Name: זלוף מדרדר ומילוי בכלי הדם הכליליים עכבר כהכנה מיקרו טומוגרפיה ממוחשבת והדמיה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: למדו שיטת זלוף מדרדר ומילוי כלי דם כליליים בעכברים באמצעות Microfil לצורך הדמיית מיקרו-CT. טכניקה זו מאפשרת חקר מבנה כלי הדם הכליליים ומחלות לב בדגמי עכברים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים לד&quot;ר קלי סטיבנס לניסויים הראשונים של פרוטוקול, ד&quot;ר מיכאל סימונס, Hauch ד&quot;ר קיפ, וחברי שתי המעבדות שלהם לדיון בכלל. עבודה זו היא תמיכה על ידי NIH מענקים HL087513 ו P01 HL094374.

1. הכנות לפני תחילת <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממלאים כל צד של מנגנון זלוף לחץ עם חיץ vasodilator (4mg / L Papaverine + 1G / L אדנוזין ב PBS) או Paraformaldehyde 4% (PFA) ב PBS, בהתאמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להכין מזרק אינסולין 1/2cc (עם 29G המצורפת לצמיתות ½ &quot;מחט) על ידי ממלא אותו עם 0.1 מ&quot;ל של הפרין 1:100 (מניות 5000U/ml) וכיפוף את המחט בזווית 120 מעלות ~ עם שיפוע כלפי מעלה. האם אותו הדבר עם המזרק 1 מ&quot;ל (עם מחט 26G &quot;½) מלא פתרון 0.3 מ&quot;ל KCl רוויה. </li></ol> 2. חשיפת לב cannulating אבי העורקים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר באמצעות הרדמה של בחירה. (אנו משתמשים מנת יתר של תערובת קטמין / Xylazine:. הזרקת ה-IP של קטמין מ&quot;ג / ק&quot;ג 130 ו 8.8 מ&quot;ג / ק&quot;ג Xylazine ב מלוחים) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להצמיד את העכבר הרדים על מגש הניתוחים, את הצד הגחוני. פתח את חלל הבטן עם חתך קו האמצע ו לחזור בו העורכדי לחשוף את האיברים. להעביר את המעיים בצד אחד לחשוף באזור האחורי של הווריד הנבוב (PVC). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק פתרון הפרין ל PVC. כפי שאתה לחלץ את המחט, מכסים את החור עם מחט המוליך כותנה שקצהו כדי למנוע דליפת והחזק אותו במשך כמה שניות עד קרישי קיר PVC, אטמים. המתן 2-3 דקות הפרין לפזר ברחבי מחזור העכבר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח את הסרעפת ואת בית החזה, כך שתוכל לראות את הלב הפועם. לאט לאט להזריק פתרון KCl ב PVC עד המעצרים לב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את כל האיברים מתחת לסרעפת, ולהסיר את החלק האחורי של העכבר, עוזבים את האזור הקדמי של הסרעפת ללא פגע. הסר את הסרעפת, נזהר לחתוך PVC ליד הסרעפת כך את החלק הפרוקסימלי ללב קל לאתר בשלבים הבאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את הקצוות של אבי העורקים. מניחים 1 אורך תפר ארוכה של 6-0 משי קלוע אבי העורקים מתחת כמה מילימטרים הקדמי הלוך ושובמ &#39;בסוף לחתוך כך תפר כפול לאחור על עצמו. חותכים את תפר עוד במחצית אז יש 2 חתיכות של תפר תחת אבי העורקים. הכנס angiocatheter לתוך סוף חתך של אבי העורקים (איור 1 א &#39;, ב&#39;) ולקשור כל תפר כפול עם הקשר להחזיק angiocatheter במקום ולמנוע כל גב הלחץ בתוך העורקים מ דולף החוצה. </li></ol> 3. זלוף הזרקת Microfil <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את angiocatheter למנגנון לחץ זלוף (איור 2) ולהתחיל המרוססת כלי עם חיץ vasodilator (איור 1 ג) על ידי שאיבת מנגנון זלוף ללחץ הנהיגה של 100-110 מ&quot;מ כספית. בדוק כי המאגר המרוססת דרך מהתקפי על ידי הבטחת נוזלי היציאה מ-PVC. המשך perfuse לפחות 3 דקות או עד שהנוזל היוצא PVC ברור. (המשך הצעדים הבאים תוך המרוססת.) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח את הצלעות והגב סיכה (או להסיר) את בית החזה כדי לחשוף את הלב. נחשף פעם אחת, להיות CAreful לא לתת ללב להתייבש על ידי כיווץ טיפות חיץ אל הלב מתוך קטע חיץ ספוג של גזה. לפנות את התימוס לחשוף את קשת אבי העורקים. ולקשור את שלושת הענפים העיקריים אבי העורקים באמצעות 6-0 תפר משי קלוע כדי להבטיח נוזל מוטה דרך מהתקפי ולא באמצעות אלה, כלי גדולים יותר התנגדות נמוכה (איור 1D). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Perfuse הלב עם מקבע במשך 15 דקות, ואז לשטוף עם חיץ התרחבות לפחות 2 דקות. בינתיים, ולקשור גם Anterior הנבוב Cavae למנוע Microfil מ דולף מן הלב לאחר ההזרקה (איור 1E). מקום התפרים סביב PVC, אבי העורקים, אך לא להדק אותם עד לאחר מילוי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן Microfil (כמפורט בטבלה של ריאגנטים) ולטעון אותו לתוך מזרק 1 מ&quot;ל. מלאו את מגש לנתיחה עם מים מספיק כדי לכסות את הקטטר (כדי למנוע כניסת בועות אוויר בעת מעבר בין צינורות טפטוף כדי מזרק Microfil). נתק את זלוף APparatus מ קטטר וחבר את המזרק Microfil מוכן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מזריקים לתוך אבי העורקים Microfil עד מילוי טוב של העורקים הכליליים ניכר (תאנים 1F, 3A): העורקים ימלא הראשונה ולאחר מכן Microfil יהיה &quot;לשפוך&quot; לתוך הנימים כמו גלי רקמות עם צבע Microfil. פעם אחת בצד ורידים, אופי הידרופובי של Microfil גורם לו בתחילה יהפכו לכדורים עצמאיים כפי שהוא עולה מן הדם הקטנים יותר. המשך להזרים Microfil עד טור מתמשך ממלא את הוורידים. מילוי מלא יהיה לידי ביטוי כאשר Microfil היא רציפה בתוך הכלים, והוא היציאה דרך PVC. