Name: אפיון של רצפטורים מצמידים גרמו חלבון על ידי Assay גיוס סיד הקרינה מבוססת (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 49 s
Description: למד לזהות ליגנדים פעילים לקולטני GPCR יתומים באמצעות שיטת גיוס סידן מבוססת פלואורסצניה בתאי HEK293T. שיטה זו מאפשרת סקרינג בינוני-תפוקה לגילוי סוכנים פרמקולוגיים חדשים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

המחברים מודים קרן המחקר פלנדריה (FWO פלנדריה, בלגיה, G.0601.11) וKU Leuven קרן מחקר GOA/11/002. IB, TJ וה-LT נהנה ממלגה מFWO פלנדריה.

שימו לב: יש לבצע את כל הפעולות שבו תאים מעורבים בסביבת סטרילית על ידי עבודה בזרימה למינרית. 1. תחזוקה של הקו הסלולרי HEK293T <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגדל את תאי HEK293T בבקבוק T-75 על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבר התאים כאשר מגיעים לנקודת מפגש של 80%. הערה: זה בדרך כלל לוקח 3 עד 4 ימים. תאים בתרבית רציפה יאפשר 20-25 מעברים שמישים להקרנה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח מלוח של Dulbecco פוספט (PBS) ללא סידן כלורי ומגנזיום כלורי, PBS-טריפסין-ethylenediaminetetraacetic חומצה (EDTA) (500 מיליליטר PBS בתוספת 10 מיליליטר פתרון טריפסין-EDTA ו4.5 מיליליטר 4% EDTA) ומדיום גידול (500 מיליליטר המדיום של הנשר שונה Dulbecco - גלוקוז גבוהה [DMEM] בתוספת 10% בסרום שור עוברי [FBS] ומ&quot;מ 1 [נ.ב.] פניצילין, סטרפטומיצין) בטמפרטורת חדר כחצי שעה מראש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להסירמדיום גידול הישן מהתאים. לשטוף את התאים מתים עם 3 מיליליטר PBS ולהסיר את PBS שוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 3 מיליליטר PBS-טריפסין-EDTA, דגירה 1 דקות בטמפרטורת חדר ולהסיר את הערה הפתרון: המורפולוגיה של התאים תשתנה לספירה בצורת בצורת כוכב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שחרר את התאים מהחלק התחתון של הבקבוק על ידי הקשה עדינה ולאסוף את התאים על ידי שטיפה מספר פעמים התחתונה עם 10 מיליליטר של מדיום גידול טרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברה 1 מיליליטר של תרבית התאים לT-75 בקבוק חדש המכיל 14 מיליליטר מדיום גידול טרי, ולדגור על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified. </li></ol></li></ol> 2. Transfection חולף של תאי HEK293T <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגדל את תאי HEK293T בבקבוק T-75 3 ימים לפני assay גיוס סידן בפועל מתרחש. הקפד להשתמש בשלוש T-75 צלוחיות, אחת לtransfection עם מבנה הקולטן, אחד עבור transfection עם וקטור ריק ביטוי, שליטה שלילית, וoנה לשליטת transfection. הערה: passaging של התאים מתבצע כמתואר בשלב 1.2. כאשר צלחות 96 היטב מרובות צריכה להיות מוקרנים, ניתן להשתמש בם T-150 צלוחיות כדי לקבל תשואה גבוהה יותר של תאים (כדי לעשות את זה, כפול כל כמות הרשומה בצעדים 1.2.5, 2.3, 3.1.3 ו3.1.4) . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה צלוחיות על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified ל20-24 שעה עד שתרביות התאים להתקרב מפגש 50-70%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אוכלוסייה אחת שיתוף transfect תאים עם וקטור ביטוי קידוד GPCR של ריבית ומבנה Gα 16, את הבקבוק השני עם הווקטור הריק ולבנות Gα 16, ושלישי עם שליטת transfection ומבנה Gα 16. הערה: בפרוטוקול זה, קולט דרוזופילה sNPF שובט בוקטור ביטוי יונקים pcDNA3.1 13. JetPRIME שימש לביצוע transfection, אך ניתן להשתמש ריאגנטים transfection אחרים גם כן. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף בסך כל של 7.8 מיקרוגרם DNA (3.9 מבנה מיקרוגרם קולט או וקטור ריק, ו3.9 מיקרוגרם מבנה ביטוי 16 Gα) לצינור microcentrifuge 1.5 מיליליטר ולהוסיף 500 μl של חיץ JetPRIME. מערבבים היטב על ידי vortexing הצינור, ספין למטה תוך זמן קצר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 37.5 μl של מגיב JetPRIME, המערבולת וספין למטה 1 דקות ב14,000 X גרם. דגירה transfection תמהיל 10 דקות בטמפרטורת חדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיף את תערובת transfection dropwise למדיום תרבית תאים ולוודא פיפטה ישירות לתוך מדיום הימנעות ממגע עם הקירות של בקבוק התרבות. דגירה צלוחיות על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified ל20-24 שעה. </li></ol></li></ol> 3. Assay גיוס הסיד <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף את תאי transfected וזרעם בצלחות שחורות חומה, ברורות תחתון 96 היטב. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את PBS, PBS-טריפסין-EDTA ובינוני העברת DMEM (500 מיליליטר DMEM בתוספת 10% FBS dialyzedו1% PS) בטמפרטורת חדר כחצי שעה מראש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעיל 96 גם צלחות, שחור קירות, ברורות תחתית עם 60 μl של PBS עם פיברונקטין (0.0025%) בכל טוב (5.85 מיליליטר PBS ו150 μl פיברונקטין [0.1%] לכל צלחת). דגירה הצלחות בטמפרטורת חדר למשך שעה 1 במכסה. הסר את הפתרון מהבארות ודגירת הצלחות שוב במשך שעה 1 ללא המכסה על בטמפרטורת חדר. לחלופין, אפשר להשתמש בצלחות מראש מצופים לקובץ מצורף תא מוגבר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תוריד את מדיום גידול הישן מהתאים ולשטוף תאים מתים מעל עם 3 מיליליטר PBS ולהסיר את PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 3 מיליליטר PBS-טריפסין-EDTA, דגירה במשך 1 דקות, ולאחר מכן להסיר את הפתרון. הערה: המורפולוגיה של התאים משתנה מצורת כוכב לכדור בצורת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שחרר את התאים מהחלק התחתון של הבקבוק על ידי הקשה עדינה ולאסוף אותם על ידי שטיפה מספר פעמים עם 10 מיליליטר של מדיום DMEM העברה. להעביר את התאים לתוך צינור פלקון 50 מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> רוזןמספר התאים למ&quot;ל (הופיע עם NucleoCounter כאן, אבל התא של &#39;שודד גופות מקובל). הוספה של תרבית התאים 100 μl בצינור microcentrifuge 1.5 מיליליטר. הוספת 100 מאגר תמוגה μl ומערבבים על ידי הקשה על הצינור. הוספת 100 חיץ μl ייצוב ומערבבים על ידי הקשה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מלא NucleoCassette עם ההשעיה התא ולספור את התאים עם הדלפק. להכפיל את מספר התאים על ידי שלוש, כפי שהתאים היו מדוללים בפקטור של שלוש בעת הוספת תמוגה וייצוב חיץ בשלב 3.1.6. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל את התאים לריכוז סופי של 600,000 תאים / מיליליטר וזרעים 150 μl של התאים לכל גם בצלחות מצופים כדי להשיג צפיפות תאים של כ 90,000 תאים לכל / כן. למנוע בועות אוויר ולנצל את הצלחת על מנת להפיץ את התאים באופן שווה על מנת לקבל שכבת תאים רציפה. דגירה הצלחות על 37 מעלות צלזיוס ב5% CO 2 באינקובטור humidified ל16-24 שעה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> טען את התאים עם פלורסנט לצבוע ולהכין את שיתוףצלחת mpound. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן תמיסת מלח מאוזנת של האנק (HBSS) / HEPES / Ca 2 + / אלבומין בסרום שור (BSA) חיץ: להוסיף 165 פתרון מניות μl CaCl 2 (1 M CaCl 2 במים מזוקקים [DH 2 O] - לאחסן בטמפרטורת חדר), פתרון מניות 500 HEPES μl (1 M HEPES ב DH 2 O, pH 7.4 - לאחסן בטמפרטורת חדר), ו0.05 BSA גרם ל50 מיליליטר HBSS. שים לב שBSA החופשי של חומצות שומן המשמש למבחנים בסידן, כמו חומצות שומן יכולות להפעיל קולטנים ספציפיים, פוגם באות סידן של הקולטן של עניין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן פתרון פרובנציד (100x, 250 מ&quot;מ): להמס פרובנציד 0.71 גרם ב 5 מיליליטר NaOH (1 M) ולהוסיף 50 HEPES μl פתרון מניות ו5 מיליליטר של / HEPES / Ca 2 + / החיץ BSA HBSS - תמיד להכין תמיסה טריות. הערה: פרובנציד מעכב מובילי אניון אורגניים שיכול לעקור Fluo-4 מציטופלסמה, ובכך להפחית את אות הניאון. מומלץ לבצע את טעינת הצבע בהנוכחות והיעדר פרובנציד כדי לקבוע אם מובילי אניון אורגניים מהווים בעיה פוטנציאלית בשורות תאים מסוימות תחת חקירה, כפרובנציד אולי אפילו להקטין את האות בתיווך אגוניסט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן לשטוף חיץ: להוסיף 500 μl פתרון פרובנציד 50 מיליליטר HBSS / HEPES / Ca 2 + / חיץ BSA, התאם את ה-pH 7.4 ותסנין פתרון החיץ. תמיד להכין חיץ טרי, ו50 מיליליטר חיץ לנדרשת צלחת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 10% תמיסת חומצת pluronic: חומצת pluronic לערבב 50 μl (20% w / v בדימתיל-sulfoxide [DMSO]) עם 50 DMSO μl - אם התגבשות מתרחשת, חום ל37 מעלות צלזיוס, תמיד להכין תמיסה טריות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן פתרון Fluo-4 בבוקר (1 מ&quot;מ): להוסיף 44 פתרון μl 10% חומצה pluronic לבקבוקון המכיל 50 מיקרוגרם Fluo-4 בבוקר ומערבולת עד שהוא נמס לגמרי. הימנע מחשיפה לאור כדי למנוע הלבנת של fluorophore. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את חיץ טעינה: להוסיף 8.8 מיליליטר DMEM supplementeד עם 10 HEPES מ&quot;מ ו2.5 פרובנציד מ&quot;מ (pH 7.4) לפתרון Fluo-4 בבוקר (44 μl) ו המערבולת. השתמש תמיד חיץ טרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בטל בינוני מהתאים, לשטוף את התאים עם 200 μl PBS לכל טוב, ולהסיר את PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 55 חיץ טעינת μl לכל טוב ודגירה במשך שעה 1 בטמפרטורת חדר. עטוף את הצלחת בנייר אלומיניום כדי למנוע חשיפה של הצלחת להדליק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הקפד לייבש את התרכובות לפני שהמסך אם הם מומסים בממסים שמשפיעים לרעה (למשל, אצטוניטריל) למערכת הביטוי התאי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Solubilize פפטידים בחיץ לשטוף בצינורות 1.5 microcentrifuge מיליליטר siliconized. להכין סדרת דילול לבצע ניתוח ריכוז תגובה וכדי לקבוע את ערך EC 50 של ליגנד. הוספת 70 μl של ליגנד במקביל גם של הצלחת המורכבת (צלחות 96, גם בצורת V) וכולל בקרות חיוביות (אגוניסט אנדוגני) ושליליות (חיץ לשטוף) על כל צלחת. לא<html> דואר: אם תרכובת אינה מסיסה בחיץ לשטוף, אפשר לנסות ממסים אחרים שאינם מזיקים לתאים תחת חקירה, כגון מים או פתרונות שemulsify וsolubilize שמנים וחומרים אחרים לא מסיסים במים (לדוגמא, Kolliphor EL) . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למדוד את כל הדגימות בשלושת עותקים. זכור כי 50 μl של ליגנד מצלחת המתחם יועבר להיטב עם 100 לשטוף חיץ μl של צלחת התא במהלך assay, אז להכין את התרכובות ב3x הריכוז הסופי הרצוי שלהם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחק את חיץ הטעינה מצלחת התא ולהוסיף למאגר לשטוף 100 μl היטב כל אחד. דגירה דקות צלחת 15 בטמפרטורת חדר ולמנוע חשיפה לאור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחק את החיץ לשטוף מצלחת התא ולהוסיף 100 לשטוף חיץ חדש μl היטב כל אחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה את צלחת התא, צלחת המתחם, ומתלת קצה (96 היטב, טיפים פיפטה מכשיר תחנה) ל15 דקות ב 37 ° C. </li></ol></li></ol>הכותרת &quot;&gt; 4. Assay על ההתקנים התחנה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ליצור ולטעון את קובץ הפרוטוקול הרצוי עם התוכנה ולהפעיל את יחידת בקרת הטמפרטורה לחדר הקריאה. כאן, למדוד תגובות סידן ב37 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות שורה אחת בכל פעם עם 1.52 מרווח שניות בין קריאות רצופות (מדידת צלחת 96 היטב מלאה לוקחת כ 25 דקות) ב525 ננומטר. הגדר את העירור של Fluo-4-488 ננומטר ולהעביר נפח כולל של 50 μl של מתחם לצלחת התא, 18 שניות לאחר תחילת הקריאה, עם המהירות לוותר נקבעה על 26 μl / sec וגובה פיפטה של ​​135 μl. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם את המתחם וצלחת תא, ואת מדף הקצה במגירות המתאימות של מכשיר התחנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע אחת קריאה של צלחת התא באותו אורך גל העירור ופליטה במצב נקודת הסיום, לפני שמתחיל את המסך בפועל במצב FLEX. הערה: מדידה זו נותנת יחידת הקרינה יחסי ערכים (RFU) ומאפשרת איתור שונות בינינוLLS של הצלחת. ערכים שבין 20,000 ו -40,000 נחשבים כמקובל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התחל assay ולנתח את הנתונים עם התוכנה. </li></ol>

