Name: שימוש קו ורידים מרכזי עבור נוזלים, תרופות ומנהל מזין בתוך עכבר דגם של מחלות קשות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-02T14:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 17 s
Description: למדו ליצור מודל עכברים עם קטטר ורידי מרכזי לחקר מחלות קשות ממושכות. השיטה משלבת נקיפת צקום עם מתן נוזלים, תרופות ומזון תוך שיקוף תנאי טיפול נמרץ אנושיים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

GVdB, באמצעות אוניברסיטת לובן (KU Leuven), מקבל תמיכה במחקר מבני ארוך טווח מתוכנית מתושלם הממומנת על ידי הממשלה הפלמית (METH08/07) ומחזיק במענק מתקדם של מועצת המחקר האירופית AdvG-2012-321670 מתוכנית הרעיונות של תוכנית המסגרת השביעית של האיחוד האירופי. SET קיבלה מלגת עוזר מחקר של קרן המחקר-פלנדריה (FWO).

הפרוטוקול אושר על ידי האוניברסיטה של ​​מועצה לביקורת אתית לובן למחקר בבעלי החיים. 1. הכנת הקו ורידי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את קצה הצנתר ורידי ידי טבילה החלק האמצעי במהירות של 60 ס&quot;מ microrenathane (MRE) צינורות ב חם (&gt; 220 ° C) שמן שומשום. לאחר מכן למתוח את החלק האמצעי של הצינור כדי לייצר בקוטר צר (קוטר חיצוני (OD) &lt;0.5 מ&quot;מ) על ידי הזזת הקצוות בעדינות של צינורות אחד מהשני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בלהב סכין המנתחים כדי לחתוך את צינורות לשני חלקים של 30 ס&quot;מ כל אחת (ראה איור 1, טבלה 1). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את צינורות MRE כדי PE10 צינורות פוליאתילן באמצעות מחבר PE50 פוליאתילן ולהתחבר בצינור PE10 זה החלק התחתון של המסתובב. חבר את החלק העליון של המסתובב כדי בצינור PE10, ולחבר את זה מחט בדל Luer עם מחבר צינורות PE50 לפי איור 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל חזק מהיר acting דבק דבק לכל החיבורים ולבדוק את הקטטר עבור דליפה ידי שטיפה עם אוויר. גז לעקר את הקטטר לפני השימוש. </li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/55553/55553fig1.jpg" /> איור 1: בניית קו ורידי. קווי ורידים מוכנים על ידי מתיחת צינורות MRE לקוטר קטן וחיבורו באמצעות צינורות פוליאתילן למכשיר מסתובב מכרסם. ראה טבלה 1 לקבלת הוראות באורכים של חלקים שונים. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55553/55553fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> אגדה </td><td> אורך </td><td> כֶּרֶך </td></tr><tr><td> 1) תלוש Luer מחט 22G </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 2) PE50 - פוליאתילן 0.023&quot; x 0.038&quot; </td><td> 5 ס&quot;מ </td><td> 13 μL </td></tr><tr><td> 3) PE10 - פוליאתילן 0.011&quot; x 0.024” </td><td> 50 ס&quot;מ </td><td> 30 μL </td></tr><tr><td> 4) מכרסמים סיבוב 20 G </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 5) PE-10 </td><td> 15 ס&quot;מ </td><td> 9 μL </td></tr><tr><td> 6) PE-50 (מחבר) </td><td> 5 ס&quot;מ </td><td> 13 μL </td></tr><tr><td> 7) MRE025 טיפ נמתח microrenathane 0.025&quot; x 0.012&quot; </td><td> 30 ס&quot;מ </td><td> 27 μL </td></tr><tr><td> סכום כולל </td><td> 105 ס&quot;מ </td><td> 92 μL </td></tr></tbody></table> טבלה 1: בניית ורידי הקו. טבלה זו כוללת אגדה עבור איור 1. 2. הרדמה וטיפול ניתוח Pre <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמשו הישן 24 שבועות זכר C57BL / 6J (27 - 32 גרם). הערה: אנו משתמשים בעכברים 24-בן כמה שבועות (מבוגר בוגר) כמו גיל זה מתאים יותר עם הגיל הממוצע של החולים לטיפול נמרץ. אנו משתמשים עכברי זכרים בלבד, כדי למנוע את ההשפעה המחזורית של אסטרוגנים. הטכניקה יכולה לשמש גם על בעלי חיים צעירים (נבדקו בעכברים ישנים 16 שבועות) ונקבות, אם עדיף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעקר את כל מכשירי הניתוח לפני השימוש. שטוף את צנתר ורידי סטרילית תוצרת הבית עם מלח כדי להסיר בועות אוויר כדי לבדוק patency ו דליפות פוטנציאליות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים חוט מתכת (קוטר 0.8 מ&quot;מ) באורך 80 ס&quot;מ, להכפיל אותו על ידי קיפול ולעשות לולאה. עופרת 3 פנינים על החוט הכפיל את הלולאה. צרף את הקטטר אל חוט מתכת על ידי המנחה את קצה הצנתר דרך 3 הפנינים. הערה: תיל מצורף מתכת הכרחי עבור סיבוב של המסתובב שאליו קטטר מחובר. ככזה, העכבר יכול לנוע בחופשיות, מבלי לחסום את הקו ורידי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את מ &#39;על יד הבית על ידי זריקה intraperitoneal (IP) של תערובת של 0.03 קטמין מ&quot;ל (100 מ&quot;ג / ק&quot;ג) ו 0.02 מ&quot;ל xylazine (13 מ&quot;ג / ק&quot;ג). ודא ההרדמה כי היא נאותה על ידי בדיקת העדר רפלקסים. משוך בעדינות את לשון העכבר בחוץ עם מלקחיים כדי למנוע מחנק על ידי בליעה של הלשון. הערה: אם לאחר 10 דקות, העכבר עדיין מנסה למשוך הגפיים שלה לתת קטמין נוסף כמו בולוס 0.01 מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגלח את אזור הניתוח כולל הבטן, בצד הגחון של הצוואר (משולש בין הסנטר, עצם החזה ואת עצם הבריח), ובין השכמות בבסיס הראש). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר שכיבה על כרית חימום מחומם מראש, לחטא את העור עם אתנול 70% ולהחיל כמות קטנה של חומר סיכה עיניים כדי להגן על העיניים מפני התייבשות. חדור באתרי כירורגי (הבטן, הצוואר-מלפנים ומאחור) עם 0.2 ropivacaine מ&quot;ל (0.67 מ&quot;ג / ק&quot;ג). