Name: יצירת מודלים העכבר עבור וירוס Zika-induced הפרעות נוירולוגיות באמצעות הזרקת גרם אסטרטגיות: עובריים Neonatal, למבוגרים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: חקור מודלי עכברים לזיהום וירוס זיקה במוח באמצעות הזרקה תוך-גולמית ותוך-גולמית לניאונטלית ולמבוגרים. שיטה זו מאפשרת חקר מנגנוני פתוגנזה ופיתוח טיפולים למיקרוצפליה ולקויות נוירולוגיות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחברים רוצה להכיר את ד ר Benraiss אללטיף ב אוניברסיטת רוצ'סטר עבור ההדרכה שלו ודיונים רלוונטיים למידה למבוגרים כירורגי וטכניקות neonate. המחברים גם רוצה להכיר ד ר ג'יימס לודרדייל-עוגה עבור השימוש שלו ציוד stereotaxic ודיונים הקשורים הגדרת את המתודולוגיה של טכניקה זו, ולקידום עבור מדענים המכללה מחקר (קשתות) הרישמי שלהם התמיכה והתמיכה שלנו NIH (NINDS מעניקה R01NS096176-02, R01NS097231-01, & F99NS105187-01).

כל חיה להשתמש פרוטוקולים בצע את ההנחיות טיפול בבעלי חיים של אוניברסיטת דרום קליפורניה, אוניברסיטת של גאורגיה. המתת חסד שיטות סכרים בהריון ומבוגרים מבוצעות על פי פרוטוקולים שאושרו: חנק פחמן דו-חמצני, ואחריו נקע בצוואר הרחם כשיטה משנית כדי להבטיח המתת חסד. הגורים neonatal מורדמים ע י עריפת ראשו.
התראה: פרוטוקול הבאים כרוך בטיפול וירוס פתוגניים. זהירות נאות צריך להתייחס לטיפול את הוירוס. כל הפרוטוקולים תאושר ע י ראש המנזר הוועדה המוסדית המתאים לשימוש.
1. עובריים חיסון גרם של וירוס Zika
<ol><li>להזדווגות מתוזמן בהריון, שקול בצהריים של יום לאחר ההזדווגות כמו E0.5. זוג עכברים בסוף היום וסמנו פקקים בשעות הבוקר המוקדמות כדי להפחית את השתנות זמן הזיווג.</li>
	<li>הכינו את המחט זכוכית לפני הניתוח. משוך את המחט, לחתוך ב- 1/3 אורכו, לאחר מכן לחדד בזווית של 45° בעזרת מטחנה micropipette עם טפטוף מים עד הנקבובית מותאם 50-70 מיקרומטר. הסימון עצות מחט תחת סטריאוסקופ איכות, שבירה.</li>
	<li>נחזיק בווירוס aliquot על הקרח. רק לפני הניתוח, לטעון את התמהיל הזרקת ZIKV לתוך המחט הזרקת זכוכית מוכן. להרכיב את המזרק הזרקת גז חזק (נפח µL 50) מצורף נעל-סכינים סטריליים, אבובים וירווה את המזרק התאספו עם הצנרת עם שמן מינרלי. ברגע רווי, לצרף את המחט, ולצייר ~ 6-7 µL ZIKV לתוך המחט (~ 1 µL הוא 1.7 × 106 TCID50/mL).</li>
	<li>להזריק C57BL בהריון/6J או 129S1/SvImJ עכברים עם עוברי E14.5 יום עובריים (להזרקה תוך-גולגולתי) או עוברי E10.5 (להזרקה תוך רחמי) עם קטמין הידרוכלוריד (80-100 מ"ג/ק"ג), חריגות השירותים הווטרינריים (5-10 מ"ג/ק"ג) מדולל בתמיסת סטרילי intraperitoneally כדי לגרום הרדמה ב האמא. לחלופין, עזים ומתנגד אמהות עם איזופלוריין איזופלוריין בפיקוח שסופקו על-ידי שאיפה, עם גז פסולת ניקוי, במידת הצורך. להזריק הבופרנורפין-SR (0.5-1.0mg/kg) subcutaneously לזירוז שיכוך כאבים.</li>
	<li>מבחן קמצוץ ומורדמת אמהות על קצה הבוהן או זנב, ואז להניח אותם פרקדן על רכיב pad שאושרו על-ידי חיה חימום (תרמי משטח של 100 x 200 2.5 מ מ). המלקחיים קמצוץ הבוהן אינם סטריליים, לא משמשים כדי להתמודד עם רקמות בניתוח. לחלופין, ניתן להשתמש ידיים בכפפות לבחון את רפלקס הנסיגה קמצוץ של הבוהן. הערה: עיין שלך צוות וטרינרי מוסדי עבור perioperative המועדפת חימום בשיטה. כיסוי הוצב בין זה טמפון החיה.</li>
	<li>הוסף אופטלמולוגיות משחה לעיניים.</li>
	<li>לגלח את פני השטח של הבטן ולחטא עם יוד ואלכוהול שלוש פעמים. לסירוגין את המגבונים יוד ואלכוהול; נגב בתנועה סיבובית מן האתר כירורגית.</li>
	<li>לעטוף את העור שמסביב באתר כירורגית עם בד סטרילי כדי למנוע זיהום של החתך והמכשירים. הערה: פתיחת הכיסוי ותאבטחי לא צריך להיות גדול יותר מאשר באתר כירורגית מוכן; אין שיער צריך להיראות תלויה בפתיחה.</li>
	<li>צובטים את העור של האם מן הבטן שלה עם מלקחיים, לחתוך את הבטן התחתונה בקו 1-1.5 ס מ על קו הסאגיטלי המדיאלי עם מספריים כירורגיים סטרילי. זה חותך העור ולא נוספת לתוך חלל הבטן כך העוברים חשופים כעת. הערה: מספריים כירורגיים משמשות תחתכי את העור, שכבת הצפק. כלי סטרילי וכפפות משמשים עבור כל ניתוח.</li>
	<li>לחתוך חתך באמצע גזה סטרילי קטן ולהחיל על גבי הפתח כירורגי. מימה עם מלח סטרילית. למשוך את העוברים דרך הסדק לנוח על גזה סטרילית, בזהירות כדי לא להסיר יותר מ 4-5 עוברי התמקדות קרן הרחם אחת בבת אחת.</li>
