Name: אלקטרופיזיולוגיות להערכת אטריה מאתר עם מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-22T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 19 s
Description: חקור אלקטרופיזיולוגיה של אטריה בעכברים באמצעות מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה. שיטה זו מאפשרת ניתוח מדויק של דפוסי הולכה חשמליים ומנגנוני הפרעות קצב אטריאליות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמך על ידי התוכנית עבור שיפור של סביבת מחקר לחוקרים צעירים מקרנות תיאום מיוחד לקידום המדע, הטכנולוגיה (SCF) (ל ט. ס), Grants-in-Aid למחקר מדעי (מס 16K. 09494, ל ט. ס, מספר 26293052, אל. טי) של משרד החינוך, התרבות, הספורט, המדע והטכנולוגיה (MEXT) של יפן. אנו מעריכים Brainvision ואת מר קנג'י Tsubokura לסיוע טכני, אנחנו מעריכים גם מר ג'ון מרטין לסיוע הלשוני שלו.

ניסויים בבעלי חיים זו אושרה והופיע תחת ויסות טיפול בעלי חיים מוסדיים שימוש הוועדה של טוקיו הרפואי ואת שיניים אוניברסיטת.
1. הכנה
<ol><li>פתרונות מניות<ol>
<li>להמיס את צבעי רגיש מתח (di-4-ANEPPS, ו RH237) ו- Ca2 + מחוון (אני רוד-2) עם 100% דימתיל סולפוקסיד (דימתיל סולפוקסיד) להכין מלאי פתרונות עם ריכוזים של 6 מ מ, 10 מ מ ו- 10 מ"מ, בהתאמה.</li>
		<li>להמיס את עירור-התכווצות (E-C) uncoupler, blebbistatin, עם 90% דימתיל סולפוקסיד לעשות פתרון מניות 50 מ מ.</li>
		<li>Aliquot הפתרונות מניות ב- 0.2 מ ל PCR צינור בחדר חשוך, ולהחליף את האוויר בצינור מניות באמצעות גז חנקן כדי למנוע חמצון.</li>
		<li>לעטוף את הצינורות מניות בנייר אלומיניום בנפרד להגנה מפני האור ואחסן אותם ב-20 הלעפה תרוטרפמט.</li>
	</ol>
</li>
	<li>פתרונות עבודה<ol>
<li>להכנת 1 ליטר של תמיסת מלח פוספט buffered (PBS) ללא Ca2 + (137 מ מ NaCl, מ מ 2.7 אשלגן כלורי, 8.0 מ מ נה2HPO4ו- 1.5 מ מ ח'2PO4, pH 7.40 על ידי NaOH)</li>
		<li>להכין 1 ליטר של הפתרון של Tyrode (135 ממ NaCl, 5.4 מ"מ אשלגן כלורי, 1.8 מ"מ CaCl2, מ מ 0.53 MgCl2, 0.33 מ מ NaH2PO4, 5.5 מ"מ D-גלוקוז, ו 5.0 מ"מ HEPES, pH 7.40 על ידי NaOH).</li>
		<li>סינון הפתרון של Tyrode עם מסנן העליון של בקבוק מיקרומטר 0.22, לאוורר אותו היטב על ידי לערבב בועות באמצעות אבן אוויר מחובר עם בלון גז של2 O.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. אופטי מיפוי בליבם Langendorff-perfused
<ol><li>להרכיב מערכת מיפוי אופטי באמצעות שתי מצלמות משלימים תחמוצת מתכת מוליכים למחצה (CMOS) (איור 1a& b)<ol>
<li>להרכיב את מצלמות CMOS קרן הפיצול, המטרה עדשות, עדשה האקדח, מקור האור, מראות ודיקרואיק זוהר, מסננים, חלקים אחרים לתוך מערכת מיפוי אופטי כפי שמוצג באיור 1a& b.</li>
		<li>בחר את רמת ההגדלה על-ידי שינוי העדשה המטרה בצריח, מצוידים עם רמות הגדלה שונות (1.6 X ו- 5 X). הערה: גודל חיישן CMOS הוא 10 מ מ × 10 מ מ, עם רזולוציה 100 × 100, מה שאומר, עם 5 X עדשת אובייקטיבי, מערכת זו מספקת רזולוציה מרחבית 20 מיקרומטר.</li>
		<li>להגדיר את האור עירור באמצעות מנורת דיודות פולטות אור (LED) עם מרכז אורך גל של 530 ננומטר, עברו דרך מסנן הלהקה מעברים (520/35 nm), משתקפת עם מראה ודיקרואיק זוהר (560 ננומטר).</li>
		<li>רשומה האות פליטה מחולק במפצל (665 ננומטר), איזו מצלמה הגדרה 1 עם תנועה ארוכה לעבור את הסינון (697/75 ננומטר) מזהה את קרינה פלואורסצנטית באמצעות צבע רגיש מתח הממברנה (di 4-ANEPPS או RH237), מצלמה 2 תשאר עם מסנן הלהקה מעברים (572/28 ננומטר) מזהה אות של Ca2 + המחוון (Rhod2-AM).</li>
	</ol></li>
	<li>להרכיב את המעגל זלוף Langendorff<ol>
<li>לצרף צינורות פוליוויניל כלוריד (PVC) משאבה סחרור.</li>
		<li>מכניסים לצד צריכת צינור PVC הפתרון של Tyrode מוגזים עם 100% O2 כאמור בשלב 1.2.3.</li>
		<li>להתחבר לצד פריקה של צינור PVC מלכודת אויר בעבודת יד ולאחר מכן לארגן את 5 מיקרומטר מסנן, stopcocks משולשת, רגשי לחץ, חימום זכוכית סליל, ואת המחט קהות 21-מד (גודל מחט הוא הפכפך התואמת את גודל האאורטה) ברצף , באמצעות צינורות PVC אחרים.</li>
		<li>למלא את המעגל זלוף עם הפתרון של Tyrode הימנעות בועות אוויר בתוך המעגל, לעצור את הזרם עד הלב מחובר המעגל.</li>
	</ol></li>
	<li>Heparinization והרדמה<ol>
<li>מזריקים unfractionated הפרין (200 יחב ל, ללא קשר משקל הגוף) intraperitoneally לתוך עכבר באמצעות מחט בקוטר 25 מזרק 1-mL.</li>
		<li>עזים ומתנגד העכבר על ידי זריקה בקרום הבטן של פנטוברביטל (65 מ"ג/ק"ג) 10 דקות לאחר הזרקת הפרין.</li>
	</ol></li>
	<li>תעלות זלוף<ol>
<li>הנח את העכבר במצב פרקדן. אשר חיות הוא ומורדמת באמצעות חוסר תגובה שאורך צביטה. פתח בקיר הבטן מתחת לרמת מצאתי תהליך באמצעות מספריים. עושים חתך רוחבי של הסרעפת חתך צידי הצלעות בקו בבית השחי המדיאלי ללא נזק ללב, הפוך קיר החזה הקדמי כלפי מעלה. לקדם את המלקחיים מעוקל מאחורי הלב, והחזק את אבי העורקים, הוושט, הכלילי. ואז, לסלק את הלב עם מספריים במהירות יחד עם כלי הסמוכים ורקמות, כגון אבי העורקים, הריאות, קנה הנשימה, הוושט, רקמות adipose וכן התימוס.</li>
		<li>לשטוף את הלב עם 10 מ"ל של PBS קר כקרח בצלחת פטרי, ולהסיר את הרקמות הסמוכות.</li>
		<li>להציג את קצה המחט קהות 21-מד מחובר המעגל זלוף לתוך אבי העורקים, לתקן את זה עם חוט תחת stereomicroscope.</li>
		<li>להתחיל perfuse את הלב במשך 10 דקות עם הפתרון של Tyrode מוגזים עם 100% O2.</li>
		<li>נטר את הלחץ זלוף ברציפות עם מתמר לחץ מחובר מגבר ו מקליט.</li>
		<li>לשמור על הלחץ זלוף בין 80-100 מ מ כספית (בדרך כלל תואם ל- 2-5 mL/min עבור קצב הזרימה) במהלך כל השלבים הבאים.</li>
		<li>במהלך זלוף הראשונית (שלב 2.4.4.), הוסף את צינור דק פוליאתילן (PE) (הקוטר החיצוני: 0.8 מ מ) לתוך SVC, לתקן את זה עם חוט. אז, במקום הלב אל החדר ומחוממת זכוכית (איור 1b& c).</li>
		<li>דקירה מחט שכנה 24-מד (הקוטר החיצוני: 0.7 מ מ) לתוך חלל השמאלי (LV) חדרית דרך השיא חדרית כדי למנוע נזק לאטריום ולהסיר את המחט הפנימי עוזב את הצינורית חיצוני ב LV.</li>
		<li>להציג את צנתר אלקטרודה 1-צרפתית גודל מותאם אישית עשה דרך הצינורית PE ב SVC לבצע גירוי חשמלי רע אם יש צורך, לקדם הקטטר לתוך החדר הימני (RV) עבור צועד חדרית.</li>
		<li>הכנס אלקטרודה pin השיא חדרית ברציפות להקליט את electrocardiograms דו קוטבי (א) בין ה-pin אלקטרודה, תעלות המחט אבי העורקים (איור 1 c).</li>
		<li>המשך ניטור אק ג זלוף הלחץ במהלך המחקר כולה.</li>
		<li>לכבות את האור, לבצע את הניסוי הבא בחדר חשוך.</li>
		<li>עבור לשלב 2.5. עבור הקלטות יחיד של מתח הממברנה או 2.6. לצורך הקלטה כפולה של מתח הממברנה, Ca2 + ארעי.</li>
	</ol></li>
	<li>צביעת עבור הקלטה יחיד של מתח הממברנה<ol>
<li>לשמור על הפתרון זלוף מחוממת ב 37 הלעפה תרוטרפמט במהלך הפרוטוקול מכתימים עבור הקלטה יחיד של מתח הממברנה.</li>
		<li>לדלל µL 8.3 של הפתרון מניות di-4-ANEPPS (6 מ מ) עם 10 מ"ל של הפתרון של Tyrode (הריכוז הסופי הוא 5 מיקרומטר).</li>
		<li>להשרות את הנפח הכולל (10 מ ל) של הפתרון מדולל di-4-ANEPPS אל הלב דרך המסלול זלוף למשך 2-5 דקות, ואחריו כשלון עם הפתרון של Tyrode במשך 5 דקות.</li>
		<li>לדלל 5 µL של הפתרון מניות blebbistatin (50 מ"מ) עם 1 מ"ל של הפתרון של Tyrode (הריכוז הסופי הוא 250 מיקרומטר).</li>
		<li>מחלקים את הכמות הכוללת של הפתרון מדולל blebbistatin דרך המסלול זלוף.</li>
		<li>לדלג על שלב 2.6 והמשך לשלב 2.7 עבור שטיפה.</li>
	</ol></li>
	<li>צביעת עבור הקלטה כפולה של מתח הממברנה, Ca2 + ארעי<ol>
<li>לשמור על הפתרון של Tyrode בטמפרטורת החדר. הערה: ההגדרה הראשונית של הטמפרטורה היא שונה מזו של צביעת עבור הקלטה יחיד של מתח הממברנה (שלב 2.5.).</li>
		<li>לנהל את blebbistatin באותו אופן כמו שלבים 2.5.4 ו 2.5.5.</li>
		<li>לערבב 3 µL של Rhod2AM מניות פתרון (10 מ מ), 30 µL של polyoxyethylene-polyoxypropylene בלוק קופולימר F-127 (20% ב דימתיל סולפוקסיד), לאחר מכן לדלל את התערובת עם 10 מ"ל של הפתרון של Tyrode.</li>
		<li>לטעון את הסכום הכולל של Rhod2AM פתרון (3 מיקרומטר) יותר מ 2-5 דקות דרך באותה הדרך כמו blebbistatin.</li>
		<li>לדלל 7 µL של RH237 מניות פתרון (10 מ מ) עם 10 מ"ל של הפתרון של Tyrode.</li>
		<li>לנהל את הסכום הכולל של הפתרון RH237 מדולל (7 מיקרומטר) יותר מ 2-5 דקות.</li>
		<li>לאחר סיום ההליך לעיל, מתחילים לחמם הפתרון של Tyrode הלעפה תרוטרפמט 37.</li>
	</ol></li>
	<li>שטיפה<ol>
<li>לשמור על הטמפרטורה של הפתרון של Tyrode הלעפה תרוטרפמט 37 בניסוי הבא.</li>
		<li>Perfuse את הלב עם הפתרון של Tyrode לפחות 5 דקות לשטוף את צבעי מוגזמת. הערה: יש צורך להגביר את קצב הזרימה במהלך זה לשטוף את שלב (עיין שלב 2.4.6).</li>
		<li>לאשר את היעלמותו של כל חפץ תנועה בשל התכווצויות, ואת ההכתמה הומוגנית בלב perfused.</li>
	</ol></li>
	<li>דיגום וניתוח נתונים<ol>
<li>לשים את מכסה הזכוכית (25 מ"מ × 60 מ"מ) על הלב perfused בקפידה, לשטח פני השטח פרפור בלי יותר מדי לחץ מכני, ולמנוע תנועה חפץ מן רטט של הפתרון. לאשר כי האטריום מייחסת מכסה הזכוכית כראוי.</li>
		<li>שיא זריחה על ידי המצלמות CMOS עם דגימה בשיעור עד 0.1 מילישניות di 4-ANEPPS, ו- 1 ms עבור RH237 ו- Rhod2AM מכתים.</li>
		<li>לנתח את הקלטות שהושג באמצעות תוכנה וניתוח, על פי הוראות היצרן עבור הפעולה בפועל של התוכנה.</li>
		<li>ליצור הפעלה מפה של הסרט לאחר חילוץ האזור של עניין, הסרת להיסחף, סינון הטמפורלי, ו 3 X 3 binning5.</li>
	</ol></li>
</ol>3. אלקטרופיזיולוגיות המחקר
<ol><li>הגדרת את אלקטרודות pacing, ממריץ<ol>
<li>לאשר את המגע של קצה האלקטרודה pacing בהזמנה אישית ב ר. א לרקמת לגירוי (עיין שלב 2.4.9.).</li>
		<li>לספק גירויים כל pacing הקטטר pacing מחובר את ממריץ לתכנות.</li>
	</ol>
</li>
	<li>קביעת הסף pacing<ol>
<li>להגדיר מרווח הזמן pacing בין 100 ו 150 ms (רוחב הדופק של 0.4 ms), הימנעות מהותי חוש קצב הקצב pacing והאנושיים.</li>
		<li>לספק גירוי קבוע צועד לפחות 20 פעימות להשיג צועד פרפור יציב.</li>
		<li>להגדיר את צועד פלט-5 mV, ואז בהדרגה לצמצם את זה עד בהבטחתו pacing ונמסרו depolarize האטריום.</li>
		<li>לאשר את עירור פרפור על ידי הנוכחות של גלי P בא, ו/או אות פרפור עירור על ידי ההקלטה אופטיים.</li>
		<li>קבע את המינימום צועד פלט כי הוא מסוגל depolarize האטריום כמו הסף pacing.</li>
		<li>להגדיר את הפלט pacing עבור המחקרים הבאים מושחרות pacing פעמיים.</li>
	</ol>
</li>
	<li>קבוע, פרץ צועד<ol>
<li>לספק צועד קבוע עבור פעימות 99, עם מרווח pacing החל מ- 150 מילישניות, או את מרווח הזמן הארוך זה מונע והאנושיים הקצב מהותי.</li>
		<li>להפחית את מרווח הזמן pacing בהדרגה עם שלבים 5 מילי-שניות, עד 40 ms או עד להגיע למרווח זה נכשל לקבל 1:1 לכידתו של האטריום.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Extrastimulus יחיד צועד<ol>