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מילוי הושלמה, מהר להדק את התפרים שהונחו בעבר סביב PVC, אבי העורקים, כדי למנוע את אופי גמיש של רקמת לב מ לסחוט Microfil את הכלים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכסים את הלב עם גזה רטוב (ספוג עם מים ממגש לנתח) כדי למנוע ייבוש החוצה, ולתת לו לשבת במשך שעה כ 1 בטמפרטורת החדר עד Microfil יש מפולמר. למנוע לחצים חיצוניים על הלב במהלך תהליך פילמור, כמו הרמת או הפיכת לב, בניסיון לקבל תצוגה מוקדמת של כלי מלאים בחלק האחורי של הלב. זה עלול לסחוט Microfil מכלי כמה לאזור גמיש יותר של הלב, גורמת הפסקות Microfil. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הלב ופוסט לתקן את זה PFA 4% בין לילה ב 4 ° C. לאחר מכן לאחסן באתנול 70% ב 4 ° C. בכלי הדם בלב מוכן כעת הדמיה μCT. </li></ol> 4. נציג תוצאות כלי אשר perfused ביעילות Microfil יהיה Microfil מתמשך, רצוף לאורך כל הכלים (איור 3 א). מידת מילוי של כלי הכליליים יכול להישפט על ידי העין, ורידים נמצאים epicardially 18, ניתן להבחין בקלות (איור 3 א &#39;, ראש חץ), עורקים,אשר intramyocardial יותר 18, הם גם נראים דרך פני השטח של הלב (איור 3 א, חץ). מילוי נימי ניכר גם, כמו רקמת לב יש צפיפות גבוהה מאוד של נימי דם, ולכן, כאשר מילוי נימי דם, רקמת לב לא להוריד את המים עם הצבע של Microfil (איור 3 א, כוכב). לכן, כל רשתות כלי דם שלא הצליחו למלא יהיה מורגש בשל היעדר Microfil (איור 3 ב &#39;, ג&#39;). שיבושים ב Microfil (כוכביות איור 3 ב) לעיתים קרובות מופיעים בגלל האופי ההידרופובי של Microfil גורמת לו להתכווץ לתוך עצמו ולגרום &quot;נשבר&quot; בתוך כלי מלא. אלה &quot;הקלות&quot; אפשר לצמצם אם הלחץ בתוך כלי הדם נשמרת דרך נאותה לקשור המראות מנקודות היציאה של כלי הדם של הלב. שיבושים אחרים יכולה להיגרם על ידי בועות אוויר בתוך microfil. כדי למנוע החדרת אוויר, לוודא angiocatheter טבול במים באופן מלא בעת מעבר מ זלוף AP<html> paratus כדי מזרק Microfil. אם בועת אוויר הוא הציג, זה לעתים קרובות ניתן להסיר רק על ידי המשך זלוף Microfil עד הבועה כבר עבר דרכו אל מחוץ לכלי הכליליים. רשתות כלי דם לא יכול למלא לחלוטין אם חלק של המיטה כלי דם חסום (איור 3 ב, חץ). בעוד הפרין מונע היווצרות קרישי דם, חסימות פה ושם, עדיין עשויים להתרחש עקב זלוף הפרין שלם לפני תחילת ההליך, או עקב גורמים לא ידועים אחרים. אם החסימה מתרחשת, קיימת, למיטב ידיעתנו, אין שיטה פירוק החסימה כדי להשלים את מילוי כלי הדם. מילוי שלם יכולים גם לגרום ללחץ אם מעט מדי נעשה שימוש במהלך מילוי, כמו Microfil לא ייאלצו את כל כלי הדם מיטות ורשתות נימי (איור 3 ג). לעומת זאת, יותר מדי לחץ יכול לגרום נימים לפרוץ ו extravasate Microfil אל הרקמות המקיפות (איור 3D). files/ftp_upload/3740/3740fig1.jpg &quot;alt =&quot; איור 1 &quot;/&gt; באיור 1. סקירה של תוכנית זלוף Microfil. (א) אבי העורקים ו PVC נחתכים ברמה של כ הסרעפת. (ב) באבי העורקים עולה הוא cannulated עם angiocatheter. (ג) המאגר הוא התרחבות perfused דרך כלי, המונעים על ידי מנגנון לחץ זלוף (לא בתמונה), בזמן (ד &#39;) שלושה סניפים מרכזיים מחוץ לקשת אבי העורקים הם ligated. (ה) PFA 4% הוא perfused דרך מהתקפי תוך שתי Cavas הקדמי הנבוב הם ligated. (F) באמצעות מזרק, Microfil הוא perfused דרך מהתקפי עד הוא ציין היציאה מ-PVC. <img src="/files/ftp_upload/3740/3740fig2.jpg" alt="איור 2"/> איור 2. Apparatus זלוף. שתי צלוחיות Erlenmeyer, כל אחד מלא חיץ בין התרחבות או 4% PFA, הם הצטרפו בלחץ דרך צינורות המחוברים עדיין אקדחים וכלי נשק שלהם. המערכת נמצאת בלחץ באמצעות שימוש השאיבה שלהנורה, ואת מד הלחץ מחובר אחד הבקבוקים על מנת לאפשר ניטור ותחזוקה של לחץ. צינורות קטנים להרחיב באמצעות פקקים גומי לתוך הנוזל בבקבוק אחד. הלחץ להיכנס מן המשאבות אקדחים נוזל בבקבוק אחד את אלה צינורות קטנים יותר. הצינורות ואז למזג את שסתום בו רק נוזל לזרום בקבוק אחד בכל פעם. <img src="/files/ftp_upload/3740/3740fig3.jpg" alt="איור 3"/> איור 3. לטעום לבבות Microfilled. (א) כלים מלאים גם יהיו כמה (אם בכלל) הפסקות Microfil, ואת רקמת לב יהיה צבע בגוון של Microfil בשל נימים מלא (כוכב, ולהשוות עם C). שני העורקים (חץ - שמאל עורק יורד קדמי) וורידים (ראש חץ - עורק כלילי שמאלי) נראים דרך פני השטח את הלב. (ב) לב עם הפסקות microfil (כוכביות) וכן חסימות כלי כמה שמנע כניסת מיקרופון המלאrofil חדירה. כלי חסומים להישאר אדום (חץ), כמו הדם לא היו סמוקות החוצה בתהליך זלוף. (ג) לב עם כלי שמולאו באופן חלקי. שימו לב רקמות לא לקחה על הצבע הצהוב של Microfil, המציין Microfil לא חדרה אל תוך הנימים. (ד) שם לב נימים פרץ במהלך מילוי, גרימת Microfil לדלוף אל הרקמות המקיפות (החץ).