	<li>מימה העוברים עם מלח סטרילית לפני ובמהלך את חיסון כדי להבטיח שהם לא יתייבש. לשמור על מעקב אחר של העוברים אילו מוזרקים ואת המיקום שלהם בתוך הקרן הרחם. העוברים הבודדים נחשבים ניסויים נפרדים, ולכן כפי העוברים אינם משנים עמדה תוך פיתוח בתוך הרחם. (ממשיכים לצעוד 1.15 להזרקה תוך רחמי).</li>
	<li>הנח בעדינות מרית מתחת לראש של העובר. להאיר את העוברים עם מנורה כדי להמחיש את התפרים הראש והגולגולת. הערה: מלווה הטכניקה Aseptic, כולל כפפות כירורגי סטרילי וכלי נגינה. לאחר יפגעו שאינו סטרילי פריטים (כגון המנורה), כפפות צריך להיות מוחלף עם כפפות סטריליות חדש לפני הטיפול סטרילי מכשירים ואזורי.</li>
	<li>עמדה בראש על-ידי מניפולציה העובר עם המנורה (מאחורי הראש עבור ניראות) והן אצבעות חינם עד ראש העובר הקדמתי ישירות על הקיר הרחם, שנערך במקום עם היד האחרת. הערה: מיקום העובר הוא חלק קריטי הטכניקה שיוביל בפועל רוב. מדי לחץ אצבע עלולה לגרום נזק בקרום embryonic שמוביל קטלני, לא מספיק לחץ עלולה להקשות את הזריקה.</li>
	<li>השתמש בכלי הדם, מי שניצח את התפר הגולגולת כמדריך. מזריקים ZIKV וירוס (~ 1 µL, 1.7 × 106 TCID50/mL מקסיקני ולבודד MEX1-44) לתוך החדרים הצדדיים של מוח העובר E14.5 עם מזרק שהורכב ואת המחט. להשתמש בקרת מדיה כמו זריקה המזויפים.</li>
	<li>כדי לשפר את השמירה של ההריון, להימנע הזרקת ויראלי של שני העוברים בסמוך השחלות, שני העוברים ליד הנרתיק העליונה (איור 1 א'). בסך הכל, לא יותר מ 6 עוברי מוזרקים בכל המלטה כדי לצמצם את זמן הניתוח ולמנוע אובדן העובר.</li>
	<li>למקם את העוברים מוזרק לתוך הסכרים בהריון, ולמלא את חלל הבטן עם ~ 0.5 מ ל תמיסת מלח סטרילית. כדי לסגור, קודם תפר בשני לשריר הצפק בטן ולאחר מכן שנית תפר את שכבת העור החיצונית בתפרים סטרילי 4.0. . זה עדיף להשתמש התפרים קטעה; יש אפשרות של התבקעות הפצע אם העכבר לועס את התפר.</li>
	<li>הנח את העכבר בכלוב חלקית מונח על כרית החימום כדי לאפשר את העכבר כדי להימלט לאזור לא מחוממים במידת הצורך. מעקב האמהות בזמן השחזור (1-2 h) מן ההרדמה. לפתח את העוברים לאחר ניתוח מגוונים פעמים לפי ניסויים בודדים.</li>
	<li>
הזרקה תוך רחמי
	<ol>
<li>עם הרחם קרן אחת, העוברים חשופים, להשתמש מחט מזרק ו- 27G 1 מ"ל להחדיר וירוס Zika μL 100 (106 TCID50 יחידות הושעו ב 100 μL DMEM), או שליטה בינונית, לחלל תוך רחמי או לתוך הרקמה היפרדות. שים לב אילו עוברי יש הוזרק עבור ניתוח בשלב העוברי. ראה עבודה שפורסמו קודם לכן עבור פרטים נוספים18.</li>
		<li>המקום העוברים מוזרק לתוך הסכרים בהריון, ממלאים את חלל הבטן עם ~ 0.5 מ ל תמיסת מלח סטרילית. כדי לסגור, תחילה תפר את שריר הבטן הצפק ולאחר מכן שנית תפר את שכבת העור החיצונית בתפרים סטרילי 4.0. . זה עדיף להשתמש התפרים קטעה; יש אפשרות של התבקעות הפצע אם העכבר לועס את התפר.</li>
		<li>הנח את העכבר בכלוב חלקית מונח על כרית החימום כדי לאפשר את העכבר כדי להימלט לאזור לא מחוממים במידת הצורך. מעקב האמהות בזמן השחזור (1-2 h) מן ההרדמה. לפתח את העוברים לאחר ניתוח מגוונים פעמים לפי ניסויים בודדים.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. neonatal חיסון גרם של וירוס Zika: P0/P1
<ol><li>ודא כי מכשור רנטגן וטומוגרפיה גז חזק (נפח µL 10) של מחטים לא סתומים. נקי ובדוק על-ידי טעינת שלושה מזרקים חד פעמיות 20 מ עם מחטים 26-מד: אחד עם תמיסת מלח, אחד עם 70% אתנול, ואחד עם אוויר כדי לנקות את הפתרונות. לחטא עם אקונומיקה 10% אם השתמש בעבר עבור הזרקת וירוס.</li>
	<li>שמור וירוס על קרח. לטעון את המזרק מאת למלא. את זה עם מי מלח כדי לצמצם את נפח מת במזרק, לצייר µL 0.75 אוויר כדי להפריד את תמיסת החומר הזרקה.</li>
	<li>הגדרת תא ומחוממת שחזור humidified עבור הגורים מוזרק. בעזרת בלוק חימום, מיכל closeable (כגון תיבה ריקה עצה) עם גזה סטרילי מקם, ללחלוח עם תמיסת מלח. מחממים אותו לפני הפעלת זריקות.</li>
	<li>להגדיר את microinjector כולל המשאבה ואת הבקר. לקבוע את קוד סוג ההתקן עבור המזרק ספציפי (קרי, תחפש מזרק 10 µL, לסוג ההתקן הוא "D"). לקבוע את המהירות של הזרקה.</li>
