Name: איטרטיבי אופטימיזציה של דופלקסים DNA להתגבשות של מכלולי SeqA-DNA (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 42 s
Description: למד אופטימיזציה של דופלקסי DNA להתגבשות מכלולי SeqA-DNA באיכות דיפרקציה. חקור את השפעת אורך ה-DNA, מרווחי GATC וקצוות ה-DNA על איכות הגבישים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחברים מבקשים להודות לצוות PXRR בNSLS (ברוקהייבן המעבדה הלאומית) לקבלת סיוע במהלך איסוף נתונים ומוניקה Pillon לעזרה בטיהור ה-DNA. עבודה זו נתמכה על ידי המכון הקנדי לחקר בריאות (MOP 67189).

1. טיהור חלבון המקשר הגמיש חיבור N-(oligomerization) ו-C-מסוף (DNA המחייב) תחומי SeqA עזרי ההכרה חוזרת GATC hemimethylated המופרד 02:59 מדליק את ה-DNA. במחקר זה, שהייתי גרסה של dimeric SeqA (SeqAΔ (41-59)-A25R) עם מוטציה נקודתית בתחום N-המסוף המונעת המשך oligomerization ומקשר קצר שמגביל את ה-DNA המחייבת לטנדם GATC חוזר מופרדת באופן בלעדי על ידי סיבוב אחד בדנ&quot;א (איור 1) 2,8. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מרה (DE3) BL21 תאים עם SeqA הקידוד פלסמיד תחת השליטה של ​​אמרגן T7, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צלחת השינוי בתגובת צלחות LB-אגר כולל 100 מיקרוגרם / המ&quot;ל אמפיצילין, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פיק מושבות מעורבות לחסן תרבות לילה בקנה מידה הקטנה (תקשורת LB עם 100 מיקרוגרם / המ&quot;ל אמפיצילין), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למחרת בבוקר לחסן 1 ליטר של מדיה באמצעות דילול של 1:100 overniתרבות ght, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגדל את התאים לOD 600 של ~ 0.7 ולגרום לייצור חלבון על ידי תוספת של איזופרופיל β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) לריכוז סופי של 1 מ&quot;מ, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המשך הדגירה של 3 שעות ב 37 ° C עם רעד מסלולית ולאחר מכן לקצור את התאים על ידי צנטריפוגה (10 דקות ב 3300 ז), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend תא הגלול במאגר הטיהור וlyse ידי sonication, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נקה lysate ידי צנטריפוגה (40 דקות ב 39000 ז) ולטעון את supernatant על עמודה מתאזנת עם חיץ הטיהור הפרין, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Elute SeqA באמצעות שיפוע ליניארי לM NaCl 1 (SeqA elutes ב ~ 0.7 מ &#39;NaCl), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברכה את שברי SeqA המכילים יחד, לדלל להנמיך את העוצמת היונית של המדגם ועומס בעמודת כרומטוגרפיה קטיון מטבע מתאזן עם חיץ טיהור, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש בשיפוע מלח ליניארי, SeqA הטהור elutes ב ~ 0.4 מ &#39;NaCl, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברכה את שברי SeqA המכילים יחד, concentratדואר (3 מ&quot;ג / מ&quot;ל) וחנות במאגר האחסון. </li></ol> 2. טיהור DNA <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזמין oligonucleotides unmethylated והמפוגל משלימים מהחברה האהובה עליך, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממס μmol 1 מתוך כל דנ&quot;א גדיל הבודד lyophilized בשנת 800 μl של autoclaved DDH 2 O, מערבולת ולתת לו לשבת במשך 10-20 דקות, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 800 μl של חיץ הטעינה 2X חומם מראש לכל oligonucleotide, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למשך 20-30 נוקלאוטידים oligonucleotides הארוך, להכין 10% ג&#39;ל denaturing גדול (160 x 250 x מ&quot;מ 1): * מערבב היטב 80 מ&quot;ל של 10% תמהיל PAGE, TEMED 80 μl וpersulfate אמוניום μl 800 לג&#39;ל ולשפוך, * מפולמר פעם, להסיר את המסרק ולשטוף את הבארות עם DDH 2 O ביסודיות, * הרכיב את הג&#39;לי על גבס ג&#39;ל כולל צלחת קירור ולאחר מכן למלא את המאגרים העליונים ותחתונים עם ריצת חיץ (1X TBE), * מראש להפעיל את הג&#39;ל ב700-750 V כדי לחמם את הג&#39;ל עד 55 מעלות צלזיוס, * תפסיק לרוץ ולשטוף בארות thoroughly עם ריצת חיץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחמם את oligonucleotides עד 90 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מערבולת ולסובב את הדגימות ומייד לפני טעינת ג&#39;ל, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את הג&#39;ל ב~ 700 V ולעצור אותו הפעם אחת oligonucleotide הגר באמצע הדרך. (שים לב שעל 10% ג&#39;ל polyacrylamide הכחול bromophenol שיתוף נודד עם oligonucleotides ~ 20 בסיסים ארוכים וקסילן cyanol FF עם ~ 60 בסיסים ארוכים), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עצור את הג&#39;ל, לפרק אותו מתיבת ג&#39;ל ולהסיר את המפרידים, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> על משטח שטוח, הסר צלחת זכוכית אחת ולכסות את הג&#39;ל בניילון נצמד, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את הג&#39;ל בסביבה, להסיר את צלחת זכוכית האחרת ולכסות אותו בניילון נצמד, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סמן את הרצועות באמצעות אור UV וצלחת ניאון מאחורי הג&#39;ל לראות את צל ה-DNA, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחתוך את הרצועה בסכין גילוח לחתיכות קטנות ולהעביר אותם לתוך צינור מ&quot;ל סטרילי 15, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 9 מ&quot;ל של חיץ elution וelute לילה על 37 מעלות צלזיוס עם תסיסה, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות להעביר את הפתרוןלצינור צנטריפוגה autoclaved באמצעות קצה פיפטה ג&#39;ל טעינה כדי למנוע חתיכות acrylamide מעבירים ולהוסיף 1 מ&quot;ל של נתרן יצטט M 3 ב-pH 7 (1:10 דילול) בתוספת 25 מ&quot;ל של אתנול 100% מצונן (2.5 כרכים), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה ב -20 ° C לפחות 3 שעות, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספין למטה ולהעביר את supernatant לצינור נפרד, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ייבש את הכדור במהירות-VAC בחום בינוני, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend גלול ב 400 μl של autoclaved DDH 2 O ולהעביר לצינור טרי, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסיפו 40 μl יצטט M 3 נתרן בשעת 7 pH ו1 מ&quot;ל של אתנול 100%; מערבב היטב (מערבולת) ודגירה 30 דקות בטמפרטורת חדר ואחרי 30 דקות ב -20 ° C, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספין במשך 15 דקות ב18,000 גרמו וזורק supernatant, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטוף את הכדור עם 100 μl של אתנול קר 70% להסיר מלח השיורי מהגלולה והספין ל6 דקות ב18,000 גרמו. השלך אתנול ולייבש את הגלולה במהירות-VAC, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend הגלולה בסך של 100 μl של autoclaved DDH <sub&gt; 2 O. למדוד את הריכוז של oligonucleotide, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לחשל את דופלקסים DNA hemimethylated, לערבב ריכוזי equimolar של גדילים המשלימים ולחמם את התערובות עד 95 מעלות צלזיוס באמבט מים למשך 5 דקות ולאחר מכן לתת להם להתקרר לטמפרטורת חדר באיטיות בתוך אמבט המים. </li></ol> 3. חלבון ה-DNA גיבוש וניתוח מורכב <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לערבב כמויות שווות של המטוהרים SeqAΔ (41-59)-A25 (81 מיקרומטר) ודנ&quot;א hemimethylated (81 מיקרומטר), </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה בטמפרטורת חדר למשך 15 דקות ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס עד שיהיו מוכנים להשתמש בו, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מסך לתנאי התגבשות באמצעות מסכי מסחר דליל מטריצה, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שמוביל התגבשות ראשוני זוהה, לייעל את התנאים לגדל גבישים באיכות עקיפה, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cryoprotect גבישי תוצאת SeqA-DNA או על ידי הגדלת הכמות של 400 הווה PEG בפתרון ההתגבשות לריכוז סופי של 25% (v / v) או הוספת גליצרול 20% (v / v) לפתרון ההתגבשות, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סקופ גבישים בודדים עם לולאת ניילון, ותקפיא אותם בחנקן נוזלי, </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את גבול ההשתברות של כל גביש ב 100 ק </li></ol> 4. נציג תוצאות כדי להשיג את המבנה הגבישי של SeqAΔ (41-59)-A25R הקשור ל-DNA hemimethylated, אנו רציפות מותאמת שלושה פרמטרים על ה-DNA: (i) הפרדה בין רצפי GATC hemimethylated (ii) אורך של הדופלקס וכן (iii) היעדרות / הנוכחות מסוכך 5 &#39;. מבחני משמרת אלקטרו ניידות עולים כי SeqAΔ (41-59)-A25R מעדיף נקשר חוזרת GATC מופרד 9-10 זוגות בסיסים (איור 1). לכן, אנחנו בהתחלה הוקרנו דופלקסים 23-24 זוגות בסיסים (סל&quot;ש) ארוך המכילים שני רצפי GATC hemimethylated מופרד או 9 או 10 סיביים לשנייה. שלושה דופלקסים הניבו גבישים יפים בצורה (איור 2). אללמרות שאיש מגבישי diffracted לרזולוציה גבוהה, 23 bps הארוך דופלקס עם שני אתרי GATC המופרדים ב9 סל&quot;ש מתפזר טוב יותר משאר צילומי רנטגן, המציין כי הפרדת GATC של 9 סל&quot;ש הועדפה להתגבשות. לכן, סדר את המרווח בין GATC עד 9 סל&quot;ש לכל המסכים שלאחר מכן. באופן כללי, התגבשות DNA היא העדיף לאורכים מתאימים למדויקים סיבובי סליל דופלקס כי מולקולות דנ&quot;א מרובות יכולות לערום את הראש אל זנב בצורת B-DNA מתמשך בתוך 9 גביש. לכן, אנו קצרנו את האורך הכולל של עד 21 דופלקסים סל&quot;ש (שני סיבובים כלומר סליל). בעוד דופלקס 21 סל&quot;ש עם קצוות קהים לא הניב גבישים עקיפים איכותיים (מידע לא מוצג), דופלקס 21 סיבי לשנייה עם סככת 5 &#39;נוקלאוטיד יחידה בכל קצה לא תניב גבישים שמתפזרים כדי 5 A במקור הבית שלנו. השיפור בגבול ההשתברות הציע שקצה לקצה דופלקס עמותה אכן הייתה מעדיפהאריזת ing גביש. מאז SeqA אינטראקציה עם רצפי GATC כי הם על אותו הפרצוף של ה-DNA, פן ההפוכות של הדופלקס הדנ&quot;א צריכות להיות חשופות לממס. כדי לשפר עוד יותר את הגבישים של המתחם, אז אנחנו שונים הרצף של הדופלקס לכלול dinucleotide CG בין שני אתרי GATC לקדם אינטראקציות גרוב-עמוד שדרה עם מולקולות DNA סמוכות בגביש באמצעות הפנייה השנייה של דופלקס, שיטה שנעשה שימוש כדי לשפר את התגבשות DNA ב10 העבר. עם זאת, גבול ההשתברות של הגבישים גדלו עם דופלקס CG המכיל היה זהה לאלה שגדלו עם דופלקס דנ&quot;א דומה שלא הכיל dinucleotide CG (איור 3). תוצאה זו מצביעה על כך שאינטראקציות גרוב-עמוד שדרה לא היו חשובות במקרה זה. אנחנו מכן מותאמים האורך של מסוכך על ידי השוואה בין הגבישים גדלו עם דופלקס דנ&quot;א שהיו שני נוקליאוטידים נוספים בכל5 הסוף &#39;. שינוי זה השפיע באופן דרסטי על מורפולוגיה גביש, כמו גם, גבול השתברות המציין כי נוקליאוטידים נוספים שינו את המגעים המולקולריים וארגון משופר גביש (איור 3) באופן דרמטי. המבנה הגבישי של SeqAΔ (41-59)-A25R חייב דופלקס זו האחרונה דנ&quot;א אשר כי הפנייה ללא דופלקס דנ&quot;א אינה עוסקת בקשר של גביש, כצפוי מההשפעה המוגבלת של החדרת CG-dinucleotide. למרות הגודל היחסי של חלבונים ו-DNA, רוב האינטראקציות בין בני זוג סימטריה מתווכות על ידי אינטראקציות בין חלבונים וחלבון ה-DNA (איור 4). מעניין לציין שבמקרה הספציפי הזה, ההשפעה המועילה של סככת dinucleotide 5 &#39;היא לא עקב ההיווצרות של DNA פסאודו רציף. במקום זאת, סופו 5 &#39;מפרויקטי הגדיל המפוגלים הרחק מצירי DNA ומקיים אינטראקציה עם מולקולת SeqA הפרוקסימלי של המתחם, המסביר מדוע נוקלאוטידים 2 w<html> פה נדרש להקפיד לשנות את גביש אריזה 8,11. <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/4266/4266fig1.jpg" /> איור 1. עקידת SeqAΔ (41-59)-A25R ל-DNA hemimethylated. () תרשים סכמטי של תחומי SeqA שoligomerization וDNA החלבון לתווך מחייב. (ב) assay electrophoretic ניידות המשמרת של SeqAΔ (41-59)-A25R עם DNAs המכיל שני רצפי GATC hemimethylated מופרדים על ידי מספר גדל והולך של זוגות בסיסים ( X). הנתיב השמאלי ביותר (שכותרת ריקה) מכיל תערובת של equimolar DNAs עם 5, 7, 12, 21, 25 ו 34 זוגות בסיסים בין שני רצפי GATC בהעדר SeqAΔ (41-59)-A25R. (C) תרשים המתאר את השלושה המשתנים מותאמים על DNA דופלקסים להשיג גבישים באיכות עקיפה. upload/4266/4266fig2.jpg &quot;fo: תוכן רוחב =&quot; 6in &quot;fo: src =&quot; / files/ftp_upload/4266/4266fig2highres.jpg &quot;/&gt; איור 2. השפעה של שינוי מרחק. הסיכום בין GATC של oligonucleotides משמש וגבישים שהושגו עם 23-24 דופלקסים ארוכים BP המכילים שני אתרי GATC hemimethylated המופרד ב9 או 10 זוגות בסיסים. כל התמונות של גבישים נלקחו באותו הגדלה וסרגל קנה המידה מציין 100 מיקרומטר. מגבלת הרזולוציה של כל SeqAΔ (41-59)-A25R-DNA גביש מתבסס על תמונות שנאספו על עקיפת Rigaku RU-300 מערכת גנרטור רנטגן. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4266/4266fig2large.jpg" target="_blank">לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.</a> <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/4266/4266fig3.jpg" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/4266/4266fig3highres.jpg" /> איור 3. השפעה של שינוי DNA מסתיימת. סיכום של tהוא oligonucleotides שימוש, וגבישים שהושגו עם 21 bps דופלקסים ארוכים המכילים שני אתרי GATC hemimethylated המופרד ב9 זוגות בסיסים וכוללים 0, 1 או 2 מסוכך נוקלאוטיד 5 &#39;קצה. כל התמונות של גבישים נלקחו באותו הגדלה וסרגל קנה המידה מציין 100 מיקרומטר. מגבלת הרזולוציה של כל SeqAΔ (41-59)-A25R-DNA הגביש מתבסס על תמונות שנאספו בעקיפת beamlines X12C וX29 (NSLS, BNL). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4266/4266fig3large.jpg" target="_blank">לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.</a> <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/4266/4266fig4.jpg" /> איור 4. האריזה של SeqAΔ קריסטל (41-59)-A25R חייב DNA עם סככת dinucleotide: נצפה מ() למעלה ובצד (B). היחידה אסימטרית מכילה 2 SeqAΔ (41-59)-A25R-DNA מתחמים שבו החלבון מוצג באפור תוך הדנ&quot;א מוצג בכתום. Symmetר&quot;י הקשור SeqAΔ (41-59)-A25R-DNA מולקולות מוצגות בלבן והצהוב לחלבון ה-DNA. נתון זה הוכן באמצעות 12 PyMOL. נתון זה קשור לסרט 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4266/4266fig4large.jpg" target="_blank">לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.</a> סרט 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4266/4266movie1.avi" target="_blank">לחץ כאן לצפייה בסרט.</a>

