ההדמיה PET / MRI בו זמנית בעכבר מוחין היפוקסיה-איסכמיה

המטרה הכוללת של הליך זה היא לרכוש בו זמנית טומוגרפיה אחת של פליטה ונתוני הדמיית תהודה מגנטית במהלך הופעת פגיעה איסכמית היפוקסית. זה מושג על ידי קשירה ראשונה, עורק הצוואר המשותף באופן חד צדדי בעכבר. השלב השני הוא הכנת החיה להדמיה ורכישת נתוני PET ו-MRI בסיסיים.

השלב האחרון הוא רכישת נתוני הדמיה במהלך ואחרי אתגר היפוקסי. בסופו של דבר, רכישת PET ו-MRI בו זמנית משמשת להדגמת שינויים בדיפוזיה של מים ובספיגת גלוקוז דאוקסי שפעת בנגע במהלך ואחרי היפוקסיה. שיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי שינויים דינמיים בפיזיולוגיה ובביוכימיה במהלך שבץ מוחי, אך ניתן ליישם אותה גם במקרים אחרים שבהם המערכת הנצפית אינה במצב יציב, אלא משתנה.

הכן שדה כירורגי סטרילי עם הכלים המוצגים כאן, הממוקמים בנוחות סביב החלק החיצוני. הפעל את כרית החימום וודא שהיא מגיעה ל-37 מעלות צלזיוס. לפני תחילת ההליך.

להרדים את העכבר באמצעות 1 עד 3% איזוף פלואור, ולמרוח משחה עיניים על העיניים. הנח אותו במצב שכיבה ואשר את ההרגעה עם צביטת הבוהן. לאחר מכן, מרחו קרם דטורי על הצוואר התחתון ואזור החזה העליון באמצעות צמר גפן אחד עד שניים.

המתינו כשתי דקות ואז הסירו את השיער והקרם בעזרת גזה רטובה לאחר שהאזור נקי משיער. עקר את אזור החתך עם בטדין על ידי מריחתו בצורה מעגלית מבפנים לחוץ. החלף לכפפות כירורגיות סטריליות והשתמש במספריים כירורגיות כדי לבצע חתך של סנטימטר אחד לאורך קו האמצע של הצוואר התחתון.

הפרד בזהירות את העור החיצוני מהפאשיה שמסביב בעזרת מספריים כירורגיים. שימוש בשני מלקחיים לתפירת מיקרו קשתית של MCFE. הסר את רקמת החיבור.

עברו בין רפידות השומן של הזיכרון והפרידו את עורק הצוואר המשותף הימני מהפאשיה. הקפד להימנע מפגיעה בוורידים או הפרעה לעצב התועה. לאחר מכן, השתמש במלקחיים כדי להוציא את עורק הצוואר המשותף הימני.

במצב יציב, מרחו כמה טיפות של מי מלח כדי למנוע ממנו להתייבש מעבר לשניים עד שלושה סנטימטרים של שישה תפרי משי מתחת לעורק הצוואר המשותף הימני ולקשור אותו באמצעות קשר מרובע כפול. לאחר מכן חזור על הקשירה באמצעות תפר באורך שני. מקם מחדש את עורק הצוואר המשותף הימני ונקה עודפי נוזלים מהפתח באמצעות ספוגית סטרילית עם קצה ספוג.

לאחר מכן סגור את החתך עם שישה תפרי משי OTT ומרח לידוקאין באופן מקומי עד שבעה מיליגרם לקילוגרם. עקוב אחר ההנחיות הספציפיות למוסד שלך לטיפול בכאב כירורגי. בצע ניטור לאחר הניתוח במהלך ההתאוששות עד שהעכבר מוכן להדמיה.

בדוק את פעולת מדי זרימת החמצן והחנקן על ידי הפעלה ראשונה של מקורות האוויר החמצן והחנקן. לאחר מכן הפעל את מדי הזרימה בקצב זרימה של ליטר לדקה. הגדר את זרימת החמצן ל-114.3 מיליגרם לדקה ואת זרימת החנקן ל-1.150 גרם לדקה.

לאחר מכן, הכינו את מיטת החי על ידי הקפדה על כך שמערכות ההרדמה, כריות הנשימה והחימום ממוקמות בצורה מאובטחת ומתפקדת. לאחר מכן חבר סמנים נאמנים המכילים עוקב רדיו למיטת החיה בשדה הראייה. אתה מרדים את העכבר עם איזוף פלואור ומחמם מראש את זנבו כדי להכין אותו להחדרת קטטר.

ברגע שמוכן, הכנס עד חמישה סנטימטרים של קטטר PE 10 מלא מראש במי מלח הפריניים. אבטח את קו העירוי במקום ההחדרה עם טיפה של דבק ציאנואקרילט. ואז העבירו את החיה למיטת בעלי החיים המוכנה.