<li>הגדר אורך מחזור pacing הכונן בסיסי (S1) 120 ms, 100 ms ו- 80 ms אלא אם הקצב מהותי outpaces הכונן בסיסי או שיהיה כשל pacing להשיג עירור פרפור 1:1.</li>
		<li>הגדר את המספר של צועד גירויים 10 פעימות לרכבת נסיעה בסיסיים.</li>
		<li>הגדר את extrastimulus הראשון (S2)-10 ms אורך מחזור בסיסי.</li>
		<li>לספק S2 לאחר הגירוי pacing האחרון של הכונן בסיסי.</li>
		<li>לקצר את מרווח הזמן צימוד של S2 בהדרגה עם שלבים 5 מילי-שניות, עד S2 לא יצליח depolarize האטריום.</li>
		<li>לקבוע תקופת עקשן יעיל (ERP) בתור הארוך המרווח S2 ואשר depolarize האטריום.</li>
		<li>הערכת ERP באורכים שונים מחזור בסיסי לפחות 3 כדי להעריך את קצב העיבוד של ERP.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Extrastimuli כפולים ומשולשים צועד לזירוז tachyarrhythmias פרפור<ol>
<li>לאפס את מרווח S2 לנקודת 20 ms מחוץ ERP S2 אם אין הפרעות קצב הם נצפו.</li>
		<li>הוסף extrastimulus השני (S3), החל המרווח באותו הזמן כמו S2.</li>
		<li>להקטין את מרווח הזמן צימוד בין S2 S3 בהדרגה עם שלבים 5 מילי-שניות עד S3 נכשל depolarize האטריום.</li>
		<li>אפס את מרווח הזמן של S2 נקודה 10 ms מחוץ ERP, ולאחר מכן חזור על שלב 3.5.3.</li>
		<li>לאפס את המרווחים S2 ו- S3 לנקודות 20 ms מחוץ לכל ERP.</li>
		<li>הוסף extrastimulus השלישי (S4), החל המרווח באותו הזמן כמו S3.</li>
		<li>להקטין את מרווח הזמן צימוד בין S3 S4 בהדרגה עם שלבים 5 מילי-שניות עד S4 נכשל depolarize האטריום.</li>
		<li>לאפס את מרווח S3 לנקודת 10 ms מחוץ ERP, ולאחר מכן חזור על שלב 3.5.7.</li>
		<li>לאפס את המרווחים S2 ו- S3 נקודות 10 ms מחוץ ERP, ולאחר מכן חזור על שלב 3.5.7.</li>
		<li>להגדיר את inducibility של tachyarrhythmias פרפור מאת אינדוקציה לשחזור באמצעות גירויים מתוכנתים באופן דומה.</li>
	</ol>
</li>
	<li>הערכת inducibility של tachyarrhythmias פרפור<ol>
<li>ללא הרף להקליט א במהלך כל הפרוטוקולים pacing (שלב 3.3-3.5.).</li>
		<li>לבצע הקלטות אופטי במהלך ואחרי כל גירוי, כדי להקליט את תנאי הגיוס של פרפור טכיקרדיה (AT) או תגובה פרפור החוזרות על עצמן (RAR).</li>
		<li>לאשר את הפארמצבטית על-ידי החלת באותו פרוטוקול pacing כאשר AF או של RAR הוא המושרה.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Gollob, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+mutations+in+the+Connexin+40+Gene+%28GJA5%29+in+atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22New+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Somatic mutations in the Connexin 40 Gene (GJA5) in atrial fibrillation.</a> New Engl J Med. 354, 2677-2688 (2006).</li>
<li>Gudbjartsson, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variants+conferring+risk+of+atrial+fibrillation+on+chromosome+4q25%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Variants conferring risk of atrial fibrillation on chromosome 4q25.</a> Nature. 448, 353-357 (2007).</li>
<li>Ellinor, P. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meta-analysis+identifies+six+new+susceptibility+loci+for+atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Meta-analysis identifies six new susceptibility loci for atrial fibrillation.</a> Nat. Genet. 44, 670-675 (2012).</li>
<li>Sinner, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrating+genetic%2C+transcriptional%2C+and+functional+analyses+to+identify+5+novel+genes+for+atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Integrating genetic, transcriptional, and functional analyses to identify 5 novel genes for atrial fibrillation.</a> Circulation. 130, 1225-1235 (2014).</li>
<li>Laughner, J. I., Ng, F. S., Sulkin, M. S., Arthur, R. M., Efimov, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Processing+and+analysis+of+cardiac+optical+mapping+data+obtained+with+potentiometric+dyes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol-Heart+C%22%5BJournal%5D)">Processing and analysis of cardiac optical mapping data obtained with potentiometric dyes.</a> Am J Physiol-Heart C. 303, H753-H765 (2012).</li>
<li>Oishi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretch+of+Atrial+myocytes+stimulates+recruitment+of+macrophages+via+ATP+released+through+gap-junction+channels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Stretch of Atrial myocytes stimulates recruitment of macrophages via ATP released through gap-junction channels.</a> J. Pharmacol. Sci. 120, 296-304 (2012).</li>
<li>Herron, T. J., Lee, P., Jalife, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging+of+voltage+and+calcium+in+cardiac+cells+%26+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Optical imaging of voltage and calcium in cardiac cells & tissues.</a> Circ. Res. 110, 609-623 (2012).</li>
<li>Girouard, S. D., Pastore, J. M., Laurita, K. R., Gregory, K. W., Rosenbaum, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+mapping+in+a+new+guinea+pig+model+of+ventricular+tachycardia+reveals+mechanisms+for+multiple+wavelengths+in+a+single+reentrant+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Optical mapping in a new guinea pig model of ventricular tachycardia reveals mechanisms for multiple wavelengths in a single reentrant circuit.</a> Circulation. 93, 603-613 (1996).</li>
<li>Koizumi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+defects+in+a+His-Purkinje+system+transcription+factor%2C+IRX3%2C+cause+lethal+cardiac+arrhythmias%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Heart+J%22%5BJournal%5D)">Genetic defects in a His-Purkinje system transcription factor, IRX3, cause lethal cardiac arrhythmias.</a> Eur. Heart J. 37, 1469-1475 (2016).</li>
<li>Glukhov, A. V., Uchida, K., Efimov, I. R., Nichols, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+roles+of+KATP+channel+subunits+in+metabolic+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Cell.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Functional roles of KATP channel subunits in metabolic inhibition.</a> J. Mol. Cell. Cardiol. 62, 90-98 (2013).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-fat+diet+increases+vulnerability+to+atrial+arrhythmia+by+conduction+disturbance+via+miR-27b%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Cell.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">High-fat diet increases vulnerability to atrial arrhythmia by conduction disturbance via miR-27b.</a> J. Mol. Cell. Cardiol. 90, 38-46 (2016).</li>
<li>Choi, B. -R., Salama, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+maps+of+optical+action+potentials+and+calcium+transients+in+guinea-pig+hearts%3A+mechanisms+underlying+concordant+alternans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Simultaneous maps of optical action potentials and calcium transients in guinea-pig hearts: mechanisms underlying concordant alternans.</a> J. Physiol. 529, 171-188 (2000).</li>
<li>Hwang, G. -S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+calcium+and+vulnerability+to+fibrillation+and+defibrillation+in+Langendorff-perfused+rabbit+ventricles%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Intracellular calcium and vulnerability to fibrillation and defibrillation in Langendorff-perfused rabbit ventricles.</a> Circulation. 114, 2595-2603 (2006).</li>
<li>Kwaku, K. F., Dillon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shock-induced+depolarization+of+refractory+myocardium+prevents+wave-front+propagation+in+defibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Shock-induced depolarization of refractory myocardium prevents wave-front propagation in defibrillation.</a> Circ. Res. 79, 957-973 (1996).</li>
<li>Lang, D., Sulkin, M., Lou, Q., Efimov, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+mapping+of+action+potentials+and+calcium+transients+in+the+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Optical mapping of action potentials and calcium transients in the mouse heart.</a> J. Vis. Exp. (55), e3275(2011).</li>
<li>Eijsbouts, S. C. M., Majidi, M., Zandvoort, M. v, Allessie, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+acute+atrial+dilation+on+heterogeneity+in+conduction+in+the+isolated+rabbit+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cardiovasc.+Electr%22%5BJournal%5D)">Effects of acute atrial dilation on heterogeneity in conduction in the isolated rabbit heart.</a> J. Cardiovasc. Electr. 14, 269-278 (2003).</li>
<li>Ravelli, F., Allessie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Atrial+dilatation+on+refractory+period+and+vulnerability+to+atrial+fibrillation+in+the+isolated+Langendorff-perfused+rabbit+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Effects of Atrial dilatation on refractory period and vulnerability to atrial fibrillation in the isolated Langendorff-perfused rabbit heart.</a> Circulation. 96, 1686-1695 (1997).</li>
<li>Sasano, T., McDonald, A. D., Kikuchi, K., Donahue, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+ablation+of+ventricular+tachycardia+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Molecular ablation of ventricular tachycardia after myocardial infarction.</a> Nat. Med. 12, 1256-1258 (2006).</li>
<li>Wakimoto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+atrial+tachycardia+and+fibrillation+in+the+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Induction of atrial tachycardia and fibrillation in the mouse heart.</a> Cardiovasc. Res. 50, 463-473 (2001).</li>
<li>Haissaguerre, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+Initiation+of+Atrial+Fibrillation+by+Ectopic+Beats+Originating+in+the+Pulmonary+Veins%5BTitle%5D)+AND+%22New+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Spontaneous Initiation of Atrial Fibrillation by Ectopic Beats Originating in the Pulmonary Veins.</a> New Engl J Med. 339, 659-666 (1998).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