<ol><li>Campbell, J. L., Kleckner, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((E.+coli+oriC+and+the+dnaA+gene+promoter+are+sequestered+from+dam+methyltransferase+following+the+passage+of+the+chromosomal+replication+fork%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">E. coli oriC and the dnaA gene promoter are sequestered from dam methyltransferase following the passage of the chromosomal replication fork.</a> Cell. 62, 967-979 (1990).</li>
<li>Guarné, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+a+SeqA-N+filament%3A+implications+for+DNA+replication+and+chromosome+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Embo.+J%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of a SeqA-N filament: implications for DNA replication and chromosome organization.</a> Embo. J. 24, 1502-1511 (2005).</li>
<li>Brendler, T., Austin, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Binding+of+SeqA+protein+to+DNA+requires+interaction+between+two+or+more+complexes+bound+to+separate+hemimethylated+GATC+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Embo.+J%22%5BJournal%5D)">Binding of SeqA protein to DNA requires interaction between two or more complexes bound to separate hemimethylated GATC sequences.</a> Embo. J. 18, 2304-2310 (1999).</li>
<li>Jordan, S. R., Whitcombe, T. V., Berg, J. M., Pabo, C. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+variation+in+DNA+length+yields+highly+ordered+repressor-operator+cocrystals%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Systematic variation in DNA length yields highly ordered repressor-operator cocrystals.</a> Science. 230, 1383-1385 (1985).</li>
<li>Tan, S., Hunziker, Y., Pellegrini, L., Richmond, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystallization+of+the+yeast+MATalpha2%2FMCM1%2FDNA+ternary+complex%3A+general+methods+and+principles+for+protein%2FDNA+cocrystallization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Crystallization of the yeast MATalpha2/MCM1/DNA ternary complex: general methods and principles for protein/DNA cocrystallization.</a> J. Mol. Biol. 297, 947-959 (2000).</li>
<li>Rice, P. A., Yang, S., Mizuuchi, K., Nash, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+an+IHF-DNA+complex%3A+a+protein-induced+DNA+U-turn%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of an IHF-DNA complex: a protein-induced DNA U-turn.</a> Cell. 87, 1295-1306 (1996).</li>
<li>Yang, W., Steitz, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+the+site-specific+recombinase+gamma+delta+resolvase+complexed+with+a+34+bp+cleavage+site%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of the site-specific recombinase gamma delta resolvase complexed with a 34 bp cleavage site.</a> Cell. 82, 193-207 (1995).</li>
<li>Chung, Y. S., Brendler, T., Austin, S., Guarne, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+insights+into+the+cooperative+binding+of+SeqA+to+a+tandem+GATC+repeat%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Structural insights into the cooperative binding of SeqA to a tandem GATC repeat.</a> Nucleic Acids Res. , (2009).</li>
<li>Anderson, J., Ptashne, M., Harrison, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cocrystals+of+the+DNA-binding+domain+of+phage+434+repressor+and+a+synthetic+phage+434+operator%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Cocrystals of the DNA-binding domain of phage 434 repressor and a synthetic phage 434 operator.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81, 1307-1311 (1984).</li>
<li>Timsit, Y., Moras, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+self-fitting%3A+the+double+helix+directs+the+geometry+of+its+supramolecular+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+J%22%5BJournal%5D)">DNA self-fitting: the double helix directs the geometry of its supramolecular assembly.</a> Embo J. 13, 2737-2746 (1994).</li>
<li>Chung, Y. S., Guarne, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystallization+and+preliminary+X-ray+diffraction+analysis+of+SeqA+bound+to+a+pair+of+hemimethylated+GATC+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Crystallogr+Sect+F+Struct+Biol+Cryst+Commun%22%5BJournal%5D)">Crystallization and preliminary X-ray diffraction analysis of SeqA bound to a pair of hemimethylated GATC sites.</a> Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 64, 567-571 (2008).</li>
<li>DeLano, W. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDeLano%2C+WL+%22The+PyMOL+Molecular+Graphic+Systems%22">The PyMOL Molecular Graphic Systems</a>. , DeLano Scientific. (2002).</li>
</ol>

