצוי החלבונים המתויגים. קבע את ריכוז החלבונים הרקומביננטיים בשיטה סטנדרטית כגון ערכת בדיקת החלבון BioRad. אם תמצית גולמית ולא חלבון מטוהר ישמש לבדיקה.
העריכו את ריכוז החלבון המעניין על ידי סריקת צפיפות של הרצועה המתאימה על ג'ל SDS פולי אקרילאמיד מוכתם בקומאסי. שימוש בריכוזים ידועים של BSA כהתייחסות. לאחר מכן שרטט את העקומה הסטנדרטית על סמך עוצמות האות הנמדדות על ידי צפיפות הסריקה של ה-BSA וחשב את כמות החלבון הכלולה בתמצית הגולמית.
השלב הבא של ההליך הוא לשתק את pro Iam ו-pro IAM NC על הממברנה. התחל בטעינת מיקרוגרם אחד, כל אחת מתמציות pro Iam ו-pro IAM NC בשכפול על ג'ל SDS poly acrylamide. לאחר האלקטרופורזה, הסר את הג'ל מלוחות הזכוכית והניח אותו ב -100 מיליליטר של מאגר העברה, ואז דגר בתסיסה עדינה למשך 20 דקות בטמפרטורת החדר.
לאחר הדגירה, בצע כתם מערבי כדי להעביר את החלבונים לקרום ניטרוצלולוזה לאחר ההעברה כדי לאפשר לחלבונים הקשורים לממברנה להתקפל מחדש. מניחים את הממברנה ב -15 מיליליטר של מאגר A ומדגרים אותה בתסיסה עדינה. להסרת שאריות SDS יש לדגור למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר עם תסיסה עדינה.
לאחר הדגירה הסר בזהירות את הממברנה מהמאגר. לאחר מכן הניחו את הממברנה ב -25 מיליליטר של מאגר דנטורציה. דגירה במשך שעתיים בטמפרטורת החדר עם תסיסה עדינה.
במהלך הדגירה, קרום הניטרוצלולוזה יהפוך אטום. לאחר מכן, בעזרת מלקחיים, העבירו את הממברנה ל -25 מיליליטר TBS ודגרו בתסיסה עדינה למשך חמש דקות. במהלך שלב זה, הממברנה חוזרת לצבעה הלבן המקורי.
לאחר מכן, העבירו את הממברנה ל -25 מיליליטר של מאגר קשירה. דגירה בארבע מעלות צלזיוס עם תסיסה עדינה למשך הלילה. לאחר מכן, החלבון המסיס ישמש לבדיקת הממברנה עבור החלבון המשותק.
ראשית, הכינו את מאגרי ההכלאה לדלל 1 עד 10 מיקרוגרם של פרוסול ופרוסול NC בצינורות נפרדים המכילים 10 מיליליטר של מאגר קשירה טרי. לאחר מכן העבירו את המאגר לשקית הכלאה. לאחר מכן, חותכים את הממברנה לשתי רצועות, שתיהן מכילות pro IM ו-pro IAM nc.
ממברנות אלה יוצבו במאגר ההכלאה. העבירו כל קרום לתמיסת ההכלאה של פרוסול או פרוסול NC ודגרו במשך 1.5 שעות בטמפרטורת החדר בתסיסה עדינה. הסר את הממברנות מתמיסות ההכלאה ושטוף שלוש פעמים למשך 15 דקות ב- TBS.
כדי לדמיין אינטראקציות חלבון חלבון, חסום את הממברנה עם 2.5% חלב דל שומן ב-TBST למשך שעה. לאחר הדגירה, הנח את הממברנות החסומות בתמיסת הנוגדנים הראשונית. כאן משתמשים בנוגדני ארנב אנטי סטרפטוקוקוס שני רב-שבטיים.
יש לדגור במשך שעה בטמפרטורת החדר עם תסיסה עדינה לאחר הדגירה. שוטפים את הממברנות ב -20 מיליליטר TBST למשך 15 דקות ופעמיים למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר בתסיסה עדינה. לאחר מכן מקם את הממברנות בתמיסת הנוגדן המשני המצומד HRP כאן, נעשה שימוש בנוגדני IgG נגד ארנב מצומד ל-HRP.
יש לדגור במשך שעה בטמפרטורת החדר עם תסיסה עדינה. שוטפים את הממברנות ב -20 מיליליטר TBST למשך 15 דקות ופעמיים למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר בתסיסה עדינה כמו קודם, לאחר השטיפה הסופית ב- TBS, דמיינו את האינטראקציה של חלבון החלבון באמצעות מצע כימילומינסנט HRP כאן Millipore. Im Molan Western Chemiluminescent.
מצע HRP משמש לאחר ספיגה חיסונית של הפרוסול. שוטפים את הממברנה ואת TBST למשך 15 דקות ופעמיים למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן בדוק מחדש את הממברנות עם הנוגדן העיקרי כדי שהתג יהיה פרו.
אחריו מגיע הנוגדן המשני המתאים. דמיין את PRO I ו-pro Im NNC על ידי זיהוי כימילומינסנציה כדי לאמת את זהות הרצועות המתקבלות בבדיקת שכבת הממברנה של החלבון. האינטראקציה בין החלבונים A ו-K ו-YFP ו-MP CYFP הוערכה בתאי אפידרמיס טבק באמצעות השיטה המתוארת בסרטון זה כפי שמוצג כאן.
כאשר הוערכה השלמת פלואורסצנטיות ביו-מולקולרית שוחזר אות YFP חזק. אות BFC זה הצטבר בפונטה בפריפריה של התא, שהם אבחון של פלזמה דה מכיוון ש-MP הוא חלבון בלתי מסיס ביותר. כאשר הוא בא לידי ביטוי בחיידקים או בצמחים, אומץ מבחן כיסוי קרום החלבון כדי לאמת אינטראקציה זו.
תמציות חלבון במבחנה המכילות מיקרוגרם אחד של GST, MP או GST לא מאוחה נפתרו על ידי אלקטרופורזה של ג'ל SDS פולי אקרילאמיד ואחריה העברה אלקטרו לקרום ניטרוצלולוזה. כאשר הפרו-יאמים הללו נבדקו עם סטרפטוקוקוקוס nnk שני מ"מ GST, אך לא בלתי מאוחדים, GST הציג כריכה. יתר על כן, כאשר אותה קבוצה של pro IMS נבדקה עם פרו לא קשור nc IE Arabidopsis Cytoplasmic, NADH kinase מתויג סטרפטוקוס שתיים, לא נצפתה קשירה נוספת המדגימה את הספציפיות של אינטראקציית A NK MP בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור למלא מחדש את החלבונים המשותקים כראוי בהתאם לפרוטוקול המוצג.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג מבחן קישור חלבון-חלבון in vitro שנועד לחקור אינטראקציות בין חלבון קבוע בממברנה לבין חלבון מסיס. השיטה מספקת גישה אמינה לבדיקת אינטראקציות הכוללות חלבונים בלתי מסיסים.
Validating protein-protein interactions is essential for target de-risking in early discovery, particularly when studying insoluble or membrane-associated targets. The protein membrane overlay assay enables reliable in vitro assessment of interactions between soluble and insoluble proteins, addressing a key limitation of solubility-dependent methods like GST pull-down or Co-IP. When combined with orthogonal approaches such as BiFC, it supports mechanistic confidence and reduces false-positive risk in target validation workflows.
The assay fits within the discovery continuum from target engagement screening to lead optimization, particularly for targets where solubility complicates biochemical validation. It enables progression from phenotypic hits or genetic interactors to mechanistically de-risked targets.