	<li>לאסוף את הגורים כמחנכת יום 0 או 1 (P0/P1) ליד הגדרת כירורגי. לטעון את המזרק הזרקת בווירוס. לחטא ההר ראש pup עם 70% EtOH.</li>
	<li>לעטוף את הגורים בשכבה דקה של גזה ולקבור אותם לגמרי במקרה קרח כדי להגיע למצב של הרדמה. הגורים נמצאים cryoanesthetized עבור 5 דק. ודא כי הגורים הם מספיק ומורדמת להזרקה על-ידי ביצוע קמצוץ toe זנב ללא תגובה. זה מניב בערך 15 דקות של מדינת הרדמה.</li>
	<li>במקום הכלבלב על ראש הר, לעקר השטח של הראש עם יוד ו, אתנול (שלוש פעמים), לאחר מכן לנגב היבש עם מגבון סטרילי (אלכוהול איזופרופיל 70% EtOH).</li>
	<li>לסמן למבדה עם סמן שחור ולהקליט את הקואורדינטות-למבדה באמצעות מכשיר stereotaxic. למדוד המרחק למדא לקצה של העין, החל מ stereotaxic נקודות הציון של למדא לחשב את המרחק 2/5 של למדא לעין (עבור שתי ההמיספרות אם אתה מזריק שניהם).</li>
	<li>בדוק שנית את העומק הרדמה לפני יצירת חור בשביל ההזרקה. להשתמש בזהירות, באופן שטחי לנקב את הקרקפת והגולגולת במיקום ההזרקה (הגולגולת הוא רך מאוד ב- neonates) כדי ליצור פתח המחט הזרקת של מחט בקוטר 26.</li>
	<li>להנמיך את המחט הזרקה אל המיקום מנוקבת, לאחר המחט פשוט פרצו את העור, לחשב 1 מ מ לעומק על ההזרקה (לרוחב החדר) באמצעות מכשיר stereotaxic.</li>
	<li>ברגע שהמחט הוא הוריד את העומק הזרקה, לתכנת את microinjector כדי להזריק: 1 µL של וירוס, בקצב של 10 nL/s, הזרקת כ 1 µL מעל 1.5 דקות (~ 1 μl 3.4 x 105 TCID50/mL ZIKV).</li>
	<li>כאשר הזריקה מסיים, חכה 30 s, ומשכו את המחט במרווחים 0.5 מ מ על-ידי סיבוב הבורג (dorsally), מחכה 30 s לאחר כל תוספת. הערה: זה מפחית את בריחת של הוירוס שהוחדר.</li>
	<li>ברגע הוסר, גם במהירות טעינת מחט של מזרק עם וירוס נוסף (נגיפים שונים או פקדים מבוים יש לטעון מזרקים נפרד/מחטים) או להסיר את הכלבלב מן ההר ראש אל התא humidified מראש ומחוממת. לפקח על הכלבלב כל כמה דקות כדי לאמוד את השחזור. החלף את הגורים שלה המלטה.</li>
</ol>3. למבוגרים חיסון גרם של וירוס Zika
<ol><li>להזריק עכברים בוגרים intraperitoneally עם קטמין הידרוכלוריד (80-100 מ"ג/ק"ג), חריגות השירותים הווטרינריים (5-10 מ"ג/ק"ג) מעורבבת עם מלח סטרילית כדי לגרום הרדמה. להזריק הבופרנורפין-SR (0.5-1.0mg/kg) subcutaneously לזירוז שיכוך כאבים. הבוהן/זנב לצבוט את העכבר כדי להבטיח למצבו הרדמה ולאחר מכן לעלות אותו על המכשיר stereotaxic (עם כרית חימום) כדי לשתק את הראש במהלך הניתוח.</li>
	<li>הוסף אופטלמולוגיות משחה לעיניים כדי למנוע את העיניים של העכבר מתייבש במהלך הניתוח. לגלח את הקרקפת מתחיל בעיניים להתחלה של האוזניים. לחטא את העור חשוף עם יוד ו- 70% EtOH שלוש פעמים. לסירוגין את המגבונים יוד ואלכוהול; נגב בתנועה סיבובית מן האתר כירורגית.</li>
	<li>בדוק שנית את העומק הרדמה לפני אם העור. באמצעות אזמל, תגרום עושים חתך 0.5 ס מ לאורך הקו הסאגיטלי המדיאלי של הראש מיקום מעוקר, חשיפת bregma. באמצעות תנועה מתגלגל המוליך שקצהו כותנה, נקה את פני השטח של הגולגולת של רקמות של קרום המוח, בזמן בו זמנית לדחוף את העור מן האתרים הזרקה.</li>
	<li>החל מ- bregma, ליישר את המקדחה כירורגי ולזהות את האתרים הזרקה בעזרת הקואורדינטות הבאות: AP -0.5 מ. מ., ML: + /-1.5 מ מ. בעזרת דוושת רגל שליטה, לקדוח לתוך הגולגולת לאט כדי לקדוח רק עצם עד חור נוקתה המחט.</li>
	<li>החלף את התרגיל עם משאבת microinjector ועם מזרק גז חזק (נפח µL 10)-stereotaxic. שעזב את בועת אוויר קטן בין תמיסת מלח הנגיף, לצייר ~ 4-5 µL של וירוס. לקבוע את קוד סוג ההתקן עבור אמצעי האחסון מזרק מסוים (כלומר, D עבור 10 μL נפח מזרק). להנמיך את המחט to DV:-1.5 מ מ פני המוח. כדי להזריק µL 1 של וירוס, תוכנית שיעור של 10 nL/s, הזרקת כ 1 µL מעל 1.5 דקות.</li>
	<li>כאשר הזריקה מסיים, חכה 30 s, ולהסיר את המחט במרווחים של 0.5 מ מ, מחכה 30 s לאחר כל תור. זה מפחית זרם אחורי ודליפה של הוירוס שהוחדר.</li>
	<li>כאשר סיים את injection(s), להשתמש מלקחיים כדי לשחרר את העור ולשחזר את הגולגולת חשוף. תפר הקרקפת בחזרה יחד בעזרת תפרים 4.0 ולהסיר את העכבר מן הכלי stereotaxic. המקום העכבר בתוך כלוב חלקית מונח על כרית החימום כדי לאפשר את העכבר כדי לברוח לאזור לא מחוממים במידת הצורך, מעקב בזמן השחזור (1-2 h) מן ההרדמה.</li>
</ol>

