JoVE Encyclopedia of Experiments
טכניקות ביולוגיות
0 צפיות • 3:43 דק' • July 8th, 2025
כדי לחקור את האינטראקציה של חלבונים עם מולקולות שומנים, התחל עם שני צינורות נימיים. הוסף לאחד מהם חלבוני בדיקה עם תווית צבע פלואורסצנטי בשתי השפופרות ומולקולות שומנים ללא תווית. הנח את הנימים הללו במערך והנח אותם בתוך מכשיר תרמופורזה בקנה מידה מיקרו.
להקרין את הנימים המכילים חלבון באור אינפרא אדום ממוקד, ליצור עליית טמפרטורה בנקודת המוקד המתפזרת דרך התמיסה, ויוצרת שיפוע טמפרטורה בתוך אזור צר המכיל חלבונים המסומנים בפלואורסצנט.
גלאי הקרינה אוסף את אות הקרינה מאותה נקודה של הנימים - שם הלייזר ממוקד. המעבד ממיר את האות ומייצר עלילה של הקרינה היחסית כפונקציה של זמן.
בשיפוע טמפרטורה, חלבונים מסומנים מתחילים לנדוד מהאזור החם יותר לאזור הקריר יותר, ומציגים תרמופורזיס, תופעה של נדידה תלוית טמפרטורה.
עקב תרמופורזיס, עוצמת הקרינה פוחתת בהדרגה עם הזמן ומגיעה למצב יציב, שבו חלבונים מסומנים מגיעים לשיווי משקל.
הקרינו את הנימים המכילים תערובת חלבון-שומנים, ויוצרים שיפוע טמפרטורה.
במהלך התרמופורזה, החלבונים המסומנים הנודדים מקיימים אינטראקציה עם מולקולות השומנים, ויוצרים קומפלקסים של חלבון שומנים עם מסה מולקולרית גבוהה יותר. זה מוביל לעיכוב בתנועתם.
הגירה דיפרנציאלית זו גורמת לשינוי בקרינה, ומאשרת אינטראקציה מוצלחת בין חלבון לשומנים.
לפני תחילת ניתוח, הפעל את מתג ההפעלה בגב מכשיר ה-MST ופתח את תוכנת הבקרה. ודא שהמחשב מחובר להתקן ובמצב "מחובר", והגדר את MST לפני ל- 3 שניות, את MST ל- 30 שניות ואת התאוששות הקרינה ל- לאחר שנייה אחת.
עבור כל צינור נימי, הזן את שם ליגנד המטרה, שם אנליט הליגנד, ריכוז המטרה וריכוז הטיטרציה הגבוה ביותר באמצעות יחס טיטרציה למילוי אוטומטי. בחר טווח של עוצמות MST והזן את הערכים עבור כל חזקה כדי לבדוק את התאמת הכריכה החזקה ביותר.
כדי להכין דגימות MST מסומנות, יש לדלל תמיסת Vam7-octahistidine לריכוז של 200 ננו-מולרית וצבע NTA-Atto 647 לריכוז של 100 ננו-מולרי, שניהם ב-PBS. מערבבים את הצבע Vam7-octahistidine ו-NTA-Atto 647 ביחס נפחי של 1 ל-1, ומניחים לתערובת לשבת בטמפרטורת החדר, מוגנת מפני אור, למשך 30 דקות. בתום הדגירה יש לצנטריפוגה את תערובת הצבע והחלבון, ומאחסנים את התמיסה בחום של 4 מעלות צלזיוס עד מספר שעות לפני השימוש. לאחר מכן, הכינו את הדגימה. קח צבע לליגנד וחשוף את האנליט.
עבור תרמופורזיס MicroScale של הדגימה, פתח את המכשיר והחלק את מתלה הנימים החוצה. טען את נימי הדגימה לתוך המתלה עם הריכוז הגבוה ביותר במצב 1, ובחר את הערוץ האדום בתוכנת הבקרה. לאחר מכן, טען את המתלה במכשיר. לאחר מכן, בחר טווח של הספק MST והתחל את מדידת Cap Scan + MST והעריך את תגובת ההעברה.
מאמר זה מתאר שיטה לחקר אינטראקציות בין חלבונים לליפידים באמצעות MicroScale Thermophoresis (MST). הטכניקה כוללת מעקב אחר נדירתם של חלבונים המסומנים פלואורסצנטית בתגובה למדרג טמפרטורה, מה שמאפשר ניתוח של זיקת קישור (binding affinities) למולקולות ליפידיות.
תרמופורזה במיקרו-קנה מידה (MST) מאפשרת הערכה כמותית של קישור חלבון-ליפיד בתמיסה, ותומכת בתיקוף מטרה (target validation) בשלבי הגילוי המוקדמים על ידי אספקת נתוני זיקה (affinity) המסייעים בהפחתת סיכונים מכניסטיים. השיטה מספקת קריאות הניתנות לשחזור המבוססות על סימון, אשר עוזרות לתעדף מטרות הקשורות לליפידים ולהפחית עמימות בהיפותזות של מודולציה של מסלולים. דבר זה תומך בביטחון חיזוי בזיהוי מובילים (lead identification) עבור מנגנוני מחלה הקשורים לממברנה.
MST משתלבת ברצף הגילוי, החל מסריקת מעורבות מטרה (target engagement) ועד לאופטימיזציה של מובילים (lead optimization), במיוחד עבור מטרות שבהן קישור ליפידים מווסת את התפקוד או את המיקום התאי.
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
עודכן לאחרונה: 29 אוגוסט 2026