<ol><li>Couffinhal, T., Dufourcq, P., Barandon, L., Leroux, L., Duplaa, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+to+study+angiogenesis+in+the+context+of+cardiovascular+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Front.+Biosci%22%5BJournal%5D)">Mouse models to study angiogenesis in the context of cardiovascular diseases.</a> Front. Biosci. 14, 3310-3325 (2009).</li>
<li>Zagorchev, L., Mulligan-Kehoe, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+imaging+of+vessels+in+mouse+models+of+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Radiol%22%5BJournal%5D)">Molecular imaging of vessels in mouse models of disease.</a> Eur. J. Radiol. 70, 305-311 (2009).</li>
<li>Krucker, T., Lang, A., Meyer, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+polyurethane-based+material+for+vascular+corrosion+casting+with+improved+physical+and+imaging+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">New polyurethane-based material for vascular corrosion casting with improved physical and imaging characteristics.</a> Microsc. Res. Tech. 69, 138-147 (2006).</li>
<li>Murakami, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+flow+patterns+in+the+rat+pancreas%3A+a+simulative+demonstration+by+injection+replication+and+scanning+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">Blood flow patterns in the rat pancreas: a simulative demonstration by injection replication and scanning electron microscopy.</a> Microsc. Res. Tech. 37, 497-508 (1997).</li>
<li>Icardo, J. M., Colvee, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origin+and+course+of+the+coronary+arteries+in+normal+mice+and+in+iv%2Fiv+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Anat%22%5BJournal%5D)">Origin and course of the coronary arteries in normal mice and in iv/iv mice.</a> J. Anat. 199, 473-482 (2001).</li>
<li>Beighley, P. E., Thomas, P. J., Jorgensen, S. M., Ritman, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+architecture+of+myocardial+microcirculation+in+intact+rat+heart%3A+a+study+with+micro-CT%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Exp.+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">3D architecture of myocardial microcirculation in intact rat heart: a study with micro-CT.</a> Adv. Exp. Med. Biol. 430, 165-175 (1997).</li>
<li>Bentley, M. D., Ortiz, M. C., Ritman, E. L., Romero, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+microcomputed+tomography+to+study+microvasculature+in+small+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The use of microcomputed tomography to study microvasculature in small rodents.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1267-R1279 (2002).</li>
<li>Jorgensen, S. M., Demirkaya, O., Ritman, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+imaging+of+vasculature+and+parenchyma+in+intact+rodent+organs+with+X-ray+micro-CT%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional imaging of vasculature and parenchyma in intact rodent organs with X-ray micro-CT.</a> Am. J. Physiol. 275, H1103-H1114 (1998).</li>
<li>Marxen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroCT+scanner+performance+and+considerations+for+vascular+specimen+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Phys%22%5BJournal%5D)">MicroCT scanner performance and considerations for vascular specimen imaging.</a> Med. Phys. 31, 305-313 (2004).</li>
<li>Zagorchev, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro+computed+tomography+for+vascular+exploration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Angiogenes.+Res%22%5BJournal%5D)">Micro computed tomography for vascular exploration.</a> J. Angiogenes. Res. 2, 7-7 (2010).</li>
<li>Heinzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hierarchical+microimaging+for+multiscale+analysis+of+large+vascular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroimage%22%5BJournal%5D)">Hierarchical microimaging for multiscale analysis of large vascular networks.</a> Neuroimage. 32, 626-636 (2006).</li>
<li>Dedkov, E. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synectin%2Fsyndecan-4+regulate+coronary+arteriolar+growth+during+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">Synectin/syndecan-4 regulate coronary arteriolar growth during development.</a> Dev. Dyn. 236, 2004-2010 (2007).</li>
<li>Gossl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+anatomy+and+hemodynamic+characteristics+of+vasa+vasorum+in+the+walls+of+porcine+coronary+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec.+A.+Discov.+Mol.+Cell.+Evol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Functional anatomy and hemodynamic characteristics of vasa vasorum in the walls of porcine coronary arteries.</a> Anat. Rec. A. Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. 272, 526-537 (2003).</li>
<li>Rodriguez-Porcel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+myocardial+microvascular+3D+architecture+in+experimental+hypercholesterolemia%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Altered myocardial microvascular 3D architecture in experimental hypercholesterolemia.</a> Circulation. 102, 2028-2030 (2000).</li>
<li>Bell, R. M., Mocanu, M. M., Yellon, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrograde+heart+perfusion%3A+The+Langendorff+technique+of+isolated+heart+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Cell.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Retrograde heart perfusion: The Langendorff technique of isolated heart perfusion.</a> J. Mol. Cell. Cardiol. 50, 940-950 (2011).</li>
<li>Skrzypiec-Spring, M., Grotthus, B., Szelag, A., Schulz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolated+heart+perfusion+according+to+Langendorff---still+viable+in+the+new+millennium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Toxicol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Isolated heart perfusion according to Langendorff---still viable in the new millennium.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 55, 113-126 (2007).</li>
<li>Toyota, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+endothelial+growth+factor+is+required+for+coronary+collateral+growth+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Vascular endothelial growth factor is required for coronary collateral growth in the rat.</a> Circulation. 112, 2108-2113 (2005).</li>
<li>Lavine, K. J., Long, F., Choi, K., Smith, C., Ornitz, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hedgehog+signaling+to+distinct+cell+types+differentially+regulates+coronary+artery+and+vein+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Hedgehog signaling to distinct cell types differentially regulates coronary artery and vein development.</a> Development. 135, 3161-3171 (2008).</li>