<ol><li>Dreher, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectrum+of+Disease+and+Outcome+in+Children+with+Symptomatic+Congenital+Cytomegalovirus+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Pediatr%22%5BJournal%5D)">Spectrum of Disease and Outcome in Children with Symptomatic Congenital Cytomegalovirus Infection.</a> J of Pediatr. 164 (4), 855-859 (2014).</li>
<li>Lanzieri, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+outcomes+of+children+with+symptomatic+congenital+cytomegalovirus+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+of+Perinatol%22%5BJournal%5D)">Long-term outcomes of children with symptomatic congenital cytomegalovirus disease.</a> J of Perinatol. 37 (7), 875-880 (2017).</li>
<li>Naseer, M. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+WDR62+mutation+causes+primary+microcephaly+in+a+large+consanguineous+Saudi+family%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Saudi+Med%22%5BJournal%5D)">A novel WDR62 mutation causes primary microcephaly in a large consanguineous Saudi family.</a> Ann Saudi Med. 37 (2), 148-153 (2017).</li>
<li>Abuelo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcephaly+Syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Pediatr+Neurol%22%5BJournal%5D)">Microcephaly Syndromes.</a> Semin Pediatr Neurol. 14 (3), 118-127 (2007).</li>
<li>Nicholas, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((WDR62+is+associated+with+the+spindle+pole+and+is+mutated+in+human+microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">WDR62 is associated with the spindle pole and is mutated in human microcephaly.</a> Nat Genet. 42 (11), 1010-1014 (2010).</li>
<li>Pulvers, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+mouse+Aspm+%28abnormal+spindle-like+microcephaly+associated%29+cause+not+only+microcephaly+but+also+major+defects+in+the+germline%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mutations in mouse Aspm (abnormal spindle-like microcephaly associated) cause not only microcephaly but also major defects in the germline.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (38), 16595-16600 (2010).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+disrupts+neurovascular+development+and+results+in+postnatal+microcephaly+with+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection disrupts neurovascular development and results in postnatal microcephaly with brain damage.</a> Development. 143 (22), 4127-4136 (2016).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Disrupts+Neural+Progenitor+Development+and+Leads+to+Microcephaly+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Disrupts Neural Progenitor Development and Leads to Microcephaly in Mice.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 672(2016).</li>
<li>Miki, T., Fukui, Y., Takeuchi, Y., Itoh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+study+of+the+effects+of+prenatal+X-irradiation+on+the+development+of+cerebral+cortex+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">A quantitative study of the effects of prenatal X-irradiation on the development of cerebral cortex in rats.</a> Neurosci Res. 23, 241-247 (1995).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population-based+microcephaly+surveillance+in+the+United+States%2C+2009+to+2013%3A+An+analysis+of+potential+sources+of+variation%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res+Part+A+Clin+Mol+Teratol%22%5BJournal%5D)">Population-based microcephaly surveillance in the United States, 2009 to 2013: An analysis of potential sources of variation.</a> Birth Defects Res Part A Clin Mol Teratol. 106 (11), 972-982 (2016).</li>
<li>Cragan, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+Prevalence+of+Birth+Defects+Associated+with+Congenital+Zika+Virus%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Morb+Mortal+Wkly+Rep%22%5BJournal%5D)">Baseline Prevalence of Birth Defects Associated with Congenital Zika Virus.</a> MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 66 (8), 219-220 (2017).</li>
<li>Mlakar, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Associated+with+Microcephaly%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Associated with Microcephaly.</a> N Engl J Med. 374 (10), 951-958 (2016).</li>
<li>Jaenisch, T., Rosenberger, D., Brito, C., Brady, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+of+microcephaly+after+Zika+virus+infection+in+Brazil%2C+2015+to+2016%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+World+Health+Organ%22%5BJournal%5D)">Risk of microcephaly after Zika virus infection in Brazil, 2015 to 2016.</a> Bull World Health Organ. 95 (3), 191-198 (2017).</li>
<li>Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translating+developmental+time+across+mammalian+species%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Translating developmental time across mammalian species.</a> Neuroscience. 105 (1), 7-17 (2001).</li>
<li>Driggers, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infection+with+Prolonged+Maternal+Viremia+and+Fetal+Brain+Abnormalities%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infection with Prolonged Maternal Viremia and Fetal Brain Abnormalities.</a> N Engl J Med. 374 (22), 2142-2151 (2016).</li>
<li>Semple, B. D., Blomgren, K., Gimlin, K., Ferriero, D. M., Noble-Haeusslein, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+development+in+rodents+and+humans%3A+Identifying+benchmarks+of+maturation+and+vulnerability+to+injury+across+species%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Brain development in rodents and humans: Identifying benchmarks of maturation and vulnerability to injury across species.</a> Prog Neurobiol. 106, 1-16 (2013).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Infects+Neural+Progenitors+in+the+Adult+Mouse+Brain+and+Alters+Proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Infects Neural Progenitors in the Adult Mouse Brain and Alters Proliferation.</a> Cell Stem Cell. 19 (5), 593-598 (2016).</li>
<li>Vermillion, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrauterine+Zika+virus+infection+of+pregnant+immunocompetent+mice+models+transplacental+transmission+and+adverse+perinatal+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Intrauterine Zika virus infection of pregnant immunocompetent mice models transplacental transmission and adverse perinatal outcomes.</a> Nat. Commun. 8, 14575(2017).</li>
<li>Goodfellow, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+Induced+Mortality+and+Microcephaly+in+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Zika Virus Induced Mortality and Microcephaly in Chicken Embryos.</a> Stem Cells Dev. 25 (22), 1-27 (2016).</li>
<li>Dick, G. W. A., Kitchen, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+Virus+%28I%29.+Isolations+and+serological+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+R+Soc+Trop+Med+Hyg%22%5BJournal%5D)">Zika Virus (I). Isolations and serological specificity.</a> Trans R Soc Trop Med Hyg. 46 (5), 509-520 (1952).</li>
<li>Shao, Q., Herrlinger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+African+Zika+virus+MR-766+is+more+virulent+and+causes+more+severe+brain+damage+than+current+Asian+lineage+and+Dengue+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The African Zika virus MR-766 is more virulent and causes more severe brain damage than current Asian lineage and Dengue virus.</a> Development. , (2017).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