אין ניגודי האינטרסים הכריזו.

אחד האתגרים הגדולים ביותר בקריסטלוגרפיה macromolecular רנטגן הוא קבלת גבישים באיכות עקיפה. במקרה של חלבון או חלבון-DNA תסביכים, אתגר זה מתעצם בשל משתנים הנוספים שצריך להיות מותאמים. הוא האמין נרחב כי אורכו של ה-DNA ואת הנוכחות של מסוכך דביק כדי לשפר את הקשר בין מולקולות דנ&quot;א השכנות בעוד פסאודו דופלקס את הפרמטרים העיקריים כדי לייעל. עם זאת, יש לנו הראינו שהאופי והאורך מסוכך אלה יכולים להיות השפעה נוספת על אריזת הגביש של קומפלקס החלבון ה-DNA. למרות שפרוטוקול זה היה מתוכנן כדי ל...

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם המגיב </td><td> חברה </td><td> קטלוג # </td><td> תגובות (אופציונלי) </td></tr><tr><td> TRIS </td><td> Bioshop </td><td> TRS003.5 </td><td></td></tr><tr><td> Ethylenediaminetetraacetic חומצה (EDTA) </td><td> הפישר סיינטיפיק </td><td> E478-500 </td><td></td></tr><tr><td> Dithiotheitrol (DTT) </td><td> יו היסוד בע&quot;מ </td><td> DB0058 </td><td></td></tr><tr><td> NaCl </td><td> Bioshop </td><td> SOD002.10 </td><td></td></tr><tr><td> גליצרול </td><td> Caledon </td><td> 5350-1 </td><td></td></tr><tr><td> סוכרוז </td><td> סיגמה אולדריץ </td><td> S5016-500G </td><td></td></tr><tr><td> סולפט dodecyl נתרן (SDS) </td><td> Bioshop </td><td> SDS001.500 </td><td></td></tr><tr><td> אוריאה </td><td> Bioshop </td><td> URE001.5 </td><td></td></tr><tr><td> 40% Bis 29:1 / acrylamide </td><td> יו היסוד בע&quot;מ </td><td> A0007-500ml </td><td> לאחסן ב 4 ° C </td></tr><tr><td> חומצה בורה </td><td> EMD </td><td> BX0865-1 </td><td></td></tr><tr><td> קסילן cyanol FF </td><td> Bio-Rad </td><td> 161-0423 </td><td></td></tr><tr><td> בלו Bromophenol </td><td> Bioshop </td><td> BR0222 </td><td></td></tr><tr><td> מערכת ג&#39;ל כפולה מתכוונן אנכי </td><td> CBC המדעי חברה בע&quot;מ </td><td> DASG-250 </td><td></td></tr><tr><td> מסך התגבשות אינדקס </td><td> המפטון מחקר </td><td> HR2-144 </td><td> לאחסן ב 4 ° C </td></tr><tr><td> מסך התגבשות אני אשף </td><td> אמרלד BioSystems </td><td> EBS-Wiz-1 </td><td> לאחסן ב 4 ° C </td></tr><tr><td> מסך התגבשות השנייה אשף </td><td&gt; אמרלד BioSystems </td><td> EBS-Wiz-2 </td><td> לאחסן ב 4 ° C </td></tr><tr><td> קלאסיקות מסך התגבשות </td><td> Qiagen </td><td> 130701 </td><td> לאחסן ב 4 ° C </td></tr><tr><td> מגשי Intelliplate </td><td> אמנות רובינס מכשירים </td><td> 102-0001-00 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> פתרונות חיץ חלבון טיהור: 100 המ&quot;מימ TRIS pH 8, 2 המ&quot;מ EDTA, mM DTT 2 ו 5% גליצרול. חיץ חלבון אחסון: 20 המ&quot;מ TRIS pH 8, 150 המ&quot;מ NaCl, 5 המ&quot;מ DTT, 0.5 המ&quot;מ EDTA ו5% גליצרול. תמהיל ג&#39;ל טעינה: הוסף 20 גרם של סוכרוז, 25 מ&quot;ג של כחול bromophenol, 25 מ&quot;ג של cyanol FF קסילן, 1 מ&quot;ל של 10% w / v SDS ו10 מ&quot;ל של TBE 10X עד 70 מ&quot;ל של autoclaved DDH 2 O. מערבב עם חימום קל עד סוכרוז נמס ולהתאים הסופייםנפח עד 100 מ&quot;ל עם autoclaved DDH 2 O. לאחסן ב 4 ° C. חיץ הטעינה 2X: הוסף 11 גרם של אוריאה עד 10 מ&quot;ל של תערובת טעינת ג&#39;ל. מערבב בצלחת חמה עד האוריאה מתמוססת. Aliquot ב 2 צינורות מ&quot;ל ולאחסן ב 4 ° C. תמהיל העמוד 10X: מיקס 420.4 גרם של אוריאה, 100 מ&quot;ל של TBE 10X (autoclaved), 250 מ&quot;ל של 40% 29:1 Bis / acrylamide בDDH 2 O. מערבב עד שהיא נמסה לחלוטין ולהתאים את הנפח 1 ליטר. אחסן בבקבוקים כהים ב 4 ° C. TBE 10X: ממס 108 גרם לטריס, 55 גרם של חומצה בורה ו9.3 גרם של EDTA ב1 ליטר של DDH 2 O. חיטוי וחנות בטמפרטורת חדר. חיץ elution: לדלל 8 מ&quot;ל של 5 M NaCl, 2 מ&quot;ל של M TRIS pH 1 7.5, 0.4 מ&quot;ל של 0.5 מ &#39;EDTA pH 8 ב 200 מ&quot;ל של DDH 2 O. חיטוי וחנות בטמפרטורת חדר. </td></tr></tbody></table&gt;

