5 במאי 2014
פרוטוקול זה מתאר את ההתקנה של מיקרוסקופ גיליון אור ויישומה לin vivo הדמיה של ג elegans עוברים.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לדמות את ההתפתחות של C Allergan באמצעות מיקרוסקופ יריעות אור פלואורסצנטיות. זה מושג על ידי הגדרה ראשונה של מיקרוסקופ מבוסס יריעת אור המורכב ממיקרוסקופ זקוף וקבוצה קטנה של אלמנטים אופטומכניים ליצירת יריעת אור. השלב השני של ההליך הוא הרכבת העובר.
השלבים האחרונים הם להתאים את יריעת האור על העובר ולתעד את התפתחותו. התוצאות יכולות להראות את הדינמיקה של חלבונים המסומנים פלואורסצנטית במהלך התפתחות CL egan באמצעות ניתוח של סרטוני תלת מימד וסרטוני זמן. היתרונות העיקריים של מיקרוסקופ ספינת מגדלור על פני שיטות קיימות אחרות, כגון מיקרוסקופיה קונפוקלית, הוא בכך שהיא מאפשרת הדמיה מהירה יותר עם פוטוטוקסיות נמוכה יותר.
שלישית, שיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי איטום מפני התפתחות. ניתן ליישם אותו גם על מערכות אחרות כגון דג זברה או דג זברה. הדגמת הנוהל תהיה ברורה.
שיילס, מהנדסת מהמעבדה שלי, ופאולין לינאק, מהנדסת מהמעבדה של ואן. סעיף זה מתאר את מכלול ההתקנה, וניתן להשאיר אותו מורכב לכל הניסויים. לאחר שהלייזרים, המסננים, הטלסקופ והפריסקופ הוצבו כולם על השולחן האופטי, אבטח את העדשה הגלילית כדי ליצור את יריעת האור.
עדשה אחרת מותאמת למיקוד. נקודת המוקד של מטרת ההארה צריכה להיות בקנה אחד עם נקודת המוקד של האובייקט של מטרת הזיהוי. כעת, הקרן את הקרן על הקיר או המסך והזיזו את מטרת התאורה לאורך ציר האלומה עד שקווי המתאר של ההקרנה חדים.
כלול מסנן פליטת קו מרובע ומצלמת E-M-C-C-D במערך המיקרוסקופ. תקן את שלב התרגום הידני השני לראשון בניצב. הברג את המכלול לשלב המיקרוסקופ הקיים.
לאחר הסרת מטרת תאורת העדשה הגלילית שנקבעה, מקם את המכלול על המיקרוסקופ והחזר את ערכת התאורה על השלבים. חבר את מחזיק ה-qve בצומת הניצב של נתיב התאורה ונתיב הזיהוי. כעת, בדוק את גיליון האור.
מלאו זכוכית בתמיסת פלואורסצאין והניחו אותה במחזיק על השלבים. הסדין הקל צריך להיות גלוי. זה צריך להיות אופקי וממורכז ביחס לעדשת אובייקט הזיהוי.
לאחר מכן, הסר את העדשה הגלילית. בצע אופטימיזציה של גיליון האור עם תרגום תלת מימד של מטרת התאורה, ורכוש תמונה למדידת עובי יריעת האור. זה תלוי בצמצם העדשה האובייקטיבית.
לאחר מכן הקפד להחליף את העדשה הגלילית. ראשית, חותכים חתיכת זכוכית בעובי מילימטר אחד, 10 מילימטרים על 20 מילימטרים. השתמש בעט סימון יהלום.
לאחר מכן, הוסף 20 מיקרוליטר פולי L ליזין לצד אחד, ולאחר הייבוש, הצמד אותו לשקופית שנייה. במצב קבוע, הוסף טיפה של 5% אגר והחליק אותה עם משקל של סט שקופיות שלישי למעלה. לאחר שהאגר מתייבש, הסר את השקופית השלישית וחתוך את כרית האגר שלושה מילימטרים מקצה שתי המגלשות הנותרות מעל המגלשה ללא פולי L ליזין.
ואז הסר את השקופית הקבועה והשאיר תלייה של אגר. מצפים את האגר ב -20 מיקרוליטר פולי ליזין ומניחים לו להתייבש. כעת הכניסו תולעי GR לזכוכית שעון מלאה במדיום M nine תחת מיקרוסקופ דיסקציה.