המתוארים כאן היא שיטת חיסון גרם של ZIKV בשלבים עובריים neonatal, למבוגרים עבור החקירה של ZIKV-induced נזקים בהתפתחות המוח. אמנם פשוטה, ישנם מספר שיקולים חוקרים שעליך לבצע כדי לוודא את איכות העבודה ואת הבטיחות של המעורבים.
DENV קשורה קשר הדוק ZIKV של הסוג flavivirus. DENV לא סיבתי חובר הפרעות מוח בילדים בבני אדם. DENV2 בהצלחה ניתן להדביק, לשכפל במוח המתפתח באמצעות שיטת חיסון עובריים (~ 1 µL של 3.4 x 105 TCID50/mL) (איור דו-ממדי). לכן, בנוסף נגוע Vero תא ...

Microcephaly היא מצב הנובע התפתחות המוח פגומה מאופיין קטן יותר גודל ראש ממוצע ילודים. ילדים עם microcephaly מוצג מגוון של תסמינים אשר יכולות לכלול עיכוב התפתחותי, פרכוס, מוגבלות, אובדן שמיעה, בעיות ראייה ובעיות עם תנועה ואיזון, בין היתר, בהתאם לחומרת המחלה, לגרום1,2,3. מצב זה הוא multifactorial בטבע, עם סוכן זיהומיות גנטיים, גורמים סביבתיים קשורים וגרם microcephaly4,5,6,7,8, 9. לפני תחילת 2015-2016 ZIKV, 8 ילדים מתוך 10,000 לידות אובחנו עם microcephaly בארצות הברית על פי ה-CDC10. ב-1 בפברוארst של 2016 ארגון הבריאות העולמי הכריז הווירוס Zika בריאות הציבור חירום של הבינלאומי דאגה לנוכח העלייה מדאיג אבחנות microcephaly המשויך ZIKV זיהום אמהות11, 12. מחקר שנערך לאחרונה מהמרכז לבקרת מחלות על מקרים ZIKV בארצות הברית עולה כי התוצאות זיהום ZIKV האימהי סיכון מוגבר 20-fold לילד לפתח microcephaly לעומת אנשים נגוע, ו 4% מהאמהות ZIKV נגוע מארצות הברית גרמו ילדים עם microcephaly11. הקצב microcephaly-הקשורים למומים מולדים במהלך ההריון מזיהום ZIKV בברזיל דווחו משפיע עד 17% של תינוקות: האמהות נגועים, המציין כי גורמים אחרים באמריקה הלטינית עשוי להיות תורם סיכון מוגבר 13. בזמן שאנו יודעים כי ZIKV יכול לגרום microcephaly ו פתוגנזה ב קדמון עצבית תא (NPC) האוכלוסייה7,8,14, מלאה בפתוגנזה של ZIKV בפיתוח המוח נשאר קשה להבנה. חשוב לפתח מודלים בעלי חיים להמשיך לחקור את מנגנוני המחלה הבסיסית של חריגות המוח הקשורים עם זיהום ZIKV.
ללמוד ישירות את ההשפעה ZIKV על התפתחות המוח, לראשונה פיתחנו מודל העכבר באמצעות חיסון גרם של המוח (E14.5) 14.5 יום עובריים ZIKV7. בשלב זה נבחר כפי שהוא נחשב נציג של סוף השליש הראשון ההיריון האנושי14. הגורים יכולים לשרוד עד יום כמחנכת 5 (P5) בשיטה זו זריקה גרם עובריים (~ 1 µL של 1.7 x 106 תרביות רקמה זיהומיות מינון (TCID50/mL)). לאחר הלידה הגורים להפגין מגוון פנוטיפים באופן דומה נצפתה אצל תינוקות בני אדם נגועים כולל החדרים מוגדלים, אובדן עצביים, עצב rarefaction, astrogliosis, microglial הפעלה12,15. מוח העכבר היילוד הוא יחסית לא בוגר, דומה השלב ההתפתחותי של המוח האנושי בגיל אמצע ההיריון16, התפתחות המוח העכבר כולל מרכיב מרכזי כמחנכת. ללמוד זיהומים בשלב מאוחר יותר של ההיריון, מתואר גם שיטה של זיהום לאחר הלידה. Neonates נגוע ZIKV ב P1 מסוגלים לשרוד 13 ימים שלאחר ההזרקה. זיהום דם-נולד הבמה למבוגרים שתיארנו העכבר בעבר17 אך מחייב השימוש שעתוק גורם רגולטורי (IRF) אינטרפרון (IFN) גורמים IRF-3,-5, נוקאאוט טריפל-7 זן. פרוטוקול זה מתאר שיטה מזריקים ZIKV intraventricularly לעקוף את השבתת התגובה אנטי ויראליים של המודל מאתר אצל אדם בוגר. בזמן זה עוקף את המערכת החיסונית מאתר, המסלול של הזרקת לא ישירות לחקות את המסלול טיפוסי של זיהום. כדי לטפל אי-התאמה זו ישירות, הנסיין ניתן לבצע זיהום תוך רחמי של ZIKV במקום תוואי תוך-גולגולתי. לאימוץ מבית בעבודה הקודמת18, בקצרה תארנו טכניקה זו בפרוטוקול זה זיהום מתחלקים.
זני וירוס Zika מיושם עם טכניקה זו כוללים את בידוד מקסיקני7,MEX1-4419 ולבודד אפריקה ב 194720מר-766. Zika MEX1-44 היתה מבודדת במקסיקו, צ'יאפס בינואר 2016 מ נגוע Aedes aegypti יתושים. . השגנו את הוירוס הזה עם אישור באמצעות הסניף הרפואה באוניברסיטת טקסס בגלבסטון (UTMB). בנוסף, serotype וירוס דנגה 2 (DENV2) היה מחוסן בעזרת טכניקה זו במחקר השוואה. DENV2, זן S16803 (רצף GenBank GU289914), היה מבודד מדגם החולה מתאילנד בשנת 1974, passaged בתאים C6/36. הווירוס היה passaged פעמיים בתאים Vero על ידי המרכז התייחסות העולם מתעוררים וירוסים, Arboviruses (WRCEVA) לפני זריקות העכבר. זה מדגים כי טכניקה זו פועלת באותה מידה גם עבור זנים שונים של ZIKV ושל אחרים flaviviruses שעשויה להיות לו השפעה על התפתחות המוח.

גמיש <table><tbody><tr><td>גל כונן מקדחה תליית מנוע</td><td>Leica</td><td>39416001</td><td></td></tr><tr><td>עכבר Stereotax</td><td>Kopf</td><td>04557R</td><td></td></tr><tr><td>Micro4 בקר משאבת מיקרו-מזרק</td><td>WPI</td><td>SYS-MICRO4</td><td></td></tr><tr><td>UMP3 UltraMicroPump</td><td>WPI</td><td>UMP3</td><td></td></tr><tr><td>Modulamp</td><td>Schott-Luer-lock</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>צינורות (19-מד)</td><td>המילטון</td><td>90619</td><td></td></tr><tr><td>נקודת התכה נימי</td><td>Kimble</td><td>34500-99</td><td>מחט זכוכית</td></tr><tr><td>Fluoro-Max: מיקרוספירות פלואורסצנטיות אדומות</td><td>Thermo Scientific</td><td>R25</td><td>ללא דילול; השתמש לתרגול זריקות</td></tr><tr><td>10 ומיקרו; L, דגם 1701 LT SYR</td><td>Hamilton</td><td>80001</td><td>לחיסון עוברי</td></tr><tr><td>10 ומיקרו; L, דגם 1701 RN SYR, NDL קטן נשלף, 26s ga, 2 אינץ', סגנון נקודה 2</td><td>המילטון</td><td>80030</td><td>ליילוד/מבוגר</td></tr><tr><td>4-0 אתילון ניילון תפרי</td><td>אתיקון-שמן</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>מינרלי</td> <td>VWR-מיקרופיפטה</td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Sutter Instruments</td><td>P-1000</td><td></td></tr><tr><td>מטחנת מיקרופיפטה</td><td>Narishige</td><td>EG-44</td><td></td></tr><tr><td>Fastgreen FCF צבע</td><td>Sigma</td><td>F7252</td><td>להזריק 0.5%</td></tr> <tr><td>נוגדנים חזקים<חזקים></חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flavivirus נוגדן אנטיגן מקבוצת</td><td>Millipore</td><td>MAB10216</td><td>ms IgG2a 1:400 (איור 2</חזק>, איור 3</חזק>)</td></tr><tr><td>Pax6</td><td>DBHB</td><td>Pax6-s</td><td>ms IgG1 1:20</td></tr></tbody></table>