איטרטיבי אופטימיזציה של דופלקסים dna להתגבשות של מכלולי seqa-dna

Iterative Optimization of DNA Duplexes for Crystallization of SeqA-DNA Complexes

Escherichia coli SeqA הוא רגולטור שלילי של שכפול הדנ&quot;א שמונע פגי אירועי reinitiation לפי אשכולות GATC hemimethylated sequestering בתוך המקור של שכפול 1. מעבר למקור, SeqA נמצא במזלגות שהכפולים, שבו הוא מארגן את ה-DNA המשוכפל חדשה למבנים מסודרים גבוהים יותר 2. מקורבי SeqA רק בחולשה עם רצפי GATC בודדים, אבל הוא יוצר קומפלקסי זיקה גבוהות עם דופלקסים DNA המכילים אתרי GATC מרובים. היחידה התפקודית ומבנית המינימאלית של SeqA היא דימר, ובכך הסבירה את הדרישה של לפחות שני רצפי GATC כדי ליצור מורכבות-זיקה גבוהה עם DNA hemimethylated 3. בנוסף, ארכיטקטורת SeqA, עם oligomerization ותחומי ה-DNA מחייבים מופרדים מקשר גמיש, מאפשרת מחייבת לחוזר GATC המופרד עד שלושה סיבובי סליל. לפיכך, הבנת הפונקציה של SeqA ברמה מולקולרית דורשת ana המבניתמוגה של SeqA חייבת רצפי GATC מרובים. בהתגבשות החלבון ה-DNA, ה-DNA יכול להיות אף להשפעה יוצאת דופן על אינטראקציות האריזה בהתאם לגדלים והארכיטקטורה היחסיים של החלבונים והדנ&quot;א. אם החלבון הוא גדול יותר מאשר ה-DNA או טביעות רגליים של רוב ה-DNA, אריזת הגביש מתווכת בעיקר על ידי אינטראקציות בין חלבונים. לעומת זאת, כאשר החלבון הוא באותו גודל או קטן יותר מאשר DNA או שהוא מכסה חלק קטן של ה-DNA, ה-DNA DNA-DNA וחלבון האינטראקציות רק שולט אריזת גביש. לכן, התגבשות של קומפלקסים-DNA חלבון דורשת הקרנה השיטתית של 4 אורך הדנ&quot;א ומסתיים DNA (בוטה או סככה) 5-7. בדו&quot;ח זה, אנו מתארים כיצד לעצב, לייעל, לטהר ולהתגבש דופלקסים DNA המכילים hemimethylated חוזר טנדם GATC במתחם בוריאצית dimeric של SeqA (SeqAΔ (41-59)-A25R) כדי לקבל גבישים מתאימים לקביעת מבנה.

מבנה הגבישי של קומפלקסים-DNA חלבון יכול לספק תובנות לגבי תפקוד חלבון, מנגנון, כמו גם, את אופי האינטראקציה הספציפית. כאן, אנו מדווחים איך לייעל את האורך, רצף וקצוות של DNA דופלקס להתגבשות שיתוף עם<em&gt; חיידקי Escherichia</em&gt; SeqA, רגולטור שלילי של ייזום שכפול.

איטרטיבי אופטימיזציה של דופלקסים DNA להתגבשות של מכלולי SeqA-DNA

חלבון SeqA של *Escherichia coli* הוא רגולטור שלילי של שכפול DNA, המונע אירועי אתחול מוקדמים מדי על ידי סקווסטרציה של מקבצי GATC המהמי-מתילתיים...