<ol><li>Bockaert, J., Pin, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+tinkering+of+G+protein-coupled+receptors+an+evolutionary+success%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Molecular tinkering of G protein-coupled receptors an evolutionary success.</a> EMBO J. 18 (7), 1723-1729 (1999).</li>
<li>Gether, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncovering+molecular+mechanisms+involved+in+activation+of+G+protein-coupled+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Endocr+Rev%22%5BJournal%5D)">Uncovering molecular mechanisms involved in activation of G protein-coupled receptors.</a> Endocr Rev. 21 (1), 90-113 (2000).</li>
<li>Drews, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+discovery+a+historical+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Drug discovery a historical perspective.</a> Science. 287 (5460), 1960-1964 (2000).</li>
<li>Marinissen, M. J., Gutkind, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G-protein-coupled+receptors+and+signaling+networks+emerging+paradigms%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol+Sci%22%5BJournal%5D)">G-protein-coupled receptors and signaling networks emerging paradigms.</a> Trends Pharmacol Sci. 22 (7), 368-376 (2001).</li>
<li>Bendena, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropeptide+physiology+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Neuropeptide physiology in insects.</a> Adv Exp Med Biol. 692, 166-191 (2010).</li>
<li>Van Hiel, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropeptide+receptors+as+possible+targets+for+development+of+insect+pest+control+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Neuropeptide receptors as possible targets for development of insect pest control agents.</a> Adv Exp Med Biol. 692, 211-226 (2010).</li>
<li>Tang, X. L., Wang, Y., Li, D. L., Luo, J., Liu, M. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orphan+G+protein-coupled+receptors+%28GPCRs%29%3A+biological+functions+and+potential+drug+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Pharmacol+Sin%22%5BJournal%5D)">Orphan G protein-coupled receptors (GPCRs): biological functions and potential drug targets.</a> Acta Pharmacol Sin. 33 (3), 363-371 (2012).</li>
<li>Civelli, O., Reinscheid, R. K., Zhang, Y., Wang, Z., Fredriksson, R., Schiöth, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G+protein-coupled+receptor+deorphanizations%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Pharmacol+Toxicol%22%5BJournal%5D)">G protein-coupled receptor deorphanizations.</a> Annu Rev Pharmacol Toxicol. 53, 127-146 (2013).</li>
<li>Mertens, I., Vandingenen, A., Meeusen, T., De Loof, A., Schoofs, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postgenomic+characterization+of+G-protein-coupled+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacogenomics%22%5BJournal%5D)">Postgenomic characterization of G-protein-coupled receptors.</a> Pharmacogenomics. 5 (6), 657-672 (2004).</li>
<li>Brough, S. J., Shah, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+aequorin+for+G+protein-coupled+receptor+hit+identification+and+compound+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Use of aequorin for G protein-coupled receptor hit identification and compound profiling.</a> Methods Mol Biol. 552, 181-198 (2009).</li>
<li>Gee, K. R., Brown, K. A., Chen, W. N. U., Bishop-Stewart, J., Gray, D., Johnson, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+and+physiological+characterization+of+fluo-4+Ca2%2B-indicator+dyes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Chemical and physiological characterization of fluo-4 Ca2+-indicator dyes.</a> Cell Calcium. 27 (2), 97-106 (2000).</li>
<li>Beets, I., Lindemans, M., Janssen, T., Verleyen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deorphanizing+G+protein-coupled+receptors+by+a+calcium+mobilization+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Deorphanizing G protein-coupled receptors by a calcium mobilization assay.</a> Methods Mol Biol. 789, 377-391 (2011).</li>
<li>Mertens, I., Meeusen, T., Huybrechts, R., De Loof, A., Schoofs, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+short+neuropeptide+F+receptor+from+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Characterization of the short neuropeptide F receptor from Drosophila melanogaster.</a> Biochem Biophys Res Commun. 297 (5), 1140-1148 (2002).</li>
<li>Lu, H. -L., Kersch, C. N., Taneja-Bageshwar, S., Pietrantonio, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+calcium+bioluminescence+assay+for+functional+analysis+of+mosquito+%28Aedes+aegypti%29+and+tick+%28Rhipicephalus+microplus%29+G+protein-coupled+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A calcium bioluminescence assay for functional analysis of mosquito (Aedes aegypti) and tick (Rhipicephalus microplus) G protein-coupled receptors.</a> J. Vis. Exp. (50), e2732(2011).</li>
<li>Feng, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+characterization+of+a+neuropeptide+F-like+receptor+from+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Functional characterization of a neuropeptide F-like receptor from Drosophila melanogaster.</a> Eur. J. Neurosci. 18 (2), 227-238 (2003).</li>
<li>Nässel, D. R., Wegener, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+review+of+short+and+long+neuropeptide+F+signaling+in+invertebrates+any+similarities+to+vertebrate+neuropeptide+Y+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">A comparative review of short and long neuropeptide F signaling in invertebrates any similarities to vertebrate neuropeptide Y signaling.</a> Peptides. 32 (6), 1335-1355 (2011).</li>
<li>Grimmelikhuijzen, C. J. P., Hauser, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mini-review+The+evolution+of+neuropeptide+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Regul+Pept%22%5BJournal%5D)">Mini-review The evolution of neuropeptide signaling.</a> Regul Pept. 177, S6-S9 (2012).</li>
<li>Caers, J., Verlinden, H., Zels, S., Vandersmissen, H. P., Vuerinckx, K., Schoofs, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((More+than+two+decades+of+research+on+insect+neuropeptide+GPCRs+an+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Endocrinol+%28Lausanne%22%5BJournal%5D)">More than two decades of research on insect neuropeptide GPCRs an overview.</a> Front Endocrinol (Lausanne. 3 (151), 1-30 (2012).</li>
<li>Kozak, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+analysis+of+5%E2%80%99-noncoding+sequences+from+699+vertebrate+messenger+RNAs%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">An analysis of 5’-noncoding sequences from 699 vertebrate messenger RNAs).</a> Nucleic Acids Res. 15 (20), 8125-8148 (1987).</li>
<li>Offermanns, S., Simon, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G%CE%B115+and+G%CE%B116+couple+a+wide+variety+of+receptors+to+phospholipase%5BTitle%5D)+AND+%22CJ+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Gα15 and Gα16 couple a wide variety of receptors to phospholipase.</a> CJ Biol Chem. 270 (25), 15175-15180 (1995).</li>
<li>Ral Conklin, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carboxyl-terminal+mutations+of+Gq%CE%B1+and+Gs%CE%B1+that+alter+the+fidelity+of+receptor+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Carboxyl-terminal mutations of Gqα and Gsα that alter the fidelity of receptor activation.</a> Mol Pharmacol. 50 (4), 885-890 (1996).</li>
<li>Kostenis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Is+G%CE%B116+the+optimal+tool+for+fishing+ligands+of+orphan+G-protein-coupled+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol+Sci%22%5BJournal%5D)">Is Gα16 the optimal tool for fishing ligands of orphan G-protein-coupled receptors.</a> Trends Pharmacol Sci. 22 (11), 560-564 (2001).</li>
<li>Robas, N. M., Fidock, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+orphan+G+protein-coupled+receptor+ligands+using+FLIPR+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of orphan G protein-coupled receptor ligands using FLIPR assays.</a> Methods Mol Biol. 306, 17-26 (2005).</li>
<li>Caers, J., Peeters, L., Janssen, T., De Haes, W., Gäde, G., Schoofs, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure-activity+studies+of+Drosophila+adipokinetic+hormone+%28AKH%29+by+a+cellular+expression+system+of+dipteran+AKH+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Gen+Comp+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Structure-activity studies of Drosophila adipokinetic hormone (AKH) by a cellular expression system of dipteran AKH receptors.</a> Gen Comp Endocrinol. 177 (3), 332-337 (2012).</li>
<li>Peeters, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+pharmacological+study+of+NLP-12+neuropeptide+signaling+in+free-living+and+parasitic+nematodes%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">A pharmacological study of NLP-12 neuropeptide signaling in free-living and parasitic nematodes.</a> Peptides. 34 (1), 82-87 (2012).</li>
</ol>