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעוד העכבר עדיין במצב מועדים, לעשות חתך קטן בבסיס של הצד הגבה<html> של הראש עם אזמל או מספריים. לחשוף את שרירי צוואר הרחם אחורי, ולקשור את השריר כדי הלולאה של החוט מצורף עם 3.0 ניילון ידי מובילים חוט 3.0 ניילון מתחת לשריר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר על הצד הימני שלה. ביצוע חתך אנכי קטן בעור הצוואר הגחון עם אזמל או מספריים. תחת הדרכתו ויזואלי, מנהרה תת-עורית מחט 18-מד דרך חתך הגחון זה כלפי חתך בגב עשה בעבר ולהשחיל את הצנתר דרך המחט אל exteriorize אותו בצד הגחון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר על הגב שלה. Pass חוט 3.0 ניילון מאחורי השיניים החותכות העליונות של העכבר ואת הקלטת אותה למטה אל כרית החימום. אבטח את הראש בתוך מסיכת פנים עבור אספקת חמצן (2 L / min). תקן את העכבר בעמדה נמתחה על ידי מקליט את הזנב ואת שני forelimbs. הערה: אם הרדמה-xylazine קטמין לבדו אינו מספיק, isoflurane בשאיפה (0.5 - 1.5%) ניתן למסור במהלך הניתוח. </li></ol>class = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. החדרת צנתר שכינה כרונית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר תחת מיקרוסקופ לנתח. בשנת החתך שנעשה בעבר בצוואר הגחון, להקניט רקמת שומן בעדינות ובלוטות משם עם מלקחיים עד וריד הצוואר ניתן דמיין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בבוטות לנתח לשחרר את וריד הצוואר מן רקמת חיבור תת עורית מעל ומסביב הכלי ידי צבת קצה המלקחיים בין הווריד ורקמת חיבור ופתיחת המלקחיים שוב ושוב במקביל הווריד. ככזה, ניזק הווריד יימנע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את וריד הצוואר על ידי הצבת מלקחיים בוטים תחת הווריד. Feed שלוש חתיכות של חוט 3.0 משי תחת הווריד, עמדת הפרוקסימלי חתיכה אחת אל ההסתעפות של וריד הצוואר (ליגטורה גולגולתי) ואחד חתיכה קרובה לשריר sternocleidomastoid (ליגטורה זנב). הדקו את ליגטורה גולגולתי ואת ליגטורה הזנב כדי למתוח את הווריד ולמנוע דימום יתר תוך שימת הקטטר. Tכלומר ליגטורה רופפת עם החוט באמצע כדי להבטיח הבטחה קלה של קטטר בהמשך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים מיקרו, עושים חתך לאורך הוריד בין ליגטורה גולגולתי ואת הזנב וגדולים מספיק כדי לעבור את הקטטר. תפוס את הקטטר עם מלקחיים, ולהכניס את הקטטר 11 מ&quot;מ לתוך הווריד. רופף לאבטח את הקטטר על ידי קשירה את ליגטורה באמצע ולאשר מיקום נכון על ידי שטיפה בעדינות עם מלח סטרילית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Secure את הקטטר ידי בחוזקה קשירת את ליגטורה באמצע הזנב סביב הספינה ואת הקטטר. עניבה מסתיימת של ליגטורה זנב ואת באמצע יחד כדי לאבטח את הקטטר בתקיפות. ודא כי הקשרים לא לחסום את העורק, על ידי שטיפה הקטטר לאחר כל קשר עשה. לבסוף, לקשור את הזנב ואת ליגטורה גולגולתי. סגירת החתך עם 5.0 תפרי משי. </li></ol> 4. Cecal קשירת נקר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך קו האמצע 1 ס&quot;מ דרך העור של החצי התחתון של הבטן עם אזמל או מספריים;להיזהר לא לחדור לתוך חלל הצפק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהה את Linea alba של שרירי הבטן ולעשות חתך intermuscular כדי לקבל כניסה לתוך חלל הצפק. אתר את cecum, להשתמש במלקחיים אנטומיים בוטה לבודד את cecum ו exteriorize זה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ולקשור cecum ב 50% מאורכו עם 3.0 תפרי משי. ודא שלא ולקשור את שסתום ileocecal כך משכיות מעי נשמרות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחורר את cecum עם מחט 18-מד ידי יחיד דרך-ו-דרך באמצע הדרך ניקור בין קשירת קצה cecum. לאחר הסרת המחט, extrude כמות קטנה של צואה מן החור כדי להבטיח patency. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיקום מחדש של המעי בחלל הבטן, ולסגור את הצפק עור עם 5.0 תפרי משי. הערה: בממוצע, מתמחה חדשה דורשת 10 עד 15 בעלי חיים כדי להיות מסוגל חלקה למקם את צנתר ורידי ולבצע CLP בתוך 45 דקות. לאחר תקופת הכשרתו, רלה הרדמה / ניתוחניתן לצפות תמותה של 10% טד. </li></ol> 5. טיפול לאחר ניתוח החייאה נוזלת <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את העכבר במצב שכיבה ולאבטח את הקטטר אל החוט המצורף עם קלטת. הזיזו את העכבר לכלוב הפרט. השתמש דוכן עם מהדק מתכווננת להחזיק את המכשיר מסתובב 25 סנטימטרים מעל העכבר ובתקיפות קלטו את החלק החופשי של החוט המצורף מתכת לנקודת הסיבוב של המסתובב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף מזרק המכיל התערובת של קולואידים מאוזן crystalloids (1: 4) אל קו הוורידים כדי להתחיל החייאה נוזלת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הכלוב בטמפרטורה מבוקרת (27 מעלות צלזיוס) ארון חיה עם 12 h אור מחזורים כהה ולהתחיל החייאה נוזל תוך ורידי (10 מ&quot;ל / ק&quot;ג / שעה) באמצעות משאבת אינפוזיה מדויק מונחה מזרק. ספק העשרה כלוב כגון חומר קינון ו בלוק עץ. </li></ol> 6. טיפול נמרץ <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בשעה 6 שעות לאחר הניתוח, תת-עורית להזריק כאב medication ואנטיביוטיקה (0.3 עצירות מ&quot;ל (0.15 מ&quot;ג / ק&quot;ג) ו 0.2 אימיפנם מ&quot;ל (16.67mg / ק&quot;ג)). הערה: בעקבות לעסוק ברפואה בחיות מעבדה סטנדרטית, המנה הראשונה של תרופות כאב ניתנת לפני החתך הניתוחי הראשוני ולאחר מכן על פי הוראותיה של מדיניות הווטרינרים של המוסד. זריקות תת עוריות צריך להיות מוזרק בזהירות לתוך החלל התת-עורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחרי 20 - 24 שעות של החייאה נוזל, להחליף את crystalloids / קולואידים ידי תזונה parenteral הכולל (6.67 מ&quot;ל / ק&quot;ג / שעה). הערה: תזונת parenteral סה&quot;כ מנוהלת (5.8 קק&quot;ל / 24 h) משתרעת על כ 40% מכלל הקלוריות היומיות של עכברים, דומי צריכת הקלוריות מוקדם של מטופלים ביחידה לטיפול הנמרצת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תת-עורית לנהל משככי כאבים ואנטיביוטיקה (0.6 עצירות מ&quot;ל (0.3 מ&quot;ג / ק&quot;ג) ו 0.2 אימיפנם מ&quot;ל (16.67 מ&quot;ג / ק&quot;ג) כל 12 h בתקופת שלמה של מחלות קשות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את החיות לפחות כל 3 h במהלך היום. להעריך את הסבל על ידי מתן כאבניקוד המבוססת על סולם העוויה העכבר תוקף 11. להגביר פיקוח על בעלי חיים עם ציון כאב גבוה. </li></ol> 7. בסוף הניסוי הערה: אישור והמלצות על רמת החומרה של מודל הנחיות ומדיניות למחשבי קצה אנושי יש לבקש דירקטוריון הסקירה המוסדי המקומי האתי למחקר בבעלי החיים. הערה: במקרה של קו ורידים מתפקד כמו קטטר החסום, delocalization של הקטטר, בעיות עם משאבת המזרק, החיה מהמחקר ו מורדם. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בתום תקופת הניסוי, עמוק להרדים את העכבר באמצעות תערובת של 0.03 קטמין מ&quot;ל (100 מ&quot;ג / ק&quot;ג) ו 0.02 מ&quot;ל (13 מ&quot;ג / ק&quot;ג) xylazine. להרדים את העכבר על ידי משיכת הדם על ידי לנקב לב. חנות צמד דגימות רקמה קפוא של ריבית -80 מעלות צלזיוס. </li></ol>