ניסוי זה מפרט כיצד להפיק גבישים באיכות דיפרקציה של חלבון הקשור ל-DNA המכיל רצף GATC חצי-מתילתי (hemi methylated) בסידור טנדמי. חזור על הפעולה כדי לעודד אריזה גבישית של קומפלקס החלבון-DNA. התחל בתכנון רציונלי של אורך ה-DNA, המרווחים בין רצפי ה-GATC וקצות ה-DNA, המשך בשימוש באוליגנוקלאוטידים משלימים בעלי גדיל בודד כדי לטהר את ה-DNA, ולאחר מכן בצע עיגון (annealing) ליצירת דופלקס ה-DNA החצי-מתילתי, ולבסוף ערבב את seq A המטוהר כדי ליצור את הקומפלקס.בשלב הבא, מצאו תנאים אופטימליים להבאת גבישים של קומפלקס החלבון-DNA באיכות דיפרקציה, באמצעות ניסויי התגבשות עם מסכי מטריצה דלילה (sparse matrix screens) מסחריים. תוצאות מוצגות. שתפו את ההשפעה של שינוי באורך ה-DNA, במרווח ה-GATC ובקצוות על איכות הדיפרקציה של גבישי ה-CQ A DNA.מטרת עבודה זו היא להשיג גבישים באיכות דיפרקציה של CK הקשור ל-DNA, אך היא יכולה לסייע גם בהבנת המשתנים הכלליים שיש לשקול בעת תכנון דופלקסים של DNA לצורך גבישה של קומפלקסים אחרים של חלבון-DNA. הדגמה של הליך זה תשמש את Chang, A, עמית דוקטורט מהמעבדה שלי. מחקר זה משתמש בגרסה של חלבוני בקרה של רפליקציית DNA. Seek a שיוצר דימרים יציבים ובעל אזור קישור (linker) מקוצר בין דומיין ה-ization לדומיין הקשירה ל-DNA.גרסה זו מגבילה את קישור ה-DNA לחזרות GATC טנדמיות המופרדות אך ורק על ידי סיבוב אחד של ה-DNA. ראשית, בצע טרנספורמציה לתאים מסוג BBL 20 1D three עם הפלסמיד המקודד ל-DEMETRIC seq A תחת שליטתו של פרומוטור T7. פרוס את תגובת הטרנספורמציה על צלחות אגר LB המכילות 100 µg/mL ampicillin והצב אותן באינקובטור חיידקי למשך הלילה. בחר מושבות מעורבבות והתחל תרבית קטנה למשך הלילה.בבוקר למחרת, יש להוסיף לתרבית של ליטר אחד 10 milliliters מהאינוקולום של הלילה הקודם. כאשר התרבית נמצאת בשלב הלוגי (log phase), יש להוסיף two milliliters של 0.5 molar IPTG כדי להשרות את ייצור החלבון. יש להמשיך את הדגירה למשך שלוש שעות במנער אורביטלי בטמפרטורה של 37 °C.לאחר מכן, קצרו את התאים על ידי סנטריפוגציה ב-3,300 G למשך 10 דקות. השביה את משקע התאים בבופר טיהור A באמצעות סוניקציה, והצלילו את הליזט על ידי סנטריפוגציה ב-39,000 times G למשך 40 דקות. כעת, העמיסו את הסופרנאטנט על עמודת הפרין שהושרה עם בופר טיהור.כדי להבדיל (elute) את חלבון ה-CK. השתמש במדרג ליניארי עד ל-1 molar sodium chloride. חלבון ה-CK נבדיל בריכוז של כ-0.7 molar sodium chloride. אסוף את השברים המכילים את ה-CK ומדלל אותם כדי להוריד את עוצמת היונים של הדגימה.לאחר מכן, טען את הדגימה לעמודת כרומטוגרפיית חילוף קטיונים המאוזנת עם באפר טיהור. החל גרדיאנט מלח ליניארי כדי לבודד חלבון CK טהור בריכוז של כ-0.4 מולארי של sodium chloride. איגד את הפראקציות המכילות CK.רכזו לריכוז של 3 mg/mL ואספקו לאחסון. תכנון של בופר עבור אוליגו-נוקלאוטידים משלימים, לא מתילated ומתילated. הכינו דגימות של 1 µmol מכל DNA גדיל יחיד ליאפיליז ב-800 µL של מים מזוקקים פעמיים שעברו אוטוקלאב, ערבלו בוורטקס והמתינו 15 דקות, כעת ו-800 µL.הוסיפו תמיסת טעינה (loading buffer) בריכוז 2X לכל דגימה. עבור אוליגו-נוקלאוטידים באורך של 20 עד 30 נוקלאוטידים, הכינו ג'ל דנטורציה גדול בריכוז 10%. לאחר הפולימריזציה, הסירו את המסרק ושטפו את הבארות ביסודיות. הרכיבו את הג'ל ומלאו את מאגרי החלק העליון והתחתון בתמיסת TBE running buffer בריכוז 1X.בצע הרצה מקדימה של הג'ל ב-750 volts כדי לחמם את הג'ל ל-55 degrees Celsius. לאחר מכן עצור את ההרצה ושטוף היטב את הבארים עם running buffer. כעת חמם את האוליגונוקלאוטידים ל-90 degrees Celsius למשך שתי דקות.ערבבו במערבל Vortex וסובבו (spin). העבירו את הדגימות מיד להטענה על הג'ל. הריצו את הג'ל במתח של כ-700 volts עד להגירת האוליגוניוקלאוטיד.במרכז ג'ל poly acrylamide בריכוז 10%, צבעי phenol blue ו-xylene syl ff נודדים יחד עם אוליגונוקלאוטידים באורך של כ-20 בסיסים וכ-60 בסיסים, בהתאמה. פרקו את הג'ל מהמכשיר והסירו את המקריבים (spacers) על משטח שטוח. הסירו פלטה אחת מזכוכית וכסו את הג'ל בניילון נצמד.לאחר מכן הפוך את הג'ל, הסר את לוחית הזכוכית השנייה וכסה את הג'ל בניילון נצמד. בשלב הבא, סמן את הפסים באמצעות אור UV ולוח פלורסצנטי מאחורי הג'ל. כדי לראות את צל ה-DNA, השתמש בלהב תער כדי לחתוך את הפס ולהוציאו בחתיכות קטנות.