<li>Cheema, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adventitial+microvessel+formation+after+coronary+stenting+and+the+effects+of+SU11218%2C+a+tyrosine+kinase+inhibitor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Adventitial microvessel formation after coronary stenting and the effects of SU11218, a tyrosine kinase inhibitor.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 47, 1067-1075 (2006).</li>
<li>Lametschwandtner, A., Lametschwandtner, U., Weiger, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+electron+microscopy+of+vascular+corrosion+casts--technique+and+applications%3A+updated+review%5BTitle%5D)+AND+%22Scanning+Microsc%22%5BJournal%5D)">Scanning electron microscopy of vascular corrosion casts--technique and applications: updated review.</a> Scanning Microsc. 4, 889-941 (1990).</li>
<li>Schneider, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+3D+visualization+and+quantification+of+murine+bone+and+bone+vasculature+using+micro-computed+tomography+and+vascular+replica%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">Simultaneous 3D visualization and quantification of murine bone and bone vasculature using micro-computed tomography and vascular replica.</a> Microsc. Res. Tech. 72, 690-701 (2009).</li>
<li>Manelli, A., Sangiorgi, S., Binaghi, E., Raspanti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+analysis+of+SEM+images+of+corrosion+casting+using+adaptive+stereo+matching%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy+Research+and+Technique%22%5BJournal%5D)">3D analysis of SEM images of corrosion casting using adaptive stereo matching.</a> Microscopy Research and Technique. 70, 350-354 (2007).</li>
<li>Alanentalo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tomographic+molecular+imaging+and+3D+quantification+within+adult+mouse+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Meth%22%5BJournal%5D)">Tomographic molecular imaging and 3D quantification within adult mouse organs.</a> Nat. Meth. 4, 31-33 (2007).</li>
<li>Quintana, L., Sharpe, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aQuintana%2C+L+%22Optical+projection+tomography+of+vertebrate+embryo+development%22">Optical projection tomography of vertebrate embryo development</a>. , Cold Spring Protoc. 586-594 (2011).</li>
<li>Walls, J. R., Coultas, L., Rossant, J., Henkelman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Analysis+of+Vascular+Development+in+the+Mouse+Embryo%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Analysis of Vascular Development in the Mouse Embryo.</a> PLoS ONE. 3, e2853-e2853 (2008).</li>
<li>Chalothorn, D., Clayton, J. A., Zhang, H., Pomp, D., Faber, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collateral+density%2C+remodeling%2C+and+VEGF-A+expression+differ+widely+between+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Collateral density, remodeling, and VEGF-A expression differ widely between mouse strains.</a> Physiol. Genomics. 30, 179-191 (2007).</li>
<li>Behm, C. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Imaging+of+Endothelial+Vascular+Cell+Adhesion+Molecule-1+Expression+and+Inflammatory+Cell+Recruitment+During+Vasculogenesis+and+Ischemia-Mediated+Arteriogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Molecular Imaging of Endothelial Vascular Cell Adhesion Molecule-1 Expression and Inflammatory Cell Recruitment During Vasculogenesis and Ischemia-Mediated Arteriogenesis.</a> Circulation. 117, 2902-2911 (2008).</li>
<li>Carr, C. L., Lindner, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+perfusion+imaging+with+contrast+echocardiography%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Cardiol.+Rep%22%5BJournal%5D)">Myocardial perfusion imaging with contrast echocardiography.</a> Curr. Cardiol. Rep. 10, 233-239 (2008).</li>
<li>Leong-Poi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Endogenous+and+Therapeutic+Arteriogenesis+by+Contrast+Ultrasound+Molecular+Imaging+of+Integrin+Expression%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Assessment of Endogenous and Therapeutic Arteriogenesis by Contrast Ultrasound Molecular Imaging of Integrin Expression.</a> Circulation. 111, 3248-3254 (2005).</li>
<li>Villanueva, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbubbles+Targeted+to+Intercellular+Adhesion+Molecule-1+Bind+to+Activated+Coronary+Artery+Endothelial+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Microbubbles Targeted to Intercellular Adhesion Molecule-1 Bind to Activated Coronary Artery Endothelial Cells.</a> Circulation. 98, 1-5 (1998).</li>
<li>Wei, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+Myocardial+Blood+Flow+With+Ultrasound-Induced+Destruction+of+Microbubbles+Administered+as+a+Constant+Venous+Infusion%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Quantification of Myocardial Blood Flow With Ultrasound-Induced Destruction of Microbubbles Administered as a Constant Venous Infusion.</a> Circulation. 97, 473-483 (1998).</li>
<li>Beckmann, N., Stirnimann, R., Bochelen, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Resolution+Magnetic+Resonance+Angiography+of+the+Mouse+Brain%3A+Application+to+Murine+Focal+Cerebral+Ischemia+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Magnetic+Resonance%22%5BJournal%5D)">High-Resolution Magnetic Resonance Angiography of the Mouse Brain: Application to Murine Focal Cerebral Ischemia Models.</a> Journal of Magnetic Resonance. 140, 442-450 (1999).</li>
<li>Kobayashi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+MR+angiography+of+intratumoral+vasculature+using+a+novel+macromolecular+MR+contrast+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Magnetic+Resonance+in+Medicine%22%5BJournal%5D)">3D MR angiography of intratumoral vasculature using a novel macromolecular MR contrast agent.</a> Magnetic Resonance in Medicine. 46, 579-585 (2001).</li>
<li>Nezafat, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B1-insensitive+T2+preparation+for+improved+coronary+magnetic+resonance+angiography+at+3+T%5BTitle%5D)+AND+%22Magn.+Reson.+Med%22%5BJournal%5D)">B1-insensitive T2 preparation for improved coronary magnetic resonance angiography at 3 T.</a> Magn. Reson. Med. 55, 858-864 (2006).</li>
<li>Wagner, S., Helisch, A., Ziegelhoeffer, T., Bachmann, G., Schaper, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+angiography+of+collateral+vessels+in+a+murine+femoral+artery+ligation+model%5BTitle%5D)+AND+%22NMR+in+Biomedicine%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance angiography of collateral vessels in a murine femoral artery ligation model.</a> NMR in Biomedicine. 17, 21-27 (2004).</li>
<li>Cochet, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+MR+angiography+and+velocity+measurement+in+mice+coronary+arteries+at+9.4+T%3A+assessment+of+coronary+flow+velocity+reserve%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">In vivo MR angiography and velocity measurement in mice coronary arteries at 9.4 T: assessment of coronary flow velocity reserve.</a> Radiology. , 254-441 (2010).</li>
</ol>

