Name: במבחנת in vivo המודל ללמוד הידבקות חיידקים לכלי השיט וול תנאי זרימה תחת (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 24 s
Description: חקור מנגנוני הידבקות חיידקים לכלי דם תחת מתח גזירה פיזיולוגי באמצעות מודלים של in vitro ו-in vivo. שיטה זו מאפשרת ויזואליזציה בזמן אמת של Staphylococcus aureus adhering לתאי אנדותל פעילים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי חטיבות voor Wetenschappelijk Onderzoek (כשיש שתיים) Vlaanderen G0466.10, 11I0113N; &quot;אדי מרקס מענק מחקר&quot; ו&quot; ספורטה המחקר גרנט &quot;לקרדיולוגיה ילדים, UZ לובן, בלגיה (JC); המרכז לביולוגיה מולקולרית כלי דם נתמך על ידי Programmafinanciering KU Leuven (PF / 10/014), על ידי &quot;Onderzoeksacties Geconcentreerde&quot; (GOA 2009/13) מאוניברסיטת לובן ומענק מחקר מBoehringer Ingelheim-.

ניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי ועדת האתיקה של לובן KU. 1. חיידקים הכנה לזילופי מבחנה ובניסויים בVivo <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמשנו ס aureus מתח ניומן לכל הניסויים שתוארו בכתב היד הזה. ס aureus ניומן היה מאוחסן במוח לב עירוי (BHI) עם גליצרול 10% ב -80 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש לולאת סטרילי כדי לגרד את החיידקים קפואים ומלחסן בO 5 מיליליטר tryptic סויה מרק (TSB) / N ב 37 ° C (OD 600&gt; 3). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף את החיידקים על ידי צנטריפוגה (2,600 גרם, RT, 5 דקות) וresuspend גלולה חיידקים ב5 מיליליטר PBS (פוספט שנאגרו מלוח). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן פתרון 1 מ&quot;ג / מיליליטר 5 (6) אסתר -carboxy-והעמסת N-hydroxysuccinimidyl (carboxy-והעמסת) באתנול. לדלל את 1 מ&quot;ג הפתרון / מיליליטר carboxy-והעמסת 150 מיקרוגרם / מיליליטר במי כיתה מעבדה (למשל, המים MilliQ). להגן על הצינורות מן האורבנייר האלומיניום ולאחסן ב -20 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה החיידקים (2600 XG, RT, 5 דקות). Resuspend גלולה חיידקים ב800 μl PBS ולהוסיף 200 μl (ריכוז סופי של 30 מיקרוגרם / מיליליטר לניסויי זלוף) או 400 μl (ריכוז סופי 50 מיקרוגרם / מיליליטר לניסויי in vivo) של / מיליליטר פתרון carboxy-והעמסת 150 מיקרוגרם. להגן על הצינורות מן האור עם רדיד אלומיניום דגירה במשך 30 דקות ב RT על שייקר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר תיוג, בלוק עם 6% פתרון שור אלבומין בסרום (BSA) ב- PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל חיידקים באמצעות צפיפות אופטית (OD), OD 600 של 0.65 לניסויים במבחנה (המקביל ל 3 x 10 8 יחידות כ מושבה להרכיב (CFU) / מיליליטר לS. aureus) וOD 600 של 1.8 לin vivo ניסויים ( מתאים לכ 1 x 10 9 CFU / ml עבור ס aureus) ב- PBS. להגן על הצינורות מן האור עם רדיד אלומיניום ולהשאיר על קרח. </li></ol> 2. ניסויים במבחנה זלוף <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ציפוי של Coverslips הזכוכית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל גורם פון Willebrand (VWF) (Haemate P, 2,400 מיקרוגרם / מיליליטר ריכוז המלאי) במי כיתה מעבדה (Deionized מזוקק) לריכוז סופי של 50 מיקרוגרם / מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל קולגן בתמיסה איזוטונית גלוקוז (פתרון SKF, pH 2.7-2.9, כפי שסופקו על ידי היצרן) לריכוז סופי של 160 מיקרוגרם / מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> coverslips זכוכית מעיל (24 × 50 מ&quot;מ) עם VWF או קולגן על ידי הטלת 200 μl של הציפוי על parafilm ולמקם את coverslip על גבי אגל. אגל יתפשט על פני השטח של coverslip. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה coverslip במכל humidified במשך 4 שעות ב RT. רם בזהירות את coverslips מparafilm עם מחט קהה. הר coverslip בחלק התחתון של תא הזרימה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ציפוי של פלסטיק מחליקה עם תאי האנדותל <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תלושי פלסטיק מעיל(1-גם תא תרבית תאי PCA, Sarstedt, גרמניה) עם 1 מיליליטר של פתרון ג&#39;לטין 1% ב- PBS והדגירה של 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס. תאי זרע אנושיים וריד טבור אנדותל (HUVECs) בתלושי הפלסטיק מצופה ג&#39;לטין ולגדל אותם לconfluency 70-80%. הר להחליק הפלסטיק בחלק התחתון של תא הזרימה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניסוי זלוף הערה: סקירה סכמטי של במבחנה המודל זלוף מיוצגת באיור 1. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבצע במבחנה הידבקות חיידקים בזרם צלחת תא מיקרו מקביל במאמץ גזירת מינרית בין 2.5 דיין / 2 סנטימטר ו -20 דיין / 2 סנטימטר כדי לדמות תנאי זרימה פיסיולוגיים שונים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> (העיצוב בבית) תא זרימה מורכב מסגרת מתכת וחדר זלוף עשוי מפרספקס (פולי (מתיל) methacrylate (PMMA)). על ידי חיבורו למשאבת דיוק גבוה עירוי (PHD 2000 עירוי, הרווארד Apparatus, ארה&quot;ב), אנחנו יכולים ליצור תזרים raTES בין 0.0001 μl / דקה ו220.82 מיליליטר / דקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את הצינור לחלקו העליון של תא הזרימה ולהזריק בינוני בצינור. מניח בעדינות את החלק העליון של תא הזרימה על גבי החלק התחתון ולהרכיב את תא הזרימה. להיות זהיר, כדי למנוע בועות אוויר. הזרק 1 מיליליטר של מדיום דרך החדר כדי לוודא שהתא לא דולף ולהסיר פתרון ציפוי עודף. למנוע בועות אוויר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר על כרית חימום מבוקר תרמו על 37 מעלות צלזיוס במגש מיקרוסקופ. מכיוון שמדובר בהליך מסוף, אין צורך בהליכי asceptic קפדן. עושה חתך ליד וריד הצוואר, להסיר בעדינות בצד ימין של שריר צוואר הרחם ולבודד את וריד הצוואר מהרקמה הסובבת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר את משאבת העירוי ומיקרוסקופ פלואורסצנטי. הגדרות משאבת עירוי תלויות בקוטר המזרק ואת קצב הזרימה הרצוי (ראה סעיף 2.4). מעתה והלאה, לעבוד בחדר חשוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> VWF ציפוי: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממלאי מזרק עם חיידקים שכותרתו fluorescently ולחבר אותו לצינור הכניסה. למנוע בועות אוויר. התחל משאבת העירוי למשך 10 דקות. זמן העירוי תלוי בשיעור הגזירה וציפוי, חיידקים ובינוניים המשמש וצריך לייצג את המצב היציב של הידבקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 10 דקות, לשטוף את החיידקים מאוגד על ידי חיבור מזרק עם PBS לצינור הכניסה ומתחיל את משאבת העירוי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח לפחות 15 תמונות או סרטים במקומות שונים לאחר תהליך השטיפה. חיידקים הם קטנים וקשים שעלולים להתמקד ב. לפני במבחנה ניסוי הזרימה, מישור המוקד המתאים יכול להאסף על ידי הצבת ירידה של חיידקים שכותרתו fluorescently על coverslip והצבת coverslip בתא הזרימה. לאחר מכן, לחפש את מישור המוקד המתאים ולשמור את ההגדרות. הערה: במהלך הניסוי במבחנה הזרימה, לכידת התמונות במהלך שלב הכביסה (± 5 דקות אחרי ההתחלה) מבטיחה כי רקאות לחיידקים חסיד הוא נתפס. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קולגן ציפוי: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף VWF / מיליליטר 60 מיקרוגרם לחיידקים שכותרתו fluorescently רק לפני שמתחיל זלוף. ממלאי מזרק עם חיידקים שכותרתו fluorescently או חיידקים שכותרתו fluorescently בתוספת 60 מיקרוגרם VWF / מיליליטר ולחבר אותו לצינור הכניסה. למנוע בועות אוויר. חזור על שלבים 2.3.5.2 ל2.3.5.3 </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאי האנדותל: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את תאי האנדותל על ידי זלוף עם פתרון 0.1 מ&quot;מ של Ca 2 + -ionophore A23187 (פתרון מניות 10 מ&quot;מ מומס בsulfoxide דימתיל (DMSO)) בDMEM באותו שיעור הגזירה כזלוף החיידקים במשך 10 דקות על ידי זלוף עם 0.1 מ&quot;מ. חזור על שלבים 2.3.5.2 ל2.3.5.3. </li></ol></li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חישוב שיעור גזירה ולחץ גזירה כדלקמן. שיעור גזירה = 6Q / ש&quot;ש 2 איפה: ש: קצב זרימה במ&quot;ל / דקה, w: רוחב בס&quot;מ, שעות: גובה בס&quot;מ מאמץ גזירה (τ) = חולדה גזירהצמיגות לשעבר (μ) איפה μ: בינוני: 0.01 שניות dynes / 2 סנטימטר, כל דם x: 0.04 שניות dynes x / 2 סנטימטר </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח תמונה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשיג תמונות חיות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוך עם מצלמה בשחור לבן ולפתח באמצעות תוכנת הדמיה. השתמש בזמן חשיפה של 1.5 שניות. לצלם תמונות מרובות (לפחות 15) להפיץ באופן אקראי על פני המשטח המצופה של תא הזרימה ולשמור אותם בפורמט של הקובץ המתאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבצע ניתוח תמונה עם ImageJ. הפחת את הרקע כדי להסיר רקע רציף וחלק מהתמונה (תהליך - רקע Substract) ולהגדיר את הסף להגדרת ערכי סף תחתון ועליונים, פילוח תמונות גוניות אפורות לתכונות של עניין. למדוד את השטח מוגבל לסף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שקלו את הידבקות חיידקים, מתבטא בשטח ניאון, למשל, באמצעות תוכנת ניתוח סטטיסטית. השווה את הקבוצות באמצעות ANOVA חד-כיווני או לאמבחן T- של הסטודנטים זנב וו. דווח על כל הערכים כשגיאת ± סטנדרטי הממוצעת של הממוצע (SEM). שקול ערך p- של &lt;0.05 משמעותיים (* p &lt;0.05; ** p &lt;0.01; *** p &lt;0.001). </li></ol></li></ol> 3. בVivo mesenteric זלוף דגם <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנה / ניתוח של העכבר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצום עכבר הלילה שלפני הניסוי כדי להגביל את תנועת מעיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תן עכבר 6-8 בן שבוע (C57Bl / 6) שיכוך כאבים טרום ניתוחיים על ידי הזרקה תת עורית של עצירות (0.1 מ&quot;ג / קילוגרם משקל גוף (BW)) דקות 20-30 לפני הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר על ידי הזרקה תוך הצפק של קטמין (125 מ&quot;ג / קילוגרם BW) וxylazine (12.5 מ&quot;ג / קילוגרם BW). בדוק על ידי רפלקס דוושה. החל משחה וטרינר כדי למנוע יובש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר על כרית חימום מבוקר תרמו על 37 מעלות צלזיוס במגש מיקרוסקופ. מכיוון שמדובר בהליך מסוף, אין צורך בascepti קפדןנהלי ג. עושה חתך ליד וריד הצוואר, להסיר בעדינות בצד ימין של שריר צוואר הרחם ולבודד את וריד הצוואר מהרקמה הסובבת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס קטטר תוך ורידי צרפתי 2 לוריד הצוואר הימני לעירוי של חיידקים שכותרתו fluorescently או פתרונות אחרים. פתח את חלל הצפק דרך חתך בבטן קו האמצע ולהשתמש צמר גפן כדי להפיץ את mesenterium ולדמיין arteriolar mesenteric ומחזור venular. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר בצד ימין על צלחת שקופה ולאבטח את הצינורית עם קלטת. השתמש חבילה חמה כדי למנוע היפותרמיה. כדי למנוע התייבשות של הרקמות, שחרר 500 μl 0.9% NaCl במעיים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיקרוסקופ פלואורסצנטי של הידבקות חיידקים למחזור mesenteric <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעבוד בחדר חשוך. השתמש צמר גפן כדי לשתק את כלי השיט ולדמיין אותם תחת מיקרוסקופ הפוכה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מריחה להחיל 5 μl של o פתרון 10 מ&quot;מו A23187 -ionophore Ca 2 + מומס DMSO. לאחר 10 שניות, להזריק 100 μl כותרת חיידקים (ראה שלב 1) דרך קטטר וריד הצוואר. קח זמן לשגות תמונות. לאחר הניסוי סיים, להרדים את העכבר על פי הנחיות שאושרו מוסדיות. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח תמונה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשיג תמונות חיות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוך, שנתפס באמצעות מצלמה בשחור לבן ופותח באמצעות כל תוכנת הדמיה. החל זמן חשיפה אוטומטי ואופטימיזציה ניגוד מסוימת לציוד המשמש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לרכוש זמן לשגות תמונות באמצעות הכלי &#39;הרכישה&#39; בסרגל הכלים (רכישות רב ממדי - זמן) באמצעות 40 מחזורים של 1,000 תמונות / sec. שמור את התמונות בפורמט קובץ תמונה מתאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תמונות תהליך באמצעות תוכנת ניתוח ImageJ למדוד את השטח של אות ניאון לכל תמונה. הגדר את הסף להגדרת ערכי סף תחתון ועליונים, פילוח תמונות גוניות אפורות לתוך Features של עניין. זהה את האזור של עניין (כלי דם) ולמדוד את השטח מוגבל לסף והאזור של עניין. שקלו את הידבקות חיידקים, מתבטא בשטח ניאון באמצעות כל תוכנה סטטיסטית או גרפים. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Vanassche, T., Peetermans, W. E., Herregods, M. C., Herijgers, P., Verhamme, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anti-thrombotic+therapy+in+infective+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev+Cardiovasc+Ther%22%5BJournal%5D)">Anti-thrombotic therapy in infective endocarditis.</a> Expert Rev Cardiovasc Ther. 9 (9), 1203-1219 (2011).</li>
<li>Heying, R., van de Gevel, J., Que, Y. A., Moreillon, P., Beekhuizen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibronectin-binding+proteins+and+clumping+factor+A+in+Staphylococcus+aureus+experimental+endocarditis%3A+FnBPA+is+sufficient+to+activate+human+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Fibronectin-binding proteins and clumping factor A in Staphylococcus aureus experimental endocarditis: FnBPA is sufficient to activate human endothelial cells.</a> Thromb Haemost. 97 (4), 617-626 (2007).</li>
<li>Pappelbaum, K. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultralarge+von+Willebrand+factor+fibers+mediate+luminal+Staphylococcus+aureus+adhesion+to+an+intact+endothelial+cell+layer+under+shear+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Ultralarge von Willebrand factor fibers mediate luminal Staphylococcus aureus adhesion to an intact endothelial cell layer under shear stress.</a> Circulation. 128 (1), 50-59 (2013).</li>
<li>Claes, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion+of+Staphylococcus+aureus+to+the+vessel+wall+under+flow+is+mediated+by+von+Willebrand+factor%E2%80%93binding+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Adhesion of Staphylococcus aureus to the vessel wall under flow is mediated by von Willebrand factor–binding protein.</a> Blood. 124 (10), 1669-1976 (2014).</li>
<li>Thiene, G., Basso, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathology+and+pathogenesis+of+infective+endocarditis+in+native+heart+valves%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Pathol%22%5BJournal%5D)">Pathology and pathogenesis of infective endocarditis in native heart valves.</a> Cardiovasc Pathol. 15 (5), 256-263 (2006).</li>
<li>Sixma, J. J., Schiphorst, M. E., Verweij, C. L., Pannekoek, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+deletion+of+the+A1+domain+of+von+Willebrand+factor+on+its+binding+to+heparin%2C+collagen+and+platelets+in+the+presence+of+ristocetin%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Biochem%2FFEBS%22%5BJournal%5D)">Effect of deletion of the A1 domain of von Willebrand factor on its binding to heparin, collagen and platelets in the presence of ristocetin.</a> Eur J Biochem/FEBS. 196 (2), 369-375 (1991).</li>
<li>Theilmeier, G., Lenaerts, T., Remacle, C., Collen, D., Vermylen, J., Hoylaerts, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+activated+platelets+assist+THP-1+monocytoid%2Fendothelial+cell+interaction+under+shear+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Circulating activated platelets assist THP-1 monocytoid/endothelial cell interaction under shear stress.</a> Blood. 94 (8), 2725-2734 (1999).</li>
<li>Bjerketorp, J., Jacobsson, K., Frykberg, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+von+Willebrand+factor-binding+protein+%28vWbp%29+of+Staphylococcus+aureus+is+a+coagulase%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol+Lett%22%5BJournal%5D)">The von Willebrand factor-binding protein (vWbp) of Staphylococcus aureus is a coagulase.</a> FEMS Microbiol Lett. 234 (2), 309-314 (2004).</li>
<li>Friedrich, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staphylocoagulase+is+a+prototype+for+the+mechanism+of+cofactor-induced+zymogen+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Staphylocoagulase is a prototype for the mechanism of cofactor-induced zymogen activation.</a> Nature. 425 (6957), 535-539 (2003).</li>
<li>Vanassche, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+formation+by+staphylothrombin+facilitates+Staphylococcus+aureus-induced+platelet+aggregation%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Fibrin formation by staphylothrombin facilitates Staphylococcus aureus-induced platelet aggregation.</a> Thromb Haemost. 107 (6), 1107-1121 (2012).</li>
<li>Vanassche, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+staphylothrombin-mediated+fibrin+deposition+in+catheter-related+Staphylococcus+aureus+infections%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">The role of staphylothrombin-mediated fibrin deposition in catheter-related Staphylococcus aureus infections.</a> J Infect Dis. 208 (1), 92-100 (2013).</li>
<li>Buerkle, M. A., Lehrer, S., Sohn, H. Y., Conzen, P., Pohl, U., Krötz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+inhibition+of+cyclooxygenase-2+enhances+platelet+adhesion+in+hamster+arterioles+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Selective inhibition of cyclooxygenase-2 enhances platelet adhesion in hamster arterioles in vivo.</a> Circulation. 110 (14), 2053-2059 (2004).</li>
<li>Kim, K. H., Barazia, A., Cho, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+imaging+of+heterotypic+platelet-neutrophil+interactions+on+the+activated+endothelium+during+vascular+inflammation+and+thrombus+formation+in+live+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Real-time imaging of heterotypic platelet-neutrophil interactions on the activated endothelium during vascular inflammation and thrombus formation in live mice.</a> J Vis Exp. 2 (74), (2013).</li>
</ol>