<ol><li>Angus, D. C., van der Poll, T. <a target="_blank" href="http://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMra1208623">Severe sepsis and septic shock.</a> N Engl J Med. 369 (9), 840-851 (2013).</li>
<li>Singer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Third+International+Consensus+Definitions+for+Sepsis+and+Septic+Shock+%28Sepsis-3%29%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3).</a> JAMA. 315 (8), 801-810 (2016).</li>
<li>Remick, D. G., Newcomb, D. E., Bolgos, G. L., Call, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+mortality+and+inflammatory+response+of+two+models+of+sepsis%3A+lipopolysaccharide+vs.+cecal+ligation+and+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Comparison of the mortality and inflammatory response of two models of sepsis: lipopolysaccharide vs. cecal ligation and puncture.</a> Shock. 13 (2), 110-116 (2000).</li>
<li>Copeland, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+inflammatory+response+to+endotoxin+in+mice+and+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Diagn+Lab+Immunol%22%5BJournal%5D)">Acute inflammatory response to endotoxin in mice and humans.</a> Clin Diagn Lab Immunol. 12 (1), 60-67 (2005).</li>
<li>Seok, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+responses+in+mouse+models+poorly+mimic+human+inflammatory+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Genomic responses in mouse models poorly mimic human inflammatory diseases.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (9), 3507-3512 (2013).</li>
<li>Rittirsch, D., Huber-Lang, M. S., Flierl, M. A., Ward, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunodesign+of+experimental+sepsis+by+cecal+ligation+and+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Immunodesign of experimental sepsis by cecal ligation and puncture.</a> Nat Protoc. 4 (1), 31-36 (2009).</li>
<li>Zolfaghari, P. S., Pinto, B. B., Dyson, A., Singer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+metabolic+phenotype+of+rodent+sepsis%3A+cause+for+concern%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+Care+Med+Exp%22%5BJournal%5D)">The metabolic phenotype of rodent sepsis: cause for concern.</a> Intensive Care Med Exp. 1 (1), 25(2013).</li>
<li>Radermacher, P., Haouzi, P. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26266795">A mouse is not a rat is not a man: species-specific metabolic responses to sepsis - a nail in the coffin of murine models for critical care research.</a> Intensive Care Med Exp. 1 (1), 26(2013).</li>
<li>Dyson, A., Singer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+sepsis%3A+why+does+preclinical+efficacy+fail+to+translate+to+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Animal models of sepsis: why does preclinical efficacy fail to translate to the clinical setting.</a> Crit Care Med. 37 (1 Suppl), S30-S37 (2009).</li>
<li>Osuchowski, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abandon+the+mouse+research+ship%3F+Not+just+yet%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Abandon the mouse research ship? Not just yet.</a> Shock. 41 (6), 463-475 (2014).</li>
<li>Langford DJ1, B. A., Chanda, M. L., Clarke, S. E., Drummond, T. E., Echols, S., Glick, S., Ingrao, J., Klassen-Ross, T., Lacroix-Fralish, M. L., Matsumiya, L., Sorge, R. E., Sotocinal, S. G., Tabaka, J. M., Wong, D., van den Maagdenberg, A. M., Ferrari, M. D., Craig, K. D., Mogil, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coding+of+facial+expressions+of+pain+in+the+laboratory+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse.</a> Nat Methods. 7, (2010).</li>
<li>Hollenberg, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+hyperdynamic+murine+model+of+resuscitated+sepsis+using+echocardiography%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Characterization of a hyperdynamic murine model of resuscitated sepsis using echocardiography.</a> Am J Respir Crit Care Med. 164 (5), 891-895 (2001).</li>
<li>Heuer, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cecal+ligation+and+puncture+with+total+parenteral+nutrition%3A+a+clinically+relevant+model+of+the+metabolic%2C+hormonal%2C+and+inflammatory+dysfunction+associated+with+critical+illness%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Cecal ligation and puncture with total parenteral nutrition: a clinically relevant model of the metabolic, hormonal, and inflammatory dysfunction associated with critical illness.</a> J Surg Res. 121 (2), 178-186 (2004).</li>
<li>Conti, M., Merlani, P., Ricou, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prognosis+and+quality+of+life+of+elderly+patients+after+intensive+care%5BTitle%5D)+AND+%22Swiss+Med+Wkly%22%5BJournal%5D)">Prognosis and quality of life of elderly patients after intensive care.</a> Swiss Med Wkly. 142, (2012).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