העכברים טופלו בשיטות שאושרו על ידי טיפול בבעלי חיים מוסדי ועדת שימוש מאוניברסיטת וושינגטון ועל פי מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה שפורסם על ידי המוסד האמריקני הלאומי לבריאות (NIH פרסום מס &#39;85-23, מתוקן 1996).

רקמת לב יש דרישה מטבולית גבוהה מאוד, ולכן דורש אספקה ​​קבועה של חומרי מזון וחמצן מהדם מועברים על ידי כלי הדם הכליליים. מחלות של כלי כלילית, אשר להפחית תפקוד כלילית עקב היצרות כלי וסתימת, יכול להוביל לחוסר חמצן לרקמות איסכמיה, ולשים חולים הנגועים בסיכון לאוטם שריר הלב ונזק בלתי הפיך לשריר הלב. הבנה טובה יותר של מצב החולה של הכלים האלה הוא הכרחי, ואת קריטית ליכולת שלנו ללמוד כלי הכליליים היא הדמיה של כלי הדם. כאן, אנו מציגים שיטה להכנת בכלי הדם הכליליים Murine הדמיה vivo לשעבר</...

<html><table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם מגיב </td><td> חברה </td><td> מספר קטלוגי </td><td> תגובות </td></tr><tr><td> 1 מ&quot;ל מזרקים </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">בקטון דיקינסון</a> </td><td> BD-309602 </td><td></td></tr><tr><td> אינסולין מזרקים עם מחטים 1/2cc וחצי 29G &quot;מצורף באופן קבוע </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">בקטון דיקינסון</a> </td><td> BD-309306 </td><td></td></tr><tr><td> 2 &quot;x 2&quot; גזה רפידות </td><td> Med101store.com </td><td> מק&quot;ט 2208 </td><td></td></tr><tr><td> 24G ¾ &quot;Angiocath קטטר IV </td><td> <a href="http://www.bd.com/" target="_blank">בקטון דיקינסון</a> </td><td> BD-381112 </td><td></td></tr><tr><td> 26G ½ &quot;מחטים מד </td><td>דליל &quot;&gt; בקטון דיקינסון </td><td> BD-305111 </td><td></td></tr><tr><td> אדנוזין </td><td> <a href="http://www.sigmaaldrich.com/" target="_blank">סיגמא</a> </td><td> A9251 </td><td> 1G / L ב PBS על מאגר התרחבות (עם Papaverine) </td></tr><tr><td> גרפה מלקחיים זווית </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">מדע כלים עדינים</a> </td><td> 11052-10 </td><td></td></tr><tr><td> כותנה שקצהו applicators: 6 &quot;לא סטריליים </td><td> <a href="http://www.cardinal.com/" target="_blank">הקרדינל הבריאות</a> </td><td> C15055-006 </td><td></td></tr><tr><td> מספריים כירורגיות מעוקלים </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">מדע כלים עדינים</a> </td><td> 14085-09 </td><td></td></tr><tr><td> Stereoscope לנתח את מקור האור </td><td> <a href="http://www.nikon.com/" target="_blank">ניקון</a> </td><td> NA </td><td> NA </td></tr><tr><td> מגש לנתח, 11.5 x 7.5 אינץ&#39; </td><td> <a href="http://www.coleparmer.com/" target="_blank">קולמן בן הזוג</a> </td><td> YO-10915-12 </td><td> מלא זפת על מצמיד את העכבר </td></tr><tr><td> מלקחיים המעוקל, הנאה </td><td> <a href="http://www.aesculapusa.com/" target="_blank">Aesculap</a> </td><td> FD281R </td><td> צריך 2 </td></tr><tr><td> הפרין, 5000 U / ml המניות </td><td> <a href="http://www.apppharma.com/" target="_blank">APP Pharmaceuticals LLC</a> </td><td> NDC 63323-047-10 </td><td> 1:100 דילול במים </td></tr><tr><td> KCl </td><td> <a href="http://www.fishersci.com/" target="_blank">דיג</a> </td><td> P217 </td><td> פתרון רווי ב H2O </td></tr><tr><td> Ketamin (Ketaset), 100 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​המניות </td><td> Fort Dodge, אוברלנד פארק, קנזס, ארה&quot;ב </td><td> NDC 0856-2013-01 </td><td> מעורב כמשקל מ&quot;ג / ק&quot;ג 130 הגוף, עם Xylazine ב 0.9% sאלין </td></tr><tr><td> Microfil </td><td> <a href="http://www.flowtech-inc.com/" target="_blank">תזרים טק</a> </td><td> MV-122 (צהוב). אפשרויות צבע אחרים זמינים אף הם. </td><td> מערבבים 01:01 לפי משקל, עם 10% לפי נפח של סוכן ריפוי. להכין ממש לפני ההזרקה, ואת המערבולת על מנת להבטיח את זה היא מעורבת גם </td></tr><tr><td> לא סטריליים קשירת: 6-0, משי קלוע </td><td> <a href="http://www.harvardapparatus.com/" target="_blank">הרווארד Apparatus</a> </td><td> 723287 </td><td></td></tr><tr><td> Papaverine </td><td> <a href="http://www.americanregent.com/" target="_blank">האמריקאי ריג&#39;נט בע&quot;מ</a> </td><td> NDC 0517-4010-01 </td><td> 4mg / L ב PBS על מאגר התרחבות (עם אדנוזין) </td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> <a href="http://www.sigmaaldrich.com/" target="_blank">סיגמא</a> </td><td> P6148 </td><td> הוכן כפתרון 4% </td></tr><tr><td> זלוף Apparatus </td><td></td><td></td><td> ראה איור 2 </td></tr><tr><td> האביב מספריים </td><td> <a href="http://www.finescience.com/" target="_blank">מדע כלים עדינים</a> </td><td> 15018-10 </td><td></td></tr><tr><td> Xylazine (Anased), 20 מ&quot;ג / GL המניות </td><td> <a href="http://www.lloydlab.com/" target="_blank">לויד Labs</a> </td><td> נדא # 139-236 </td><td> מעורב כמשקל מ&quot;ג / ק&quot;ג 8.8 הגוף, עם Ketamin ב מלוחים 0.9% </td></tr></tbody></table>

זלוף מדרדר ומילוי בכלי הדם הכליליים עכבר כהכנה מיקרו טומוגרפיה ממוחשבת והדמיה

Retrograde Perfusion and Filling of Mouse Coronary Vasculature as Preparation for Micro Computed Tomography Imaging