מיפוי אופטי הוא תרגיל ומבוססת ללמוד את הלב אלקטרופיזיולוגיה7, הוא כלי שימושי למדי להעריך לא רק להפרעה8,9, אלא גם אלה פרפור10,11 . מיפוי סימולטני של פוטנציאל transmembrane ו- Ca2 + שנחשולי שימושי להבנת המנגנון הבסיסי של הפרעות קצב ביחס אי ספיקת לב, מחלות לב אחרות,12,13. כאשר משווים את אלקטרופיזיולוגיות להערכת שיטות אחרות, כגון אלה באמצעות תא בודד או גיליון תא, אחד דברים מוחלטים של מיפוי אופטי בלב perfused הוא ההערכה של התבנית הולכה בפרוזדור ללא פגע, החדר, לא רק במהלך קצב סינוס, אלא גם במהלך induced הפרעות קצב14. ניסיון לנצל מאתר לבבות, במיוחד האטריום, בתור פונדקאית של בני אדם נתקל בקשיים בעיקר בשל גודלם הקטן, עם זאת, העכבר הוא מדגם ניסיוני אטרקטיבי מבחינת ההערכה של חיים מהונדס מודל, בעיה זו להכריעו. הגישה שלנו מספק דיירקשן לפתור אותה.
למרות מכשיר אופטי מיפוי שלנו היה בעיקרון דומה למערכת קונבנציונליים עבור כל מאתר לבבות15, השיטה שלנו יש את היתרון של הערכת האטריום מאתר על ידי ביצוע מספר שינויים אליו. ראשית, אנחנו רדף להשיג רזולוציה יכולות גבוהה של עד 0.1 ms/מסגרת 20 מיקרומטר לפיקסל ואת מיפוי ברזולוציה גבוהה זה תרם מדידה מדויקת יותר של דפוס מהירות והתפשטות של הולכה בפרוזדור מאתר. שנית, כדי למנוע פגיעה מכנית מיותרת או מתיחה של האטריום, אשר יכול לשנות מאפייני אלקטרופיזיולוגיות 16,17, שכנה המחט מוחדרת ישירות לתוך בעירוי כדי להפחית את הלחץ אינטרה-הקאמרית, במקום להכניס את זה דרך לה כפי שבוצע הקודם לומדים15. יתר על כן, הגירוי pacing מועבר דרך קטטר אלקטרודה גודל מותאם אישית 1-צרפתית עשוי להציב את רא, אבל לא על ידי אלקטרודה המחט, אשר עלול לפגוע האטריום. סיכות נחסכים בתיקון הפרוזדור, אשר שימשו את לימוד העבר15. שלישית, מבחינת ההערכה של המנגנון הבסיסי של הפרעות בקצב הלב, פרוטוקול גירוי מתוכנת לזירוז tachyarrhythmias פרוזדורים הוא מכריע18,19. אנו מבצעים זהה לזו מתוכנת גירוי במחקרים קליניים אלקטרופיזיולוגיות, כולל פרץ צועד ועד extrastimuli טריפל צועד, עם שינוי של מרווח הזמן pacing ללב העכבר. לכן, בנוסף הפרמטרים מידה בסיסית, הפרוטוקול יכול להעריך את inducibility של AT. בעת הצורך, inducibility של AT שקובעת עם הממשל של isoproterenol או תרופות אחרות. מניסיוננו, העכברים פראי-סוג בקושי מופיעים כל ATs גם לאחר פרוטוקול גירוי מלאה. לפיכך, inducibility של AT צריך להיות מידע חשוב להערכת התרומה של מספר תנאים פתולוגיים כגון מוטציות גנטיות, ניתוחים הממשל של סמים11. שינויים אלה יכול למטב את ההערכה אלקטרופיזיולוגיות מדויק באטריום מאתר ללא פגע.
בשיטה זו יש גם מספר מגבלות. ראשית, שימוש ברזולוציה המרחבית מקסימלית עם עדשה המטרה X 5, שדה הראייה (FOV) מוגבל לחלק של האטריום (כלומר. רק שמאלה הפרוזדור כמו באיור איור 2a). עבור קבלת של FOV גדול יותר של האטריום, עדשה המטרה X 1.6 הוא לפעמים עדיפה (איור 2b). שנית, מבלי לתקן את האטריום עם סיכות, לפעמים קשה למדוד את המאפיינים הולכה פרפור כראוי, כי השטח פרפור עקום. אז, אנחנו במקום הזכוכית המכסה על המשטח לשטח זה במקום לתקן אותה על-ידי סיכות. שיטה זו היא גם מועיל למניעת תנועה חפץ מן התנודות של הפתרון. שלישית, בשיטה שלנו, זה די קשה להשיג את FOV כולו, אז להשתמש התצוגה anterior ואת אחורי כראוי חשוב יותר בגישה שלנו יותר בגישה אחרת כפי שמוצג באיור2. היתרון של התצוגה הקדמי יהיה ברור התבוננות לאטמוספרה במקרה של מצבים פתולוגיים, במיוחד התוספתן (איור 4). מצד שני, הנוף האחורי יש יתרון של קבלת תצוגה טובה של הקיר האחורי פרפור, וייתכן הקלטה מפורטת של מפעילה פעילות מן השרוול שריר הלב. כאשר קשה להשיג קובץ תצוגה מתאים, לשטח פני השטח שלו מעוקל עם השיטה שלנו, ניתן לתקן את האטריום עם המתח מינימלי באמצעות סיכות.
בשיטה שלנו, יש 3 בעיות אפשריות, כשל של צביעת, צועד בקצב הלב אינדוקציה. לכישלון של צביעת, אם אין או קרינה פלואורסצנטית קלה הוא ציין, אתה צריך לבדוק האם המנגנון מיפוי אופטי מורכב כראוי, וה -אם הכימית כראוי המאוחסנים בשימוש. התנאי של הפתרון זלוף הוא גם חיוני, אשר יכולים להשפיע גם את המאפיינים אלקטרופיזיולוגיות של הלב עצמו, אז המצב של פתרון כולל את ה-pH, טמפרטורה, ויש במציאותם לערבב מספיק להיות במעקב בלבד. חשוב גם להימנע מכל תסחיף אוויר בלב. עבור צועד כשל, אם הגירויים pacing לא יכול לרגש האטריום, חוקרים צריך לבדוק אם החיווט הנכון באמצעות כבודק במעגל. כאשר הגירויים pacing הם outputted כראוי, הבעיה היא הקשר של האלקטרודה עם הרקמה. מיקום מחדש של האלקטרודות ניתן לפתור את הבעיה, הגישה שלנו בעזרת הצנתר pacing מקלה. על הקושי אינדוקציה בקצב הלב, RV צועד יכול לשמש את אינדוקציה של AT במקרים מסוימים המוגבלת. באמצעות צנתר אלקטרודה quadripolar אשר דיסטלי שתי אלקטרודות ואלקטרודות proximal עשויה להימצא ב RV ו רא, בהתאמה, זה קל לשנות את האתר pacing מרה בקרוואן קטטר זה שימושי גם הסטה של עירור חדרית כאשר אות הפעלה בו-זמנית חדרית מסכות האות עירור פרפור.
שיטה זו תורמת כדי לבדוק את ה-גנוטיפ פנוטיפ באינטראקציה AF הקשורים גנים נמצאו לאחרונה על ידי מחקרים חדשניים כגון GWAS, במיוחד על הגנים אשר החקירה נכשל להראות להם על ידי גישות אחרות. עם ההתקדמות של מכשירים וטכניקות, המאפיינים אלקטרופיזיולוגיות של השרוול וריד ריאתי, אשר הוא מקור חשוב של AF20, יכול להיות מוערך בלב שלם עם גישה זו.