יצירת מודלים העכבר עבור וירוס zika-induced הפרעות נוירולוגיות באמצעות הזרקת גרם אסטרטגיות: עובריים neonatal, למבוגרים

Establishing Mouse Models for Zika Virus-induced Neurological Disorders Using Intracerebral Injection Strategies: Embryonic, Neonatal, and Adult

הווירוס Zika (ZIKV) הוא flavivirus כיום אנדמית ב צפון, מרכז, דרום אמריקה. עכשיו זה נקבע כי ZIKV יכול לגרום microcephaly חריגות המוח נוספים. עם זאת, המנגנון שבבסיס בפתוגנזה של ZIKV במוח המתפתח עדיין לא ברור. שיטות הניתוח גרם משמשים לעתים קרובות במחקר מדעי המוח על שאלות על התפתחות המוח תקינה ולא תקינה ותפקוד המוח. פרוטוקול זה מנצל טכניקות ניתוחיות קלאסית, מתאר שיטות שבהן אפשר אחד דגם ZIKV-הקשורים האנושי מחלה נוירולוגית במערכת העצבים העכבר. בזמן חיסון מוח ישירה דגם לא נורמלי ההידבקות וירוס, השיטה מאפשרת חוקרים כדי לשאול שאלות יישוב הנוגעות התוצאה לאחר זיהום ZIKV של המוח המתפתח. פרוטוקול זה מתאר בשלבים עובריים neonatal, למבוגרים של חיסון ע של ZIKV. לאחר mastered, שיטה זו יכולה להפוך טכניקה פשוטה, לשחזור לוקח רק כמה שעות לביצוע.

להחליפן בתמונות שלנו שיטות הזרקה חיסון ZIKV של המוח העוברי של מוצגים בדיאגרמות המתארים גרם זריקות (איור 1 א'), תוך רחמי וזריקות intraplacental (איור 1B), הממחישות דרך סכר בהריון ואת עוברי צריך להציג אותו מונחה לניתוח (פרוטוקול חיסון עובריים). איור 2A תערוכות ZIKV (MEX1-44) זיהום (immunostained עם הנוגדן כנגד אנטיגן קבוצה flavivirus, ירוק) בקליפת E18.5. Pax6 (אדום) תוויות NPCs בקליפת המתפתח. ZIKV מחוס...

כאן נתאר שיטת יצירת מודל של Zika הנוצרות על-ידי וירוס microcephaly עכבר. פרוטוקול זה כולל שיטות חיסון גרם עובריים neonatal, מבוגר-שלב של הנגיף Zika.

יצירת מודלים העכבר עבור וירוס Zika-induced הפרעות נוירולוגיות באמצעות הזרקת גרם אסטרטגיות: עובריים Neonatal, למבוגרים

The Zika virus (ZIKV) is a flavivirus currently endemic in North, Central, and South America. It is now established that the ZIKV can cause microcephaly ...