יש המחברים אין לחשוף.

מאמץ גזירה הוא גורם מכריע להידבקות חיידקים מוקדם לקיר הכלי ועבור הדור הבא של endovascular או vegetations endocardial וזיהומים גרורתי 4,5. תארנו משלים במבחנה ובמודלי vivo ללמוד את הפתוגנזה של זיהומי endovascular תחת מאמץ גזירה פיסיולוגי. מודלים אלה אפשרו לנו לזהות חלבון פון Willebrand מחייב גורם (vWbp) כס המרכזי חלבון aureus לאינטראקציה תחת זרימה עם קיר כלי דם פגוע חושף VWF 4. זיהומי Endovascular, ואנדוקרדיטיס זיהומית בפרט, הם דאגה לא רק בגלל כשל איברים מושרה אלח דם ומוות, אלא גם בגלל סיבוכים מקומיים ומרוחקים (&quot;גרורתי&quot;). לגרום לאנדוקרדיטיס זיהומית וזיהומים גרורתי, חיידקים יש לדבוק בקיר הכלי ובכך לעמוד בלחץ הגזירה של זורם דם. רובמחקרים על חיידקי גורמי אלימות בוצעו בתנאים סטטיים. עם זאת, אינטראקציות המבוססות אלה עלולים שלא לעמוד בכוחות ומחקרי גזירה תחת תנאי זרימה יכולה לחשוף גורמים חדשים, בלתי מוכרים בעבר ביחסי גומלין חיידקים-מארח. שימוש בתא זרימת מיקרו-המקביל, אנחנו ואחרים הראינו את החשיבות של VWF להידבקות של כלי דם. תחת מאמץ גזירה, VWF הדרגה נפרשות מהמבנה הכדורי מנוחתו, וחושף את תחום A1 שאינטראקציה עם טסיות דם באמצעות קולט GPIB 6. תאי זרימה נעשו שימוש נרחב ללמוד לתפקד טסיות דם 7. למרבה הפלא, גם ס הידבקות aureus תחת זרימה דורשת VWF, ובפרט תחום A1 שנחשף על גזירה. זיהינו vWbp לתווך VWF מחייב. vWbp הוא coagulase שתורם לס aureus הפתופיזיולוגיה ידי הפעלת פרותרומבין של המארח. Staphylothrombin, מילulting המורכב של coagulase ופרותרומבין חיידקים, ממיר את פיברינוגן לפיברין 8,9 מסיס. המחקרים שלנו הראו כי vWbp לא רק להפעיל פרותרומבין, אבל מפעיל את ההיווצרות של אגרגטים חיידקי הפיברין-טסיות, אשר משפרים את ההידבקות לכלי דם תחת זרימת 4,10,11. במבחנה מודל תא הזרימה מאפשר ללמוד את השחקנים השונים בהידבקות חיידקים למרכיבים תאיים או מטריצה. ניתן ללמוד גורמים ארסי חיידקים באמצעות מוטציות או חיידקים מזיקים לבטא חלבוני משטח ספציפיים. לחלופין, ניתן להוסיף מעכבים תרופתיים או נוגדני חסימה למדיום בתא הזרימה. תפקידם של גורמי מארח כגון מרכיבים שונים של מטריקס ניתן ללמוד באמצעות coverslips עם ציפויים שונים. Coverslips גם יכול להיות מכוסה בתאי האנדותל, שמצב ההפעלה יכול להיות מווסת על ידי הוספה לגירוי ספציפי. APART מקיר כלי הדם, התרומה של תאי דם מארח וחלבוני פלזמה ניתן ללמוד על ידי הוספת הגורמים הללו למדיום זורם. לפיכך, תנאים שונים של מורכבות גוברים ניתן ללמוד בתנאים סטנדרטיים של זרימה למינרית לפענח את האינטראקציות המאפשרות לחיידקים להיצמד לקיר כלי in vivo. אינטראקציות שזוהו במודל במבחנה הם למדו לאחר מכן במודל חיה כדי לבדוק את הרלוונטיות שלהם באורגניזם מורכב. אחר במודלי vivo ללמוד אינטראקציות דינמיות תחת זרימה תוארו, כגון תא גב אוגר skinfold 12 ומודל Cremaster 13. לשם השוואה, מודל זלוף mesenteric המתואר כאן מציע מספר יתרונות בגלל קלות שימוש, האפשרות ללהשתנות לארח רקע גנטי של העכברים ולהעריך התערבויות תרופתיות. לסיכום, תאר דגמיםמציע את האפשרות ללמוד חלבונים לא רק של ס משטח aureus, אלא של רבים מיקרואורגניזמים אחרים ברקע מארח שונה, כדי להבין טוב יותר את הפתוגנזה של זיהומי כלי דם.