יש המחברים אין לחשוף.

Assay גיוס סיד הקרינה מבוססת יושם בהצלחה על מנת לאשר את האפיון הפונקציונלי של מערכת איתות peptidergic דרוזופילה sNPF, שכבר בוצעה על ידי מרטנס et al. עם assay פליטת אור ועל ידי פנג et al. עם 13,15 assay אלקטרו. EC 50 הערכים שהושגו עם assay הקרינה בתאי HEK293T הם על פי 10 פחות מאלה שהושגו עם assay פליטת אור שבוצע בתאי CHO (Drome-sNPF-1: fluo = 2.04 ננומטר, לומים = 51 ננומטר; Drome-sNPF- 2: fluo = 5.89 ננומטר, לומים = 42 ננומטר; Drome-sNPF-3: fluo = 5.55 ננומטר, לומים = 31 בננומטר; Drome-sNPF-4: fluo = 0.50 ננומטר, לומים = 75 ננומטר). ניתן להסביר וריאציות אלה על ידי מספר גורמים, לרבות העובדה כי אחת ממערכות הביטוי בשימוש עשוי להיות מתאים יותר לביטוי תפקודי של הקולטן נתון, או הקיפול של כמה קולטנים יכול להיות פחות יעיל בגסוגי תאי ertain. EC 50 הערכים של כל ארבעת פפטידים Drome-sNPF הם בטווח nanomolar כאשר נבדקו על הקולטן שלהם עם שתי הקרינה וassay פליטת אור, בדרך כלל תמיכה רלוונטית הפיזיולוגית של האינטראקציה פפטיד קולטם in vivo. שים לב שאין שליטת transfection עם הקולטן ליגנד שמפעיל ידוע נכללה במסך שהוצג כאן, כי מערכת איתות דרוזופילה sNPF היא בדרך כלל שליטת transfection במערכי ניסוי. הבקרה החיובית עם יגנד אנדוגני של תאי HEK293T (PAR 1) ובקרה השלילית (לשטוף חיץ) נכללו במסך. התוצאות של PAR 1 הראו כי התאים היו במצב טוב. הבקרה השלילית (לשטוף חיץ) לא לעורר אות ניאון, אשר מצביעה על כך שהמדיום שבו הם מומסים פפטידים היה נקי מכל מזהמים שיכולים INFluence התוצאות. מערכת איתות דרוזופילה sNPF אפיין בעבר שימשה כאן כדי להסביר את assay גיוס סידן המבוסס על הקרינה. לצורך כך, סדרת ריכוז של ליגנד ההפעלה נבדקו באופן מיידי. עם זאת, כאשר קולטן יתום הוא הביא לביטוי היתר בassay הקרנה לבחון ספרייה המכילה מאות תרכובות, מומלץ למסך הראשון עם ריכוזים סופיים גבוהים יחסית של ליגנד (למשל., 10 או 1 מיקרומטר). בעקבות זיהוי של מתחם הפעלה, סדרת דילול של מתחם שיכולה להיות מוקרנת כדי להלחין עקומת ריכוז בתגובה ועל מנת לקבוע את ערך EC 50. ברגע יגנד ההפעלה של קולטן נקבע, מסלול האיתות תאית יכול להיחקר יותר על ידי התאמת הפרוטוקול. Assay יכול להתבצע כפי שתואר לעיל, אך ללא שיתוף transfecting G ^5; 16 למקטע. כאשר תגובת סידן נמדדה, זה אומר שזוגות קולט עם מקטע q אנדוגני Gα של מערכת הביטוי התאי. כאשר אין אות ניאון הוא ציין, יכול להיות מיושמים על פרוטוקולים כדי למדוד שינויים בריכוזים של שליחים משניים נוספים (למשל., CAMP). יכולים גם להתבצע מחקרי קשר בין מבנה לפעילות (SAR) להגדיר רצף הליבה של פפטיד הנדרש להפעלת קולט. ראשית, רצפים קטועים מוערכים להגדיר את רצף חומצות אמינו המינימלי של פפטיד זה הוא עדיין מסוגל להפעיל את קולט. בשלב הבא, ניתן לבדוק פפטידים שבו באופן שיטתי בכל חומצת אמינו הוחלפה לשאריות אלאנין. בדיקת סדרת אלנין-החלפה סינתטית על קולט מאפשרת לקבוע את החשיבות של כל אחת מחומצות אמינו להפעלת קולט 24,25. למרות השימוש התכוף שלה ואפים מוכחיםcacy, יש בו כדי להדגיש כי assay המתואר כאן עשוי צריך קצת התאמות כדי לקבל תוצאות אופטימליות לקולטנים ספציפיים של עניין. יש למקטע Gα 16 היתרון כי הוא נקשר ביותר GPCRs, אלא גם עשוי להיות השפעה דומיננטית שלילית על קולטנים שאופן אנדוגני זוג באמצעות q Gα 22. במקרה זה, זה עשוי להיות שימושי כדי לבדוק שילובים שונים של חלבוני G באופטימיזציה של assay סיד רומן ולהשוות את התוצאות לקולטנים מצמידים q Gα בהעדר או הנוכחות של Gα 16. מבחני אלטרנטיביים שאינם תלויים חלבון G האינטראקציה לזהות הפעלת קולטן יכולים גם להתבצע, כגון טרנסלוקציה של arrestin-GFP שכותרתו, או זיהוי של שינויים בפוטנציאל הממברנה (למשל., על ידי ערכת Assay פוטנציאל FLIPR ממברנה). חוץ מAM Fluo-4 המשמש כאן, מגוון רחב של fluorophores סידן רגיש האחר, כל אחד עם רפאים משלו וchemicמאפייני אל, הוא זמינים. Fluorophore המתאים ביותר ניתן לבחור על בסיס GPCR, סוג התא וקורא הצלחת זמין, אבל אימות ניסיוני היא הכרחית. הכמויות של ה-DNA transfected וצורך היחס מגיב DNA / transfection שייקבע עבור כל שילוב שורה מגיב תאי קולטן transfection. לבסוף, יש לזכור כי תאים בתרבית רציפה לאפשר רק 20-25 מעברים שמישים כדי לבצע את מבחני המיון.