הלב מורכב 4 תאי יונקים. שני התאים העליונה הינם אטריה, התחתונות נמצאות החדרים. החדרים לעבוד משאבה כדי להוציא דם מחזור הדם מערכתית או ריאתי. אטריה לקבל דם שחזר מן הורידים מערכתית או ריאתי, ולסייע בהעברת דם לתוך מתגלה כדי לקבל תפקיד משאבת הלב יעיל. מתוך היבט אלקטרופיזיולוגיות, הפונקציה העיקרית אטריה היא לווסת את קצב הלב. האותות החשמליים מקורן הצומת סינוס ממוקם בצומת בין הווריד הנבוב העליון (SVC) לבין העלייה הימנית (RA), ולאחר מכן להפיץ את רא, אטריום שמאל (LA), לנהל את הנוזלים דרך צומת atrioventricular שלו-Purkinje מערכת הולכה.
הפרעות בקצב הלב, אשר הפרעות קצב בלב, מסווגים לתוך חדרית על פי מוצאם, פרפור. פרפור פרוזדורים (AF) היא הצורה הנפוצה ביותר מתמשכת של הפרעה בקצב הלב, המאופיינת על ידי עירור אקראי ומהיר של אטריה. ניתוח גנטי האחרונות ולימודי הגנום כולו האגודה (GWAS) הראו את הקשר בין AF, מוטציות גנטיות או3,2,1,monopolymorphisms4. ממצאים אלה מצביעים על ש-AF משויכת לפחות חלקית הגורם הגנטי. לכן, חיוני כדי להעריך את האינטראקציות גנוטיפ-פנוטיפ אטריה באמצעות מודל בעלי חיים מהונדס. מקובל כי העכבר הוא היונק ביותר על ההנדסה הגנטית.
הטכניקה אופטי מיפוי פותחה כדי להעריך את עירור של רקמת הלב. עם זאת, התבוננות האטריום מאתר על ידי מיפוי אופטי היא הקשו על ידי גודלו הקטן יחסית. אנו מנסים להשיג הערכה מפורטת של האטריום מאתר עם רזולוציה טמפורלית, מרחבית גבוהה.