כדי ליצור זיהומים אנדווסקולריים, פתוגנים זקוקים למנגנון להיצמד לאנדותל, המצפה את דופן כלי הדם ואת פני השטח הפנימיים של הלב, וכדי להתמיד ולבסס זיהום למרות שהם נחשפים ללחץ הגזירה של דם הזורם במהירות. הפתוגן השכיח ביותר הגורם לזיהומים אנדווסקולריים מסכני חיים ואנדוקרדיטיס זיהומית הוא סטפילוקוקוס זהוב (S. aureus)1. 
מולקולות דבק חיידקיות שונות הקשורות למשטח מתווכות הידבקות לרקמה המארחת על ידי אינטראקציה עם רכיבי מטריצה חוץ-תאיים. MSCRAMMs אלה (רכיבי משטח מיקרוביאליים המזהים מולקולות מטריצת דבק) מזהים מולקולות כגון פיברונקטין, פיברינוגן, קולגן וגורם פון ווילברנד (VWF). MSCRAMMs הם גורמי אלימות חשובים של S. aureus ומעורבים בקולוניזציה ובפלישה של המארח2. רוב המחקרים על גורמי אלימות אלה בוצעו בתנאים סטטיים, ולכן ייתכן שלא ייצגו זיהומים אנושיים שבהם הידבקות ראשונית של החיידק מתרחשת בדם זורם. 
במקרה של זיהומים בזרם הדם, חיידקים צריכים להתגבר על כוחות הגזירה של הדם הזורם כדי להיצמד לדופן כלי הדם. לכן מודלים החוקרים את האינטראקציה בין חיידקים לאנדותל או תת-אנדותל בתנאי זרימה הם מעניינים במיוחד. 
מחקר שנערך לאחרונה הראה כי ההידבקות של S. aureus לכלי דם תחת לחץ גזירה מתווכת על ידי VWF3. VWF, חלבון הפועל במתח גזירה, משתחרר מתאי האנדותל עם ההפעלה. VWF במחזור נקשר לסיבי קולגן של המטריצה התת-אנדותלית החשופה. הקבוצה שלנו דיווחה כי חלבון קושר הגורם של פון ווילברנד (vWbp) של S. aureus הוא חיוני להדבקה בתיווך גזירה ל-VWF4. 
במאמר זה, אנו מציגים מודל תא זרימה במבחנה שבו ניתן להעריך הידבקות חיידקים לרכיבים שונים של המטריצה החוץ-תאית או לתאי אנדותל. כדי לאמת את הממצאים מנתוני מבחנה, פיתחנו מודל in vivo המדמיין ומכמת את האינטראקציה הישירה של חיידקים עם דופן כלי הדם והיווצרות פקקת טסיות דם חיידקים במחזור המזנטרי של עכברים, באמצעות מיקרוסקופ כלי דם תוך-חיוני בזמן אמת.

<table><tbody><tr><td>עירוי לב למוח (BHI)</td><td>BD פלסטיפאק&nbsp;</td><td>237500</td><td></td></tr><tr><td>מרק סויה טריפטי (TSB)</td> <td>אוקסואיד</td><td>CM0129</td><td></td></tr><tr><td>פוספט חוצץ מלח (PBS)</td> <td>Invitrogen</td><td>14190-169</td><td>D-PBS</td></tr><tr><td>5(6)-קרבוקסי-פלואורסצאין N-הידרוקסיסוקסימידיל אסטר&nbsp;</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>21878-25MG-F</td><td>תיוג פלואורסצנטי&nbsp;</td></tr><tr><td>סרום בקר אלבומין שבר V (BSA)</td><td>Roch</td><td>10 735 086 001</td><td></td></tr><tr><td>Haemate-P</td><td>CSL Behring</td><td>PL 15036/0010</td><td>VWF</td></tr><tr><td>Horm קולגן</td><td>Takeda</td><td>10500</td><td>קולגן</td></tr><tr><td>1-באר תאי תרבית תאי PCA</td><td>Sarstedt</td><td>94.6140.102</td><td>תעודות פלסטיק</td></tr><tr><td>Temgesic</td><td>Reckitt Benckiser</td><td>283716</td><td>bruprenorphine</td></tr><tr><td>אנסקטין (קטמין הידרוכלוריד 115 מ"ג/מ"ל (100 מ"ג/מ"ל קטמינום))</td><td>Eurovet</td><td>BE-V136516</td><td>קטמין</td></tr><tr><td>XYL-M 2% (קסילזין הידרוכלוריד 23.32 מ"ג/מ"ל (20 מ"ג/מ"ל קסילזין))</td><td>VMD Arendonk</td><td>BE-V170581</td><td>קסילזין</td></tr><tr><td>2 קטטר תוך-ורידי צרפתי ירוק</td><td>Portex</td><td>200/300/010</td><td></td></tr><tr><td>0.9% נתרן כלורי (NaCl)</td><td>Baxter Healthcare</td><td>W7124</td><td></td></tr><tr><td>כותנה ספוגיות</td><td>מוצר רפואי בינלאומי</td><td>300230</td><td></td></tr><tr><td>Ca2+-ionophore תמיסה A23187</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>C7522-10 MG</td><td></td></tr><tr><td>26 מד 1 מ"ל מזרק&nbsp; &nbsp;</td><td>BD פלסטיפאק&nbsp;</td><td></td><td></td>300013</tr><tr><td>מזרק 26 מד 1 מ"ל&nbsp; עם מחט</td><td>BD Plastipak&nbsp;</td><td>300015</td> צנטריפוגה <td>הזרקה תוך-פריטונאלית</td></tr><tr><td>5810-R</td><td>Eppendorf</td><td>5811 000.320</td><td></td></tr><tr><td>תלושי כיסוי זכוכית (24x50)</td> <td>VWR</td><td>BB02405A11</td><td>עובי מס, 1</td></tr><tr><td>PHD 2000 אינפוזיה</td><td>הרווארד מנגנון</td><td>702100</td><td>משאבת עירוי הרווארד דיוק גבוה</td></tr><tr><td>Axio-observer DI</td><td>Carl-Zeiss</td><td>מיקרוסקופ</td><td></td></tr> <tr><td>פלואורסצנטי הפוךImageJ</td><td>המכון הלאומי לניתוח בריאות</td><td>תוכנה</td><td></td></tr><tr><td>Graphpad Prism 5,0</td> תוכנת <td>ניתוח</td><td></td><td>תוכנה Graphpad</td></tr><tr><td>AxioCam MRm</td><td>Carl-Zeiss&nbsp;</td>מצלמה <td></td><td>בשחור-לבן</td></tr></tbody></table>

