20 ביולי 2014
יש צורך ניכר למידע משופר על נהגים מולקולריים של ושט בארט. מכתים Immunofluorescent הוא טכניקה שימושית להבנת ההשפעות של תא איתות במורפולוגיה של תאים. אנו מציגים פרוטוקול פשוט, יעיל לשימוש בצביעת immunofluorescent להעריך טיפול רפואי בתאי הוושט של בארט.
המטרה הכוללת של הניסוי הבא היא להעריך את ההשפעות של טיפול תרופתי על מבנה התא ולוקליזציה של חלבונים בתאי BE. זה מושג על ידי דגירה של תאי ה-BE הגדלים על החלקות כיסוי הזכוכית עם תרופה נבחרת בתנאי תרבית תאים סטנדרטיים. כשלב שני דגירה על התאים המטופלים עם קיבוע, המשמר את מבנה החלבון ולוקליזציה.
לאחר מכן, תאי be קבועים מודגרים ברצף עם נוגדנים משניים ראשוניים ומתויגים פלואורסצנטית על מנת לדמיין שינויים בחלבון המטרה שנבחר באמצעות מיקרוסקופיה פלואורסצנטית מתקבלות תוצאות המראות כיצד טיפול תרופתי בתאי be משנה את לוקליזציה של חלבון ומבנה התא על סמך הדמיה של צביעה אימונו-פלואורסצנטית. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי הוושט של בארט, ניתן ליישם אותה גם על מערכות אחרות כולל סרטן ותאים נורמליים. התחל הליך זה על ידי הנחת החלקות הכיסוי בגודל 18 מילימטר בצלחת פטרי מזכוכית וחיטוי אותן.
לאחר מכן העבירו את החלקות כיסוי החיטוי לצלחת תרבית רקמות של 12 בארות באמצעות פיפטת זכוכית סטרילית המחוברת לצינור ואקום. לאחר הכביסה הזו, הכיסוי מחליק עם PBS ומדיה סטריליים. הטריפסין הבא.
התאים האימורטליים סופרים את התאים באמצעות מונה תאים אוטומטי או ציטומטר המו לאחר מכן מדללים את התאים במצע תרבית לריכוז של 20,000 עד 40,000 תאים למיליליטר. לאחר מכן הניחו מיליליטר אחד של תאים בכל באר המכילה פתק כיסוי. לספירת תאים כוללת של 20,000 עד 40,000 תאים לבאר השתמש בקצה פיפטה סטרילי כדי לדחוף בעדינות את החלקת הכיסוי לתחתית הבאר כדי להבטיח שהתאים יתחברו להחלקת הכיסוי.
כדי לטפל בתאי BE, יש לדלל את התרופה שנבחרה ב-37 מעלות צלזיוס מדיה לתערובת הריכוז הרצויה היטב על ידי היפוך הצינור שוב ושוב או שימוש במערבל מערבולת. התחל בטיפול 24 שעות לאחר הישיבה הראשונית של תאי ה-BE כדי לאפשר חיבור תאים לכיסוי החלקה כעת תווית מראש של לוחות דגימה שטופלו בתרופות וברכב עם עט מעבדה כדי להבחין בין השוואה לבקרה. טפל בהחלקת כיסוי נוספת של תאי be עם 0.1% רכב מדולל במצע התרבית.
לאחר מכן, הניחו את התאים באינקובטור תרבית תאים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס, 5% פחמן דו חמצני ו-98% לחות. כעת לאחר זמן הדגירה הרצוי של הטיפול התרופתי, שאפו את המדיה ושטפו את הכיסוי מחליק במהירות עם XPBS אחד בטמפרטורת החדר. לאחר מכן שאפו את ה-PBS והוסיפו מיליליטר אחד של PBS המכיל 4% PFA לכל באר ודגרו בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות.
לאחר מכן, שאפו את ה-4% P-F-A-P-B-S שטפו את החלקות הכיסוי שלוש פעמים חמש דקות בכל פעם עם PBS בטמפרטורת החדר. אחסן את פתקי הכיסוי למשך שבוע ב-PBS ו-0.1% PFA בארבע מעלות צלזיוס אם תרצה. כדי לחדור עיניים לתאי ה-PFA הקבועים על מנת לאפשר לנוגדנים לגשת למטרות התוך-תאיות, דגרו על התאים עם אמוניום כלוריד של 50 מילי-מולרי מדולל ב-PBS למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר.
לאחר מכן שטפו אותם עם PBS בטמפרטורת החדר פעם אחת למשך חמש דקות. זה יצמצם את הרקע כדי למנוע קשירה לא ספציפית של נוגדנים לחלבונים התאיים. דגרו את תאי ה-BE למשך 30 דקות ב-100 עד 300 מיקרוליטר של PBS המכילים 0.1% טרופונין ו-0.5% BSA.
לאחר מכן הכינו צלחת ביולוגית מרובעת על ידי שכבת תחתית החדר במגבות נייר רטובות והנחת שכבת בושם מעל. סמן את הפרפיום בעט מעבדה כדי לזהות את פתקי הכיסוי. העבירו בעדינות את הכיסוי מחליק תאים הפונים כלפי מעלה אל הפראם באמצעות מלקחיים ומחט מזרק.