<table><tbody><tr><td>(-)-Blebbistatin</td><td>SIGMA</td><td>B0560-1MG</td><td>מצמד EC לביטול חפץ תנועה במהלך מיפוי אופטי</td></tr><tr><td>RH237</td><td>Biotium</td><td>61018</td><td>צבע רגיש למתח</td></tr><tr><td>Rhod2AM</td><td>Biotium</td><td>50024</td><td>מחוון Ca</td></tr><tr><td>Pluronic F-127 תמיסה 20% ב-DMSO</td><td>Biotium</td><td>#59000</td><td>לשיפור הצביעה עם Rhod2AM</td></tr><tr><td>Di-4-ANEPPS</td><td>Wako</td><td>041-29111</td><td>צבע רגיש למתח</td></tr><tr><td>דימתיל סולפוקסיד</td><td>Wako</td><td>046-21981</td><td>ממס לריאגנטים</td></tr><tr><td>מסנן עליון בקבוק</td><td>קורנינג</td><td>430513</td><td>לסינון התמיסה של Tyrode</td></tr><tr><td>Haparin Sodium</td><td>Mochida Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>N/A</td><td>כדי למנוע קרישי דם בעורק הכלילי</td></tr><tr><td>אבן אוויר (&phi; 8 מ"מ x 10 מ"מ)</td> <td>Tokyo Koshin Rikagaku Seisakusho</td><td>N/A</td><td>לאוורור</td></tr><tr><td>Pentobarbital</td><td>Kyoritsu Seiyaku Corporation</td><td>N/A</td><td>להרדמה</td></tr><tr><td>ממריץ ניתן לתכנות</td><td>Fukuda Denshi</td><td>BC-05</td><td>Fukuda Denshi שכר אותנו בחביבות.</td></tr><tr><td>Power Lab</td><td>AD Instruments</td><td>Powerlab 26/8SP</td><td>להקלטת לחץ דם ואלקטרוקרדיוגרמה</td></tr><tr><td>מגבר Bio Amp</td><td>AD Instruments</td><td>ML132</td><td>לאלקטרוקרדיוגרמה</td></tr><tr><td>BP Amp</td><td>AD Instruments</td><td>מגבר FE117</td><td>ללחץ דם</td></tr><tr><td>LabChart</td><td>AD Instruments</td><td>גרסה 7</td><td>תוכנה להקלטה וניתוח לחץ דם ואלקטרוקרדיוגרמה</td></tr><tr><td>מתמר BP חד פעמי</td><td>AD מכשירים</td><td>מתמר</td><td>לחץ</td></tr><tr><td>MLT0670 1-Fr קטטר אלקטרודות בהתאמה אישית</td><td>Unique Medical</td><td>N/A</td><td>לקצב האטריום הימני</td></tr><tr><td>צינור פוליאתילן (OD: 0.8 מ"מ, ID: 0.5 מ"מ)</td> <td>Natume Seisakujo</td><td>SP31</td><td>הכנס לווריד הנבוב העליון כדי להכניס קטטר אלקטרודה</td></tr><tr><td>Millex-SV 5.00 &mu; m</td><td>Merk Millipore</td><td>SLSV025LS</td><td>כדי לסנן את המחט השוכנת במחזור Tyrode</td></tr><tr><td>24 מד</td><td>TERUMO</td><td>SR-FS2419</td><td>הוכנס לחדר השמאלי כדי להפחית את הלחץ במחט תא</td></tr><tr><td>21 מד</td><td>TERUMO</td><td>SN-2170</td><td>חתכנו את קצה המחט והקהינו אותו על ידי הגשת</td></tr><tr><td>מחט 25 מד</td><td>TERUMO</td><td>NN-2525R</td><td></td></tr><tr><td>מזרק 1 מ"ל</td><td>TERUMO</td><td>צינור PVC SS-01T</td><td></td></tr><tr><td></td><td>TERUMO</td><td>SF-ET0525</td><td>למעגל הזלוף של לנגנדורף</td></tr><tr><td>תא עצירה תלת כיווני</td><td>TERUMO</td><td>TS-TL2K</td><td>למעגל הזלוף של לנגנדורף</td></tr><tr><td>צלחת פטרי</td><td>כאחד</td><td>3-1491-01</td><td></td></tr><tr><td>קוסטום עשה סליל זכוכית חימום</td><td>Motohashi Rika</td><td>N / A</td><td>כדי לשמור על טמפרטורת תמיסת הזלוף</td></tr><tr><td>Custum עשה תא זכוכית מחמם</td><td>Motohashi Rika</td><td>N/A</td><td>לשמירה על טמפרטורת תמיסת הזלוף</td></tr><tr><td>מכשיר מחזור בטמפרטורה קבועה</td><td>Lauda</td><td>E100</td><td>מחובר לסליל חימום ותא חימום</td></tr><tr><td>כיסוי זכוכית (25 מ"מ ופעמים; 60 מ"מ)</td> <td>Matsunami</td><td>C025601</td><td>לבש את הפרוזדורים כדי לשטח את אזור ההקלטה</td></tr><tr><td>משאבת פריסטה</td><td>ATTO</td><td>SJ-1211</td><td>משאבה פריסטלטית</td></tr><tr><td>Stemi DV4</td><td>Carl Zeiss</td><td>N/A</td><td>סטריאומיקרוסקופ</td></tr><tr><td>MiCAM ULTIMA-L2</td><td>Brainvision Inc.</td><td>מערכת מיפוי אופטית</td> <td>UL-L2</td></tr><tr><td>BV_Ana תוכנה</td><td>Brainvision Inc.</td><td>BV_Ana</td><td>תוכנת ניתוח נתונים</td></tr><tr><td>THT Macroscope</td><td>Brainvision Inc.</td><td>THT-ZS</td><td>Epi-Illumination Unit</td></tr><tr><td>מקור אור LED</td><td>Brainvision Inc.</td>מראה דיכרואית <td>LEX2-G</td><td></td></tr><tr><td>560 ננומטר</td><td>Brainvision Inc.</td><td>DM560</td><td>Epi-Illuminatinon</td></tr><tr><td>מסנן עירור 520/35 ננומטר</td><td>Semrock, Inc.</td><td>FF01-520/35-25</td><td></td></tr><tr><td>עדשת הקרנה תוכנית S 1.0X</td><td>קארל זייס</td><td>435200-0000-000</td><td></td></tr><tr><td>כונן פוקוס</td><td>קארל זייס</td><td>435400-0000-000</td><td></td></tr><tr><td>עדשת אובייקט אקדח</td><td>קארל זייס</td><td>435302-0000-000</td><td></td></tr><tr><td>עמודת פוקוס ידנית</td><td>קארל זייס</td><td>435400-0000-000</td><td></td></tr><tr><td>בסיס מקרוסקופ</td><td>קרל זייס</td><td>435430-9901-000</td><td></td></tr><tr><td>מדריך אור ישר</td><td>MORITEX Corporation</td><td>MSG10-2200S</td><td>עדשת מעבה Epi-Illuminatinon</td></tr><tr><td></td><td>MORITEX Corporation</td><td>ML-50</td><td></td></tr><tr><td>PLANAPO 5.0X</td><td>Leica Microsystems</td><td>10447243</td><td>עדשת אובייקטיבית</td></tr><tr><td>PLANAPO 1.0X</td><td>Leica Microsystems</td><td>10447157</td><td>עדשת אובייקטיבית</td></tr><tr><td>PLANAPO 1.6X</td><td>Leica Microsystems</td><td>10447050</td><td>עדשת אובייקטיבית</td></tr><tr><td>מפצל קרן</td><td>Brainvision בע"מ</td><td>FLSP-2</td><td></td></tr><tr><td>מראה דיכרואית 665 ננומטר</td><td>Brainvision Inc.</td><td>DM665</td><td>מסנן פליטת מפצל קרן</td></tr><tr><td>572/28 ננומטר</td><td>אופטיקה אדמונד</td> <td>#84-100</td><td>מסנן פליטת רוד2-AM</td></tr><tr><td>697/75 ננומטר</td><td>סמרוק, בע"</td>מ<td>FF01-697 / 75-25</td><td>RH237 ו- Di-4-ANEPPS</td></tr><tr><td>0.2 מ"ל צינור PCR</td><td>גריינר ביו-וואן</td><td>671201</td><td></td></tr><tr><td>רדיד אלומיניום</td><td>Toyo alumi</td><td>0020</td><td></td></tr></tbody></table>

