30 במרץ 2015
החלק הראשון של מאמר זה מראה כיצד לבחור קווי תאים מוטנטיים המבטאים מחליפי Na+/H+ שלפוחיתיים בקרום הפלזמה שלהם. החלק השני מספק פרוטוקולים המבוססים על מדידות pH תוך-תאיות וקליטת יונים מהירה, המשמשים לקביעת סלקטיביות היונים והפרמטרים הקינטיים של מחליפים אלה.
המטרה הכוללת של הניסוי הבא היא למדוד את הפעילות של מחליפי נתרן פרוטונים המתבטאים תוך תאיים. זה מושג על ידי בחירה ראשונה של תאים המבטאים את מחליפי הנתרן פרוטון התוך-תאיים בקרום הפלזמה על ידי בחירת הריגת פרוטונים. כשלב שני, התאים שנבחרו מחומצים, ואז נמדדת התאוששות ה-pH התוך-תאית כדי לאשר את פעילות חילופי הנתרן של התאים.
לאחר מכן נמדדת הקינטיקה המהירה של הובלת היונים כדי לקבוע את קבועי הזיקה לקטיון ולמעכבים המועברים. בסופו של דבר, ניטור השינויים ב-pH התוך תאי ובקינטיקה המהירה של התאים הסומטיים שנבחרו מאפשר אפיון תפקודי של חילופי החלבון התוך תאי. היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כמו ביטוי טרנספורטרים מוטנטיים או שימוש בתאים, הוא שהיא מאפשרת ביטוי של טרנספורטרים תוך-תאיים מסוג לבן בקרום הפלזמה ומאפשרת למדוד ישירות את תפקודם.
מדגים את ההליך יהיה ד"ר מלורי משורר, מדען חוקר מהמעבדה שלי כדי להתחיל בהליך הריגת הפרוטונים. ראשית, דגרו את התאים המבטאים את מחליף הנתרן פרוטון התוך-תאי המעניין בתמיסת העמסה ב-37 מעלות צלזיוס וחממה נטולת פחמן דו חמצני למשך שעה. לאחר מכן, שאפו את תמיסת הטעינה ושטפו את התאים פעמיים במדיום טרי.
לאחר הכביסה השנייה, יש לשאוב את המדיום ולדגור את התאים בתמיסת התאוששות בחממה נטולת פחמן דו חמצני. לאחר שעה נוספת, החלף את מדיום ההתאוששות במדיום תרבית רגיל וגדל את התאים בתנאי תרבית סטנדרטיים. חזרה על מחזור בחירה זה פעמיים בשבוע עד שיופיעו שיבוטים יציבים כדי לדמות את ה-pH הקרינה התוך-תאי של התאים.
תחילה צוידה בערכת הדמיה המורכבת ממיקרוסקופ הפוך יחד עם מצלמת וידאו בעלת רגישות גבוהה עם מסנני הפרעות פס צר של 450 ננומטר ו-490 ננומטר בשילוב עם מסנני צפיפות ניטרלית קוורץ מתאימים לעירור. במידת האפשר, השתמש בסט המסננים המתאים ובתנאי התאורה כדי להגדיר ערכי פלואורסצנטיות דומים עבור ערוצים 1 ו-2 כך שהיחס יתקרב לאחד כדי למדוד את הפעילות קדימה של מחליף פרוטון נתרן. לאחר מכן, יש להחמיץ את התאים בדגירה של שעה בתמיסת העמסת אמוניום.
בהיעדר פחמן דו חמצני במהלך חמש הדקות האחרונות של כתם הדגירה, התאים עם יחס מטרי רגיש ל-pH מתים. בתום תקופת הדגירה, יש לשטוף את התאים בתמיסת העמסת אמוניום כדי לחסל את הגשושית החוץ-תאית ולהרכיב את התאים הצבועים על המיקרוסקופ. בחר את אזורי העניין שבהם הערכים הפלואורסצנטיים יימדדו בהתאם לצורך.
לאחר מכן הקליטו מספר תמונות כדי ליצור קו בסיס ולחלחל את התאים בתמיסת RIN כדי ליזום ירידה בפלואורסצנטיות. לאחר שה-pH מתייצב, עיין בתאים עם התמיסה המעניינת כדי למדוד את שיעורי התאוששות ה-pH כפי שהם מתווכים על ידי חילופי ליתיום מימן, נתרן מימן או אשלגן מימן. כעת עיין בתאים עם תמיסת ההיפים בתוספת אשלגן כלורי וגרין.