פתחנו מודל עכבר רלוונטי יותר קליני של מחלות קשות, על ידי שילוב של שיטת קשירת לנקב cecal לגרום לאלח דם עם שימוש קו ורידים מרכזי עבור נוזלים, תרופות ומנהל מזין. התקנה ניסיונית זו ניתנת לשחזור, מאפשר ללמוד את שלב הממושך של מחלה ותוצאות קריטיות שיעור תמותה יציב, בזאת מחקה את מצב 1 הקליני בבני האדם. קשירה ו לנקב Cecal הוכר בהרחבה כמו במודל חיה של מחלות קשות חריפות שמעתיקות את המאפיינים העיקריים...

מחלות קשות היא מדינה מחלה שבה פונקציה של מערכות איבר אחד או יותר נפגעת עד כדי כך שהחולה ימות, אלא אם כן תמיכה רפואית אינטנסיבית מנוהל. בעוד הגורם הראשוני להתקבל ליחידה לטיפול נמרץ (ICU) יכול להשתנות, החל טראומה, ניתוח מסובך, כוויות, התלקחויות המחלה אלח דם, כל חולים אנושים סובלים נזק לתאים, הנגרם על ידי hypoperfusion, היפוקסיה ו דלקת מופרזת בין היתר , אשר מוביל כשל איברים. רוב המטופלים לשרוד העלבון החריף שלהם, אלא חלק חשוב של המטופלים לא מייד לשחזר וזקוק לטיפול נמרץ ממושך. הם נמצאים בסיכון גבוה לתמותה עקב אי-פתרון כשל איברים מרובים. יתר על כן, בשלב ממושך של מחלה קשה hallmarked בחולשת שרירים עמוקים האנדוקרינית שינוי מטבולי, מתוכם בפתוגנזה כיום מובנת. r כמהמודלי odent נמצאים בשימוש בסביבת המחקר בטיפול הנמרצת. שני המודלים בעיקר בשימוש הן הממשל אקסוגני של lipopolysaccharide (LPS) ו קשירת cecal ו לנקב (CLP). שני הדגמים מפותחים לחקות את השלב האקוטי של אלח דם, המוגדר תפקוד איבר מסכנות חיים שנגרם על ידי תשובת מארח dysregulated לזיהומים, ועל אחת הסיבות העיקריות להתקבל לטיפול הנמרץ ברחבי עולם 1, 2. מודל LPS יש כמה חסרונות כמו זה רק זמנים משפיע על השחרור של ציטוקינים המעמד המודינמי של החיה 3. בניגוד לבני האדם, מכרסמים הם גם במיוחד עמידים בפני רעלן פנימי והשימוש &quot;במינונים גבוהים&quot; של רעלן פנימי יש צורך לייצר תת לחץ דם ותמותה, בזאת נוספת מעלה חששות בדבר תוקפה של שיטה זו 4, 5. המודל השני, קשירת cecal ודגם לנקב (CLP)כולל קשירה של חלק cecum ואחריו ניקור מחט דרך-ו-דרך. הליך זה גורם לזיהום בטן polymicrobial עם נזק לרקמות, ואחריו טרנסלוקציה של חיידקים לתוך תא דם. זה יגרור תגובה דלקתית מערכתית והפיתוח של אלח דם. מודל CLP הוכר בהרחבה כמו במודל חיה של מחלות קשות חריפות שמעתיקות את המאפיינים העיקריים של אלח דם: hyperinflammation, התרחבות, תת לחץ דם ותפוקת לב מוגבר 6, 7. עם זאת, מודל זה אינו מאפשר לימוד של כשל איברים מרובה שאינו לפתרון, שריר מבזבז, ו האנדוקרינית שינויים מטבוליים, אופייניים לשלב הממושך של מחלות קשות. יתר על כן, לאחרונה את תוקפו של מודלי עכבר עבור מחלות קשות נחקר, שכן ממצאים ממודלי עכבר לא יכולים תמיד להיות מתורגם אדם הגדרת 8, 9, 10. הסבר אפשרי יכול להיות כי טיפול תומך המסופק באופן ביקורתי חולים אנושיים חולה שונה באופן מהותי מן הטיפול שניתן לעכברים אנושים. לכן, כדי להידמות המערכת האנושית יותר מקרוב כדי לאפשר חקירה של השלב הממושך של מחלות קשות, פתחנו מודל עכבר המחקה את לטיפול הנמרץ החריף כפי שניתן לבני אדם, כגון ממשל נוזל תוך ורידי נרחב וטיפול אנטיביוטי, ואשר מאפשר לנהל טיפול תומך כדי לשרוד את שלב הממושך של מחלות קשות, כגון תמיכה תזונתית. לשם כך, מתאמנים במודל העכבר של אלח דם CLP-Induced, להיות סטנדרט הזהב עבור אלח דם, והנחתי קו ורידים מרכזי המאפשר הממשל של נוזלים, תזונה ותרופות.