המטרה הכוללת של השיטות הכירורגיות המוצגות כאן היא לבסס מודלים in vivo של זיהום בנגיף הזיקה תוך גולגולתי. שיטה זו יכולה לסייע במתן מענה לשאלת המפתח בתחום, כגון פתולוגיה ומנגנון הדבקה בנגיף הזיקה במוח הן בשלב ההתפתחותי המוקדם והמאוחר והן בשלב הבוגר. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שניתן להשיג בקלות את כיוון הזיהום של המוח.ההשלכות של טכניקה זו משתרעות על טיפולים או אבחונים של מיקרוצפליה הנגרמת על ידי נגיף הזיקה או הפרעות נוירו-התפתחותיות אחרות. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי פתוגנזה של נגיף הזיקה, ניתן ליישם אותה גם לחקר זיהום אחר של נגיף הפלאווירוס במוח, כגון נגיף דנגי. רגע לפני הניתוח, טען את תערובת הזרקת נגיף הזיקה למחט הזרקת זכוכית מוכנה על ידי הרכבת מזרק ההזרקה האטום לגז בנפח 50 מיקרוליטר וחיבור Luer-lock.רווי את המזרק והצינורות המורכבים בשמן מינרלי. לאחר הרוויה, חבר את המחט ושאב כשישה עד שבעה מיקרוליטרים של נגיף לתוך המחט. לאחר הרדמת סכר בהריון עם עוברי E14.5, בדוק את עומק ההרדמה על ידי צביטה של הבוהן או הזנב.כאשר מושג מישור הרדמה כירורגי, ודא שהסכר מונח על כרית חימום. לגלח את פני הבטן ולעקר ביוד ואלכוהול שלוש פעמים. עטפו את העור המקיף את אתר הניתוח במטליות סטריליות כדי למנוע זיהום של החתך והמכשירים.צבט והרם את עור הבטן בעזרת מלקחיים, ולאחר מכן השתמש במספריים סטריליים כדי לבצע חתך של 1 עד 1 1/2 סנטימטר בבטן התחתונה בקו המדיאלי-סגיטלי ולחשוף את העוברים. לאחר מכן, חותכים חריץ באמצע גזה סטרילית קטנה ומניחים מעל פתח הניתוח. הרטיבו את הפתח והגזה במי מלח סטריליים.לאחר מכן, משוך את העוברים דרך החריץ כדי לנוח על הגזה, הקפד לא להסיר יותר מארבעה או חמישה עוברים בבת אחת. הרטיבו את העוברים במי מלח סטריליים לפני ובמהלך החיסון כדי להבטיח שהם לא יתייבשו. האירו את העובר להזרקה עם מנורה כדי לדמיין את תפרי הראש והגולגולת, ולאחר מכן הניחו בעדינות מרית מתחת לראש העובר להזרקה ותפעל את העובר עד שהראש נדחף למעלה ישירות אל דופן הרחם.החזק את העובר במקומו ביד הלא דומיננטית. השתמש במזרק כדי להזריק נגיף זיקה או מדיום בקרה לחדרים הצדדיים של מוח העובר. עבור הזרקה תוך רחמית בשלב E11.5, השתמש במזרק של מיליליטר אחד ובמחט בגודל 27 כדי להזריק נגיף זיקה או מדיום בקרה לחלל התוך רחמי.כדי לשפר את שימור ההריון, הימנעי מהזרקת שני העוברים ליד השחלות ושני העוברים ליד הנרתיק העליון. אם מבצעים הזרקה תוך רחמית, יש להזריק לחלל התוך רחמי או לשליה. החזירו את העוברים לסכר ההריוני ומלאו את חלל הבטן בכ-0.5 מיליליטר מי מלח סטריליים.תפר גם את שריר הצפק הבטני וגם את שכבת העור החיצונית עם 4-0 תפרים סטריליים. שמור את הסכר על כרית חימום וצג בזמן ההתאוששות מההרדמה. הפשירו את הנגיף על קרח, ולאחר מכן טענו את המזרק על ידי מילויו במי מלח כדי להפחית את הנפח המת במזרק.שאב עד 0.75 מיקרוליטר אוויר כדי להפריד את תמיסת המלח מחומר ההזרקה. כדי להקים תא התאוששות מחומם ולח, הניחו מיכל נסגר עם גזה סטרילית על קופסת חום שהוגדרה על 37 מעלות צלזיוס והשרו במי מלח. לאחר הגדרת משאבת המיקרו-מזרק והבקר, טען את מזרק ההזרקה בנגיף ועקר את תושבת ראש המשאבה של המערך הכירורגי עם 70% אתנול.לאחר מכן, לאחר הרדמה בהקפאה של הגורים היילודים למשך חמש דקות, הקפידו על הרדמה מספקת להזרקה על ידי חוסר תגובה לצביטה בזנב או בבוהן. הנח את הגור על תושבת הראש. עקרו את פני הראש עם יוד ואז אתנול, ואז נגבו יבש עם מגבון אלכוהול.סמן למבדה בטוש שחור, ואז מדוד את המרחק מהלמבדה לקצה העין, ובעזרת קואורדינטות סטריאוטקסיות, חשב את המרחק של 2/5 מהלמבדה לעין. לאחר מכן, השתמש במחט בגודל 26 כדי לנקב בזהירות ובאופן שטחי את הקרקפת והגולגולת במקום ההזרקה וליצור פתח למחט ההזרקה. כעת הורד את מחט ההזרקה למקום הניקוב, ולאחר שהמחט בדיוק חדרה את העור, חשב עומק של מילימטר אחד להזרקה לחדר הצדדי באמצעות המכשיר הסטריאוטקסי.לאחר הורדת המחט לעומק ההזרקה, הזריק מיקרוליטר אחד של וירוס בקצב של 10 ננוליטר לשנייה. המתן 30 שניות לאחר ההזרקה, ולאחר מכן משוך את המחט במרווחים של 0.5 מילימטר על ידי סיבוב הבורג בגב, המתנה של 30 שניות לאחר כל תוספת כדי להפחית את דליפת הנגיף המוזרק. לאחר סיום ההזרקה, העבירו את הגור לתא הלח והמחומם מראש והניחו עד להתאוששות.שותקים את ראשו של עכבר מבוגר מורדם במכשיר הסטריאוטקסי ומניחים כרית חימום מתחת לעכבר. לאחר צביטה בבוהן או בזנב כדי להבטיח מישור כירורגי של הרדמה, גלח את הקרקפת החל מאחורי העיניים ועד לתחילת האוזניים. עקר את העור החשוף עם יוד ואתנול 70%.לאחר ביצוע חתך של 0.5 סנטימטר לאורך הקו המדיאלי-סגיטלי של הראש במיקום המעוקר כדי לחשוף ברגמה, נקה את פני הגולגולת מרקמות קרום המוח ובמקביל דחוף את העור הרחק מאתרי ההזרקה. יישר את המקדח הכירורגי עם ברגמה, ולאחר מכן זהה את אתר ההזרקה לפי הקואורדינטות הסטריאוטקסיות. בעזרת דוושת רגל הבקרה, קדחו לאט לתוך הגולגולת עד שהחור פנוי למחט.החלף את המקדח במשאבת המיקרו-מזרק ובמזרק אטום לגז בנפח 10 מיקרוליטר. השאירו בועת אוויר קטנה בין תמיסת המלח לנגיף ושאבו ארבעה עד חמישה מיקרוליטרים של נגיף. הורידו את המחט לעומק של 1.5 מילימטר מתחת לפני המוח מפני השטח של המוח והזריקו מיקרוליטר אחד של וירוס בקצב של 10 ננוליטר לשנייה, תוך הזרקת מיקרוליטר אחד במשך דקה וחצי.לאחר הוצאת המחט מהמוח במרווחים כמו קודם, השתמש במלקחיים כדי לשחרר את העור ולכסות מחדש את הגולגולת החשופה. לאחר שהקרקפת נתפרה עם 4-0 תפרים, הסר את העכבר מהסטריאוטקס ופקח על כרית חימום עד להתאוששות. תאי אב עצביים מסומנים חיסונית עם Pax6, הנראה באדום, ונגיף הזיקה באמצעות אנטיגנים של flavivirus, הנראים בירוק, ארבעה ימים לאחר ההזרקה ב-E18.5.המוח העוברי נגוע בזן MEX1-44 של נגיף הזיקה בכל שכבות הניאו-קורטקס המתפתח. בדיקת TCID50 המשתמשת ברקמה מרקמת מוח מהיום השלישי לאחר הלידה שחוסנה ב-E14.5 מראה כי נגיף הזיקה יכול להשתכפל ביעילות ולצמוח במוח מתפתח. תמונה זו מציגה זיהום בנגיף הזיקה MEX1-44 בקליפת המוח P13 לאחר הזרקת P0.זיקה מתגלה באמצעות נוגדנים כנגד אנטיגן מקבוצת flavivirus הנראה באדום. תמונות אלה מציגות את החרוזים הפלואורסצנטיים ששימשו לתרגול מיקום ההזרקה והצלחת הזרקת החדר הצדדי במבוגרים. בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לעקוב אחר העוברים המוזרקים, לקבל בקרות מתאימות ולשמור על פצעי הניתוח קטנים.לאחר הליך זה, ניתן לבצע שיטות אחרות כמו הזרקה תוך צפקית או עורקית כדי לענות על השאלה הנוספת כמו כיצד נגיף הזיקה חוצה את השליה. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד ליצור את מודל העכבר in vivo של זיהום בנגיף הזיקה במוח.