במבחנת in vivo המודל ללמוד הידבקות חיידקים לכלי השיט וול תנאי זרימה תחת

In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions

על מנת לגרום לזיהומי endovascular ואנדוקרדיטיס זיהומית, חיידקים צריכים להיות מסוגל לדבוק בקיר הכלי בעוד שנחשף ללחץ הגזירה של זורם דם. כדי לזהות את גורמי חיידקים ומארח שתורמים להידבקות של כלי דם של מיקרואורגניזמים, מודלים מתאימים שללמוד אינטראקציות אלה בתנאים פיסיולוגיים גזירה יש צורך. כאן, אנו מתארים במבחנה מודל תא זרימה המאפשר לחקור הידבקות חיידקים לרכיבים שונים של מטריקס או לתאי אנדותל, ומודל מיקרוסקופיה intravital שפותח כדי לחזות ישירות ההידבקות הראשונית של חיידקים למחזור splanchnic in vivo . שיטות אלה יכולים לשמש כדי לזהות את גורמי חיידקים ומארח נדרשים להידבקות של חיידקים תחת זרימה. אנו ממחישים את הרלוונטיות של מאמץ גזירה ואת התפקיד של גורם פון Willebrand להידבקות של Staphylococcus aureus באמצעות שתי במבחנה ובמודל vivo.