אלקטרופיזיולוגיות להערכת אטריה מאתר עם מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה

Electrophysiological Assessment of Murine Atria with High-Resolution Optical Mapping

מחקרים שנערכו לאחרונה האגודה הגנום כולו מיקוד פרפור פרוזדורים (AF) הראו קשר חזק בין גנוטיפ פנוטיפ אלקטרופיזיולוגיות בתוך אטריה. זה מעודד אותנו לנצל את מודל העכבר מהונדס התירי את המנגנון של AF. עם זאת, קשה להעריך את המאפיינים אלקטרופיזיולוגיות אטריה מאתר בשל גודלם הקטן. פרוטוקול זה מתאר הערכת אלקטרופיזיולוגיות אטריה באמצעות מערכת מיפוי אופטי עם רזולוציה טמפורלית, מרחבית גבוהה בליבם מאתר Langendorff perfused. מערכת מיפוי אופטי מורכב עם כפולה במהירות גבוהה משלימים תחמוצת מתכת מוליכים למחצה מצלמות ועדשות בהגדלה אובייקטיבי, כדי לזהות את זריחה של מתח רגיש צבע ו- Ca2 + מחוון. כדי להתמקד ההערכה של אטריה מאתר, מתבצע מיפוי אופטי עם שטח של 2 מ מ × 2 מ מ או 10 מ"מ x 10 מ מ, עם 100 × 100 רזולוציה (20 מיקרומטר לפיקסל או 100 מיקרומטר לפיקסל), קצב הדגימה של עד 10 קילו-הרץ (0.1 ms) מקסימום. אלקטרודה quadripolar גודל 1-צרפתית צועד קטטר ימוקם אטריום ימין דרך הווריד הנבוב הימנעות נזק מכני האטריום, צועד גירוי מועבר דרך הקטטר. המחקר אלקטרופיזיולוגיות מתבצע באמצעות גירוי מתוכנת כולל צועד קבוע, פרץ צועד, ועד extrastimuli טריפל צועד. תחת ספונטני או צועד קצב, המיפוי אופטי הקליט את פוטנציאל הפעולה משך ההפעלה מפה, מהירות הולכה, Ca2 + ארעי בנפרד בתוך אטריה ימין ועל שמאל. בנוסף, גירוי מתוכנת קובע גם את inducibility של tachyarrhythmias פרפור. מיפוי מדויק ההפעלה מתבצעת כדי לזהות המשכיות עירור באטריום במהלך tachyarrhythmia פרפור המושרה. מיפוי אופטי עם סביבה מיוחדים מאפשרת הערכה אלקטרופיזיולוגיות יסודית של האטריום מאתר דגמים פתולוגיים.