establishing-mouse-models-for-zika-virus-induced-neurological

Research

JoVE Journal

Neuroscience

מדעי המוח

סרטון זה מדגים את הדור של מודל עכבר ניסיוני של מלריה מוחית. ספורוזואיטים שבודדו מנקבות יתושים נגועות בפלסמודיום ברגהיי מוזרקות לוורידי הזנב של עכבר מרוסן, מה שמוביל להפרעה במחסום הדם-מוח ולדלקת במוח, מה שגורם למלריה מוחית. מודל עכבר נגוע זה מציע כלי רב ערך לחקר פתולוגיה מיקרו-וסקולרית in vivo הקשורה למלריה מוחית.

יצירת מודל עכברי של מלריה מוחית ניסיונית באמצעות ספורוזואיטים שמקורם ביתושים מארחים

סרטון זה מדגים את ביסוסו של מודל במבחנה של זיהום בנגיף זיקה במוח מתפתח. אורגנואידים מוחיים אנושיים המכילים רוזטות של תאי גזע, תאי אב עצביים (NPCs) ונוירונים נגועים בנגיף הזיקה. הנגיף מדביק NPCs ומעורר אפופטוזיס, משבש את התפתחות האורגנואידים.

פיתוח מודל חוץ גופי של זיהום בנגיף זיקה באורגנואידים מוחיים

סרטון זה מדגים את הדור של מודל עכבר עם זיהום CNS. גור יונק מוזרק עם הנגיף הן תוך גולגולתית והן intraperitoneally. הנגיף מתפשט, מדביק את מערכת העצבים המרכזית וגורם למוות תאי עצב ודלקת. הגור מוערך עבור סימפטומים של זיהום עם התקדמות המחלה.

יצירת מודל מורין עם זיהום במערכת העצבים המרכזית

הסרטון מדגים הזרקה תוך מוחית של תרחיף נגיף זיקה בעכבר בוגר כדי לגרום לניוון עצבי. עכבר מורדם מאובטח במסגרת סטריאוטקסית, וחור נקדח לתוך הגולגולת החשופה להזרקה. השעיה של נגיף הזיקה מוזרקת לרקמת המוח. הזיהום הנגיפי גורם לדלקת, מה שמוביל לניוון עצבי.

הקמת מודל של ניוון עצבי הנגרם על ידי נגיף זיקה בעכבר בוגר

סרטון זה מדגים הליך להדבקת תאי גזע עצביים עובריים אנושיים בנגיף זיקה. התאים הנגועים יכולים לשמש למחקרים נוספים.

זיהום בנגיף הזיקה של תאי גזע עצביים עובריים

כאן אנו מדגימים טכניקה להתמרה עצבית נרחבת על ידי הזרקה תוך-חדרית של נגיף הקשור לאדנו למוח העכבר היילוד.  שיטה זו מספקת דרך מהירה וקלה להשיג ביטוי לכל החיים של טרנסגנים המועברים באופן ויראלי.

הזרקת נגיפי Intracerebroventricular של ילודים עכבר המוח לתמרה עצבית מתמשכת ונרחבת

פרוטוקול זה מתאר טכניקה המשמשת ליצור מודל Zika בנגיף של המוח האנושי המתפתח. משתמש wildtype או שורות תאי גזע מהונדסים, חוקרים עשויים להשתמש בטכניקה זו כדי לחשוף את המנגנונים השונים או טיפולים שעשויים להשפיע על דלקת המוח מוקדם, microcephaly שנוצר ב Zika הנגועים בנגיף עוברי.

דגמי Zika בנגיף של ה בפיתוח המוח האנושי במבחנה באמצעות תאי גזע נגזר Organoids מוחי

מאמר זה מפרט את שיטות המשמשות כדי להרחיב את תאי גזע עצביים במוח העובר האנושי תרבות, כמו גם כיצד להבדיל אותם לתוך תת עצביים שונים, האסטרוציטים, תוך שימת דגש על השימוש בתאי גזע עצביים ללמוד Zika בנגיף.

זיהום בנגיף Zika של תאי גזע עצביים במוח העובר האנושי בתרבית לניתוח Immunocytochemical

פרוטוקול להעריך תגובות תא T אנטיגן ספציפי באיברים immunoprivileged של Ifnar1- / - מאתר מודל עבור זיהום בנגיף (ZIKV) Zika מתואר. בשיטה זו הוא מרכזי בשביל לחקור את המנגנונים התאיים של ההגנה, השיגה חיסונים ZIKV, והוא גם יקר להערכת היעילות שלהם.

הערכה של תגובות T-cell Zika וירוס ספציפיים באיברים Immunoprivileged של עכברים נגועים Ifnar1- / -

כאן, אנו מציגים פרוטוקול ליצירת ICR מוסמך (המכון לחקר הסרטן) מודל murine של זיהום מערכת העצבים המרכזית כדי להציג את ההתפתחות של נוירופתיה. ניטור ויראלי חריפה הפרעות נצאליטיות על ידי עשרות מחלה זהה יכול להתבצע על מראה דנגי וירוס המושרה נוירופתיה ב vivo.

מודל Murine של וירוס דנגה-הנגרמת חריפה דלקת קרום המוח-כמו מחלה

המטרה של הפרוטוקול היא להדגים את הטכניקות המשמשות לחקירת מחלה נגיפית על ידי בידוד וכימות וירוס Zika, מאיברים מרובים בעכבר לאחר ההדבקה.

בידוד וקוונפיקציה של וירוס Zika ממספר איברים בעכבר

חקור מודלי עכברים לזיהום וירוס זיקה במוח באמצעות הזרקה תוך-גולמית ותוך-גולמית לניאונטלית ולמבוגרים. שיטה זו מאפשרת חקר מנגנוני פתוגנזה ופיתוח טיפולים למיקרוצפליה ולקויות נוירולוגיות.

יצירת מודלים העכבר עבור וירוס Zika-induced הפרעות נוירולוגיות באמצעות הזרקת גרם אסטרטגיות: עובריים Neonatal, למבוגרים

גלה סרטונים נוספים