<table><tbody><tr><td>בופרנורפין</td><td>אקופאר</td><td></td><td>וטרינזי 0.3 מ"ג/מ"ל</td></tr><tr><td>C57BL/6&nbsp;</td><td>Janvier labs</td><td>C57BL/6JRj</td><td></td></tr><tr><td>קולואידים</td><td>Fresenius Kabi</td><td></td><td>Volulyte 6%</td></tr> <tr><td>crystalloids</td><td>Baxter</td><td></td><td>Plasmalyte a viaflo</td></tr><tr><td>Ethilon 3.0 Ethicon</td><td></td><td>F3211</td><td></td></tr><tr><td>Imipenem</td><td>MSD</td><td></td><td>Tienam 500&nbsp; אבקת מ"ג לנוזל הזרקה</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Eurovet</td><td></td><td>Iso-vet</td></tr><tr><td>קטמין</td><td>Eurovet</td><td></td><td>Nimatek 100 מ"ג / מ"ל</td></tr><tr><td>LocTite סופר דבק3 כל הפלסטיק&nbsp;</td><td>Rectavit</td><td>119818</td><td></td></tr><tr><td>Mersilk 3.0</td><td>Ethicon</td><td>L192</td><td></td></tr><tr><td>Mersilk 5.0</td><td>Ethicon</td><td>F682</td><td></td></tr><tr><td>Microrenathane .025 אינץ' OD x .012" תעודת זהות</td><td>Bioseb</td><td>MRE-025</td><td></td></tr><tr><td>olimel N7E</td><td>Baxter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PE10 - פוליאתילן .011 אינץ' x .024 אינץ'&nbsp;</td><td>Instech Solomon</td><td>BTPE-10</td><td></td></tr><tr><td>PE-50 צינורות .023 אינץ' x.038 אינץ'</td> <td>Instech Solomon</td><td>BTPE-50</td><td></td></tr><tr><td>מסתובב מכרסמים 20 גרם</td><td>Bioseb</td><td>RS-20G&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Ropivaca&iuml; ne</td><td>Astrazenica</td><td></td><td>Naropin 2&nbsp; מ"ג/מ"ל</td></tr><tr><td>קסילזין</td><td>VMD</td><td></td><td>קסילזין הידרוכלוריד 2%</td></tr></tbody></table>

שימוש קו ורידים מרכזי עבור נוזלים, תרופות ומנהל מזין בתוך עכבר דגם של מחלות קשות

Use of a Central Venous Line for Fluids, Drugs and Nutrient Administration in a Mouse Model of Critical Illness

פרוטוקול זה מתאר מודל עכבר צינתור המרכזי של מחלות קשות ממושכות. אנו משלבים את קשירת cecal ו לנקב שיטה לגרום לאלח דם עם שימוש קו ורידים מרכזי עבור נוזלים, תרופות ומנהל מזין לחקות את ההגדרה הקלינית בבני האדם. האנושות חולה דורש תמיכה רפואית אינטנסיבית על מנת לשרוד. בעוד שרוב המטופלים יתאושש תוך מספר ימים, כרבע מהחולים זקוקים לטיפול נמרץ ממושך נמצאים בסיכון גבוה למות הלא לפתרון כשל איברים מרובים. יתר על כן, בשלב הממושך של מחלה קשה hallmarked בחולשת שרירים עמוקה, ו האנדוקרינית שינויים מטבוליים, מתוכם בפתוגנזה כיום מובנת. המודל החי הנפוץ ביותר במחקר בטיפול נמרץ הוא מודל קשירת לנקב cecal לגרום לאלח דם. זהו מודל מאוד לשחזור, עם שינויים דלקתיים אקוטיים המודינמי דומים ספטמבר האנושיאחותי, אשר נועדה לבחון את השלב האקוטי של מחלה קריטית. עם זאת, המודל הזה הוא בסימן ידי הקטלניות גבוהות, אשר שונה מן המצב האנושי הקליני, והוא לא פותחים כדי ללמוד את שלב הממושך של מחלות קשות. לכן, אנו להתאים את הטכניקה על ידי הצבת צנתר ורידי מרכזי וריד הצוואר מאפשר לנו לנהל טיפול תומך רלוונטי קליני, כדי טוב יותר לחקות את המצב הקליני האנושי של מחלות קשות. במודל של עכברים זה דורש הליך כירורגי נרחב לטיפול נמרץ יומי של החיות, אבל התוצאה היא מודל רלוונטי של השלב החריף והמתמשך של מחלות קשות.