קולטני G-חלבון בשילוב (GPCRs) מהווה אחת המשפחות הגדולות והמגוונת ביותר בין כל החלבונים בתא השטח. הנוכחות שלהם בבעלי חוליות, חסרי חוליות, צמחים, שמרים, ועובש רפש, כמו גם בפרוטוזואה וdiploblastic המוקדם צורות החיים מצביעים על כך שGPCRs הן בין המולקולות הוותיקות מקושרות עם העברת אותות 1. ligands ההפעלה הטבעי שלהם מהווה מגוון רחב של גירויים חיצוניים כולל פפטידים, אמינים ביוגני, ניחוחי, גליקופרוטאינים, ופוטונים 2. ככזה, מערכות איתות הקולטן ליגנד האלה מעורבים במגוון רחב של תהליכים פיסיולוגיים. הספקטרום הפונקציונלי הרחב הופך אותם מתאים באופן אידיאלי לפיתוח תרופות טיפוליות המכסות מגוון רחב של מחלות בבני אדם. כ 50-60% ממטרות התרופה הנוכחיות מיוצגים על ידי GPCRs 3,4. מלבד החשיבות הגדולה שלהם בתעשיית התרופות, GPCRs גם הן באור הזרקורים לפיתוחדור חדש של חומרי הדברה מינים ספציפיים 5,6 וחומרי הדברה באופן כללי. בגלל ligands הטבעי של GPCRs רבות עדיין לא מזוהה, הם מסווגים כGPCRs יתומה. Deorphanization של קולטנים אלה ישפר את ההבנה של התפקידים הפיסיולוגיים שלהם באורגניזמים ועלול לחשוף את מטרות המשוערת עבור יישומי תרופה חדשים 7. מאז העידן הגנומי, אסטרטגית פרמקולוגיה הפוכה מיושמת באופן נרחב לdeorphanization של GPCRs 8. הגישה מרמזת כי קולטן יתום משמש כ &#39;וו&#39; ל &#39;דג מחוץ&#39; ליגנד ההפעלה שלה מתמצית ביולוגית או מספרייה של תרכובות סינתטיות. GPCR של עניין הוא משובט לכן וtransfected לאחר מכן במערכת ביטוי תאית. בשיטות הנפוצות ביותר, הפעלת קולטן נקבעת על ידי מדידת שינויים בריכוז של מולקולות שליח השניה 9 </sup&gt;. מבחני מיון קולט העיקריים מסתמכים על חלבוני bioluminescent סידן רגיש (למשל, aequorin) 10 או אינדיקטורים סיד ניאון (למשל, Fluo-4) 11. מבחני הקרינה מבוססת, שבו תאי קולטן להביע נטענים עם מחוון סיד ניאון לפני הקרנת יגנד, יש את היתרון שהם מאפשרים תפוקה גבוהה הקרנה בשל קלות שימוש שלהם, זמן קריאה קצר, ואת הגמישות של הקרנה קולטנים יתום מרובים על צלחת אחת 12. הנה, assay גיוס סידן המבוסס על הקרינה מתואר באופן יסודי ומאויר על ידי תהליך deorphanization של F נוירופפטידים הקצר melanogaster דרוזופילה קולט (sNPF). מערכת איתות neuropeptidergic זו התאפיינה במקור על ידי מרטנס et al. ב2002 13 עם assay פליטת אור סידן שבוצע בשחלת אוגר הסינית תאים (CHO)14 ועל ידי פנג et al. ב2003 עם assay אלקטרו באמצעות Xenopus ביציות 15. הנוכחות של מערכת איתות sNPF נראית מוגבלת מהערכה של Arthropoda, שבו הוא מעורב במגוון רחב של תהליכים, כולל הרגולציה של האכלה, צמיחה, תגובות לחץ, תנועה, ומקצבי היממה 16. מחקר על מערכות איתות neuropeptidergic בחרקים לא יכול להוביל רק למטרות חדשות לפיתוח של חומרי הדברה, אך הידע של התפקוד שלהם יכול גם להסיק כלפי אורגניזמים אחרים מערכות איתות רבות, בדרך כלל כבר נשמרים היטב לאורך האבולוציה 17. בעשור האחרון, התקדמות רבה נעשתה בתהליך deorphanization של GPCRs נוירופפטידים חרקים. למרות מאמצים אלה, רק מספר קטן של קולטנים שכבר מתאימים ליגנד מאותו המקור שלהם, והמון מידע רצףGPCRs היתום החדשה הפכה זמינה בשל הרועם של גנומיקה 18. הזמינות של מדיום / גישות הקרנת תפוקה גבוהה, כמו assay גיוס הקרינה מבוססת סידן שהוכיח את עצמו בטכניקה מיושמת באופן נרחב 9,18, לכן לא יסולא בפז. Assay גיוס הקרינה מבוססת סידן כפי שמתוארים כאן מתבצע ב293T הכליה העוברי האנושי שורת תאים (HEK293T) ומשתמש בבדיקת ניאון כדי לקבוע שינויים בריכוז סידן תוך תאי על הפעלת קולט. כדי להבטיח ביטוי גבוה ורמות תרגום של הקולטן, רצף קונסנסוס קוזאק 19 מתווסף לסוף &#39;5 של רצף קידוד קולטן, שהוא משובט לאחר מכן בוקטור ביטוי (למשל, סדרת וקטור pcDNA לשורות תאי יונקים). כמו שקשה לחזות את החלבון-G הצימוד אנדוגני של GPCR יתום המבוססים על מידע רצףלבד, המולקולות השניה השליח (לדוגמא, סידן או cAMP) כי הם מווסתים לאחר הפעלת קולטן לעתים קרובות אינן ידועות מראש לזיהוי ליגנד. כדי לעקוף בעיה זו, חלבוני G מופקרים של משפחת G q (למשל, עכברי 15 Gα או Gα אדם 16 [משמש כאן]) או חלבוני chimeric G (למשל, qi5 Gα) כי אינטראקציה עם רוב GPCRs ולגרום לשחרורו של סידן יכול להיות שותף הביע 20,21,22. על הכריכה של ליגנד לקולטן שלו, GPCR עובר שינוי קונפורמציה שגורם להפעלה של מסלולים תאיים מסוימים. מולקולת דיפוספט guanosine (תמ&quot;ג), מחויבת בתנאי מנוחה למקטע Gα 16, תוחלף על ידי אדנוזין guanosine מולקולה (GTP). זה מעורר את הניתוק של חלבון G heterotrimeric במקטע Gα 16 וGβγ. מקטע Gα 16 מפעיל פוספוליפאז C &amp;946 #; (PLCβ), אשר בתורו hydrolyzes bisphosphate הקרום הנכנס phosphatidylinositol (PIP 2) וכתוצאה מכך diacylglycerol (DAG) וtrisphosphate אינוסיטול (IP 3). IP 3 יתפשט בציטופלסמה ומפעיל IP ערוצי סידן 3 תלויים בהווה בקרום של reticulum endoplasmic, אשר גורם לשחרור של סידן לתוך הציטופלסמה. שחרור סידן על הפעלת קולטן מתרחש תוך שניות ויכול להיות מזוהה על ידי טעינת תאים לפני assay ההקרנה עם צבע סידן רגיש, כמו Fluo-4 acetoxymethyl (AM) 11. קבוצת אסתר AM מאפשרת fluorophore לחצות את קרום התא, והוא הבקיע את ידי esterases cytoplasmic פעם אחת בתוך התא. כתוצאה מכך, המטענים השליליים של צבע הניאון הם חשפו, ומונעים ממנו לשדר אל מחוץ לתא ומאפשר לו אינטראקציה עם יוני סידן. O אות הניאוןו Fluo-4 הוא זניחים בתאים בתנאי מנוחה המכילים רק ריכוזי סידן בטווח nanomolar. עם זאת, כאשר סידן משתחרר עם הפעלת קולטן, האות יכול להגדיל את ריכוז dependently ליותר מ פי 100, מה שמבטיח יחס אות לרעש גדול בזאת. Fluo-4 גם מפגין טווח דינמי גדול לדיווח [סיד] סביב ד K (סידן) של 345 ננומטר, מה שהופך אותו מתאים למדידה רלוונטי מבחינה פיזיולוגית לשינויים בסידן במגוון רחב של תאים. העירור של Fluo-4 מתרחש ב488 ננומטר וקרינת הפליטה נמדדת ב525 11 ננומטר. Fluorimeters כמו קורא צלחת דימות פלואורסצנטי (FLIPR) 23, NOVOstar, או FlexStation (מכשיר תחנה) 12 הן מערכות בינוניות / תפוקה גבוהה המאפשרות בנוסף מתחם בו זמנית וזיהוי של אות Fluo-4 על הפעלת קולטן לכל גם בצלחת assay. Assay גיוס הסיד המתואר כאן מסתמך על התחנהמערכת microplate 96, גם מכשיר. Pro תוכנת SoftMax (תוכנה) משמשת כדי להפעיל את המכשיר לתחנה, כמו גם לניתוח נתונים. התכנית מציגה באופן מיידי את התוצאות כגרפים בפורמט 96 היטב. ניתן לבחור בארות מרובות בו זמנית כדי להשוות את התוצאה של הבארות הללו על אותו הגרף. ערכי יחידת הניאון יחסית (RFU) בארות בכל עמודה נמדדים בו זמנית, לתקופה של שתי דקות, שמתחילים לפני התוספת של תרכובות לבארות והמתמשכות לאחר המדידה של אות הניאון הבא הפעלת קולט. בדרך כלל, את המגמה של עקומת אגוניסט מתיישר עם קו הבסיס ועד מתחם הפעלה מתווסף לתאים, וכתוצאה מכך עלייה מהירה של אות הניאון. גובה השיא מתואם עם ריכוז אגוניסט הסופי בבאר. אחרי השיא, אות הניאון יורדת באיטיות לכיוון רמת הבסיס. מדידות RFU caלהיות n מומר לעקומות ריכוז בתגובה לקביעת ערך EC 50 (ריכוז יעיל חצי מקסימאלי) של ליגנד. באופן כללי, לפחות שלושה מסכי עצמאיים, שכל אחד מהם שלושה העתקים של סדרת ריכוז, יש לבצעו להלחין עקומת ריכוז בתגובה אמינה. מומלץ לכלול כמה בקרות חיוביות ושליליות בעיצוב ניסיוני. קודם כל, שליטת transfection, כלומר היישום של קולט עם יגנד ידוע, צריכה להיבדק. זה מאפשר אימות אם סוכן transfection היה מבצעי. התאגדות של ניסוי שליטה עם אגוניסט לרצפטור אנדוגני של הקו הסלולרי ובקרה שלילית (למשל, לשטוף חיץ) מומלצות גם לעקוב אחר בריאותם ויכולת הקיום של התאים וכדי לשלול את האפשרות כי לשטוף החיץ היה מזוהם עם גורם שעלול לעורר-fluore אוטומטיתגובת ריח. אגוניסטים משמשים לעתים קרובות הם פפטיד הנגזר ממופעל פרוטאז קולט-1 (PAR 1), אשר משמש כאגוניסט PAR 1 סלקטיבית, או carbachol, אשר מפעיל את קולטן האצטילכולין. תאי transfected עם וקטור ביטוי ריק גם צריכים להיבדק כדי לשלול כי חומרים פעילים באינטראקציה עם קולטנים אנדוגני של התא. אופטימיזציה של מספר פרמטרים שתוארו בפרוטוקול שלהלן עשויה להידרש למערכות איתות שונות. דמות סכמטית של assay התגייסות מלא הקרינה מבוססת סידן מתואר באיור 1. <img alt="איור 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51516/51516fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51516/51516fig1.jpg" /> מדידות איור 1. תכנית כוללת של assay גיוס סידן המבוסס על הקרינה. אוטומטי טיפול נוזלי וקרינה בו זמנית מבוצעות עם התחנהmicroplate מכשיר קורא, מונע על ידי התוכנה. מכשיר התחנה מכיל שלוש מגירות: אחת לצלחת התא, צלחת מתחם ומתל קצה. העברות pipettor הצטברות בתרכובות מטור אחד של צלחת המתחם לעמודה המתאימה של צלחת התא (שלב 1). היטב בכל צלחת התא מכיל monolayer של תאי HEK293T כי כבר שיתוף transfected עם GPCR של עניין ומקטע Gα 16 המופקר. כאשר מתחם מפעיל את הקולטן, תמ&quot;ג Gα 16 הנכנס הוא הוחלף על ידי GTP. מקטע Gα 16 dissociates לאחר מכן מGβγ המורכב ומפעיל פוספוליפאז Cβ (PLCβ), אשר בתורו hydrolyzes bisphosphate phosphatidylinositol (PIP 2) וכתוצאה מכך diacylglycerol (DAG) וtrisphosphate אינוסיטול (IP 3). IP 3 מפעיל IP ערוצי סידן 3 תלוי בהווה בקרום של reticulum endoplasmic, וישכנע את שחרורו של int סידןo ציטופלסמה. האינטראקציה של סידן עם Fluo-4 (שבה התאים נטענים לפני המתחם בנוסף) תוצאות באות ניאון (שלב 2). התוכנה מציגה את התוצאות כיחידת ניאון יחסי ערכים (RFU) בפונקציה של זמן, וגבהים שיא לתאם עם הריכוז ליגנד באופן תלוי ריכוז. לאחר מכן ניתן להמיר נתונים אלה לעקומת ריכוז בתגובה לקביעת ערך EC 50 של זוג (שלב 3) ליגנד לקלוט.