הידבקות aureus S. לVWF, מטריצת subendothelial ותאי האנדותל היא תופעה תלויה מאמץ גזירה כדי להדגיש את תפקידו של מאמץ גזירה באינטראקציה בין ס aureus וVWF, ביצעו זילופים על VWF coverslips המצופה בשיעורי גזירה שונים (סקירה סכמטי של במבחנה המודל זלוף ניתן באיור 1. הדבקה של S. aureus לVWF גדלה עם הגדלת שיעורי גזירה מ 250 שניות -1 2,000 שניות -1 (איור 2), מצביעים על כך שכוחות גזירה גבוהה לא לעכב אבל לחזק את ההידבקות של חיידקים לVWF. על מנת לחקור את התרומה של VWF להידבקות חיידקים לקולגן, המרכיב העיקרי של מטריצת subendothelial, אנחנו perfused שכותרתו fluorescently ס aureus על קולגן בנוכחות או עדר של VWF. בהעדר VWF, ההידבקות של סureus לקולגן ירד עם עליית שיעורי גזירה. עם זאת, כאשר VWF היה נוכח במדיום, ההידבקות של ס aureus גדל עם עלייה בשיעורי גזירה (איור 3). במבחנה זרימת המודל גם מאפשר לנו לבחון את ההידבקות של חיידקים לתאי אנדותל בזרימה. אנו perfused HUVECs עם כותרתו fluorescently ס aureus בשיעורי גזירה מ -500 עד 2,000 שניות -1. בהם מצויינים, HUVECs הופעלו עם Ca 2 + -ionophore, לגרום לשחרורו של VWF. הפעלת האנדותל תא ושחרור VWF לאחר מכן, הידבקות מוגברת של ס aureus (איור 4 א), שנוצר דפוסים &quot;כמו מחרוזת-&quot; טיפוסיים שהכותרת שלו fluorescently אשכולות חיידקים מיושרים בכיוון של כוח הגזירה (איור 4), המצביע על הכריכה של חיידקים לאורך מולקולת VWF-נמתח ליניארי. ראשוני in vivoהידבקות חיידקים בעורקי splanchnic מתווכת על ידי VWF מאז ש &#39; aureus הוא מסוגל לדבוק VWF, השתמשנו עכברי wildtype (Vwf + / +) וVWF לקוי עכברים (Vwf - / -) לחקור הידבקות חיידקים לדופן כלי הדם מופעל in vivo. videomicroscopy של ורידי splanchnic בזמן אמת אפשר להדמיה vivo של מחזורי שכותרתו fluorescently ס aureus (סקירה סכמטי של מודל in vivo זלוף מיוצג באיור 5). לאחר הפעלה תרופתית של האנדותל על ידי Ca 2 + -ionophore, צפינו הצטברות מקומית מהירה של חיידקים ומצרפים של חיידקים בודדים לקיר הכלי של עכברי WT (וידאו משלימה 1 ו -2). כמעט אין הידבקות של חיידקים נצפתה על קיר הכלי מופעל של -deficie Vwfעכברי NT (משלימה וידאו 3) בהשוואה להידבקות בעכברי WT (איור 6). היעדר VWF מקטין את יכולתו של ס &#39; aureus לדבוק בקיר הכלי הופעל. <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig1.jpg" /> איור 1. ייצוג סכמטי של במבחנה זרימת המודל. במבחנה זרימת המודל הוא מודל רב תכליתי, המאפשר חקר מנגנונים תלויים גזירה שונות כגון הידבקות חיידקים למטריצת subendothelial אלא גם פקיק היווצרות. תא זרימת המייקר מקביל מושם על coverslip (פלסטיק או זכוכית) עם ציפויים שונים של חלבונים ותאי האנדותל. ההידבקות של חיידקים שונים (כתום ונקודות אפורות) ניתן לנתח, ואת ההשפעה של הנוכחות של חלבוני פלזמה, טסיות דם וכל דם ניתן להעריך. סמני ניאון לטסיות דם (אליפסות כחולות) או fibrinogen (מחרוזות כחולות) יכול לשמש בשילוב עם מעכבים שונים (אליפסות שחורות) להבחין גורמי חיידקים ומארח. נציג תמונות של הידבקות חיידקים של ס aureus לציפוי קולגן בנוכחות (התחתונה) או היעדר (למעלה) של VWF מוצג (סרגל קנה מידה הוא 100 מיקרומטר). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/52862fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig2.jpg" /> איור 2. הדבקה של ס aureus לעליות VWF עם הגדלת שיעורי גזירה. תא זרימת זלוף מיקרו-במקביל על VWF המצופה (50 מיקרוגרם / מיליליטר) עם כותרתו fluorescently ס aureus ניומן בשיעורי גזירה של 250 עד 2,000 שניות -1 (סעיף -1) במדיום (n&gt; 5). כל התוצאות באות לידי ביטוי כממוצע ± SEM. * P &lt;0.05, ** p &lt;0.01. <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig3.jpg" /> איור 3. הדבקה של ס aureus לsubendothelium הוא גזירה וVWF תלוי. תא זרימת זלוף מיקרו-במקביל על קולגן המצופה (160 מיקרוגרם / מיליליטר) עם כותרתו fluorescently ס aureus ניומן בשיעורי גזירה של 250 עד 2,000 שניות -1 במדיום (n&gt; 5). VWF (60 מיקרוגרם / מיליליטר) היה נוכח במדיום בהם מצויינים. כל התוצאות באות לידי ביטוי כממוצע ± SEM. ** P &lt;0.01. <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig4.jpg" /> איור 4. הדבקה של ס aureus לתאי האנדותל הוא מופעלים תא זרימת זלוף מיקרו-במקביל גזירה תלויה. על תאי האנדותל. (א) בתאי אנדותל וריד טבור אדם הופעלו עם Ca 2 + -ionophore23,187 (0.1 מ&quot;מ) ואחריו זלוף 10 דקות שכותרת שלו fluorescently ס aureus ניומן בשיעורי גזירה של 500 עד 2,000 שניות -1 במדיום (n&gt; 5). כל התוצאות באות לידי ביטוי כממוצע ± SEM. * P &lt;0.05. תמונה (ב) לזלוף תא זרימת מייקר מקביל על HUVECs מופעל עם ס &#39; aureus בשיעור גזירה של 1,000 שניות -2. ס aureus יוצר מחרוזות באורך 200 מיקרון ±, המצביע על הידבקות לmultimers VWF (סרגל קנה מידה הוא 100 מיקרומטר). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/52862fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig5.jpg" /> איור 5. סקירה סכמטי של מודל זלוף mesenteric in vivo. קטטר וריד הצוואר ימני (קו צהוב) מוכנס לניהול פלואורידחיידקי שכותרת escently (נקודות כתומות), הרדמה נוספת או רכיבים אחרים כגון מעכבים ונוגדני תרופות. חלל הצפק נפתח וmesenterium משתרע לדמיין את כלי דם (ורידים ועורקים) תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי. לאחר הפעלה תרופתית של האנדותל ידי -ionophore Ca 2 +, אשר גורם לשחרור של VWF, ניתן להזריק חיידקים דרך קטטר וריד הצוואר. מיקרוסקופ וידאו תוך-בזמן אמת מאפשר ההדמיה in vivo של מחזורי חיידקים שכותרתו fluorescently והיווצרות חיידקי thrombi-טסיות וכתוצאה מכך. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/52862fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 6" src="/files/ftp_upload/52862/52862fig6.jpg" /> איור 6. ההידבקות הראשונית של ס aureus<html> להאנדותל מופעל in vivo מתווך על ידי VWF בvivo ורידי מודל זלוף mesenteric עם C57Bl / 6 Vwf + / + וC57Bl / 6 Vwf -. / - עכברים. הידבקות כותרת של fluorescently ס aureus לקיר הכלי מופעל באופן מקומי הוא נמוך באופן משמעותי בVwf - / - עכברים. כל התוצאות באות לידי ביטוי כממוצע ± SEM. *** P &lt;0.001, n&gt; 7. <img alt="איור 1 וידאו" src="/files/ftp_upload/52862/52862figV1.jpg" /> וידאו 1: הידבקותו של ס &#39;בזמן אמת aureus לקיר כלי מופעל בVwf + / + עכברים. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/Video1JorienClaes.mov" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בסרטון זה.</a> FO: לשמור-together.within עמודים = &quot;תמיד&quot;&gt; <img alt="וידאו איור 2" src="/files/ftp_upload/52862/52862figV2.jpg" /> וידאו 2: היווצרות המצרפי בזמן אמת ואמבוליזציה של ס aureus בVwf + / + עכברים. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/Video2JorienClaes.mov" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בסרטון זה.</a> <img alt="איור 3 וידאו" src="/files/ftp_upload/52862/52862figV3.jpg" /> וידאו 3: הידבקותו של ס &#39;בזמן אמת aureus לקיר הופעל כלי בVwf - / -. עכברים בvivo מודל זלוף mesenteric עם Vwf + / + וVwf - / - עכברים. חמש μl של -ionophore Ca 2 + (10 מ&quot;מ) היה appliאד לאזור של מיטת כלי הדם דמיינה. השעיה של ס &#39;שכותרתו קרבוקסי-והעמסת aureus הוזרק דרך קטטר וריד הצוואר. מחזור mesenteric היה דמיין תחת מיקרוסקופ הפוכה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52862/Video3JorienClaes.mov" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בסרטון זה.</a>

כדי לחקור את האינטראקציה של חיידקים עם כלי הדם תחת לחץ גזירה, מתוארים תא זרימה ומודל מיקרוסקופיה תוך-חיונית מזנטרית in vivo המאפשרים לנתח את גורמי החיידקים והמארח התורמים להידבקות כלי הדם.

In order to cause endovascular infections and infective endocarditis, bacteria need to be able to adhere to the vessel wall while being exposed to the ...