עכברים C57BL / 6 נעשו אנושים כמתואר לעיל. ביצענו שני ניסויים להעריך ההישרדות שלאחר CLP עד שתי נקודות זמן: הישרדות עד יום 5 (n = 15) והישרדות עד 7 ימים (n = 22) שלאחר CLP. עקומות הישרדות של שני ניסויים לא היו שונות משמעותי (לעומת עד היום 5), המציינים את השחזור של סביבת הניסוי. -לשרוד ללא חיות נמצאו מוות או מורדמים בשל הקצה האנושי להגיע. קשירת 50% של cecum בשילוב עם אנטיביוטיקה, החייאה נוזל ותזונה parenteral הכולל באמצעות צנתר ורידי בתוך jugularis הנ...

פרוטוקול זה מתאר מודל עכבר מצונתר מרכזי של מחלה קריטית ממושכת. אנו משלבים את שיטת קשירת הציקל והניקוב כדי לגרום לאלח דם עם שימוש בקו ורידי מרכזי למתן נוזלים, תרופות וחומרים מזינים כדי לחקות את הסביבה הקלינית האנושית.

This protocol describes a centrally catheterized mouse model of prolonged critical illness. We combine the cecal ligation and puncture method to induce ...

המטרה הכללית של שיטה זו, המסווגת באופן מרכזי עבור עכברים, לליגציה ונקב של העקום (cecal ligation and puncture), או CLP, היא ליצור מודל הניתן לשחזור של מחלה קריטית ממושכת עם נשמי טיפול נמרץ, כדי לדמות את הסביבה הקלינית האנושית. שיטה זו יכולה לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחומי רפואת הטיפול הנמרץ, בנוגע לנתיב הפתוגנזה של שינויים אנדוקריניים ומטבוליים במהלך מחלות קריטיות חריפות וממושכות.היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שהיא משלבת את שיטת ה-CLP המקובלת והסטנדרטית עם שימוש בקו ורידי מרכזי למתן נוזלים, תרופות וחומרי הזנה. את הפרוצדורה ידגים תומס דופור, טכנאי מהמעבדה שלנו. כדי להכין את קצה הקו הוורידי, טבלו במהירות את החלק המרכזי של קטע צינור micro-renathane באורך 60 centimeter בשמן שומשום בטמפרטורה של 220 degree celsius או יותר.משכו בעדינות את קצות הפיתול כדי למתוח את מרכזו, כך שייווצר קוטר מרכזי צר, והשתמשו בלהב סקלפל כדי לחתוך את הפיתול לשני קטעים שווים של 30 סנטימטר. כעת, חברו את הפיתול למחבר polyethylene PE 50, למסובב (swivel) ולמחט Luer stub, כדי להרכיב את הקטטר כפי שהודגם, ומריחו דבק חזק ומהיר התייבשות על כל החיבורים. לאחר התייבסות הדבק, שטפו את הקטטר באוויר כדי לבדוק דליפות; לאחר מכן, גזרו קטע של 80 סנטימטר מחוט מתכת בעובי 0.8 מילימטר, וקפלו את החוט על עצמו כדי ליצור לולאה.השחילו שלושה פנינים מעל התיל הכפול של הלולאה, והנחילו את קצה הקטטר הסטרילי דרך שלושת הפנינים, כדי לחבר את הקטטר לתיל. הרדימו עכבר c57 black six זכר, בן 24 שבועות ושוקלו 27 עד 32 גרם, ואשרו את הסדציה על ידי היעדר תגובה ללחיצה על בהו הבוהן. השתמשו בפינצטה כדי למשוך בעדינות את הלשון החוצה מהפה, כדי למנוע בליעה של הלשון.בשלב הבא, גלחו את אזור הניתוח, ולאחר מכן הניחו את העכבר בתנוחה הפוכה (prone) על משטח חימום שחומם מראש. חטאו את העור החשוף באמצעות 70% ethanol ומריחו כמות קטנה של חומר סיכה אופתלמי (לעין). חללו אלגזיה לאתרי הניתוח ובצעו חתך קטן בבסיס הצד הדורסלי (הגבי) של הראש.חשוף את השרירים הצוואריים האחוריים, והשחל חוט ניילון 3.0 מתחת לשרירים כדי לקשור את לולאת תיל התמיכה לשריר. לאחר מכן, כאשר העכבר שוכב על צדו הימני, בצע חתך אנכי קטן בעור הצוואר הוונטרלי. העבר מחט בדרגה 18 באופן תת-עורי דרך חתך ונטרלי זה לכיוון החתך בגב, והשחל את הקטטר דרך המחט כדי להוציא אותה בצד הוונטרלי.כאשר העכבר מונח על גבו, העבירו חוט ניילון במידה 000 מאחורי השיריים העליונים והדביקו את הניילון למשטח החימום. לאחר מכן, קבעו את הזנב והגפיים הקדמיות במצב מתוח. כעת, התמקדו באמצעות מיקרוסקופ המשחור (dissecting microscope) והשתמשו בפינצטה כדי להסיט בעדינות את רקמת השומן והבלוטות בחתך הבטני עד שניתן יהיה לראות את הווריד הג'וגולרי (jugular vein).הניחו את קצה הפינצטה בין הווריד לרקמה המחברת, ופתחו את הפינצטה שוב ושוב במקביל לווריד כדי לבצע נתיחה קהה (blunt dissection) שתשחרר את הווריד הג'וגולרי מהרקמה המחברת ומהרקמה התת-עורית שסביב כלי הדם. כאשר כלי הדם מבודד, הניחו את הפינצטה הקהה מתחת לווריד הג'וגולרי והשחילו שני קטעי חוט משי במידה 3-0 תחת הווריד. מקמו קטע אחד בקירוב לפיצול של הווריד הג'וגולרי עבור הליגטורה הקרנאלית (עליונה), וקטע שני קרוב לשריר הסטרנוקליידומסטואיד עבור הליגטורה הקודאלית (תחתונה).