לאחר מכן אסוף את מדידות הקרינה מהתמונות וייצא את הנתונים לתוכנית גיליון אלקטרוני בפורמט טקסט כדי למדוד את הקצב ההתחלתי של מחליף פרוטון הנתרן. שבעה, על ידי קליטה מהירה של ליתיום, מחמצים את התאים ואת הלוחות מרובי הבארות על ידי טכניקת העמסת אימודיום כפי שהודגם זה עתה. לאחר מכן, שטפו את הצלחות פעמיים במהירות כפי שהודגם זה עתה.
לאחר מכן דגרו את התאים בתמיסות ספיגה המכילות 1 עד 10 ליתיום מיקרו-מולרי והריכוזים הרצויים של הקטיון או המעכבים המעניינים למשך כדקה או פחות בסוף תקופת הקליטה, הסירו בזהירות את מדיום הספיגה ושטפו במהירות את התאים ארבע פעמים עם PBS קר כקרח בפחות מ-10 שניות בסך הכל כדי למנוע פליטת ליתיום ואז לימסו את התאים ב-250 מיקרוליטר של 25% חומצה חנקתית לכל ובכן לפחות שעה. מגרדים כל באר עם קצה קצה הפיפטה בסוף הדגירה ומעבירים את המתלים מכל באר לצינורות מיקרו צנטריפוגות חדשים. לבסוף, דגימות הצנטריפוגה במשך חמש דקות ב-15,000 גרם בטמפרטורת החדר כדי להסיר את הפסולת התאית ולאחר מכן למדוד את תכולת הליתיום של ה-SNAT על ידי ספקטרוסקופיה של ספיגה אטומית.
על פי הוראות היצרן, בחירת הריגת הפרוטונים מבוססת על דיפוזיה של בסיס האמוניום החלש. לדוגמא, תאים שאינם מבטאים מחליף נתרן פרוטון פונקציונלי בקרום הפלזמה אינם יכולים לשחזר ערך pH ניטרלי ולכן מציגים היבט מחומצן טיפוסי עם צורה שטוחה וציטוזול גרגירי כפי שניתן לראות בתמונה מייצגת זו לאחר מחזורי ברירה חוזרים ונשנים, תאים ששורדים באופן מלא ויציב. עם זאת, ההחמצה יוצרת שיבוטים תאיים בודדים כפי שניתן לראות כאן, כפי שהודגם ניתן לאפיין את הפעילות וסלקטיביות היונים של מחליפי הנתרן פרוטון התוך-תאיים המתבטאים בקרום הפלזמה על ידי מדידת השינויים ב-pH התוך-תאי המושרים בתנאי ניסוי שונים כפי שנצפה בגרפים אלה לאחר החמצת העמסת אימודיום.
באשר לקינטיקה של האנזים, ניתן להשתמש בתגובת המינון לשיעורי הספיגה הראשוניים כדי לגזור את ערכי קבוע הזיקה עבור הסובסטרטים ועבור ערכי קבועי העיכוב של המעכבים. ואכן, מאפיין מעניין של הטרנספורטרים הוא שקטיון צימוד שונה יתחרה על ההובלה, ויניב את האפשרות למדוד את קבוע הזיקה לנתרן על ידי תחרות עם ספיגת הליתיום כפי שמודגם באיור זה בעקבות הליך זה. ניתן לבצע ניסויים אחרים כמו BioInnovation על פני התא בשילוב עם השתקת RNA על מנת לוודא שהטרנספורטר המעניין אכן מתבטא בקרום הפלזמה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מפרט שיטה לבחירת שורות תאים מוטנטיות המבטאות מחליפי Na+/H+ וסיקולריים בממברנת הפלזמה שלהן. הוא מספק בנוסף פרוטוקולים למדידת pH תוך-תאי וספיגה מהירה של יונים, במטרה להעריך את הסלקטיביות היונית ואת הפרמטרים הקינטיים של מחליפים אלו.
אפיון תפקודי ישיר של מחליפי Na+/H+ תוך-תאיים בממברנת הפלזמה נותן מענה לצוואר בקבוק קריטי בתיקוף מטרות עבור נשאי יונים המעורבים בהפרעות נוירולוגיות. גישה זו מאפשרת הערכה כמותית של פעילות הנשא וסלקטיביות שלו, ובכך תומכת בביטחון חיזוי בשלבי הגילוי המוקדמים ובצמצום סיכונים מכניסטיים. השיטה משפרת את קבלת ההחלטות בנוגע לתיק הפיתוח על ידי אספקת נתונים חסונים הניתנים לשחזור על תפקוד הנשא הרלוונטי לביולוגיה של המחלה.
שיטה זו משתלבת ברצף השלב של הגילוי עד למאפיינים הפרה-קליניים על ידי כך שהיא מאפשרת ניתוח תפקודי ישיר של נשאי חומרים תוך-תאיים, ובכך תומכת הן בתהליכי תיקוף של מטרות (target validation) והן בתהליכי פיתוח של בדיקות (assays).