<table><tbody><tr><td>תאי</td><td></td><td></td><td></td>HEK293T</tr><tr><td>תמיסת מלח פוספט בופר (PBS) של Dulbecco</td> תמיסת טריפסין-EDTA של <td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>(0.25%)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4049</td><td></td></tr><tr><td>Ethylenediaminetetraacetic חומצה דיסודיום מלח דיהידרט (EDTA)</td><td>MP Biomedicals</td><td>195173</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium - גבוה גלוקוז&nbsp; (DMEM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>סרום בקר עוברי (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7524</td><td></td></tr><tr><td>פניצילין-סטרפטומיצין (P-S)</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>P4333</td><td></td></tr><tr><td>jetPRIME</td><td>Polyplus transfection</td><td>114-01</td><td>FuGENE HD Transfection Reagent (Promega); ליפופקטמין LTX & Plus Reagent (Life Technologies)</td></tr><tr><td>סרום בקר עוברי בדיאליזה (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0392</td><td></td></tr><tr><td>פיברונקטין מפלזמה אנושית</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0895</td><td></td></tr><tr><td>Reagent A100, מאגר ליזה</td><td>Chemometec</td><td>910-0003</td><td></td></tr><tr><td>Reagent B, מאגר מייצב</td><td>Chemometec</td><td>910-0002</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C3881</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4034</td><td></td></tr><tr><td>אלבומין סרום בקר (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4503</td><td></td></tr><tr><td>HBSS buffer: תמיסת המלח המאוזנת של האנק</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H8264</td><td></td></tr><tr><td>Probenecid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8761</td><td></td></tr><tr><td>NaOH (1 מ')</td><td>Vel</td><td>2781</td><td></td></tr><tr><td>חומצה פלורונית</td><td>Invitrogen</td><td>P-3000MP</td><td></td></tr><tr><td>דימתיל סולפוקסיד (DMSO)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4 AM</td><td>Invitrogen</td><td>F14201</td><td>Fluo-3, Rhod-2, Fluo-5, סידן ירוק-1, ... (אינוויטרוגן)</td></tr><tr><td>צלוחיות תרבית רקמות TPP (T-75 ו-T-150)</td><td>מכשיר Sigma-Aldrich</td><td>Z707503 ו-Z707554</td><td></td></tr><tr><td>FlexStation</td><td>התקנים</td><td></td> מולקולריים <td>NOVOstar (BMG Labtechnologies); FLIPR (קורא לוחות הדמיה פלואורומטרי) (מכשירים מולקולריים)</td></tr> <tr><td>לוחות פוליסטירן בעלי קירות שחורים (96 בארות) עם תחתית שקופה</td><td>Greiner Bio-One</td><td>655090</td><td>קורנינג 96 בארות שטוח תחתית שקופה שחורה מצופה פוליסטירן פולי-D-ליזין מיקרו-פלטות</td></tr><tr><td>NucleoCassette</td><td>Chemometec</td><td>941-0001</td><td></td></tr><tr><td>NucleoCounter NC-100</td> צינורות מיקרוצנטריפוגה <td>Chemometec</td><td></td><td></td></tr><tr><td>, סיליקון</td><td>BioCision</td><td>BCS-2470</td><td></td></tr><tr><td>פוליסטירן בצורת V 96 צלחות</td><td>גריינר ביו-וואן</td><td>651101</td><td></td></tr><tr><td>96 בארות, קצות פיפטה FlexStation</td><td>מכשירים מולקולריים</td><td>9000-0912</td><td></td></tr><tr><td>Soft Max Pro תוכנה</td><td>התקנים</td><td></td><td></td> מולקולריים</tr></tbody></table>