המטרה הכוללת של הניסוי הבא היא לחקור את האינטראקציה בין חיידקים לבין האנדותל והתת-אנדותל תחת מאמץ גזירה. דבר זה מושג באמצעות סימון פלואורסצנטי של חיידקים כדי להדמיותם בזמן אמת באמצעות מיקרוסקופיית וידאו כשלב שני. תא זרימה (flow chamber) במערכת in vitro משמש לבחינת הגורמים השונים המעורבים בהיצמדות של חיידקים זורמים לרכיבים תאיים או לרכיבי המטריקס.בשלב הבא, האינטראקציות שזוהו במודל ה-in vitro נחקרות במודל perfusion מזנטרי in vivo כדי לבחון את הרלוונטיות שלהן באורגניזם מורכב; התוצאות מראות כי staphylococcus reus מסוגל להיצמד לתאי אנדותל מופעלים ולסאב-אנדותל תחת מאמץ גזירה (shear stress). היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות הוא שהיא כוללת מודל in vitro ומודל in vivo, המשלימים זה את זה בחקר הפתוגנזה של זיהומים אנדו-וסקולריים תחת מאמץ גזירה. שיטות אלו יכולות לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בתחום המחלות הזיהומיות והביולוגיה הווסקולרית, כגון האופן שבו אנדוקרדיטיס זיהומית וזיהומים מטאסטטיים מתבססים תחת מאמץ גזירה פיזיולוגי. ההליך מודגם על ידי be Malin, טכנאי המתמחה בעבודת בעלי חיים מהמעבדה שלנו. התחילו בהכנת הצבע הפלואורסצנטי המשמש למעקב אחר החיידקים.הוסיפו 150 µL מתמיסת stock של carboxy fluorescent ל-850 µL של מים בדרגת מעבדה וערבבו. אחסנו את התמיסה מוגנת מאור בטמפרטורה של 20°C- עד למועד השימוש. לאחר מכן, בצעו pellet לתרבית של 5 mL של *S. reus*.חיידקים שגודלו למשך לילה במצע tryptic soy broth נשטפים פעם אחת ב-PBS ולאחר מכן תלושב. למשקע החדש ב-800 microliters של PBS, יש להוסיף 200 microliters של תמיסת הצבע לתאים התלושבים עבור ניסויי פרפוזיה in vitro, או 400 microliters של תמיסת הצבע. עבור ניסויי in vivo, יש לכסות את המבחנות בנייר אלומיניום כדי למנוע דהייה פוטוכימית (photobleaching) של הצבע ולהדגיר במנער למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.בשלב הבא, הוסף לתערובת תמיסת bovine serum albumin בריכוז 6% ב-PBS כדי לחסום קישור לא ספציפי. בדוק את ריכוז התאים באמצעות ציטומטריה אופטית ומטב את החיידקים ב-PBS לריכוזים שונים בהתאם ליישומם. לאחר הדילול, הגן על המבחנות מפני אור והנח אותן על קרח.דללו את גורם von Vand במים בדרגת מעבדה לריכוז סופי של 50 µg/mL. כמו כן, דללו קולגן בתמיסת גלוקוז איזוטונית לריכוז סופי של 160 µg/mL. לאחר מכן, טפטפו 200 µL מכל ציפוי על רצועת פאראפורם.הנח את לביבות הכיסוי מעל הטיפות כדי לצפ them בחלבונים. דגור את לביבות הכיסוי במיכל לח למשך ארבע שעות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, הרם בזהירות את לביבות הכיסוי מהפאראפורם בעזרת מחט קהה והרכב את לביבת הכיסוי בחלק התחתון של תא זרימה (flow chamber) לניסויים עם תאי אנדותל; עבור לביבות פלסטיק, צפה אותן ב-1 mL של תמיסת ג'לטין בריכוז 1% ב-PBS ודגור אותן למשך 30 דקות ב-37 °C.לאחר מכן, זרע תאי אנדותל של וריד טביליות אנושי (human umbilical vein endothelial cells) על רצועות הפלסטיק המצופות ג'לטין, וגדל אותם עד להגעה ל-70 עד 80% confluence. התקן את כיסוי הזכוכית המצופה בחלבון או את רצועת הפלסטיק המצופה בתאי אנדותל בחלקו התחתון של תא הזרימה. לאחר מכן, חבר את צינורות הכניסה והיציאה לחלקו העליון של תא הזרימה, וחבר את צינור היציאה למכל פסולת.הניחו בעדינות את החלק העליון של תא הזרימה על החלק התחתון והרכיבו את תא הזרימה. תוך הימנעות מהיווצרות בועות אוויר, הזרימו 1 mL של מצע דרך התא כדי לוודא שאין דליפות ולהסיר שאריות של תמיסת הציפוי.בשלב הבא, הגדירו את משאבת ההזרקה עבור מזרק של 1 ml כך שהזרימה תהיה בקצב של 75 µL לדקה. בעבודה בחדר חשוך, מלאו מזרק של 1 ml ב-1 ml של חיידקים מסומנים פלואורסצנטית והניחו אותו במשאבת ההזרקה. חברו את מוצא המזרק לכניסה של תא הזרימה.תוך הקפדה על מניעת בועות אוויר, הפעילו את משאבת ההזרקה למשך 10 דקות בקצב של 75 µL לדקה. לאחר 10 דקות, הסירו את המזרק הראשון וחברו למבוב הכניסה מזרק של 1 mL המכיל PBS או DMEM. הפעילו את משאבת ההזרקה ושטפו במשך 10 דקות כדי להסיר חיידקים שאינם קשורים.לאחר השטיפה, השאר את משאבת ההזרקה פועלת ודגום לפחות 15 תמונות בשחור-לבן בזמן חשיפה של 1.5 שניות במיקומים אקראיים, הפזורים על פני השטח המצופים של תא הזרימה. באמצעות תוכנה לניתוח תמונות כגון Image J, בצע חיסור רקע (Subtract background) כדי להסיר רקעים חלקים ורציפים מהתמונה, והגדר סף (threshold) לקביעת ערכי הסף התחתונים והעליונים, המבצעים סגמנטציה של תמונות גווני האפור למאפיינים הרלוונטיים. לאחר מכן, מדוד את השטח המוגבל לסף שנוצר בשלב זה, ושמור ערך זה, המכונה השטח הפלואורסצנטי, עבור כל דגימה.יש לצום עכברים בני שבוע עד שמונה שבועות בלילה שלפני הניסוי כדי להפחית את תדירות היציאות. ביום הניסוי, התחל בהזרקת 0.1 milligrams של buprenorphine לכל kilogram של משקל גוף כמשכך כאבים. לאחר מכן, הרדם את העכבר ומריח משחה בעיניו.הנח את העכבר על פד חימום מבוקר טמפרטורה תחת מיקרוסקופ הדיסקציה ובדוק כי העכבר אינו מראה רפלקס של פטלה. בצע חתך של סנטימטר אחד במקביל לווריד הג'וגולרי (Jugular vein). הסר את הצד הימני של שריר הצוואר ולאחר מכן בודד את הווריד הג'וגולרי מהרקמה שסביבו.החדירו קטטר תוורידי במידה של 2 French לווריד הג'וגולרי הימני וקבעו אותו במקומו באמצעות תפרים. לאחר מכן, בצעו חתך בקו האמצע של הבטן כדי לפתוח את חלל הפריטונאום. הניחו את העכבר על צדו הימני על פלטה שקופה וקבעו את הקנולה באמצעות סרט הדבקה.משכו בעדינות את המעיים החוצה באמצעות מקלוני צמר גפן ופרסו את העוטיקון (mesenterium), כדי להמחיש את זרימת הדם בעורקי ובנימי העוטיקון. הניחו שקית חימום על העכבר כדי למנוע היפותרמיה, וטפטפו 500 µL של 0.9%NACL על המעיים מדי 30 דקות כדי למנוע התייבשות של הרקמה.השתמשו במקלוני צמר כדי לקבע את כלי הדם ולהדמיות אותם תחת מיקרוסקופ הפוך. לאחר מכן, גרשו באופן טופיקלי חמישה µL של תמיסה בריכוז 10 mM של calcium ionophore המומסת ב-DMSO. פעולה זו תפעיל את שחרור ה-Von Willebrand factor מהתאים האנדותלליים בכלי הדם.לאחר 10 שניות, הזרק 100 µL של חיידקים מסומנים פלואורסצנטית דרך הקטטר הוורידי הג'וגולרי. בשלב זה, התחל בצילום time-lapse; רכוש את תמונות ה-time-lapse באמצעות כלי הרכישה בסרגל הכלים, תוך שימוש ב-40 מחזורים של 1000 תמונות לשנייה. עם השלמת רכישת התמונות, השמד את העכבר בהתאם להנחיות המוסדיות.שמרו את התמונות בפורמט קובץ תמונות מתאים, ולאחר מכן עבדו את התמונות באמצעות תוכנת ניתוח image J כפי שתואר בעבר כדי להדגיש את תפקיד מאמץ הגזירה בהיצמדות חיידקים; ביצועי פרפוזיות של staphylococcus aureus בוצעו בקצבי גזירה שונים על לוחות כיסוי מצופים ב-Von Vbr factor. ככל שקצבי הגזירה עולים, כך עולה גם היצמדות החיידקים, מה שמעיד על כך שכוחות גזירה גבוהים אינם מעכבים, אלא מחזקים את היצמדות החיידקים לחלבון. בהיעדר Von Vand factor, היצמדות של staphylococcus aureus לקולגן פחתה עם עליית קצבי הגזירה.עם זאת, כאשר גורם Von Willebrand היה נוכח במצע, הדבקות החיידקים עלתה עם עליית קצבי הגזירה; תאי אנדותל שהופעלו באמצעות calcium ionophore כדי לשחרר גורם Von Willebrand הראו דבקות חיידקית משמעותית יותר מאשר תאים שלא הופעלו. בנוסף, החיידקים יצרו דפוסים טיפוסיים דמויי חוטים של צבירי חיידקים המסומנים פלואורסצנטית, שהיו מיושרים עם כיוון כוח הגזירה, דבר המצביע על קישור של חיידקים לאורך מולקולת VWF מתוחה וליניארית. כדי לבחון את השפעת גורם Von Willebrand in vivo, הופעלו תאי אנדותל של מחזור הדם המזנטרי לשחרור גורם Von Willebrand, ולאחר מכן הוחדרו תאי חיידקים המסומנים פלואורסצנטית לזרם הדם. החיידקים נדבקו באופן מקומי לדופן כלי הדם המופעלת ויצרו אגרגטים.לאחר צפייה בסרטון זה, תרכשו הבנה טובה יותר לגבי אופן חקירת האינטראקציה של חיידקים עם דופן כלי הדם תחת מאמץ גזירה (shear stress), באמצעות סימון פלואורסצנטי של החיידקים והדמייתם הן בתא זרימה in vitro והן במודל perfusion מסנteriקה intra vital in vivo. טכניקה זו סוללת את הדרך עבור חוקרים בתחום הזיהומים הקרדיווסקולריים לבחון את האינטראקציה בין פתוגנים לדופן כלי הדם באנדוקרדיטיס זיהומית ובזיהומים מטאסטטיים.