כעת יש לדלל את הנוגדן העיקרי ב-PBS המכיל גם 0.5% BSA וגם 0.1% ספונין ולמחוק בעדינות את תמיסת החסימה. בעזרת רקמת מעבדה, הוסף 100 מיקרוליטר מתמיסת הנוגדנים העיקרית ודגר את תאי ה-be למשך הלילה בארבע מעלות צלזיוס. למחרת.
שטפו את השקופיות שלוש פעמים עם PBS המכיל 0.5% BSA ו-0.1% טרופונין במשך חמש דקות בכל פעם בטמפרטורת החדר. לאחר מכן יש לדלל את הנוגדן המשני המצומד עם תג פלואורסצנטי ב-PBS המכיל 0.5% BSA ו-0.1% פוננט. הוסף 100 מיקרוליטר נוגדן מדולל לכל החלקת כיסוי ודגר את התאים למשך שעתיים בטמפרטורת החדר לאחר שעתיים.
שטפו את הכיסוי שלוש פעמים חמש דקות בכל פעם ב-PBS המכיל 0.5% BSA ו-0.1% טרופונין. הסר את מאגר הכביסה והוסף 100 עד 300 מיקרוליטר PBS להחלקות הכיסוי. הרם בעדינות את פתק הכיסוי בעזרת מלקחיים ומחק את ה-PBS באמצעות טישו מעבדה או מגבת נייר.
לאחר מכן הוסף 15 מיקרוליטר של מדיית הרכבה מתאימה של אנטיפה המכילה DPI להחלקת הכיסוי. הנח את החלקה של הכיסוי ההפוך על שקופית מיקרוסקופ זכוכית כשהתאים פונים כלפי מטה. לאחר מכן הנח את השקופיות בתיקיית שקופיות והרחיק אותן מאור ישיר למשך הלילה בטמפרטורת החדר כדי לאפשר למדיום האנטיפה להתרפא.
לאחר שמדיום האנטיפה התייצב, ניתן לאחסן את השקופיות בארבע מעלות צלזיוס או ב-20 מעלות צלזיוס עד להדמיה מיקרוסקופית. בשלב זה, הסר את שקופיות האחסון מ-20 מעלות צלזיוס שליליות או ארבע מעלות צלזיוס ואפשר להן להתחמם לטמפרטורת החדר. הפעל את המיקרוסקופ ואת מנורת קשת הכספית.
הנח שקופית מיקרוסקופ כשהחלקת הכיסוי פונה לכיוון המטרה על המיקרוסקופtagה. לאחר מכן, בחר את מסנן ה-DAPI ופתח את התריס. מקד את המטרה תוך התבוננות דרך חלקי העיניים עד להופעת התמונה.
מכיוון שכל התאים נצבעו ב- dpi, יש לצפות בקלות בגרעינים . אסוף תמונות באמצעות תוכנת עיבוד תמונה מתאימה באיור זה, כריכה תלושים עם CPC ו-CPD טופלו ברכב או במיקרו-טולר אחד של מעכב SRC. SKI 6 0 6 למשך 24 שעות להיות התאים תוקנו ונצבעו.
על פי הפרוטוקול המתואר, בטא קטנין המסומן בירוק הודגם באמצעות נוגדן ספציפי ונוגדנים משניים המחוברים ל-LOR 4 88 בעוד שהגרעין נצבע ב-DPI המסומן בכחול. שימו לב לשינוי במיקום של בטא-קטנין מהגרעין לקרום התא. לאחר טיפול ב-SKI 6 0 6.
לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד לצבוע את הוושט של בארט באופן פלואורסצנטי כדי לחקור לוקליזציה של חלבון או מבנה תא.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג פרוטוקול לצביעה אימונופלואורסצנטית לבחינת תאים של ושט ברט (Barrett's Esophagus). השיטה מאפשרת לחוקרים להעריך את השפעות הטיפול התרופתי על מבנה התא ועל לוקליזציה של חלבונים.
שיטת סמימה אימונופלואורסצנטית זו מאפשרת לצוותי מו"פ בתחום הביופארמה להעריך שינויים הנגרמים על ידי תרופות בלוקליזציה של חלבונים ובמבנה התא במודלים של ושט ברט (Barrett's esophagus), ובכך לתמוך בתיקוף מטרות (target validation) ובהפחתת סיכונים מכניסטיים בתהליך גילוי תרופות לאדנוקרצינומה של הוושט. על ידי אספקת קריאה כמותית הניתנת לשחזור של השפעות תרכובות טיפוליות על מסלולי איתות, הטכניקה מגבירה את הביטחון החזוי בסריקה פרה-קלינית ובהחלטות של תעדוף תיקי פיתוח.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מאימות מוקדם של מטרה, דרך זיהוי תרכובות מובילות ועד למחקרים מכניסטיים פרה-קליניים, ובכך מאפשרת הערכה איטרטיבית של השפעות התרכובות על הביולוגיה התאית של ושט ברט (Barrett's esophagus).