אפיון של רצפטורים מצמידים גרמו חלבון על ידי assay גיוס סיד הקרינה מבוססת

Characterization of G Protein-coupled Receptors by a Fluorescence-based Calcium Mobilization Assay

במשך יותר משנים 20, פרמקולוגיה ההפוכה הייתה האסטרטגיה הדגולה לגלות ligands ההפעלה של קולטני G-חלבון בשילוב יתום (GPCRs). תחילתה של assay פרמקולוגיה ההפך היא השיבוט וtransfection הבא של GPCR של עניין במערכת ביטוי תאית. קולט Heterologous הביע אז תיגר עם ספרייה מורכבת של ligands המועמד לזהות יגנד הפעלת קולטן (ים). הפעלת קולטן יכולה להיות מוערכת על ידי מדידת שינויים בריכוז של מולקולות כתב השליח השניה, כמו סידן או במחנה. Assay גיוס הקרינה מבוססת סידן שתואר כאן הוא מדיום תפוקה משמשת לעתים קרובות להפוך assay פרמקולוגיה. GPCR היתום מתבטא transiently ב293T כליה העוברית האנושי לתאים (HEK293T) ומבנה Gα 16 מופקר הוא שיתוף transfected. בעקבות יגנד מחייב, הפעלה של מקטע Gα 16 גורמת לשחרור של f סידןrom reticulum endoplasmic. לפני הקרנת יגנד, תאי קולטן להביע נטענים עם מחוון סיד ניאון, Fluo-4 acetoxymethyl. אות הניאון של Fluo-4 היא זניחה בתאים בתנאי מנוחה, אבל יכולה להיות מוגבר יותר מ פי 100 על האינטראקציה עם יוני סידן שפורסמו לאחר הפעלת קולט. הטכניקה המתוארת אינה דורשת הקמתה של שורות תאי transfected ביציבות שבו החומר הגנטי transfected משולב לתוך הגנום התא המארח זמן רב. במקום זאת, transfection חולף, שהניבו ביטוי זמני של גן היעד, מספיק כדי לבצע את assay ההקרנה. ההתקנה מאפשרת הקרנה בינונית תפוקה של מאות תרכובות. Co-transfection של 16 Gα המופקר, שהזוגות ביותר GPCRs, מאפשר מסלול האיתות תאית כדי להיות מנותב לכיוון שחרורו של סידן, ללא קשר למסלול איתות היליד בגד &#39;אנדוגניטים. תאי HEK293T קלים לטפל והוכיחו את יעילותם לאורך השנים במבחני deorphanization הקולטן. עם זאת, אופטימיזציה של assay לקולטנים ספציפיים עשויה להישאר צורך.

סדרת ריכוז הנעה בין 50 מיקרומטר ל0.001 ננומטר נבדקו עבור כל ארבעת פפטידים דרוזופילה sNPF (Drome-sNPF-1: AQRSPSLRLRFamide, Drome-sNPF-2: SPSLRLRFamide, Drome-sNPF-3: PQRLRWamide, Drome-sNPF-4: PMRLRWamide) על תאי HEK293T שtransiently לבטא את קולט דרוזופילה sNPF ומקטע Gα 16 המופקר. GPCR הופעל על ידי כל ארבעת פפטידים בריכוזים סופיים עד 0.1 ננומטר, והפעלת קולטן הייתה תלוי ריכוז. איור 2 מתאר את הגרפים המתאימים לאחד משלושה העתקים של סדרת הריכוז Drome-sNPF-1. הבקרה השלילית (לשטוף חיץ) לא לגרום לאות ניאון, תוך הבקרה החיובית (1 PAR - 1 מיקרומטר) שהושרו על הפעלה חזקה של אנדוגני קולט-1, מה שמוביל לאות גבוהה ניאון (± 30,000 RFU) מופעל פרוטאז. יצוין, כי סטייה שלהעקומה האופיינית עשויה להצביע על ליקויים. לדוגמא, עלייה מתמשכת של העקומה מבלי לחזור לנקודת ההתחלה עשויה להיות קשורה לאותות שאינם קולטן בתיווך, כגון הנוכחות של יונופורים סידן, או bilayer שומנים שיבש דליפות סידן. התוכנה מאפשרת הזנת נוסחאות כדי לקבוע את אחוז ההפעלה או שגיאות התקן של ריכוזים השונים בין יתר. הנתונים המתקבלים משמשים להלחין עקומות ריכוז בתגובה ראשוניות כדי לאמוד את EC 50 ערכים, כפי שמוצגים לארבעה פפטידים Drome-sNPF באיור 3. העקומות של איור 3 כוללות גם את הנתונים לביקורת השלילית שבו הריכוז של הסדרה פפטידים Drome-sNPF נבדקו על תאי HEK293T transfected עם וקטור pcDNA3.1 ריק. התוצאות מצביעות על כך שהתוספת של פפטידים לתאים אלה אין להם השפעה על קולטני אנדוגני, אבל אכן Activאכלתי את הקולטן של עניין. Assay גיוס סידן המבוסס על הקרינה לאחר מכן חזר שלוש פעמים באופן עצמאי. בהתבסס על עקומות ריכוז בתגובה הראשוניות של המסך הראשוני, הריכוזים שנבדקו היו מותאמים כדי לכסות את הטווח הדינמי של העקומה (איור 4). ערכי EC50 של Drome-sNPF-1 (2.04 ± 1.48 ננומטר [95%]), Drome-sNPF-2 (5.89 ± 3.74 ננומטר), Drome-sNPF-3 (5.55 ± 3.95 ננומטר) וDrome-sNPF- 4 (0.50 ± 1.01 ננומטר) הם דומים, מה שמעידים שהם חזקים באותה מידה על מנת להפעיל את קולט. <img alt="איור 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51516/51516fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51516/51516fig2.jpg" /> פלט איור 2. גרפי של התוכנה לתגובת הקרינה קולטן בתיווך של סדרת ריכוז. עשרה ריכוזים סופיים (החל 50 מיקרומטר ל0.001 ננומטר) oו פפטיד Drome-sNPF-1 נבדק על קולט Drome-sNPF. ההפעלה באה לידי ביטוי ביחידת ניאון יחסי ערכים (RFU). הגרף העליון נותן את התוצאות של ששת הריכוזים הגבוהים ביותר וגרף התחתון של ששת הריכוזים הנמוכים ביותר. הביקורת החיובית (+) היא PAR 1 (1 מיקרומטר) והבקרה השלילית (-) הוא לשטוף חיץ. <img alt="איור 3" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51516/51516fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51516/51516fig3.jpg" /> איור 3. עקומות ריכוז בתגובה ראשוניות של פפטידים דרוזופילה sNPF נקבעים על ידי assay התגייסות חד הקרינה מבוססת סידן. עקומות ריכוז-התגובה של הקולטן דרוזופילה sNPF הביע transiently בתאי HEK293T לארבעה פפטידים דרוזופילה sNPF מוצגות בכחול. לבקרות השליליות (מסומנות באדום), פפטידים נבדקו על HEK293Tתאי transfected עם וקטור pcDNA3.1 ריק. תגובות הניאון מוצגות כיחסי (%) לערך הגבוה ביותר (הפעלת 100%). העקומות הן התוצאה של ניסוי אחד שבו כל אחת מסדרות ריכוז נמדדו בשלושה עותקים. הקווים האנכיים מייצגים סטיות התקן של הממוצע (SEM), שלפעמים הם קטנים יותר מאשר הסמלים המשמשים (במקרה זה, רק סימנים מתוארים). <img alt="איור 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51516/51516fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51516/51516fig4.jpg" /> איור 4. עקומות ריכוז בתגובה ומתאימה EC 50 ערכים של פפטידים דרוזופילה sNPF נקבעים על ידי שלושה מבחני גיוס סידן המבוסס על הקרינה עצמאי. עקומות תגובת הריכוז של הקולטן Drosopihla sNPF הביעו transiently בתאי HEK293T לארבעה פפטידים דרוזופילה sNPF הן התוצאה מהשלוש עצמאייםasurements כל בוצע בשלושה עותקים (n ≥ 9). תגובות הניאון מוצגות כיחסי (%) לערך הגבוה ביותר (הפעלת 100%). כוכביות מצביעות על ריכוזים שלn ≤ 9. ברים שגיאה מצביעים SEM, שלפעמים הם קטנים יותר מאשר הסמלים המשמשים (במקרה זה, רק סימנים מתוארים). EC 50 ערכים מוצגים עם מרווחי הביטחון של 95% שלהם.

Assay הגיוס שתואר כאן הקרינה מבוססת סידן הוא מערכת הקרנת פרמקולוגיה ההפוכה בינוני תפוקה לזיהוי ליגנד תפקודי הפעלה (ים) של קולטני G-חלבון בשילוב יתום (GPCRs).