מיפוי אופטי הניסויים מתבצעים באמצעות המכשירים כפי שמוצג באיור 1a. הסכימה של מערכת אופטית מודגם ב איור 1b. המערכת מספקת ניתוח ברזולוציה גבוהה של פוטנציאל הממברנה, Ca2 + ארעית בתוך הפרוזדור.
כפי שהיא מתוארת באיור 1 c ו- d, בלב המבודד ממוקם בתוך תא טמפרטורה מבוקרת. צנתר אלקטרודה גודל 1-צרפתית מושם ב ר. א דרך צינור PE מוכנס לתוך SVC ולאחר עוד צינור PE שכנה מוכנס לתוך חלל LV מהקודקוד LV כדי למנוע לחץ רב מדי על תא הלב. עבור הקלטה סימולטני אק ג, הקתודה (אק ג עופרת [-]) מחובר המחט תעלות, האנודה (אק ג עופרת [+]) מחובר האלקטרודה pin מוכנס לתוך השיא חדרית. התכונה של הרכבה זו היא למנוע נזק מכני אטריה.
עבור הערכת מתח הממברנה, נרשם עם פלורסצנטיות באמצעות di-4-ANEPPS עד קצב הדגימה מסגרות לשנייה 10,000 (איור 2). המפה הפעלה מתקבל במהלך קבוע צועד נמסר מרע המיפוי בסדר המאפשרת הניתוח של הדפוס הולכה מפורט ב אטריה מאתר קטן.
איור 3 מדגים עקבות נציג של מתח הממברנה, Ca2 + ארעי באל באמצעות RH237 ו- Rhod2AM במהלך קבוע צועד מרע להפחית את קצב הדגימה של המיפוי כדי 1000 מסגרות לשנייה כדי לקבל יחס אות/רעש מספיקות של האות Rhod2AM עם ההגדרה הנוכחית. עם זאת, המערכת מספקת איכות מספיק לניתוח היחסים בין פוטנציאל הפעולה לבין Ca2 + ארעית.
אנחנו לאחר מכן לבצע אינדוקציה של tachyarrhythmia פרפור עם גירוי מתוכנת שימוש בעכברים תחת מצב פתולוגי. איור 4 תערוכות הקלטת האופטי של המושרה AT באטריום מאתר מוכתם di-4-ANEPPS. העכבר עובר הליך התרחבות אבי העורקים רוחבי כדי להחיל עומס הלחץ לאטריום 10 ימים לפני הניסוי6. אנחנו זירוז AT מאת extrastimuli טריפל צועד (120/100/100/80), ולבחון התפשטות של מעגל reentrant.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56478/56478fig1.jpg"> איור 1. מערכת מיפוי אופטי. א העצרת הכללית של מערכת מיפוי electrophysiology/אופטי. b. מפרטים טכניים של ההרכב של מערכת מיפוי אופטי: החץ הכחול מציין את עירור אור שנוצר על ידי מקור האור. ניתן להחליף את העדשה המטרה עם הצריח. האור הנפלט מכל הלב מוכתם מפוצל בין מצלמה 1 מצלמה 2 תשאר. מצלמה 1 מזהה את האותות אורך גל ארוך עבור מתח הממברנה, מצלמה 2 רשומות אורכי הגל עם מסנן bandpass של 580 nm ± 20 עבור Ca2 + והחולף. במהלך ההליך, הלחץ אק ג זלוף נרשמים באופן רציף, האות א הוא גם לייבא בו-זמנית המפה אופטי תוכנת צריבת. ג הכנה של לבבות בודדים: ליבם הם לצינוריות עם מחט קהות דרך העורקים עבור זלוף. להקלטות אק ג בו זמנית, הקתודה מחובר המחט תעלות, האנודה עם האלקטרודה pin מוכנס לתוך השיא חדרית. האלקטרודות ובשעות תעלות ד : הלב הוא לצינוריות עם מחט קהות 21-מד עבור זלוף (תעלות מחט). בגודל 1-צרפתית מגרה אלקטרודה (אלקטרודה) ממוקם באטריום ימין דרך צינור פוליאתילן מוכנס לתוך הווריד הנבוב. תא זכוכית מחומם ב 37 הלעפה תרוטרפמט על ידי מים מחומם במחזור חלל החדר. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/56478fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56478/56478fig2.jpg"> באיור 2. הפעלת מפה באטריום. א הפעלת נציג מפות בתצוגה קדמית עם 5 X עדשת אובייקטיבי, ו - b בתצוגה האחורי עם עדשה המטרה X 1.6. (משמאל לוח) תיאור סכמטי של אטריום והלב מבודד. (לוח נכון) הפעלת מפה של אטריום שמאל שהושג עם די-4-ANEPPS מכתים-מסגרות 10,000/s. ההקלטה מתבצעת תחת קבוע צועד עם האלקטרודה מגרה ממוקמת ב אטריום ימין. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/56478fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56478/56478fig3.jpg"> איור 3. הקלטה כפולה של פוטנציאל הפעולה, Ca2 + ארעי ב אטריום שמאל. א סכמטי של הלב מבודד. b. תמונה ייצוגית של האינטנסיביות של זריחה מימדי באמצעות RH237 עבור מתח הממברנה (Vm) ו- Rhod2AM עבור Ca2 + והחולף. ההקלטה מתבצעת עם עדשה המטרה X 5 ב-1000 מסגרות/s. c. הקלטה בו זמנית של אק ג (למעלה), האות RH237 (באמצע), האות Rhod2AM (למטה), בזמן קבוע צועד עם האלקטרודה גירוי ב אטריום ימין. החצים השחורים מציינים גירוי קוצים חיצים צהובים של עירור חדרית. אפקט פיזור אור מן הנוזלים גם יכול להיות שנצפו (חץ צהוב) הן RH237 אות, אות Rhod2AM. ד הממוזג RH237 ו- Rhod2AM לאתר. פוטנציאל הפעולה של Ca2 + שינויים חולף נרשמים בו זמנית. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/56478fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56478/56478fig4.jpg"> באיור 4. מיפוי ההפעלה במהלך טכיקרדיה פרפור. (משמאל לוח) תיאור סכמטי של הלב מבודד. (התיכון לוח) מפת ההפעלה במהלך טכיקרדיה פרפור (AT). AT הסחרור הושפע extrastimuli טריפל צועד נמסר מהפרוזדור הימני. (לוח נכון) מפת ההפעלה במהלך קצב סינוס בלב העכבר זהה. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/56478fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
הסרט משלים 1. הסרט מייצג של קרום פוטנציאליים בתוך הפרוזדור באמצעות צביעת עם די-4-ANEPPS. <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/Supplementary_movie_1.zip">אנא לחץ כאן כדי להוריד את הקובץ.</a>
הסרט משלים 2. סרטים נציג של המיפוי הפעלה בזמן פרפור קצב סינוס טכיקרדיה. <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56478/Supplementary_movie_2.zip">אנא לחץ כאן כדי להוריד את הקובץ.</a>

פרוטוקול זה מתאר הערכת אלקטרופיזיולוגיות אטריה מאתר ניצול מערכת מיפוי אופטי עם הגיאופוליטיות והמרחביות טמפורלית רזולוציה גבוהה, כולל הקלטות כפולה של מתח הממברנה, Ca2 + חולף תחת מתוכנת גירוי דרך קטטר אלקטרודה מיוחדת.

Recent genome-wide association studies targeting atrial fibrillation (AF) have indicated a strong association between the genotype and ...

המטרה הכוללת של ניסוי זה היא להשיג הערכה מפורטת של אטריום העכברים עם רזולוציה זמנית ומרחבית גבוהה במהלך קצב סינוס תקין והפרעות קצב פרוזדוריות הנגרמות על ידי גירוי חשמלי. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום האלקטרופיזיולוגי של הלב, כגון כיצד מוטציות גנטיות תורמות להפרעות קצב פרוזדורים. היתרון העיקרי בטכניקה זו הוא שאנו יכולים להשיג את המיפוי האופטי המדויק בפרוזדורים, תוך התמקדות במנגנון ההתחלה והתחזוקה של הפרעות קצב פרוזדורים.פרטים על מנגנון לנגנדורף שהוקם, כולל הרכבת מעגל הזילוף, מסופקים בפרוטוקול הטקסט. פרמטרי הדמיה מסופקים גם בטקסט. כדי להכין את העכבר לקנולציה יש לטפל בו בהפרין ולהרדים אותו כמפורט בטקסט.הקפד לאשר את ההרדמה באמצעות בדיקת רפלקס לפני שתמשיך. כדי להמשיך, אבטח את העכבר במצב שכיבה על לוח ההפעלה. לאחר מכן, פתח את דופן הבטן מתחת לרמת תהליך ה- xiphoid באמצעות מספריים.לאחר מכן, בצע חתך רוחבי בסרעפת וחתך את שני צידי הצלעות בקו בית השחי המדיאלי מבלי לפגוע בלב. לאחר מכן, כרתו במהירות את הלב יחד עם כלי הדם והרקמות הסמוכים. לאחר מכן, שטפו את הלב עם 10 מיליליטר PBS קר כקרח והסירו את הרקמות שמסביב.לאחר מכן, לתוך אבי העורקים העולה, הכניסו את קצה המחט הקהה בגודל 21 המחוברת למעגל הזילוף. תחת סטריאוסקופ, תקן אותו במקומו בעזרת תפרים. כעת, שטפו את הלב בתמיסה של טירוד מאווררת בחמצן טהור למשך 10 דקות.במהלך הזילוף, עקוב באופן רציף אחר לחץ הזילוף. שמור אותו בין 80 ל -100 מילימטרים של כספית. במהלך הזלוף, הכנס צינור פוליאתילן דק לתוך הווריד הנבוב העליון והשתמש בתפרים כדי להחזיק אותו במקומו.לאחר מכן, הנח את הלב בתא הזכוכית המחומם. ברגע שנכנסים לחדר, יש לנקב את חלל החדר השמאלי עם מחט שוכנת בקוטר 24 על ידי מעבר דרך קודקוד החדר כדי למנוע נזק לאטריום. לאחר מכן, הסר את המחט הפנימית והשאיר צינורית חיצונית בחדר השמאלי.לאחר מכן, הכניסו קטטר אלקטרודה מרובע קוטבי 1 צרפתי, בהתאמה אישית, דרך הצינור בווריד הנבוב העליון כדי לעורר את הפרוזדור הימני. כעת, הכנס אלקטרודת סיכה לקודקוד החדר כדי להקליט ברציפות את האלקטרוקרדיוגרמה הדו-קוטבית בין אלקטרודת הסיכה למחט הקנולציה. עקוב באופן רציף אחר האלקטרוקרדיוגרמה ולחץ הזלוף לאורך כל המחקר.כדי להכתים להקלטות בודדות של מתח הממברנה, תחילה צמצם את תאורת הסביבה. יש לשמור על טמפרטורת תמיסת הזלוף על 37 מעלות צלזיוס. העבירו 10 מיליליטר של כתם במשך שתיים עד חמש דקות דרך מסלול הזילוף.לאחר מכן, רדפו אחרי הכתם על ידי החדרת התמיסה של טירוד למשך חמש דקות. הקפידו לשמור על לחץ הזלוף בין 80 ל -100 מילימטרים של כספית. לאחר מכן, יש לתת מיליליטר אחד של הבלביסטטין המדולל דרך מסלול הזילוף.יש לאשר את חיסול התכווצות הלב. כמו כן, וודאו שהלב קלט את הכתם בצורה הומוגנית. לפני שתמשיך, הגדר את אלקטרודות הקצב והממריץ ומצא את סף הקצב.כדי להמשיך, הניחו בזהירות זכוכית כיסוי על הלב המפוזר כדי לשטח את משטח הפרוזדורים ולמנוע חפץ תנועה מרטט של התמיסה. ודא שהאטריום מתחבר לזכוכית הכיסוי כראוי. כעת, ניתן להעריך גדודי קצב שונים.לקצב קבוע או פרץ, ספק 99 פעימות במרווח קצב המתחיל ב-150 אלפיות השנייה או המרווח הארוך ביותר שנמנע מקצב מהיר יותר מהקצב הפנימי. לאחר מכן, צמצם את מרווח הקצב בהדרגה בחמש אלפיות שנייה עד 40 אלפיות השנייה, או עד שהמרווח לא מצליח לעורר את האטריום. עבור קצב גירוי יחיד נוסף, הגדר את אורכי מחזור הקצב של הכונן הבסיסי או שיש לבדוק את S1.At לפחות שלושה מרווחי S1 עד S1, כגון 120, 100 ו-80 אלפיות השנייה.לאחר מכן, הגדר את הגירוי הנוסף הראשון, או S2, למינוס 10 אלפיות השנייה עבור אורך המחזור הבסיסי, וספק את ה-S2 לאחר גירוי הקצב האחרון של הדחף הבסיסי. בהדרגה, קצר את מרווח הצימוד של S2 בהדרגה, בחמש אלפיות שנייה צעדים עד שה-S2 לא מצליח לדה-פולריזציה של האטריום. קבע את תקופת העקשן האפקטיבית כמרווח S2 הארוך ביותר שאינו מצליח לדה-פולריזציה של האטריום.בעת קביעת סף המטופל או תקופת העקשן האפקטיבית, לעיתים קשה לאשר את לכידת הפרוזדורים על ידי התבוננות בקצב על האלקטרוקרדיוגרמה. במקרים כאלה, עליך לבדוק זאת באמצעות מיפוי אופטי. כדי להמשיך, החל את קצב הגירויים הנוספים הכפול והמשולש כדי לגרום לטכיאריתמיה פרוזדורית בהתאם לפרוטוקול הטקסט.מתח הממברנה בלב לנגנדורף נרשם על ידי ניטור אות הקרינה מ-di-4-ANEPPS ב-10,000 פריימים לשנייה. מפת הפעלה התקבלה על ידי קצב קבוע שנמסר מהפרוזדור הימני וניתן היה לנתח דפוס הולכה מפורט בפרוזדורי העכברים הקטנים. RH237 ו-Rhod2AM שימשו לניטור חולף הסידן בפרוזדור השמאלי במהלך אותו פרוטוקול קצב קבוע.דגימה ב-1,000 פריימים לשנייה הייתה מהירה מספיק כדי להשוות את פוטנציאל הפעולה בחולף הסידן. לאחר מכן, פרוזדורים טכיאריתמיה נוצרה בלבבות שנלקחו מעכברים 10 ימים לאחר הליך התכווצות אבי העורקים הרוחבי, שהפעיל עומס יתר על הפרוזדור. קצב גירויים נוספים משולש מ-120 עד 80 מילישניות שימש ליצירת הטכיאריתמיה, והתפשטות הטכיאריתמיה נצפתה עוברת דרך מעגל הכניסה מחדש.לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך שלוש שעות אם היא מבוצעת כראוי. בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לשמור על הפרוזדורים נקיים מכל נזק או מתח שעלולים לשנות את התכונות האלקטרופיזיולוגיות של הפרוזדורים.