הדמיה של כלי הדם הופך חשוב יותר ויותר מדינות רבות להבנת מחלות שונות. בעוד מספר טכניקות קיימות הדמיה בכלי הדם, מעטים מסוגלים לדמיין את רשת כלי הדם כולה תוך הרחבת פתרון הכולל 1,2 כלי קטן יותר. בנוסף, רבים טכניקות יציקה כלי הדם להרוס את הרקמה שמסביב, מונע ניתוח נוסף של המדגם 3-5. אחת השיטות אשר עוקף בעיות אלה הוא מיקרו טומוגרפיה ממוחשבת (μCT). μCT הדמיה יכול לסרוק ברזולוציות &lt;10 מיקרון, הוא מסוגל לייצר שחזורים 3D של רשת כלי הדם, ומשאירה רקמות שלמות לצורך ניתוח מאוחר יותר (למשל, היסטולוגיה ו morphometry) 6-11. עם זאת, כלי הדמיה על ידי שיטות לשעבר ב vivo μCT דורש כלי להתמלא מתחם radiopaque. לפיכך, ייצוג מדויק של כלי הדם המיוצר על ידי μCT הדמיה מותניתמילוי אמינות מוחלטת של הכלים. בפרוטוקול זה, אנו מתארים טכניקה למילוי כלי עכבר הכליליים לקראת הדמיה μCT. שתי טכניקות שולטים קיים למילוי בכלי הדם הכליליים: in vivo באמצעות טפטוף cannulation ו מדרדר של אבי העורקים (או סניף את קשת אבי העורקים) 12-14, או vivo לשעבר באמצעות מערכת טפטוף Langendorff 15-17. כאן אנו מתארים את שיטת אבי העורקים vivo cannulation אשר תוכנן במיוחד כדי להבטיח מילוי של כל כלי. אנו משתמשים צמיגות נמוכה radiopaque תרכובת בשם Microfil אשר יכול perfuse דרך כלי הקטנים ביותר כדי למלא את כל נימי הדם, כמו גם את שני הצדדים העורקים והוורידים של רשת כלי הדם. כלי הם perfused עם המאגר באמצעות מערכת טפטוף בלחץ, ומילא אחר כך עם Microfil. על מנת להבטיח Microfil הממלא את כלי הדם הקטנים עמידות גבוהה יותר, אנו ולקשור את הענפים הגדולים emanating מ אבי העורקים, אשר מסיט את Microfil אל מהתקפי. לאחר מילוי הושלמה, כדי למנוע את האופי האלסטי של רקמת לב מ לסחוט Microfil מתוך כלי מסוימים, אנו ולקשור נגישים הנקודות העיקריות ליציאה של כלי הדם מיד לאחר מילוי. לכן, הטכניקה שלנו מותאמת במיוחד עבור מילוי מלא ושימור מרבי של חומר מילוי, המאפשרת הדמיה של רשת שלמה של כלי הדם הכליליים - עורקי, נימי דם, וורידים כאחד.

ויזואליזציה של כלי הכליליים הוא קריטי לקידום ההבנה שלנו של מחלות לב וכלי דם. כאן אנו מתארים שיטה המרוססת בכלי הדם הכליליים Murine עם גומי radiopaque סיליקון (Microfil), לקראת הדמיה ממוחשבת מיקרו (μCT) טומוגרפיה.

ויזואליזציה של מערכת כלי הדם הופכת לחשובה יותר ויותר להבנת מצבי מחלה שונים רבים. בעוד שקיימות מספר טכניקות עבור...