אפיון של רצפטורים מצמידים גרמו חלבון על ידי Assay גיוס סיד הקרינה מבוססת

For more than 20 years, reverse pharmacology has been the preeminent strategy to discover the activating ligands of orphan G protein-coupled receptors ...

המטרה הכוללת של הניסוי הבא היא לזהות ליגנדים המפעילים תפקודית קולטני G protein coupled receptors יתומים, או GPCRs. דבר זה מושג באמצעות טרנספקציה זמנית של ה-GPCR המבוקש וטרנספקציה משולבת של מבנה G alpha 16 פרומיסקואי במערכת ביטוי תאית, כדי להשיג ביטוי הטרולוגי זמני של שני החלבונים. כשלב שני, התאים שעברו טרנספקציה נטענים בצבע הפלואורסצנטי Fluo-4 הרגיש לסידן, המזהה שחרור של סידן ממאגרים תוך-תאיים באמצעות עלייה באות הפלואורסצנטי בעת אינטראקציה עם סידן.בשלב הבא, מבוצעת בדיקת גיוס סידן מבוססת פלואורסצנציה על ידי חשיפת הרצפטור המבוטא באופן הטרולוגי לספרייה של תרכובות ליגנדים מועמדים, וזאת כדי לזהות תרכובות המפעילות את הרצפטור ומעוררות שרשרת אותיות תוך-תאית המובילה לשחרור סידן מהרשתית האנדופלזמית, שניתן למדוד כאות פלואורסצנציה. התוצאות המתקבלות מראים עקומת תגובה לריכוז עם הריכוז האפקטיבי החציוני (half maximal effective concentration) של ליגנד מפעיל, המבוססת על זיהוי אותות פלואורסצנציה שונים בהתאם לריכוזי הליגנדים שהוחדרו למערכת הביטוי התאית. היתרון המרכזי בביצוע טרנספקציה זמנית (transient transfect) להשגת ביטוי זמני של ה-GPCR שלך, לעומת שימוש בשורות תאים קלונליות יציבות, הוא ששיטה זו אינה דורשת את ההקמה הממושכת של שורות תאים כאלה שעברו טרנספקציה יציבה.טרנספקציה של תת-היחידה הפרומיסקואית G alpha 16 יכולה להסיט את מסלול השליח התוך-תאי של מרבית ה-GPCRs לעבר שחרור סידן, ללא קשר למסלול השליח הטבעי בתנאים אנדוגניים. בהתאם לכך, מערך זה מאפשר סריקה בקיבולת בינונית (medium throughput) של מאות תרכובות על GPCRs רלוונטיים בפרק זמן קצר. את הפרוצדורה מדגימים yellow gas, סטודנט לדוקטורט, ו-Nick Su, טכנאי מהמעבדה שלנו. גדלו את תאי HEK 2 93 T בבקבוקי T 75 שלושה ימים לפני ביצוע בדיקת גיוס הסידן; בצעו מעבר (passage) לתאים כאשר הגיעה רמת התרביות ל-80% confluence. הכינו בקבוק T 75 אחד לטרנספקציה עם קונסטרקט הרצפטור ובקבוק אחד לטרנספקציה עם וקטור ביטוי ריק כביקורת שלילית.דגרו את הבקבוקים בטמפרטורה של 37 °C באינקובטור לח עם 5% CO2 למשך 20 עד 24 שעות, עד שתרביות התאים יגיעו ל-50% עד 70% confluence כפי שמוצג כאן. לאחר מכן, הוסיפו 3.9 µg של קונסטרקט הרצפטור או וקטור ריק ו-3.9 µg של קונסטרקט ביטוי של G alpha 16 לשפופרת מיקרו-צנטריפוגה של 1.5 mL. הוסיפו 500 µL של jet prime buffer.ערבבו היטב באמצעות וורטקס של המבחנה ולאחר מכן סבב קצר בצנטריפוגה. לאחר מכן, הוסיפו 37.5 µL של jet prime reagent, ערבבו בוורטקס וסובבו בצנטריפוגה למשך דקה אחת במהירות מקסימלית. דגרו את תערובת הטרנספקציה למשך 10 דקות.בטמפרטורת החדר, סמנו אוכלוסייה אחת של תאים ככאלו שעברו טרנספקציה עם וקטור הביטוי, המקודד ל-GPCR הרלוונטי ולמבנה ה-G alpha 16, ואת הבקבוק השני עם הוקטור הריק ומבנה ה-G alpha 16. לאחר האינקובציה, הוסיפו את תערובת הטרנספקציה בטיפות למצע תרבית התאים, תוך הקפדה על פיפטור ישירות אל תוך המצע ומניעת מגע עם דפנות בקבוק התרבית. דגרו את הבקבוקים בטמפרטורה של 37 °C באינקובטור לח עם 5%CO2 למשך 20 עד 24 שעות עבור בדיקת גיוס הסידן.יש לאסוף את התאים שעברו טרנספקציה ולזרוע אותם בלוחות 96 בארות בעלי דפנות שחורות ותחתית שקופה. ראשית, יש לצפות את הלוחות ב-60 µL לכל בארה בטמפר בטמפרטורת החדר.סליין buffered עם פוספטים (PBS) עם פיברונקטין. הדגרירו את הפלטות בטמפרטורת החדר למשך שעה כאשר המכסה סגור. הסירו את התמיסה מהבארות והדגרירו את הפלטות שוב למשך שעה בטמפרטורת החדר ללא מכסה.בשלב זה, הסירו את מצע הגידול הישן מהתאים. שטפו תאים מתים באמצעות 3 mL של PBS והסירו את ה-PBS. לאחר מכן, הוסיפו 3 mL של PBS עם trypan EDTA בטמפרטורת החדר והדגירו למשך דקה אחת לפני הסרת התמיסה.בשלב זה, מורפולוגיית התאים משתנה מצורה כוכבית לצורה כדורית. שחררו את התאים מהקרקעית של הבקבוק באמצעות טפיחות עדינות ואספו אותם על ידי שטיפה מספר פעמים עם 10 milliliters של מצע העברה DM em בטמפרטורת החדר.העבירו את התאים לשפופרת פאלקון של 50 milliliter. כדי לספור את מספר התאים למיליליטר, הוסיפו 100 microliters מתרבית התאים לשפופרת מיקרו-צנטריפוגה של 1.5 milliliter. לאחר מכן, הוסיפו 100 microliters של בופר ליזיס (lysis buffer) וערבבו על ידי טפיחה על השפופרת.לבסוף, הוסיפו 100 µL של באפר מייצב וערבבו על ידי נקישה. מלאו קסטת Nucleo בתרחיף התאים וספרו את התאים באמצעות המונה. תוכנת ה-NucleoView מכפילה באופן אוטומטי את מספר התאים בשלוש, כיוון שהתאים דוללו פי שלושה.בעת הוספת בופר הליזיס והייצוב, דללו את התאים לריכוז סופי של 600, 000 תאים למילליליטר והעבירו 150 microliters של התאים לכל באר בלוחות המצופים. כדי להשיג צפיפות תאים של כ-90, 000 תאים לבאר, הימנעו מבועות אוויר והקישו על הלוח כדי לפזר את התאים באופן שווה. כדי לקבל שכבת תאים רציפה, דגרו את הלוחות בטמפרטורה של 37 degrees Celsius באינקובטור לח עם 5%CO2 למשך 16 עד 24 שעות.שפכו את המצע מהתאים. שטפו את התאים עם 200 µL של PBS לכל באער והסירו את ה-PBS. שימו לב שכל השלבים הבאים הכוללים פעולות עם התאים צריכים להתבצע בחושך, כיוון שמרגע זה והלאה, התאים יטענו ב-fluoro four.הוסיפו 55 µL של תמיסת טעינה (loading buffer) לכל באער, עטפו את הפלטה בנייר אלומיניום כדי למנוע חשיפה לאור והדגירו למשך שעה אחת בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, השתמשו בתמיסת שטיפה כדי להמיס את הפפטידים מיובשים במבחנות מיקרו-צנטריפוגה מסליקוניזציה בנפח 1.5 mL. הכינו סדרת מיהולים לביצוע ניתוח תגובה לריכוז ולקביעת ערך ה-EC 50 של ליגנד.יש לזכור כי במהלך הבדיקה יועברו 50 µL של ליגנד מלוחית התרכובות אל באר המכילה 100 µL של בופר שטיפה בלוחית התאים, לכן יש להכין את התרכובות בריכוז השלישי מהריכוז הסופי הרצוי. לאחר מכן, הוסיפו 70 µL של הליגנד לבאר המתאימה בלוחית התרכובות בשלישייה. כללו בקרות חיוביות ושליליות בכל לוחית.שפכו את חוצץ הטעינה (loading buffer) מלוח התאים והוסיפו 100 microliters של חוצץ שטיפה לכל באר, תוך מניעת חשיפה לאור. דגרו את הלוח למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר. שפכו את חוצץ השטיפה מלוח התאים והוסיפו 100 microliters של חוצץ שטיפה חדש לכל אחת.דגרו את פלטת התאים, פלטת התרכובות ומגש הטיפים למשך 15 דקות ב-37 °C. צרו וטענו את קובץ הפרוטוקול הרצוי באמצעות התוכנה והפעילו את יחידת בקרת הטמפרטורה עבור תא הקריאה כאן. תגובות סידן נמדדות ב-37 °C למשך שתי דקות, שורה אחת בכל פעם, במרווח של 1.52 שניות בין קריאות עוקבות באורך גל של 525 ננומטר.הגדירו את העירור של flu oh four ל-488 nanometers והעבירו נפח כולל של 50 µL של התרכובת ללוחית התאים. 18 שניות לאחר הקריאה. התחילו עם מהירות חלוקה המוגדרת ל-26 µL לשנייה וגובה פיפט של 135 µL.מקם את פלטת התרכובות, פלטת התאים ואת רסית הקצוות במגירות המתאימות של מכשיר התחנה. בצע קריאה בודדת של פלטת התאים באותם אורכי גל של עירור ופליטה במצב נקודת סיום (endpoint mode) לפני תחילת הסריקה בפועל במצב גמיש (flex mode). התחל את הבדיקה והמשך לניתוח הנתונים באמצעות התוכנה המוצגת.להלן גרפים התואמים לאחד משלושה שחזורים של סדרת הריכוזים doofus short NPF one. הביקורת השלילית לא עוררה אות פלואורסצנציה. לעומת זאת, הביקורת החיובית גרמה להפעלה חזקה של הקולטן המופעל על ידי פרוטאזה אנדוגנית אחד (endogenous protease activated receptor one), מה שהוביל לאות פלואורסצנציה גבוה.התוכנה מאפשרת הזנה של נוסחאות לקביעת אחוז ההפעלה או השגיאות התקניות של הריכוזים השונים, בין היתר. הנתונים שהתקבלו משמשים להרכבת עקומות תגובה לריכוז ראשוניות כדי להעריך את ערכי ה-EC 50, כפי שמוצג עבור ארבעת הפפטידים של NPF קצר מוווריד הוושט. העקומות כוללות גם את הנתונים עבור הביקורת השלילית, שבה נבדקה סדרת ריכוזים של פפטידי NPF קצר מ-drosophila על תאים שעברו טרנספקציה עם וקטור ריק.התוצאות מעידות כי להוספת הפפטידים לתאים אלה אין השפעה על קולטנים אנדוגניים, אך הם אכן מפעילים את הקולטן הנחקר. בוצעו עקומות תגובה לריכוז ראשוניות עבור בדיקת גיוס סידן מבוססת פלואורסצנציה, והריכוזים שנבדקו הותאמו כדי לכסות את הטווח הדינמי של העקומה. ערכי ה-EC 50 של drosophila short npf 1, 2, 3, ו-four דומים, מה שמעיד על כך שהם בעלי יעילות שווה להפעלת הקולטן בעקבות הליך זה.ניתן לבצע שיטות אחרות, כגון מחקרי קשר מבנה-פעילות (SAR), כדי לענות על שאלות נוספות, למשל אילו חומצות אמינו בפפטיד הן קריטיות להפעלת הרצפטור. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיה לכם הבנה טובה של אופן ביצוע מדידת גיוס סידן מבוססת פלואורסנציה כשיטה לזיהוי ליגנדים המפעילים באופן תפקודי רצפטורים המצומדים לחלבון G. תהליך זה כולל את התחזוקה של מערכות ביטוי יציבות, ולאחריה טרנספקציה של מערכת התאים ברצפטור הנחקר.לאחר מכן ניתן לבצע בדיקת גיוס סידן קשיחה.