העבירו כל דגימה למבחנה סטרילית של 15 milliliter. הוסיפו תשעה milliliters של תמיסת elution ודללו למשך לילה בטמפרטורה של 37 degrees Celsius תוך써 ערבוב. העבירו בזהירות את התמיסה למבחנת צנטריפוגה בעירה (autoclave) באמצעות טיפ של פפית טעינת ג'ל.כדי למנוע העברה של חלקי אקרילאמיד, הוסיפו מיליליטר אחד של נתרן אצטט בריכוז 3 מילי-מול ב-pH 7 פלוס 25 מיליליטר אתנול 100% מקורר, והדגירו בטמפרטורה של 20- מעלות צלזיוס למשך שלוש שעות לפחות. סבב את ה-DNA המשקע בצנטריפוגה. לאחר מכן, ייבשו את המשקעים ב-SpeedVac בחום בינוני, השביו כל משקע ב-400 מיקרוליטר של מים מזוקקים פעמיים שעברו אוטוקלאב, והעבירו למבחנה נקייה.הוסיפו 40 µL של נתרקה אצטט בריכוז 3 M ב-pH 7 ו-1 mL של 100% ethanol, ערבבו ב-vortex והדגירו למשך 30 דקות ב-20- °C. לאחר צנטריפוגציה למשך 15 דקות ב-18,000 ×g, שטפו את כדורית ה-DNA ב-100 µL של 70% cold ethanol כדי להסיר שאריות מלח. סובבו בצנטריפוגה למשך שש דקות ב-18,000 ×g, לאחר מכן השליכו את ה-ethanol ויבשו את הכדורית במכשיר SpeedVac.כעת השעיו כל משקע ב-100 µL של מים מזוקקים פעמיים שעברו אוטוקלאב. קבעו את ריכוז האוליגו-נוקלאוטידים באמצעות ספקטרומטריה. כדי להכין את דופלקסי ה-DNA המה-מתילים, ערבבו תחילה ריכוזים מולריים שווים של הגדילים הבודדים המשלימים.לאחר מכן, חממו את התערובות ל-95 °C באמבט מים למשך חמש דקות כדי לבצע דנטורציה (anil) לגדילים. הניחו לדגימות להתקרר לאט לטמפרטורת החדר בתוך אמבט המים. ערבבו נפחים שווים של 81 µM חלבון CQ מנוקה ו-81 µM DNA המיתילי חלקית.לאחר מכן דגרו בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות. שמרו בטמפרטורה של 4 °C עד לשימוש; סננו תנאים להתגבשות באמצעות מסכי sparse matrix מסחריים. ברגע שזוהו קשרי התגבשות ראשוניים, בצעו אופטימיזציה לתנאים כדי לגדל גבישים באיכות דיפרקציה. בצעו קריו-הגנה לגבישי ה-CK DNA שהתקבלו.הגדילו את כמות ה-PEG 400 בתמיסת ההגבשה לריכוז סופי של 25% או הוסיפו 20% גליצרול לתמיסת ההגבשה. דלגו גבישים בודדים באמצעות לולאת ניילון. הקפיאו את הדגימות בחנקן נוזלי.כעת יש לבחון את גבול העקיפה של כל גביש ב-100 k. כדי להשיג את מבנה הגביש של המוטנט המקוצר של CK הקשור ל-DNA המהמתיל חלקי, אנו מבצעים אופטימיזציה רצופה של שלושה פרמטרים ב-DNA: המרווח בין רצפי GATC המהמתיל חלקי, אורך הדופלקס והיעדר או נוכחות של בליטות ב-five prime. מחקר זה משתמש בגרסת DME של seek a עם מוטציה נקודית בדומיין הטרמינלי הקצבי המונעת ליגציה נוספת, ובלינקר מקוצר המגביל את קישור ה-DNA למבנה טנדם.בבדיקות הזזה של ניידות DNA חשמלית (electromobility shift assays), חזרות GATC המופרדות בדיוק על ידי סיבוב אחד של הסליל מעידות כי חלבון ה-CK המודגש נקשר באופן מועדף לחזרות GATC המופרדות על ידי 9 עד 10 זוגות בסיסים. לפיכך, סריקות ראשוניות משתמשות בדופלקסים באורך של 23 עד 24 זוגות בסיסים, המכילים שתי חזרות GATC הממתילתן חלקית (hemimethylated) ומופרדות על ידי 9 או 10 זוגות בסיסים.שלושה דופלקסים הניבו גבישים בעלי צורה טובה. למרות ששום גביש לא הראה עקיפה ברזולוציה גבוהה, הנתונים הצביעו על כך שהפרדה של תשעה זוגות בסיסים מסוג A-G-A-T-C הייתה מועדפת לקריסטליזציה; באופן בלתי צפוי, הגברת האינטראקציות של שלד החריץ באמצעות הכללת דינוקלאוטיד CG בין שני אתרי ה-GATC לא שינתה את גבול העקיפה של הגבישים.לעומת זאת, אופטימיזציה של אורך הבליטות (overhangs) שינתה באופן דרמטי את המגעים המולקולריים ואת מורפולוגיית הגביש. מבנה הגביש של חלבון CK זה הקשור לדוּפלקס DNA ממותיל חלקית אישר כי הפנים החופשייה של דוּפלקס ה-DNA אינה משתתפת במגעים גבישיים למרות הגודל היחסי של החלבון וה-DNA; מרבית האינטראקציות בין בני זוג סימטריים מתווכות על ידי אינטראקציות חלבון-חלבון וחלבון-DNA. מעניין שבמקרה מסוים זה, ההשפעה המיטיבה של בליטת דינוקלאוטיד בקצה 5' אינה נובעת מיצירת DNA פסאודו-רציף.במקום זאת, הקצה ה-five prime של הגדיל הממתיל בולט הרחק מצירים של ה-DNA ומקיים אינטראקציה עם מולקולת ה-CK הפרוקסימלית של הקומפלקס, מה שמסביר מדוע שני נוקלאוטידים היו נחוצים באופן מוחלט כדי לשנות את האריזה הגבישית. לאחר צפייה בסרטון זה, צריכה להיות לכם הבנה טובה של אופן טיהור חלבונים ותכנון דופלקסי DNA עבור גביש של קומפלקס חלבון-DNA. חשוב לזכור כי למרות שפרוטוקול זה תוכנן לגביש של קומפלקס CK DNA, האופטימיזציה הרציונלית של אורך ה-DNA, הרצף והקצוות מספקת מסגרת כללית לתכנון דופלקסי DNA עבור גביש של קומפלקסים אחרים של חלבון-DNA.