יש למרוח מחדש משחת עיניים על עיני העכבר כדי למנוע ייבוש ולייצב את ראש החיה על ידי הנחת החותכות העליונות סביב מוט השן והנחת מוטות האוזניים במקומם. התחל זרימת פלואור של 1% עד 2% בין 0.5 לליטר לדקה. הכנס מדחום בדיקה רקטלית, וודא שקריאות הטמפרטורה והנשימה פועלות.

לאחר מכן, שאב כ-600 מיקרו-קורי של מינון הרדיו-טריסר ב-200 מיקרוליטר של מי מלח למזרק של מיליליטר אחד והנח אותו במשאבת מזרק. חבר כשלושה מטרים של צינור PE 10 הפריני למזרק ואת הקצה השני לקו הצנתר של וריד הזנב. בדוק שהמיקום של סליל ה-MRI וכל אחד מהקווים והכבלים, במיוחד צינור ההרדמה, אינם שזורים.

ודא שמרכז המוח מיושר עם מרכזי מערכת ה-PET של סליל ה-MRI ומגנט ה-MRI. לאחר מכן החלק בזהירות את מיטת החיות קדימה לתוך קדח המגנט. בצע כוונון והתאמה של סליל ה-MRI על ידי סיבוב כפתורי הכוונון בסליל כדי למזער אי התאמות עכבה ותדרים.

לאחר מכן, בחר רצף פיילוט נסיעה נדיר והפעל את הרצף מחלון בקרת הסריקה כדי לקבל תמונת סקאוט. בדוק את מיקום החיה והתאם את מיקומה במידת הצורך עד שהמוח מרוכז. לאחר מכן אפס את ה-shims לערך אפס.

עכשיו רוץ נקודה. לפתור רצף סריקה ספקטרוסקופי בתוך המוח באמצעות נפח מלבני של 3.9 מילימטרים על שישה מילימטרים על תשעה מילימטרים. בדוק את רוחב קו המים באמצעות פקודת המאקרו רוחב קו חישוב.

אם הרוחב המלא בחצי הערך המקסימלי מקובל, מקם את תוכנית הפרוסה לסריקת ההדמיה המשוקללת של הדיפוזיה באמצעות העורך הגיאומטרי כאשר תוכנית הפרוסה המתקבלת מיושרת כרצונך. העתק תוכנית פרוסה זו בחלון בקרת הסריקה עבור כל הסריקות הבאות והתחל ברכישת התמונה. לאחר מכן, כאשר רכישת ה-PET מוכנה ומוכנה להתחיל, הפעל את משאבת העירוי לאחר הזרקת מי המלח מהצנתר, התחל ברכישת ה-PET.

על מנת ללכוד את הכניסה של עוקב רדיו. עקוב אחר קצב הספירה וחפש עלייה הדרגתית בספירות המעידה על הזרקה מוצלחת. לאחר 10 עד 15 דקות, התחל את האתגר ההיפוקסי על ידי כיבוי זרימת האוויר הרפואי והפעלה מיידית של מדי זרימת החמצן והחנקן כדי לספק 8% חמצן ו-92% חנקן.

בשלב זה, הפחיתו את איזו הפלואור ל-0.8% מיד לאחר התחלת האתגר ההיפוקסי. התחל ברכישת תמונה משוקללת לדיפוזיה באמצעות הגדרת הסריקה הקודמת. התחל רכישת תמונה משוקללת דיפוזיה שנייה מיד לאחר השלמת הסריקה הראשונה.

סיים את האתגר ההיפוקסי על ידי כיבוי מדי הזרימה, שחזור זרימת האוויר הרפואית והחזרת ריכוז הפלואור של האיזוף בחזרה ל-1 עד 2%רכוש סריקת הדמיה משוקללת לאחר דיפוזיה של היפוקסיה, ולאחר מכן כבה את משאבת העירוי ורכוש תמונות אנטומיות במישור הצירי והסגיטלי באמצעות עורך הגיאומטריה. ודא ששדה הראייה של הרכישה מכסה את המוח. באמצעות שיטה זו, ניתן לזהות שינויים בדיפוזיה במהירות לאחר התחלת שבץ מוחי כצפוי.

ערכי מקדם הדיפוזיה לכאורה בצד החסום של המוח יורדים ככל שהפגיעה מתקדמת. המוצג. להלן פרוסות עטרה ורוחביות של בעל חיים המציגות קליטה של FDG. תמונת חיית המחמד נמצאת בחזית ונרשמת עם תמונת MRI אנטומית ברקע להדמיה.

במקביל לשינויים במקדם הדיפוזיה לכאורה, ניתן להבחין בהבדלים חצי כדוריים בקליטת FDG לאחר תחילת האתגר ההיפוקסי. בשניים מתוך שלושה מקרים, ספיגת EPS מאוחרת יותר ירדה ביחס לספיגה נגדית לאחר היפוקסיה. למרות שזה לא היה נכון, בכל המקרים ככל הנראה בגלל שונות של בעלי חיים, אנו יכולים להשתמש בהליך כללי זה עם סוגים שונים של MRI וניגודיות חיות מחמד על מנת לצפות בפרמטרים פיזיולוגיים או מטרות אחרות במוח.