January 2nd, 2014
ההחזקה של virions על פני השטח היא דרישה להדמיית virion יחיד על ידי הדמיית פלואורסצנטיות ברזולוציה סופר או מיקרוסקופיה כוח אטומי (AFM). כאן אנו מדגימים שיטת הכנה לדוגמה להדבקה מבוקרת של virions למשטחי זכוכית המתאימים לשימוש AFM והדמיה פלואורסצנטית ברזולוציה סופר.
הליך זה מכין החלקות כיסוי זכוכית עם וירוסים לשימוש במיקרוסקופ כוח אטומי ומיקרוסקופ ברזולוציה גבוהה, כגון מיקרוסקופ לוקליזציה המופעל על ידי צילום פלואורסצנטי. ראשית, יש לנקות את מצע הזכוכית ולצפות את הזכוכית בסרט דק של פוליאתילן גליקול ביוטיניל חלקית המושתל בפולי L ליזין. לאחר מכן, טפל במשטח עם avadon כדי להגביר את זיקת הקישור של הסרט הביוטיניל.
כעת טפל במשטח עם נוגדנים ביוטיניליים ספציפיים לנגיף המעניין. לאחר מכן טפל במשטח שהוכן לנוגדנים עם הנגיף המעניין. בניגוד לציפוי ספין, לטכניקה זו יש את היתרון של פיזור גרסאות לאורך פני השטח בצורה הומוגנית.
על מנת לייעל את המיקרוסקופיה, הנח את החלקות הכיסוי בצורה אנכית במתלה החלקה לכיסוי טפלון בגודל מתאים, וטבל אותם בכוס מלאה בסוניקט אלכוהול אתילי מסונן למשך 30 דקות. לאחר מכן שטפו את הכיסוי החלקה בהרחבה במים טהורים במיוחד. לאחר מכן, הניחו את החלקות הכיסוי במתלה טפלון נקי נפרד וכוס מלאות בסודיום הידרוקסיד סוניקט מולארי אחד למשך 30 דקות ושטפו בהרחבה במים טהורים במיוחד.
כעת יבש את הכיסוי השטוף מחליק מתחת לזרם חנקן והעביר אותם לרשת טפלון נקי ויבש. ודא שכל החלקה של הכיסוי נקייה מכל סרט או חלקיקים גלויים. מיד לאחר הייבוש בזרם החנקן בצורה אופקית, הנח החלקת כיסוי אחת לתוך צלחת פטרי סטרילית במרכז פיפטת החלקת הכיסוי את הכמות המתאימה של פוליאתילן גליקול מושתל פוליליזין ביוטיניל ב-PBS.
מניחים עוד החלקה נקייה על גבי הנוזל בשיטת כריך. ודא שהנפח בין הפנים הפעילות של שתי החלקות הכיסוי מלא לחלוטין בנוזל. מכסים את צלחת הפטרי ודוגרים בטמפרטורת החדר למשך 45 עד 60 דקות.
לאחר מכן, הרם את הכריך בעזרת פינצטה מבלי לצבוט את עודפי הנוזלים. כעת בעזרת האגודל והאצבע המורה, צובטים את הכריך קלות ואופקית. החלק את החלקות הכיסוי בכיוונים מנוגדים והפרד אותם מבלי לגעת בפנים הפעילות.
שטפו את שני הפנים הפעילים ב-25 מיליליטר מים טהורים במיוחד. כעת יבש את החלקות הכיסוי עם זרם חנקן ושים לב אילו פני החלקה של הכיסוי פעילים לצלחת פטרי סטרילית. הנח פתק כיסוי מטופל עם הפיפטה הפעילה עם הפנים כלפי מעלה כמות מתאימה של תמיסת ראיות מופשרת על אמצע הפנים הפעילות.
הניחו החלקה נוספת עם הפנים הפעילות כלפי מטה כדי לסנדוויץ' את הנוזל, ולאחר מכן דגרו בטמפרטורת החדר למשך 25 עד 30 דקות. לאחר מכן, הפרד את שני פתקי הכיסוי כפי שהוצג קודם לכן. הקפידו לא לגעת בפנים הפעילות.
כעת שטפו את שני הפנים הפעילים ב -25 מיליליטר מים טהורים במיוחד ואז יבשו את החלקות הכיסוי בזרם חנקן. חשוב לזכור אילו פרצופי החלקה של הכיסוי פעילים. לעיון עתידי, הנח מיד כיסוי נלהב ומטופל להחליק פעיל עם הפנים כלפי מעלה בצלחת פטרי סטרילית, פיפטה כמות מתאימה של נוגדן ביוטיניל להפשיר על אמצע הפנים הפעילות.
הניחו החלקת כיסוי נוספת עם הפנים הפעילות כלפי מטה על גבי הנוזל בשיטת סנדוויץ'. לאחר מכן יש לדגור בטמפרטורת החדר למשך 45 עד 60 דקות לאחר הפרדת שתי החלקות הכיסוי, יש לשטוף את שני הפנים הפעילות עם 25 מיליליטר PBS. לאחר מכן הניחו פתק כיסוי שטופל בנוגדנים עם הפנים הפעילות כלפי מעלה בצלחת פטרי סטרילית ופיפטה כמות מתאימה של וירוס על אמצע הפנים הפעילות.
עכשיו כריך עם כיסוי פעיל שני, להחליק, לכסות ולדגור. כעת הפרד את שני פתקי הכיסוי. שטפו את שני הפנים הפעילים עם 25 מיליליטר PBS והעבירו אותם למתלה טפלון וכוס מלאה ב-PBS.
השתמש מיד בדגימות המוכנות או אחסן בארבע מעלות צלזיוס עד שלושה ימים. הנה. וריון מסוג בר של נגיף סטומטיטיס שלפוחית עוגן למשטח הזכוכית ונותח על ידי מיקרוסקופ כוח אטומי. רוחב ואורך הוויריון הם 80 ננומטר על 180 ננומטר, מה שמראה עיוותים מינימליים מהגודל המקורי של הוויריון.
בניסוי זה, הוויריון הבודד צולם על ידי מיקרוסקופ לוקליזציה של הפעלת פוטו פלואורסצנטי. שימוש בנוגדני VSVG המסומנים על ידי Alexis 6 47. האיזופני השטח הכחולים מדגימים את פני השטח המשוחזרים של הוויריון באמצעות מיקרוסקופ FOM.
לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד להכין תלושי כיסוי זכוכית עם וירוסים לשימוש עם מיקרוסקופ כוח אטומי או מיקרוסקופיה ברזולוציה סופר. חשוב לזכור בכל עת באיזה פנים של תלוש הכיסוי יש את הכימיה הפעילה.
מאמר זה מציג שיטה להכנת פרוסות כיסוי מזכוכית עם וירוסים לשימוש במיקרוסקופיית כוח אטומית (AFM) ובדימות פלואורסצנטי ברזולוציה עליונה. הטכניקה מבטיחה הידבקות מבוקרת של ויריונים, ומאפשרת דימות ברזולוציה גבוהה של מבנים ויראליים.
This method enables controlled, homogeneous virion adhesion to glass surfaces, supporting high-resolution imaging for mechanistic studies of viral structure and host interactions. By ensuring reproducible sample preparation, it reduces variability in downstream biophysical assays, improving data reliability for target validation and lead optimization efforts. The technique is applicable to enveloped viruses relevant to antiviral discovery programs.
The method fits within early discovery workflows where structural and biophysical characterization informs target selection and lead compound screening.