29 במרץ 2013
ההליך הניתוחי המשמש ללגרום לאוטם שריר לב בעכברי ניסוי מתחיל בבית חזה שמאלי בין השלישי ואת צלעות 4 כדי להמחיש את המשטח הקדמי של הלב והריאה שמאלית. העורק הכלל שמאלי גבעול, החזה סגור והעכבר מותר להתאושש באופן ספונטני.
המטרה הכוללת של הליך זה היא ליצור אוטם שריר הלב בעכברים. זה מושג על ידי ביצוע חתך עור לאורך קו בית השחי האמצעי. לאחר מכן, הלב נחשף על ידי כריתת בית החזה השמאלית בין הצלעות השלישית והרביעית.
לאחר מכן מתבצעת קשירה בקטע הפרוקסימלי של העורק היורד הקדמי השמאלי. לבסוף, החזה נסגר והעכבר מוחזר לכלוב להתאוששות ספונטנית. בסופו של דבר, ניתן לבחון את אוטם שריר הלב באמצעות אלקטרוקרדיוגרפיה או אקו לב.
הדגמה חזותית של שיטה זו היא קריטית מכיוון שקשה ללמוד את קשירת העורק הכלילי קרוב לשמאל. זיהום תקין בשריר הלב מובטח על ידי הצבת הקשירה ממש מתחת לאורקל של השמאל. אבל חשוב לא לנקב את ה-AUM השמאלי מכיוון שהוא עלול לגרום לדימום קטלני.
כדי להתחיל בניתוח, יש להרדים עכבר בן שישה שבועות ומעלה בשאיפה עם 2 עד 5% פלואור. בצע צביטה בבוהן כדי לוודא שהחיה מורדמת מספיק. לאחר שהעכבר מורדם היטב, העבירו אותו לאזור הניתוח והניחו אותו.
הגב שלו על כרית חמה. כדי לשמור על טמפרטורה קבועה של 37 מעלות צלזיוס, אבטח את העכבר למכשיר אינטובציה עם תא שדה איזוף פלואור באמצעות צינור בקוטר 0.2 ס"מ ותערובת של 2% פלואור באוויר. הכנס את הצינור לקנה הנשימה של העכבר.
לגלח את החזה האישי בצד שמאל, ולאחר מכן לחטא את האזור עם בטאדין. ואז 75% אתנול שלוש פעמים כל אחד. מרחו גם משחה עיניים על עיני העכבר באמצעות מספריים סטריליים.
בצע חתך של 1.5 סנטימטר לאורך קו בית השחי האמצעי. גישה זו מאפשרת הערכה אקו לב לאחר מכן. משתמשים במספריים ולא באזמל כדי למנוע פגיעה ברקמה הבסיסית בעכברים צעירים אלה.
לאחר מכן באמצעות מלקחיים קהים של כלי הדם, נתק והחזיר את השריר הפרקורטיאלי מדופן החזה. בצע כריתת בית חזה שמאלי בין הצלעות השלישית והרביעית כדי לדמיין את המשטח הקדמי של הלב והריאה השמאלית. נוסף. החזר את דופן בית החזה באמצעות מפסק עפעפיים מתאים.
על מנת לשפר את ההדמיה והנגישות באמצעות מלקחיים ומספריים קהים, הסר את קרום הלב. לאחר מכן, הכינו תפר ומחט של שבע אפס לון לקשירת העורק. קשרו את העורק הכלילי השמאלי על ידי הנחת המחט מתחת לעורק עם רצועת שריר הלב בין הקשירה לעורק.
סגור את החזה על ידי הנחת שני תפרים על הצלעות השלישית והרביעית. הפחת את ריכוז הפלואור של איזו ל-0.5% והשתמש בחמישה תפרים אפס אתילן כדי לסגור את העור בשלושה תפרים. לשיכוך כאבים לאחר הניתוח, יש לתת זריקה תוך צפקית של 0.05 מיליגרם לק"ג בופרנורפין.
לבסוף, הניחו את העכבר בכלוב חם להתאוששות ספונטנית וספקו 0.6 מיליגרם למיליליטר בופרנורפין במי השתייה. עקוב מקרוב אחר העכבר במשך 24 השעות הראשונות לאחר הניתוח כדי לחקור את ההשפעות של אוטם שריר הלב. הדרך הפולשנית הטובה ביותר היא להעריך את תפקוד הלב באמצעות אקו לב מספר ימים לאחר הניתוח.
באמצעות פרוטוקול זה, קשירת העורק הכלילי השמאלי גורמת לאיסכמיה של שריר הלב המערבת כ-40% מהחדר השמאלי. זה גורם לשינויים משמעותיים באק"ג במקטע ST כפי שמוצג באק"ג מייצגים אלה שנמדדו לפני ואחרי הקשירה. לפני אוטם שריר הלב.
מתחמי QRS שנרשמו עם ה-ECG הם צרים וקצרים. לאחר אוטם שריר הלב, יש גובה ברור של מקטע ST שקבור במתחמי QRS כדי להפוך את ה-QRS להרבה יותר רחב וגבוה מאלה שתועדו לפני אוטם שריר הלב. כדי לחקור את ההשפעות של אוטם שריר הלב, העריכו את תפקוד הלב באמצעות אקו לב מספר ימים לאחר ניתוח MI.
מוצגת כאן הקלטת אקו לב שנלקחה מעכברים שנותחו בדמה. בניגוד להתכווצויות הלב הטובות שנראו בעכברים שנותחו בדמה. בעכברי MI.
72 שעות לאחר MI, יש אקינזיה מורגשת בדופן החדר החופשי השמאלי בשלב הסיסטולי. לאחר צפייה בסרט זה, אתם אמורים להבין היטב את מודל העכבר הזה לאוטם שריר הלב, ואתם אמורים להיות מסוגלים להגדיר אותו במעבדה שלכם.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מתאר פרוצדורה כירורגית להשראת התקף לב בשעירים, הכוללת תרוקטומי שמאלי וחסימת העורק הכלילי הקדמי השמאלי. לאחר הפרוצדורה, בית החזה נסגר, והשעיר מורשה להתאושש באופן ספונטני.
This mouse model of myocardial infarction provides a reproducible preclinical system for evaluating cardiac pathophysiology and therapeutic interventions. It enables target validation and mechanistic de-risking in cardiovascular drug discovery by simulating human ischemia-reperfusion injury. The model supports lead identification and predictive confidence in early-stage R&D pipelines.
The model integrates into cardiovascular discovery workflows from target validation to preclinical efficacy testing.