המטרה הכוללת של פרוצדורה זו היא למלא את כלי הדם הכליליים בצבע רדיואופקי כהכנה לדימות במיקרו-Computed Tomography או micro CT. ראשית, פותחים את חלל הבטן של העכבר ומבצעים קנולציה של האביון הבטני. לאחר מכן, מבצעים פרפוזיה של כלי הדם בבופר מרחיב כלי דם, ולאחריה פרפוזיה במקבע AFF.לאחר מכן קושרים את כלי הדם הן כדי לכוון את ה-PERFUSE eight, והן כדי לחסום נקודות דליפה פוטנציאליות. לבסוף, ממלאים את כלי הדם העלליים בצבע רדיואופקי. ניתן להעריך את המילוי המלא של רשת כלי הדם העלליים באמצעות ניתוח ויזואלי של הלב או באמצעות דימות וניתוח במיקרו-CT.למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי כלי הדם בעורקים הכליליים, דפוסי הסניף, וכן חסימות בכלי דם ומחלות אחרות של כלי הדם הכליליים, ניתן ליישמה גם על רשתות כלי דם אחרות במערכות איברים אחרות, כגון המוח, הכליות או הגפה האחורית. הדגמה חזותית של שיטה זו היא קריטית כיוון ששלבי קשירת כלי הדם קשים ללמידה.אם אינך בקיא באנטומיה של כלי הדם, איתור וקשירת כלי הדם הנכונים ברקמה הסובבת עשויים להיות מאתגרים גם כן. לפני תחילת הפרוצדורה, מלא צד אחד של מכשיר פרפוזיה בלחץ (pressure perfusion apparatus) בבופר מרחיב כלי דם (vasodilator buffer) ואת הצד השני ב-4% paraform aldehyde ב-PBS. לאחר מכן, מלא מזרק אינסולין של חצי CC עם מחט 29 gauge באורך חצי אינץ' ב-0.1 milliliters של heparin בריכוז 1:100.לאחר מכן, כופפו את המחט לזווית של כ-120 מעלות כאשר פיית המחט פונה כלפי מעלה. לבסוף, מלאו מזרק של 1 מיליליטר עם מחט במידה 26 ואורך של חצי אינץ' ב-0.4 מיליליטר של תמיסת potassium chloride רוויה, ולאחר מכן כופפו את המחט ל-120 מעלות כפי שהודגם כעת. לאחר הרדמת העכבר וקיבוע בעל החיים כשהצד הבטני פונה כלפי מעלה על מגש הנתיחה, רססו את בעל החיים באתנול עד שפרוותו תהיה רטובה.לאחר מכן, פתחו את חלל הבטן באמצעות חתך בקו האמצע. הסיטו את העור כדי לחשוף את האיברים והזיזו את המעיים לצד אחד כך שניתן יהיה לגשת לווריד הנבוב האחורי (PVC). נקו כל שומן או רקמה חיבורית ככל שנדרש, והזריקו את תמיסת ההפרין שהוכנה אל ה-PVC.בעת שליפת המחט, כסו את חור המחט באמצעות מקלוני צמר כדי למנוע דליפה, והחזיקו את המקל במקומו למשך מספר שניות עד שדופן ה-PVC תקריש ותיסגר. לאחר המתנה של שתי עד שלוש דקות כדי שההפרין יתפזר במחזור הדם של העכבר, בצעו דיסקציה של הסרעפת ושל כלוב הצלעות כך שניתן יהיה לצפות בלב הפועם.לאחר מכן, הזרק באיטיות את תמיסת הפוטסיום כלוריד שהוכנה אל תוך ה-PVC עד לעצירת הלב. בשלב הבא, חתוך את ה-PVC סמוך לגובה הסרעפת, כך שניתן יהיה לאתר בקלות את החלק הפרוקסימלי ללב בשלבים הבאים. לאחר מכן, הסר את כל האיברים שמתחת לסרעפת וכרית את החלק האחורי של העכבר.כעת אתרו את הקצה החתוך של האורטה והניחו קטע ארוך של תפר משי קלוע במידה של six dash zero, מקופל לשניים מתחת לאורטה, מספר מילימטרים קדימה (anterior) מהקצה החתוך. גזרו את קטע התפר הארוך כך שיהיו שני קצוות מתחת לאורטה. לבסוף, הכניסו את הקטטר אל הקצה החתוך של האורטה וקשרו כל תפר בקשר כפול כדי לקבע את הקטטר במקומו ולמנוע דליפה של לחץ חוזר בתוך האורטה.התחילו בחיבור מכשיר הפרפוזיה בלחץ לקטטר. לאחר מכן, הפעילו את מכשיר הפרפוזיה עד ללחץ דחיפה של 100 עד 110 millimeters of mercury כדי לבצע פרפוזיה לכלי הדם עם בופר מרחיב כלי דם (vasodilator buffer). ודאו שהבופר זורם דרך העורקים הכליליים על ידי אישור יציאת נוזל מה-PVC, תוך המתנה עד שהנוזל יהיה צלול.בצעו דיסקציה של הצלעות והרחיבו את כלוב הצלעות באמצעות סיכות כדי לחשוף את הלב. לאחר החשיפה, טפטפו טיפות של תמיסת באפר על הלב באמצעות פיסת גזה ספוגה בבאפר כדי למנוע את התייבשותו. הסירו את התימוס.חשיפת קשת האביון וקשירת כלי הדם היא ההיבט המאתגר ביותר בהליך זה. איתור כלי הדם המחוברים לקשת האביון עשוי להיות מתסכל מאוד עבור המתחילים, אך ברגע שהאנאטומיה של כלי הדם מובנת, לומדים לסמוך על כך שהם נמצאים שם גם אם אינם נראים בבירור דרך השומן ורקמת החיבור האחרת. הנחת התפרים דורשת סבלנות ויד יציבה, אך זוהי מיומנות שהופכת לקלה יותר עם התמדה.לאחר מכן, השתמשו בתפר משי קלוע במידה 6-0 כדי לקשור את שלושת הענפים העיקריים של אבי העורקים, כדי להבטיח שהנוזל יופנה דרך כלי הדם המכתריים ולא דרך כלי דם גדולים אלו בעלי ההתנגדות הנמוכה. לאחר מכן, בצעו פרפוזיה של הלב עם חומר מקבע למשך 15 דקות. לאחר מכן, שטפו עם בופר להרחבת כלי דם למשך שתי דקות לפחות.בינתיים, כדי למנוע דליפה של ה-microfill מהלב לאחר ההזרקה, קשרו את ה-vena cava anterior הראשונה ולאחר מכן קשרו את ה-vena cava anterior השנייה. הניחו תפרים סביב ה-PVC והאאורטה, אך אל תהדקו אותם עד לאחר המילוי. לאחר הכנת ה-microfill וטעינתו למזרק של 1 mL, מלאו את מגש הניתוח במים כדי לכסות את הקטטר.כעת, נתק את מכשיר הפרפוזיה מהקתטר וחבר את מזרק המיקרופיל (microfill). הזרק את המיקרופיל לאורטה. החומר ימלא תחילה את העורקים, ולאחר מכן יזרום אל הנימים ויגרום לרקמה להיצבע בצבע של המיקרופיל.שימו לב כיצד הטבע ההידרופובי של המיקרופיל גורם לו להיראות בתחילה ככדורים עצמאיים בעת הופעתו מהכלי הדמים הקטנים יותר. מילוי מלא ניכר כאשר המיקרופיל רצוף בתוך כלי הדם ויוצא דרך ה-PVC. לאחר השלמת המילוי, הדקו במהירות את התפרים סביב ה-PVC והאורטה כדי למנוע מהטבע האלסטי של רקמת הלב לדחוף את המיקרופיל החוצה מכלי הדם.הימנעו מכל לחץ חיצוני על הלב במהלך תהליך הפולימריזציה, כגון הרמה או סיבוב של הלב בניסיון לקבל מבט מוקדם על הכליים המלאים בחלקו האחורי של הלב. לאחר מכן, השרו גזה במים מתוך תבנית הניתוח וכסו את הלב בגזה כדי למנוע את התייבשותו. השאירו את הלב למשך כשעה בטמפרטורת החדר עד לסיום הפולימריזציה של ה-microfill.לבסוף, הוצא את הלב וקבע אותו ב-4% PFA למשך לילה בטמפרטורה של ארבע מעלות צלזיוס. לאחר מכן, העבר את הלב ל-70% ethanol ואחסן אותו בטמפרטורה של ארבע מעלות צלזיוס. כלי דם שפרופו ביעילות באמצעות microfill יציגו רצף בלתי פסק של microfill לכל אורך כלי הדם.כפי שמוצג באיור ראשון זה, ניתן להעריך את מידת מילוי כלי הדם הכליליים באמצעות ראייה חזותית. הוורידים ממוקמים על פני השטח וניתן להבחין בהם בקלות, כפי שמוצג באמצעות ראש החץ. העורקים, שנמצאים יותר בתוך השריר הלבבי, נראים אף הם דרך פני השטח של הלב ומסומנים כאן באמצעות החץ.מילוי הנימים ניכר גם הוא. שימו לב לאזור דחוס בנימים בלב באיור זה, כפי שמסומן על ידי הכוכבית. לעיתים, חסימות עלולות למנוע את המילוי של חלק מהמיטה הווסקולרית.לפיכך, כל רשתות כלי דם שלא ימולאו יהיו בולטות בשל היעדר ה-microfill, כפי שמוצג כאן באמצעות חץ. עלולים להתרחש קרעים נוספים ב-microfill, שדוגמאות להם מסומנות בכוכבית. מילוי חלקי עלול להתרחש גם אם נעשה שימוש בלחץ נמוך מדי במהלך הזרקת ה-microfill, שכן ה-microfill לא יידחף לתוך כל רשתות הנימיים.שימו לב כי הרקמה לא קיבלה את הצבע הצהוב של המיקרו-פיל (microfill), מה שמעיד על כך שהמיקרו-פיל לא חדר אל תוך הנימיים. לעומת זאת, לחץ רב מדי עלול לגרום לפיצוץ של הנימיים ולדליפה של מיקרו-פיל לרקמה שסביבם, כפי שמודגש על ידי החץ. בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור לא להזריק את המיקרו-פיל מהר מדי או בלחץ רב מדי, שכן כלי הדם יתבקעו ויהרסו את היצקת כלי הדם.לאחר ביצוע הפרוצדורה בסריקת micro CT, ניתן לבצע שיטות נוספות כגון אנליזה אימונוהיסטוכימית על מנת לענות על שאלות נוספות ולאפיין טוב יותר את כלי הדם ואת הרקמה שסביבם.