iterative-optimization-dna-duplexes-for-crystallization-seqa-dna

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

תכנון תרופות המבוסס על מבנה ממלא תפקיד חשוב בפיתוח תרופה. רודף מטרות מרובות במקביל מגדיל מאוד את הסיכוי להצלחה לגילוי עופרת. המאמר הבא מדגיש עד כמה מרכז ג'נומיקס המבני סיאטל למחל זיהומיות מנצל גישה רב יעד לקביעת גן למבנה של שפעת PB2 מקטע.

גישת עיבוד מקביל רב היעד לקביעת גנטי למבנה של פולימראז שפעת PB2 מקטע

חבילת תוכנת 3DNA היא כלי פופולרי ביואינפורמטיקה ותכליתית עם יכולות לנתח, לבנות, ולדמיין מבני חומצות גרעין תלת ממדיים. מאמר זה מציג פרוטוקולים מפורטים לקבוצת משנה של תכונות חדשות והפופולריות זמינות ב3DNA, החלים על שני מבנים והרכבים של מבנים הקשורים בודדים.

ניתוח ובניית מבני חומצות גרעין עם 3DNA

כאן אנו מתארים שיטה כללית להקרנת מטריצת microseed אקראית. טכניקה זו מוצגת להגדיל באופן משמעותי את שיעור ההצלחה של ניסויי הקרנת התגבשות חלבון, להפחית את הצורך באופטימיזציה, ולספק אספקה ​​אמינה של גבישים לאיסוף נתונים וניסויים יגנד שרייה.

שיפור שיעור ההצלחה של התגבשות חלבון על ידי Microseed מטריקס אקראי הקרנה

ריצוף DNA היא גישה יעילה ליצירת ננו-מבנים ניתנים לתכנות. אנו מתארים את הפרוטוקולים לבניית צורות דו-ממדיות מורכבות על ידי הרכבה עצמית של אריחי DNA חד-גדיליים.

עצמי הרכבה של צורות דו-ממדיות מורכבות מחד-גדילי דנ&quot;א אריחים

אנו מתארים זאת assay על ידי צימוד זיהוי methyltransferase אדנין DNA (DamID) לרצף תפוקה גבוה (DamID-seq). שיטה משופרת זה מספקת רזולוציה גבוהה יותר וטווח דינמי רחב יותר, ומאפשרת ניתוח נתונים DamID-seq בשיתוף עם נתונים רצף אחרים תפוקה גבוהה כגון שבב seq, RNA-seq, וכו '...

DamID-seq: מיפוי הגנום של אינטראקציות החלבון-DNA על ידי תפוקה גבוהה רצף של קטעי DNA-מפוגל אדנין

שיטה זו מתאר את שיבוט, הביטוי, ואת טיהור של Nsa1 רקומביננטי לקביעת מבנה על ידי קריסטלוגרפיה באמצעות קרני רנטגן, רנטגן זווית קטנה פיזור (SAXS), והוא רלוונטי לניתוח המבני היברידית של חלבונים אחרים שניהם הורו, מגרה תחומים.

שילוב קריסטלוגרפיה באמצעות קרני רנטגן עם זווית קטנה פיזור קרני רנטגן ליצור מודל לא מובנה מחוזות Nsa1 של Cerevisiae ס

מאמר זה מציג פרוטוקול מפורט עבור T4 מצדו ולטיהור denaturing דף קטן מולקולות DNA מעגלי, חישול, ניתוח דף מקורית של אריחים מעגלית, בהרכבת AFM הדמיה של nanostructures ה-DNA 1 י ו- 2D, כמו גם agarose ג'ל אלקטרופורזה וטיהור צנטריפוגה של סופי אן nanostructures.

המוטיבים אן יציב, 1 י ו- 2D Nanostructures בנוי מולקולות DNA מעגלי קטן

ניתן לפתח את הגבלת הגבלות עם ספציפיות רצף חדש מאנזימים המספרים על רצף מנוון באופן חלקי. כאן אנו מספקים פרוטוקול מפורט כי השתמשנו בהצלחה כדי לשנות את הספציפיות הרצף של האנזים NlaIV. מרכיבי המפתח של הפרוטוקול הם ממדר החוץ של התגובה שעתוק/תרגום ומבחר של משתנים עם משתני רצף חדש.

האבולוציה בבימויו של הגבלת מגבלות על הגבלה עם ספציפיות יותר מחמירות

מטרת מאמר זה היא לתת לצופה הבנה מוצקה כיצד להפוך את פרוטוקול פיזור האדים הקטן שלהם, לגידול גבישי חלבון גדולים ובודדים, לשיטת מיקרו-קריסטליזציה של אצווה בנפח גדול לקריסטלוגרפיה סדרתית.

אופטימיזציה של הצמיחה של גבישי אנדותיאפפסין לניסויי קריסטלוגרפיה סדרתיים

אנו מציגים פרוטוקול להכנת מעבים ביומולקולריים סינתטיים המורכבים מננו-כוכבים של DNA אמפיפילי החל מהאוליגונוקלאוטידים המרכיבים את הדנ"א שלהם. קונדנסטים מיוצרים מרכיב ננו-כוכב יחיד או משני רכיבים ומותאמים כדי לקיים שעתוק חוץ גופי של RNA מתבנית DNA משובצת.

עיבויים סינתטיים וארכיטקטורות דמויות תאים מננו-מבנים של DNA אמפיפילי

למד אופטימיזציה של דופלקסי DNA להתגבשות מכלולי SeqA-DNA באיכות דיפרקציה. חקור את השפעת אורך ה-DNA, מרווחי GATC וקצוות ה-DNA על איכות הגבישים.

איטרטיבי אופטימיזציה של דופלקסים DNA להתגבשות של מכלולי SeqA-DNA

גלה סרטונים נוספים