הדקו את הקשירות הקרניאליות והקודליות, כדי למתוח את הווריד ולמנוע דימום מרובה בזמן השחלת הקטטר. השתמשו בחוט שלישי ליצירת קשירה רפויה, ולאחר מכן, באמצעות מיקרו-מספריים, בצעו חתך לאורך הווריד בין הקשירות הקרניאלית והקודלית, בגודל המספיק למעבר הקטטר. בעזרת פינצטה, השחילו את הקטטר למרחק של 11 מילימטרים לתוך הווריד, וקשרו אותו באופן רפוי באמצעות הקשירה האמצעית.שטפו בעדינות את הקטטר בתמיסת סליין סטרילית כדי לוודא את מיקומו הנכון. לאחר מכן, הדקו היטב את הקשירה הזנבית והמרכזית. קשרו את קצוות הקשירות הזנבית והמרכזית יחד כדי להבטיח את קיבוע הקטטר.יש לאשר שהוריד אינו חסום על ידי הקשרים, באמצעות שטיפה של הקתטר לאחר כל קשירה. לבסוף, יש לקישור גם את הליגטורה הקרנאלית. לאחר מכן, סגור את החתך באמצעות תפרים ממשי (silk) במידה 5/0.עבור קשירה וניקור של העקום (Cecal Ligation and Puncture), בצעו חתך של סנטימטר אחד בקו האמצע דרך העור של החצי התחתון של הבטן, תוך הקפדה לא לחדור לחלל הפריטונאום. לאחר זיהוי ה-linea alba של שרירי הבטן, בצעו חתך בין-שרירי כדי להגיע לחלל הפריטונאום.באמצעות פינצטה אנטומית קהה, בודדו והוציאו את העקום (cecum). קשרו את העקום ב-50% מאורכו באמצעות תפרי משי במידה 3-0, תוך הקפדה לא להדק את השסתום האיליאו-צקאלי (ileocecal valve), כדי לשמור על הרצף המעי. לאחר מכן, השתמשו במחט במידה 18 כדי לבצע חור דרך (through and through) במרכז העקום, במחצית הדרך בין הקשירה לקצה העקום, תוך דחיסה של כמות קטנה של צואה מהחור, כדי להבטיח שבירויות לאחר הוצאת המחט.החזירו את המעי לחלל הבטן, וסגרו את הפריטוניאום ואת העור באמצעות תפרי משי 5-0. כאשר העכבר במצב שכיבה על הגב, הדביקו את הקטטר לחוט הקיבוע. לאחר מכן, מקמו את העכבר בכלוב אישי עם חומרי קינון ובלוק עץ.באמצעות מעמד עם תבריג מתכוונן, מקמו את התקן הסיבוב בתבריג והדביקו היטב את החלק החופשי של תיל ההיקשרות המתכתי לנקודת הסיבוב של התקן. לאחר מכן, מקמו את הכלוב בתוך תא חיות עם בקרת טמפרטורה של 27 degree celsius ומחזורי אור וחושך של 12 שעות. חברו את המזרק המכיל את התערובת המתאימה של קולואידים וקריסטלואידים מאוזנים לקו הורידי, והשתמשו במשאבת הזרקה מדויקת המופעלת על ידי מזרק כדי להתחיל את החייאת הנוזלים בקצב של 0.3 millimeters per hour.לאחר שש שעות, יש להזריק משככי כאבים ואנטיביוטיקה. ניתוח של עקומות ההישרדות בניסוי אחד של קשירה וניקור של העקום (cecal ligation and puncture) למשך חמישה ימים, ובניסוי שני למשך שבעה ימים, מראה כי שיעורי ההישרדות לא היו שונים באופן מובהק בין שני המחקרים עד היום החמישי, דבר המדגיש את הדירות (reproducibility) של מערך הניסוי. קשירה של 50% מהעקום בשילוב עם אנטיביוטיקה, החייאה בנוזלים והזנה פארהנטרלית מלאה דרך קטטר ורידי ב-vena jugularis, גורמת לתמותה של 13% לאחר יום אחד של מחלה קריטית.שיעור תמותה של 24% לאחר שלושה ימים של מחלה קריטית, שיעור תמותה של 27% עד 31% לאחר חמישה ימים של מחלה קריטית ושיעור תמותה של 36% לאחר שבעה ימים של מחלה קריטית. עם זאת, עכברי הפרה הבריאים שהוגבלו קלורית לצריכת הנוטריאנטים של העכברים החולים קריטית, לא הראו תמותה באף אחד מהניסויים. לאחר תרגול על 10 עד 15 בעלי חיים לשליטה בטכניקה, ניתן להניח את הקטטר ולבצע את ה-CLP בפרק זמן של 45 דקות, במידה והפרוצדורות מבוצעות כראוי.בעת ביצוע פרוצדורה זו, זכרו להחדיר את הקטטר לווריד בזהירות. החדרת הקטטר עמוק מדי אל תוך הלב תגרום להפרעות קצב לב (arrhythmias). אם לא יוחדר מספיק עמוק, הוא עלול להישלף בקלות.יש לוודא תמיד שהקטטר ממוקם בתוך לומן כלי הדם. אם הקטטר ימוקם בתוך השכבות של דופן כלי הדם, נוזלים ידלפו לרקמות הסובבות. מודל זה עשוי לדרוש הליך כירורגי נרחב וטיפול אינטנסיבי יומי בבעל החיים.אך הדבר מביא למודל יציב וניתן לשחזור, המאפשר לחקור היבטים רבים של מחלות קריטיות חריפות וממושכות.

use-central-venous-line-for-fluids-drugs-nutrient-administration

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

מהדק hyperinsulinemic-euglycemic, או מהדק אינסולין, הוא תקן הזהב להערכת פעילות...

