כרומטוגרפיית שכבה דקה בעלת ביצועים גבוהים: טכניקה להפרדה ראשונית וכימות של שומנים מנויטרופילים

0 views • 3:59 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כרומטוגרפיה של שכבה דקה בעלת ביצועים גבוהים, HPTLC, היא טכניקה אנליטית מתקדמת להפרדת אנליטים שונים באמצעות חלקיקים סופחים בגודל עדין כשלב הנייח. תכונה זו מאפשרת אריזה יעילה, ומבטיחה הפרדה טובה יותר.

כדי להפריד שומנים באמצעות HPTLC, קח תערובת של ליפידים עם קוטביות שונות המתקבלות מנויטרופילים. כעת, יש לאזן מראש את הצלחת בממס אורגני להסרת עקבות של אדי מים ולכלוך, ולאחר מכן להפעיל בטמפרטורה גבוהה כדי למנוע הידרדרות הצלחת.

מרחו את תערובת השומנים וסטנדרט כנקודות נפרדות ליד בסיס הצלחת. העבירו את הצלחת לתא זכוכית רווי בממס קוטבי - השלב הנייד. אפשר לממס לנוע כלפי מעלה באמצעות פעולה נימית.

תוך כדי תנועה, יותר שומנים קוטביים נודדים לאורך חזית הממס בשל זיקתם לממס הקוטבי. לעומת זאת, פחות שומנים קוטביים נספגים על חלקיקי הסיליקה ופיגור. הפעל את השומנים בממס קוטביות ביניים, ואחריו ממס לא קוטבי לחלוטין, וכתוצאה מכך הפרדת שומנים נוספת.

כאשר חזית הממס מגיעה למרחק הרצוי, הסר את הצלחת וייבש אותה. חשוף את הצלחת למגיב מכתים, כגון גופרת נחושת מחומצת, הגורמת לחריכת שומנים. זה עוזר לדמיין כתמי שומנים מופרדים, בהשוואה לכתמים הסטנדרטיים המסייעים בזיהוי ראשוני של שומנים.

כדי להתחיל, מלאו עד 5 מיליליטר מכל תמיסה בתא הזכוכית המתאים. הוסף כל סוג של נייר סינון כדי להגביר את מהירות הריצה בכל תא. דגירה מוקדמת של צלחת זכוכית HPTLC סיליקה ג'ל 60 בגודל 20 x 10 ס"מ בתמיסת הריצה הראשונה. לאחר שתמיסת הריצה מגיעה לחלק העליון של הצלחת, יבש אותה במשך 10 דקות בחום של 110 מעלות צלזיוס.

ממיסים את הגלולה הנוזלית שהושגה בעבר לאחר ייבוש עם רכז ואקום, בנפח הרצוי של תמיסת כלורופורם/מתנול 1:1, ודוגרים למשך 15 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס להמסה. לאחר מכן, השתמש בסרגל ובעיפרון רך כדי לסמן את נקודות הטעינה למספר הדגימות הרצוי, בתוספת תקן אחד לפחות. סמן את מרחק הריצה בכ -4 סנטימטרים עבור פתרון הריצה הראשון, וכ -6 סנטימטרים עבור פתרון הריצה השני.

כדי לטעון את הדגימות, שטפו את המזרק בנפח 10 מיקרוליטר שלוש פעמים, בכלורופורם/מתנול 1:1, לפני טעינת כל דגימה חדשה. טען 10 מיקרוליטר מכל דגימה בטיפה, מנסה לרכז את הדגימה בשטח קטן ככל האפשר. הנח את הצלחת אנכית לתוך החדר הראשון עם תמיסת ריצה #1. ודא שהצלחת מקבילה לדופן תא הזכוכית, כדי להשיג מהירות נדידה אחידה.

יחד הלוחות ממוקמים במקביל לקיר האחורי של תאי הזכוכית, וחזיתות הממס אינן רצות רחוק מדי כדי להבטיח שהליפידים מופרדים ביעילות.

לאחר שקו הממס הגיע לסימון הראשון, הסר את הצלחת, יבש אותה והנח אותה בתמיסה השנייה. חזור על שלבים דומים עבור הפתרון השני והשלישי. השאירו את הצלחת בתמיסה עד שחזית הממס תגיע לחלק העליון של הצלחת. לאחר מכן, הסר את הצלחת וייבש אותה בטמפרטורת החדר למשך דקה.

מניחים את הצלחת בתמיסת הנחושת גופרתית למשך שבע שניות. לאחר ייבוש יסודי של הצלחת, אופים אותה בתנור במשך שבע דקות בחום של 170 מעלות צלזיוס. מוציאים את הצלחת מהתנור ומניחים לה להתקרר.

09:18

פרופיל תוכן Triacylglyceride בשומני הכסות בת על ידי כרומטוגרפיה Preparative שכבה דקה וMALDI-TOF המוני ספקטרומטריית

Related Videos

0 Views

12:04

בשכבה דקה כרומטוגרפי (TLC) הפרדות וbioassays של תמציות צמחים כדי לזהות תרכובות Antimicrobial

Related Videos

0 Views

08:59

הגדרת מצע ספציפי עבור מועמדי lipase ו פוספוליפאז

Related Videos

0 Views

02:57

בידוד שומנים מנויטרופילים שמקורם בדם אנושי על ידי הפרדה ביפאזית

Related Videos

0 Views

12:57

בידוד ואפיון כימי ליפידים מחיידקים גראם שליליים

Related Videos

0 Views

10:58

שיטות לחקר ליפידים שינויים נויטרופילים ואת הגיבוש העוקב של נויטרופילים תאיים מלכוד

Related Videos

0 Views

10:23

בידוד אגל ליפידים על ניתוח כמותי ספקטרומטריית מסה

Related Videos

0 Views

11:17

שיטה פשוטה הפיצול מופץ לניתוח מקיף של מטבוליטים, שומנים וחלבונים מדגם יחיד

Related Videos

0 Views

Last updated: 11 July 2026