חותכים את התולעים בגובה אזמל לפות ובכך משחררים את הביצים. לאחר מכן זהה את העוברים הנמצאים בשלב העניין ואסוף אותם בעזרת פיפטה מיקרו נימית. העבירו את העוברים לתליית האגר מהמגלשה המוכנה ממש ליד קצה המגלשה, לא על גבול האגר.
לאחר מכן יישר את העוברים עם פיפטה מיקרו נימית תוך הסרת הנוזל. על ידי שאיפה, העוברים יידבקו לפוליאול ליזין. חשוב מאוד למקם היטב את העוברים כדי לקבל רישום טוב, וזה דורש נימי עם היכולת הנכונה.
אם הם קטנים מדי, יהיה קשה לשחרר את העוברים. אם גדול מדי, יהיה קשה לשלוט בחוזקה בזרימה שדלפה וליישר את העוברים, לכסות את השקופית במדיום M 9 בצלחת פטרי ולאשר שהעוברים עדיין מחוברים לאגר באמצעות הגדלה. כעת, תקן את השקופית המוכנה עם עוברים למחזיק הדגימה שמתאים לבט
.המחזיק הוא מכשיר מתוצרת בית שנועד להתאים ל-vete. לאחר מכן, אבטח את הווט לבמה חשמלית של פיזו ותחת תאורת שדה בהיר, אתר עובר. כעת הפעל את חבילת התוכנה השולטת בכוונון האופטי האקוסטי.
סנן את המצלמה ואת הבמה. תוכנה זו כאן נכתבה בתוך הבית, אך ניתן להשתמש גם בתוכנה חינמית של מיקרו-מנג'ר. ראשית, בחר את קו הלייזר.
לאחר מכן, התאם את ה-stagלאורך ציר ה-x עד שגיליון האור יהיה במיטבו. לאחר מכן כוונן את שני הממדים האחרים, Y ו-Z עד שהאות לרעש יהיה במיטבו. ייתכן שיהיה צורך לחזור על זה עבור כל עובר.
מפתח זה כדי לייעל את האות ליחס כדי להשיג הקלטה טובה ly מתרגם את השלב החופשי, תומך במטרה וחיסול כאשר אני רק קשר כדי להשיג סימולציה של העובר והניגודיות הטובה ביותר. כעת רכוש תמונות זמן-lapse הגדר את החשיפה לעוצמת הלייזר, רווח הזמן ומרווח ההדמיה בהתאם לרמת הקרינה של העובר ומהירות התהליך הביולוגי המנותח. בשביל זאק.
הדמיה קבעה את המרחק בין הפרוסות למיקומי ההתחלה והסיום שלהן ב-c elgan המבטא מבנה GFP היסטוני. הדמיה של שעתיים נעשתה עם 20 ערימות פרוסות שצולמו כל 37 שניות. חלוקות תאים נראו בבירור בזן המבטא טובולין שהתמזג ל-GFP והאבן שלו התמזגה לדובדבן ההקלטות צולמו במשך 16 דקות כל 105 שניות.
עיבודים תלת-ממדיים מוצגים בשלוש נקודות זמן. הצירים המיטוטיים והכרומוזומים המעובים נראים בבירור וניתן לעקוב אחריהם בקלות באמצעות חלוקות תאים. בזן שלישי APO ליפופרוטאין vit 2 שהתמזג ל-GFP צולם עם תיוג mCherry של קרום התא.
במשך 13 דקות, 10 ערימות פרוסות נלקחו כל 27 שניות. היה קל לעקוב אחר חלקיקי ליפופרוטאין שנעים במהירות. כאן אנו משתמשים ביריעת האור שנוצרה בשיטות מורכבות יותר כדי לייצר.
ניתן ליישם את גיליון האור כדי לשפר עוד יותר את הרזולוציה המרחבית.
פרוטוקול זה מתאר את ההתקנה של מיקרוסקופ לוח אור ואת יישומו לצילום in vivo של עוברים של C. elegans. השיטה מאפשרת צילום מהיר יותר עם פוטוטוקסיות נמוכה יותר בהשוואה למיקרוסקופיה קונפוקלית.
Light sheet microscopy enables high-resolution, low-phototoxicity imaging of whole-organism development, supporting target validation in early discovery by providing quantitative, dynamic phenotypic data. This approach reduces biological uncertainty in preclinical models by allowing longitudinal tracking of cellular processes and protein dynamics in live systems. The method enhances predictive confidence in lead identification by delivering reproducible, scalable imaging outputs compatible with high-content screening workflows.
The method integrates into the discovery continuum from early target validation through lead optimization, offering a non-destructive, quantitative imaging modality for phenotypic screening and mechanistic studies in whole-organism models.