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps ב, עכברים מודעת בלתי מרוסנת

ניהול עצמי הפרדיגמה תוך הוורידים (IVSA) נחשבת לסטנדרט זהב בבוחן את מאפייני החיזוק של תרופות של התעללות במכרסמים. כתב יד זה מתאר הפרוצדורות וטכניקות כירורגיות הדרושות כדי להשיג נתוני IVSA אמינים. בפרט, השתלת צנתר מוקפדת ותחזוקה מודגשות.

שיטות לניהול עצמי תוך ורידים במודל של עכברים

בסרטון זה אנו מתארים שיטה להשתלת קטטר בווריד הצוואר של מודל עכברי שדרכו ניתן להעביר חומרים ניסיוניים כגון תרופות וצבעי נותב דרך הווריד in vivo. סידור כזה, כאשר הוא מחובר למערכות אחרות, יכול לשמש גם לניטור המודינמיקה ודגימת דם.

הזרקה תוך ורידית מבוססת צנתר של חומרים ניסיוניים: טכניקה להעברת חומרים ניסיוניים תוך ורידי דרך וריד הצוואר במודל עכבר

גישות לכלי הדם למדידת המודינמיקה, אספקת נוזלים וביצוע דגימת דם חשובות לכל מחקר מודל של בעלי חיים קטנים. אנו מציגים טכניקה להשתלת קטטרים בעורק הצוואר ובווריד הצוואר המשותף בחולדה מורדמת לחיבור למערכת לביצוע ניטור, עירוי ודגימה.

צנתור של עורק התרדמה וצוואר הווריד לבצע צעדים המודינמית, חליטות ודגימת דם במודל עכברוש מודע

הסרט הזה מדגים כיצד לרכוש פרמטרים המודינמיים מערכתיים וכבדים בעכברים. כל הניטור כולל רכישה של פרמטרים חיוניים, לחץ מערכתי בדם, לחץ ורידים מרכזיים, קצב זרימת עורק כבד נפוץ, ולחץ וריד שער, כמו גם את קצב זרימת הפורטל בעכברים.

ניטור של פרמטרים מערכתיים והבדיה המודינמית בעכברים

כאן אנו מציגים פרוטוקול המתאר את הטכניקה של חמצון ממברנה בעיות ורידים-veno (לאקמו) ב שאינם לצינורות, באופן ספונטני נשימה העכבר. מודל זה מאתר של לאקמו ניתן ליישם ביעילות מחקרים ניסיוניים של חריפה ומחלות ריאות בשלב הסופי.

ממברנה בעיות ורידים-Veno חמצון בעכבר

Aortocaval פיסטולה נוצר על ידי לפרוץ את העורקים מורנה אינפרא כליות באמצעות שני הקירות לתוך הורקאווה הנחותים ולאחר מכן הבריאה של היצרות בתוך הזרימה שלה באמצעות הארכה חלקית של האובורד הנחותים. מודל זה ניתן לשימוש כדי ללמוד היצרות הורידים המרכזי.

מודל מורנה של היצרות הורידים המרכזית באמצעות Aortocaval פיסטולה עם היצרות זרימה יוצאת

פרוטוקול זה מספק הליך שלב אחר שלב לביצוע מתן מינון בולוס תוך ורידי מרובים וניטור המודינמי פולשני בעכברים. חוקרים יכולים להשתמש בפרוטוקול זה לבדיקת תרכובת טיפולית עתידית ליתר לחץ דם בעורק הריאה.

מינון בולוס תוך ורידי מרובים והערכה המודינמית פולשנית במודל יתר לחץ דם של עורק ריאתי בעכבר הנגרם על ידי היפוקסיה

פרוטוקול זה מתאר השתלה רצופה של משאבה אוסמוטית כדי לגרום למפרצת אבי העורקים הבטני על ידי שחרור אנגיוטנסין II בעכברים חסרי אפוליפופרוטאין E (ApoE) ושל יציאת גישה וסקולרית עם קטטר ורידים ג'וגולרי לטיפול תרופתי חוזר. ניטור התפתחות מפרצת על ידי אולטרסאונד תלת מימדי מתבצע ביעילות למרות השתלים הגביים.

טיפול תרופתי על ידי קטטר ורידי מרכזי במודל עכבר של אנגיוטנסין II מפרצת אבי העורקים הבטני המושרה וניטור על ידי אולטרסאונד 3D

מאמר זה נועד להציג שיטה אופטימלית להערכת פקקת ורידים במודל סרטן עכברים, באמצעות קליפסים וסקולריים להשגת קשירה ורידית. אופטימיזציה ממזערת את השונות במדידות הקשורות לפקקת ומשפרת את הרלוונטיות לפקקת ורידים הקשורה לסרטן אנושי.

בדיקת פקקת ורידית במודל עכבר של סרטן

פינוי אינסולין בכבד הוא קריטי לוויסות הומאוסטזיס של גלוקוז. מאמר זה מתאר הליך זלוף כבד ידידותי למשתמש להערכה ישירה של קצב פינוי האינסולין בכבד באתרו בעכברים.

הערכת פינוי אינסולין בעכברים באמצעות זלוף כבד באתרו

למדו ליצור מודל עכברים עם קטטר ורידי מרכזי לחקר מחלות קשות ממושכות. השיטה משלבת נקיפת צקום עם מתן נוזלים, תרופות ומזון תוך שיקוף תנאי טיפול נמרץ אנושיים.

שימוש קו ורידים מרכזי עבור נוזלים, תרופות ומנהל מזין בתוך עכבר דגם של מחלות קשות

גלה סרטונים נוספים