electrophysiological-assessment-murine-atria-with-high-resolution

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

מאמר זה מתאר טכניקה גבוהה ברזולוציה של זמן ומרחב התנועה תמונה אופטית פעולה פוטנציאל על פני השטח של Langendorff-perfused הלבבות חולדה באמצעות צבע פוטנציומטרית (di-8-ANEPPS).

מיפוי אופטי של Langendorff-perfused לבבות עכברוש

דוח זה מספק תיאור מפורט של המתודולוגיה ואת התוצאות של מיפוי אופטי סימולטני endocardial ו epicardial של עירור חשמלי של אטריום נותר בשלמותו הלב Langendorff-perfused כבשה במהלך פרפור פרוזדורי למתוח-Induced.

ברזולוציה גבוהה מיפוי אופטי Endocardial ו Epicardial במודל הכבשים של פרפור פרוזדורי למתוח-induced

מאמר זה מתאר את ההליכים הבסיסיים לעריכת ניסויים מיפוי אופטי בלב Langendorff-perfused הארנב באמצעות מערכת הדמיה פנורמית, ואת שיטת כפול (מתח סידן) הדמיה.

Multiparametric מיפוי אופטי של הלב Langendorff-perfused הארנב

מאמר זה מפרט את הליך הנתיחה, הגדרת תפקיד, ואת תנאי הניסוי במהלך מיפוי אופטי פוטנציאל הטרנסממברני (VM) וסידן תאיים חולף (CAT) ב Langendorff מבודד בלב שלם perfused העכבר.

מיפוי אופטי של פוטנציאלים פעולה ו הארעית סידן בלב מאוס

כאן, אנו מציגים פרוטוקול למיפוי אופטי של פעילות חשמלית מן אטריום ימין בעכבר במיוחד צומת סין-פרוזדורים, ברזולוציה גבוהה במרחב ובזמן.

מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה של צומת סין- פרוזדורי העכבר

פרוטוקול זה מתאר את ההתקנה והשימוש של מערכת החשמל, פלטפורמת תוכנה פתוחה מבוססת MATLAB לניתוח נתוני מיפוי אופטי לב. מכשיר אלקטרומגנט מספק כלי רב טווח של תפוקה גבוהה לניתוח של מתח מיפוי אופטי והנתונים הסידן מגדיר על פני מגוון רחב של מודלים ניסוי לב.

ניתוח תפוקה גבוהה של נתוני מיפוי אופטי באמצעות מידע אלקטרומגנט

אנו מציגים את המתודולוגיה עבור בידוד של מוציטים מורטין וכיצד להשיג מתח או סימני הסידן במקביל עם הקיצור סרקומר באמצעות מכשירי האור הפלואורסצנטית עם מדידות הגיאומטריה הדיגיטלית בו.

הדמיה אופטית של מודציטים מבודדים המוח החדרית

פרוטוקול זה מתאר את ההליך עבור הנחת פרוסות לב של האדם לניסויים פרה-קליניים ופרטים השימוש במיפוי אופטי עבור הקלטת מתח טרנסממברניות ואותות סידן תאיים בו מפרוסות אלה.

מיפוי אופטי של הערכת החשמל לניתוחי לב באמצעות מתח כפול וסידן

פרוטוקול זה מציג מיפוי אופטי דו-צבעי של לבבות עכברים המתקבלים מחיות בר וחיות בר המושפעות מטכיקרדיה חדרית פולימורפית קטכולמינרגית, כולל מדידות אלקטרופיזיולוגיות של מתח טרנסממברנה וטרנזיאנטים תוך-תאיים Ca2+ ברזולוציה טמפורלית ומרחבית גבוהה.

מיפוי אופטי של לבבות בצבע כפול מעכברי RyR2R2474S של טכיקרדיה חדרית פולימורפית קטכולמינרגית

תדירות גבוהה אולטרסאונד דופלר היא טכנולוגיה חדשנית להערכת תפקוד שריר הלב באזור. עבודה זו מציגה את העדות הראשונה הוכחת הישימות של פלטפורמה זו הדמיה תכליתי עבור למדוד את חוזרות ונשנות של מתח שריר הלב, dp / dt, ו regurgitation צניפי בלב אדום (IR) איסכמיה reperfused Murine.

בתדירות גבוהה ברזולוציה גבוהה אקו: העדות הראשונה על מדוד לא פולשני חוזרות ונשנות של הזנים Contractility שריר הלב, ו regurgitation צניפי בלב איסכמיה reperfused Murine

חקור אלקטרופיזיולוגיה של אטריה בעכברים באמצעות מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה. שיטה זו מאפשרת ניתוח מדויק של דפוסי הולכה חשמליים ומנגנוני הפרעות קצב אטריאליות.

אלקטרופיזיולוגיות להערכת אטריה מאתר עם מיפוי אופטי ברזולוציה גבוהה

גלה סרטונים נוספים