$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
קחו למשל פרוסות מוח של עכבר בהיפוקמפוס המכילות נוירונים CA3 הנגועים בווקטור ויראלי רקומביננטי.
הגנום הנגיפי מבטא ערוץ המופעל על ידי אור המתויג עם מדווח פלואורסצנטי ומיקרו-RNA המווסת את הביטוי של תעלות סידן מגודרות מתח.
הניחו פרוסה בתא הקלטה בתנאים חשוכים. באמצעות מיקרוסקופ, זהה את נוירוני CA3 הפלואורסצנטיים.
הדבק אלקטרודת הקלטה על נוירון CA1 שמקבל קלט מנוירונים CA3 נגועים. קרע את הממברנה כדי להקליט זרמים יוניים תוך תאיים.
החל מעכב כדי לחסום קולטנים מעכבים של נוירוטרנסמיטורים, ומאפשר רק אותות מעוררים.
באמצעות פולסי אור, מגרים את הערוצים המופעלים באור בתאי העצב CA3 הנגועים, ויוצרים פוטנציאל פעולה.
בעכברים לא נגועים, פוטנציאל הפעולה מפעיל תעלות סידן מגודרות מתח, וגורם לזרם יוני סידן המעורר שחרור נוירוטרנסמיטרים. המוליכים העצביים מפעילים זרמים פוסט-סינפטיים מעוררים, או EPSCs, בתאי העצב CA1.
בעכברים נגועים, ההפחתה בתיווך microRNA של תעלות סידן מגודרות מתח מביאה לעיכוב EPSC.
עבור פרוטוקול זה, השתמש בבעל חיים ש-15 יום לפני או יותר, הוזרק rAAV1/2 למוח, על פי פרוטוקול שפורסם בעבר על ידי Cetin and Company. בודדו את המוח וצרו פרוסות מוח חריפות עם ויברטומה וגז aCSF קר כקרח.
אסוף את הפרוסות של אזור העניין, ומזער את החשיפה שלהן לאור כדי למנוע הפעלת הבדיקה האופטוגנטית. תנו לפרוסות להתאושש במשך 30 דקות בחום של 37 מעלות צלזיוס באותו aCSF. השתמש בתא שתוכנן במיוחד להחזקת פרוסות מוח. לאחר מכן, החזירו את הפרוסות לטמפרטורת החדר שם הן יישארו בריאות במשך שש עד שמונה שעות.
כדי להמשיך, העבירו פרוסה לתא ההקלטה, והיכו אותה בשני מיליליטר לדקה של aCSF. לאחר מכן, בדוק בקצרה את האות של המדווח הפלואורסצנטי המבוטא כדי לוודא את המיקום ועוצמת הזיהום. לאחר מכן, מלאו אלקטרודת תיקון בתמיסה התוך תאית.
כעת, תחת תאורת אינפרא אדום, השיגו תצורת תא שלם אטומה היטב על נוירון שמקבל קלט סינפטי מהנוירונים הנגועים. ניתן להשאיר את התנגדות הסדרה ללא פיצוי, אך היא צריכה להיות קבועה ונמוכה. לדוגמה, אם נוירונים פירמידליים CA3 נדבקו, תיקון נוירונים פירמידליים בדרכי הפרוקסימלי עד המדיאלי של אזור CA1.
כאשר התאים מתחילים להיראות מכווצים או נפוחים, כאשר התיקון נעשה קשה או שהטלאים אינם יציבים, אז הפרוסות שנבחרו אינן בריאות מספיק כדי לתעד מהן.
לאחר מכן, השתמש בפרמקולוגיה כדי לבודד את הזרמים הסינפטיים הנחקרים. לדוגמה, אם המטרה היא לחקור העברה סינפטית מעוררת, חסום העברה סינפטית מעכבת על ידי הוספת ביקוקולין לאמבטיה.
לאחר מכן, עוררו זרמים סינפטיים כגון זרמים פוסט-סינפטיים מעוררים באמצעות לייזר כחול של 473 ננומטר המחובר לסיב אופטי הממוקם על הסומטה של הנוירונים הנגועים. אל תכוון את הלייזר אל האקסונים של הנוירון.
לדוגמה, הימנע מלשפוך אור על הביטחונות של שפר. דפולריזציה ישירה של האקסונים אינה רצויה. לאחר מכן, התאם את אורך הגירוי למינימום כדי להפחית את האפשרות לעורר יותר מפוטנציאל פעולה אחד לכל פולס אור.
לאחר מכן, חדד את עוצמת הלייזר כדי לעורר זרם סינפטי קטן אך ניתן לזיהוי בבירור. לדוגמה, עבור העברה סינפטית מעוררת בין נוירונים פירמידליים CA3 ו-CA1, התאם את עוצמת הלייזר כדי לעורר זרמים סינפטיים של 20 עד 50 פיקואמפים.