$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
התחילו עם עכבר מורדם וחסר חיסון שחסר תאים חיסוניים.
טפל בעכבר במינון תת-קטלני של קרני רנטגן כדי לסלק תאי גזע קיימים ממח העצם.
נתח את העכבר והעביר שברים של כבד עוברי אנושי ורקמת תימוס בין הכליה לקפסולה שלה.
סגור את החתך.
רקמת הכבד והתימוס המושתלים גדלים ויוצרים אורגנואידים, שהם מצבורי תאים הדומים לאיבר.
לאחר ההחלמה, הזרקו תאי גזע המטופויאטיים אנושיים או HSCs לווריד הזנב.
HSCs מוזרקים נודדים לאורגנואיד התימוס ולמח העצם, ומתמיינים לתאי חיסון אנושיים שונים.
ספקו מים בתוספת אנטיביוטיקה לעכבר כדי להרוג את חיידקי המעיים הקיימים.
באמצעות צינור דרך הפה, הכניסו חיידקי צואה אנושיים ישירות למעיים של העכבר כדי לקדם קולוניזציה של חיידקים.
התוצאה היא פיתוח מודל עכברי BLT כפול המואנש הכולל מערכת חיסון אנושית וחיידקי מעיים.
כדי להשתיל את רקמות הכבד והתימוס בקפסולת הכליה השמאלית, ראשית, הניחו את העכבר במכסה המנוע. ביום הניתוח, טפל בעכברים בהקרנה תת-קטלנית של כל הגוף במינון של 12 סנטי אפור לגרם משקל גוף. גלח כל עכבר סביב הצד הצדדי והמדיאלי השמאלי לאחר אישור רמת טשטוש מתאימה. מרחו משחת עיניים על עיני החיה, והדביקו תג אוזן לפי הצורך, וחטאו את העור בשלושה קרצוף יוד ו-70% איזופרופנול.
כאשר העור מוכן, השתמש במלקחיים כדי להעמיס שבר רקמת כבד עוברי אנושי בגודל 1 עד 1.6 מילימטר לתוך טרוקר, ואחריו שבר רקמת תימוס עוברי אנושי אחד בקוטר 1 עד 1.6 מילימטר. השתמש במלקחיים כדי להרים את העור, והשתמש באזמל כדי ליצור חתך אורכי קטן בעור. הרחיבו את החתך ל -1.5 עד 2 סנטימטרים בצד שמאל של העכבר, והשתמשו במלקחיים כדי להרים את שכבת השריר. השתמש במספריים כדי לפתוח את שכבת השריר לאורך, להאריך את החתך לפי הצורך, כדי לחשוף את הכליה ולאחוז בעדינות ברקמת השומן המקיפה את הכליה.
השתמש באזמל כדי לבצע חתך של 1 עד 2 מילימטר בקצה האחורי של קפסולת הכליה והכנס באיטיות את הטרוקר הטעון מראש לתוך החתך, במקביל לציר הארוך של הכליה. לשחרר את הרקמות בין קפסולת הכליה לכליה, ולהחזיר את הכליה והמעי למקומם הרגיל. לאחר מכן, השתמש בתפרים כדי לסגור את שכבת השריר ובסיכות כירורגיות כדי לסגור את העור. הכניסו את העכבר לכלוב מיקרו-מבודד עם ניטור עד לשכיבה מלאה. שש שעות לאחר הניתוח, הניחו את העכברים מתחת למנורת חום וחטאו את הסיפורים עם 70% איזופרופנול.
להזריק 1.5 עד 5 x 105 5 רקמת כבד עוברי אנושית חיובית CD34 תאי גזע המטופויאטיים מבודדים ב-200 מיקרוליטר של PBS לווריד זנב מורחב אחד לכל חיה. לאחר מכן, עצרו כל דימום בלחץ עדין והחזירו את העכברים לכלוב הביתי שלהם. 9 עד 12 שבועות לאחר הניתוח, השתמש בריסון חרוט פלסטיק בגודל מתאים כדי לבודד רגל אחת של עכבר אחד שהואנש ולרסס את הצד המדיאלי של הרגל המבודדת ב-70% איזופרופנול. מורחים אנטיביוטיקה ומשחה לשיכוך כאבים על אתר האיסוף.
באמצעות מחט בגודל 25 המוחזקת בזווית של 90 מעלות, נקב את הווריד הספנוס כדי לאסוף 50 עד 100 מיקרוליטר דם לתוך צינור איסוף דם מצופה EDTA. כאשר הושג נפח דם מתאים, הפעל לחץ על המקום עם חתיכת הגזה הסטרילית כדי לעצור את הדימום לפני החזרת העכבר לכלוב שלו. לאחר מכן, השתמש בדגימת הדם ההיקפית שנאספה כדי להעריך את רמת הבנייה מחדש של תאי חיסון אנושיים על ידי זרימה ציטומטרית, תוך שימוש בנוגדנים נגד CD45, CD3, CD4, CD8, CD19 ועכבר CD45.
לאיסוף דגימות צואה טריות, הניחו שקיות נייר בודדות שעברו חיטוי במכסה אדים, והניחו עכבר אחד בכל שקית עד שכל בעל חיים עושה את צרכיו. לאחר מכן, החזירו את העכברים לכלוב שלהם, והשתמשו במלקחיים סטריליים כדי להעביר כל דגימת צואה לצינור אחד של 1.5 מיליליטר לכל עכבר לאחסון של מינוס 80 מעלות צלזיוס.
בתום הטיפול האנטיביוטי בן 14 הימים, החליפו את מי השתייה למים מעוקרים והעבירו את העכברים לכלוב חיטוי חדש. 24 ו-48 שעות לאחר הפסקת האנטיביוטיקה, מלאו מקורות מוכנים כראוי של חומר השתלת מיקרוביוטה צואתית והעבירו את הדגימות לתא אנאירובי בתנאים אנאירוביים.
כדי לבצע השתלת צואה, העבירו 200 מיקרוליטר של חומר השתלת מיקרוביוטה צואתית דרך הפה לכל חיית ניסוי, ופזרו את כל החומר המופשר שנותר על פרוות העכברים המואנשים או על מצעי הכלוב.