characterization-g-protein-coupled-receptors-fluorescence-based

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

על ידי שימוש לפתור spectrally שני הפוטונים מערכת הדמיה מיקרוסקופית, פיקסל ברמה מפות של העברת אנרגיה תהודה פורסטר (סריג) יעילות מתקבלים עבור תאים להביע את קולטני קרום השערה כדי ליצור הומו-oligomeric קומפלקסים. מן סריג מפות יעילות, אנו מסוגלים להעריך מידע stoichiometric על המתחם oligomer תחת מחקר.

ב כימות vivo של G מצמידים חלבון קולטן אינטראקציות באמצעות נפתר Spectrally שני פוטון מיקרוסקופית

כאן אנו מתארים מפורט לחיות הדמיה תא שיטות החקירה chemotaxis. אנו מציגים שיטות מיקרוסקופיות הקרינה לפקח על הדינמיקה של spatiotemporal איתות אירועים בתאים נודדות. מדידה של אירועים איתות מאפשר לנו עוד להבין כיצד רשת GPCR-איתות משיגה שיפוע חישה של chemoattractants בקרות כיווני ההגירה של התאים האיקריוטים.

קולטן הדמיה G-חלבון יחד (GPCR) בתיווך אירועים איתות כי הפיקוח של Chemotaxis Discoideum Dictyostelium</em

שיטות פשוטות לזיהוי הפעלה סלקטיבית של חלבוני G על ידי קולטנים מצומדים לחלבון G נותרו אתגר יוצא דופן באיתות תאים. כאן, חיישנים ביולוגיים של העברת אנרגיית תהודה (FRET) של Fӧrster פותחו על ידי קשירה זוגית של פפטידי חלבון GPCR ל-G כדי לחקור שינויים קונפורמטיביים בריכוזים מבוקרים בתאים חיים.

G- חלבון סלקטיבית GPCR תצורות נמדדו באמצעות סריג חיישנים ב assay fluorometer השעית תא חי

Guanosine triphosphate (GTP) מחייב הוא אחד האירועים המוקדמים G-Protein-Coupled קולטן (GPCR) ההפעלה. פרוטוקול זה מתאר כיצד לאפיין באופן פרמקולוגי אינטראקציות ספציפיות GPCR-ligand על ידי ניטור מחייב של אנלוגי GTP, שכותרתו רדיו, [ 35 S] guanosine-5'-O- (3-thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS), in תגובה ליגנד של עניין.

מדידת G- חלבון מצמידים איתות באמצעות רדיו שכותרתו GTP מחייב

וזמינותו הסלולר המתוארת נועד לצורך זיהוי הקולטן כימוקין CXC 4 (CXCR4)-סוכנים שמעצבת לעכב או לגרות, תחרותי או allosterically, תאיים Ca2 + שחרור שיזם CXCR4 הפעלה.

קינטי מבוסס על-ידי קרינה פלואורסצנטית Ca2 + גיוס Assay לזהות את G-חלבון בשילוב קולטן אגוניסטים היריבים, מאפננים Allosteric

בעבודה זו מתוארת בדיקה פלואורסצנטית של סידן תוך-תאי בעל תפוקה גבוהה עבור צלחות של 384 בארות לסינון ספריות מולקולות קטנות על קולטנים מצומדים לחלבון G רקומביננטי (GPCRs). המטרה, קולטן קינין מקרציית קדחת הבקר, Rhipicephalus microplus, מתבטאת בתאי CHO-K1. בדיקה זו מזהה אגוניסטים ואנטגוניסטים המשתמשים באותם תאים במבחן "תוספת כפולה" אחת.

בדיקת סידן פלואורסצנטית "דו-תוספת" לבדיקת תפוקה גבוהה של קולטנים מצומדים לחלבון G רקומביננטי

פותח פרוטוקול משופר לבדיקת ניוד סידן עם תאי אנדותל, המשמש לזיהוי ליגנדות של קולטנים המופעלים על ידי פרוטאז (PARs). הפרוטוקול החדש מקצר את זמן הבדיקה הכולל ב-90-120 דקות ומניב עקומות ריכוז-תגובה הניתנות לשחזור.

אפיון אפנן קולטנים המופעלים על ידי פרוטאז עם בדיקת ניוד סידן באמצעות קורא צלחות

פרוטוקול זה מתאר את השימוש בחיישנים ביולוגיים מבוססי BRET למדידה בזמן אמת של הפעלת חלבון G בתאי HEK293 חיים על גירוי ליגנד קולטן מצומד לחלבון G. כאן, קולטן β2-אדרנרגי וקולטן קנבינואיד מסוג 1 משמשים כדוגמאות להדגמת היעילות של חיישנים עבור מספר תת-סוגים של חלבון G ועל פני GPCRs שונים.

חיישנים ביולוגיים של חלבון G מבוססי BRET למדידת פעילות קולטן מצמד חלבון G בתאים חיים

שיטה להערכת הזיקה המתמדת של אגוניסט למדינה פעיל...

כימות פעילות אגוניסט ב G-חלבון יחד רצפטורים

הקרינה מבוסס מדידה הכניסה חנות המופעל הסידן בתאים חיים: מתא הסרטן תרבותי כדי סיב שריר שלד

למד לזהות ליגנדים פעילים לקולטני GPCR יתומים באמצעות שיטת גיוס סידן מבוססת פלואורסצניה בתאי HEK293T. שיטה זו מאפשרת סקרינג בינוני-תפוקה לגילוי סוכנים פרמקולוגיים חדשים.

אפיון של רצפטורים מצמידים גרמו חלבון על ידי Assay גיוס סיד הקרינה מבוססת

גלה סרטונים נוספים