in-vitro-vivo-model-to-study-bacterial-adhesion-to-vessel-wall-under

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

אימונולוגיה וזיהומים

זוהי שיטה לדמיין הידבקות ליקוציט כדי האנדותל של כלי בלחץ שנקטפו. הטכניקה מאפשרת ללמוד הידבקות כלי דם תחת זרם גזירה עם לחצים שונים intraluminal עד 200 מ"מ כספית ובכך לחקות-ing התנאים pathophysiological של לחץ דם גבוה.

הדמיה הדבקה ליקוציט כדי האנדותל דם בלחץ גבוה Intraluminal

בתהליך ההדבקה, צעד מפתח הוא הדבקה של פתוגנים עם תאים המארח. ברוב המקרים שלב זה הידבקות מתרחשת בנוכחות הלחץ המכני שנוצר על ידי זרימת נוזל. אנו מתארים טכניקה מציגה הלחץ גזירה כפרמטר חשוב במחקר של הידבקות חיידקים.

היכרות עם מתח שאר בחקר הדבקה חיידקית

מקור: דיטקובסקי, ב. ואחרים. מודל Invitro של מערכת פרפוזיה מקבילה לחקר היצמדות חיידקית לרקמות השתלות. J. Vis. Exp. (2019).סרטון זה מדגים את השיטה לשימוש בתא זרימה מקביל לפרפיוז חיידקים מסומנים פלואורסצנטי מעל רקמות השתל הוסקולרי, ומאפשר ניתוח מבוקר של הידבקות חיידקית ופתוגנזה מוקדמת בתנאי זרימה גזירה.

מודל זרימת הלוחה המקבילה במבחנה לחקר הידבקות חיידקית בביופסיית רקמה

מקור: קלטאיוד ארויו, מ., ואחרים. הערכת הכדאיות של קונסורציום חיידקים סינתטי בממשק המארח-מיקרוב המעי במבחנה. J. Vis. Exp. (2018).סרטון זה מדגים מודל של מארח-מיקרוב במעי במבחנה לחקר חיוניות חיידקים. קו-קולטורה של תאי Caco-2 ו-HT29-MTX מדוגרת עם חיידקים שעברו טיפול מוקדם בתנאי עיכול מדומים. שלמות מחסום האפיתל מוערכת באמצעות התנגדות חשמלית טרנס-אפיתליאלית, וחלקים מהתווך, הריר הממס, הליזאט התא ושאריות התא נאספים לניתוח במורד הזרם.

מודל המעי במבחנה להערכת הידבקות ואינטרנליזציה של חיידקים

Source: Claes, J., et al, In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions. J. Vis. Exp. (2015).This video demonstrates a method for studying host-pathogen interactions using a micro-parallel plate flow chamber seeded with human primary endothelial cells. Following endothelial cell activation by an ionophore and perfusion with fluorescently labeled bacteria, the cells release von Willebrand factor (VWF), which binds bacterial adhesins under shear...

Micro-Parallel Plate Flow Chamber Model for Studying Bacterial Adhesion to Human Endothelial Cells

Source: Claes, J., et al, In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions. J. Vis. Exp. (2015).This video demonstrates an in vivo method for analyzing shear-dependent bacterial adhesion in a live mouse model. Following surgical preparation and catheterization, the mesenteric vasculature is exposed for real-time imaging under a fluorescence microscope. Perfusion with an ionophore and fluorescently labeled bacteria reveals how shear stress triggers...

An In Vivo Model to Study Shear-Dependent Bacterial Adhesion

אנו מדווחים על שיטה במבחנה המאפשרת לכמת את המספר האמיתי של תאי דבק בתוך חד-שכבת תא אנדותל.

כימות של דביקות תא האנדותל<em&gt; במבחנה</em

לויקוציטים בלהיטות אינטראקציה עם טסיות הדם והתאים כלי הדם לאחר פציעה קיר הספינה או בעת דלקת. כאן, אנו מתארים assay מבוסס זרימה שכבתית פשוטה כדי לאפיין את המנגנונים המולקולריים העומדים בבסיס האינטראקציות בין לויקוציטים ושותפים הסלולר שלהם.

מבחני מבוסס זרימה שכבתית לחקור ליקוציט גיוס על תאים בתרבית וסקולרית, טסיות חסיד

אנו מתארים שבאתר מעוצב במבחנה זרימה קאמרית מודל, אשר מאפשר החקירה של חיידקי ההקפדה להשתיל רקמות.

מודל במבחנה של מערכת מקבילה-Plate זלוף ללמוד חיידקי ההקפדה להשתיל רקמות

אנו מציגים מודל מחלת כלי דם במבחנה לחקור אינטראקציות דם שלם עם אנדותל נגזר המטופל. מערכת זו מאפשרת לחקור תכונות טרומבוגניות של תאי אנדותל ראשוניים בנסיבות שונות. השיטה מתאימה במיוחד להעריך את הטיפול situ thrombogenicity ונוגדי קרישה בשלבים שונים של קרישה.

במודל מחלה מיקרופלוידיקית במבחנה ללמוד אינטראקציות דם-אנדותל שלם ודינמיקת קריש דם בזמן אמת

חקור מנגנוני הידבקות חיידקים לכלי דם תחת מתח גזירה פיזיולוגי באמצעות מודלים של in vitro ו-in vivo. שיטה זו מאפשרת ויזואליזציה בזמן אמת של Staphylococcus aureus adhering לתאי אנדותל פעילים.

במבחנת in vivo המודל ללמוד הידבקות חיידקים לכלי השיט וול תנאי זרימה תחת

גלה סרטונים נוספים