retrograde-perfusion-filling-mouse-coronary-vasculature-as

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

תדירות גבוהה אולטרסאונד דופלר היא טכנולוגיה חדשנית להערכת תפקוד שריר הלב באזור. עבודה זו מציגה את העדות הראשונה הוכחת הישימות של פלטפורמה זו הדמיה תכליתי עבור למדוד את חוזרות ונשנות של מתח שריר הלב, dp / dt, ו regurgitation צניפי בלב אדום (IR) איסכמיה reperfused Murine.

בתדירות גבוהה ברזולוציה גבוהה אקו: העדות הראשונה על מדוד לא פולשני חוזרות ונשנות של הזנים Contractility שריר הלב, ו regurgitation צניפי בלב איסכמיה reperfused Murine

ניגודיות משופרת כלי שיט קטן בעל חיים הדמיה על ידי microCT היא מהירה, חסכונית תפוקה גבוהה טכניקה...

כלי משופר ניגודיות הדמיה באמצעות MicroCT

משלוח סמים האוסמוטי לhindlimbs איסכמי וטפטוף של כלי דם עם Microfil למייקרו-טומוגרפיה ממוחשבת הדמיה

CFR שימושי להערכת דרישת החמצן בשריר הלב ולהערכת הסיכון הקרדיווסקולרי. מחקר זה מבסס שיטת אקו לב דופלר טרנס-חזה (TTDE) שלב אחר שלב לניטור אורכי של השינויים ב-CFR, כפי שנמדד מעורק כלילי בעכברים, תחת עומס יתר ניסיוני של פס אבי העורקים.

הערכת אולטראסאונד מבוססת של עורקים הכליליים זרימה והזרימה כלילית ריזרב שימוש בדגם עומס יתר הלחץ בעכברים

שיטה זו מתארת את השימוש בטומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת קוונטית (MicroCT) כדי להעריך את המורפולוגיה הלבבית, התפקוד, הזלוף, חילוף החומרים והכדאיות עם חומר ניגוד יוד בעכברים עם איסכמיה של שריר הלב המושרה בניסוי. ניתן ליישם את הטכניקה להדמיה אורכית לא הרסנית בתפוקה גבוהה in vivo של מודלים שונים של בעלי חיים של מחלות לב אנושיות.

In vivo כמותי הערכת מבנה שריר הלב, תפקוד, זלוף ואת הכדאיות שימוש טומוגרפיה לב מיקרו שחושב

מאמר זה מתאר מתודולוגיה מפורט של שימוש של גומי סיליקון עופרת ריתוך perfuse את להערכת מאתר על קוטר אבי העורקים כימות במודל של עכברים של מפרצת אבי העורקים, לנתיחה.

ניתוח כמותי מיקרו-CT Aortopathy במודל של עכברים של β-aminopropionitrile-induced מפרצת אבי העורקים, דיסקציה

שמורת זרם כלילית (CFR), מוגדרת כיחס של זרימת דם כלילית מירבית לזרימת הדם הכלילית במנוחה. אנו מציגים פרוטוקול להערכת CFR בחולדות באמצעות אולטרסאונד, אשר מציעה את ההזדמנות לחזות גורמי סיכון לב וכלי דם בהעדר מחלה חסימתית כלילית.

הערכה של שמורת זרם כלילית לאחר איסכמיה אוטם שריר הלב Reperfusion בחולדות

מוצג כאן הוא פרוטוקול לחקור את microcirculation כלילית ברקמת לב מורין חי על ידי ניטור ex vivo של לחץ זלוף העורקים וזרימה השומרת על הלחץ, כמו גם רכיבי עץ כלי דם כולל מיטות נימי pericytes, כמו עורק הספל הוא משומר ולחץ.

מדידה והדמיה דינמיות של נימים, עורקים ופריציטים בלב העכבר

כאן, אנו מתארים שיטת הדמיה וכימות לכלי גפיים אחוריות של מורין באמצעות טומוגרפיה ממוחשבת מיקרו-רנטגן.

הכנה מדגמית להדמיה תלת-ממדית מבוססת טומוגרפיה ממוחשבת של כלי דם הינדיים של מורין

הפרוטוקול הנוכחי מתאר מבט פרסטרנלי ארוך שונה ללוקליזציה מהירה ומדויקת של העורק היורד הקדמי השמאלי. גישה זו נועדה להיות פשוטה וידידותית יותר למשתמש תוך הקלה על בחינת שינויים דינמיים במאגר הזרימה הכלילי בעקבות איסכמיה של שריר הלב בעכברים.

הערכות דינמיות של שמורת הזרימה הכלילית לאחר רפרפוזיה של איסכמיה שריר הלב בעכברים

למדו שיטת זלוף מדרדר ומילוי כלי דם כליליים בעכברים באמצעות Microfil לצורך הדמיית מיקרו-CT. טכניקה זו מאפשרת חקר מבנה כלי הדם הכליליים ומחלות לב בדגמי עכברים.

זלוף מדרדר ומילוי בכלי הדם הכליליים עכבר כהכנה מיקרו טומוגרפיה ממוחשבת והדמיה

גלה סרטונים נוספים