-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
ניטור השפעת Osmotic הלחץ על שלפוחית הפרשה, אקסוציטוזה
ניטור השפעת Osmotic הלחץ על שלפוחית הפרשה, אקסוציטוזה
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Monitoring the Effect of Osmotic Stress on Secretory Vesicles and Exocytosis

ניטור השפעת Osmotic הלחץ על שלפוחית הפרשה, אקסוציטוזה

Full Text
8,944 Views
08:08 min
February 19, 2018

DOI: 10.3791/56537-v

Hoda Fathali1, Johan Dunevall1, Soodabeh Majdi2, Ann-Sofie Cans1

1Department of Chemistry and Chemical Engineering,Chalmers University of Technology, 2Department of Chemistry and Molecular Biology,University of Gothenburg

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates the effects of osmotic stress on exocytosis and neurotransmitter release using a combination of electrochemical methods and transmission electron microscopy. The research focuses on how secretory vesicles in cells respond to extracellular osmotic pressure and the subsequent impacts on exocytosis activity, vesicle quantal size, and neurotransmitter release.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Electrophysiology

Background

  • Understanding exocytosis in the context of physical forces is crucial for insights into neuronal function.
  • Osmotic pressure can influence vesicular dynamics and neurotransmitter release.
  • Current methodologies allow for direct observations of vesicles' reactions to environmental changes.
  • This research explores critical questions regarding vesicular responses to treatment and environmental shifts.

Purpose of Study

  • To explore how osmotic stress impacts exocytosis and neurotransmitter release.
  • To develop a methodology that enables real-time monitoring of vesicular responses.
  • To clarify the effects of extracellular conditions on cellular signaling mechanisms.

Methods Used

  • Electrochemical techniques and transmission electron microscopy were employed.
  • Cultured chromaffin cells served as the biological model, specifically examining exocytosis under varying osmotic conditions.
  • Key experimental steps involved amperometric recordings to capture exocytosis events.
  • Cells were incubated in isotonic and hypertonic buffers to analyze osmotic effects over defined time intervals.

Main Results

  • The study demonstrated significant alterations in exocytosis frequency under different osmotic pressures.
  • Findings highlighted the correlation between osmotic conditions and vesicular quantal size.
  • Responses were validated through rigorous amperometric recordings that captured real-time neurotransmitter release dynamics.
  • Insights into vesicle behavior under stress conditions were clearly defined.

Conclusions

  • This study offers a novel analytical framework for understanding vesicular responses to osmotic stress.
  • The methodology enables detailed analysis of neurotransmitter release dynamics, essential for neuroscience applications.
  • Findings enhance our comprehension of neuronal mechanisms and potential plasticity in response to environmental changes.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using electochemical methods in this study?
Electrochemical methods enable real-time monitoring of vesicular neurotransmitter release, providing insights into dynamic processes during exocytosis.
How is osmotic stress applied in the experiments?
Osmotic stress is applied by incubating cells in isotonic and hypertonic buffer solutions to observe the subsequent effects on exocytosis.
What types of cellular responses are measured?
The study measures exocytosis frequency, vesicular quantal size, and neurotransmitter release dynamics in response to osmotic variations.
How can this methodology be adapted for other studies?
This combined methodology can be applied to investigate various cell types' responses to different physical forces or drug treatments.
What limitations should be considered in this study?
Potential limitations include the specificity of the biological model and the environmental control during experiments may affect reproducibility.

מתח osmotic משפיע אקסוציטוזה ואת כמות הנוירוטרנסמיטר שפורסמו במהלך תהליך זה. נדגים כיצד שילוב שיטות אלקטרוכימיות יחד עם מיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים יכול לשמש כדי לחקור את ההשפעה של לחץ אוסמוטי חוץ-תאית על פעילות אקסוציטוזה, שלפוחית quantal בגודל כמות הנוירוטרנסמיטר משוחרר במהלך אקסוציטוזה.

המטרה הכוללת של מתודולוגיה אנליטית משולבת זו היא לספק מידע על האופן שבו שלפוחיות הפרשה בתאים מגיבות לכוח פיזי, כגון לחץ אוסמוטי חוץ-תאי, וכיצד התאמות של אברונים אלה משפיעות עוד יותר על תהליך האקסוציטוזיס. שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום מדעי המוח כגון, כיצד שלפוחיות הפרשה מגיבות ישירות לשינויים בסביבה החוץ-תאית או לטיפול תרופתי? היתרון העיקרי של גישה זו הוא ניטור ההשפעות הישירות על תכולת השלפוחית בתאים חיים והידיעה להבחין בשינוי בשחרורם הכימי לפני ואחרי הטיפול באקסוציטוזיס.

כדי להשיג משטח אלקטרודה דיסק שטוח, הנח את האלקטרודה במחזיק של מיקרו-מטחנה ושיפוע כל אלקטרודת סיבי פחמן בזווית של 45 מעלות. לאחר מכן, סמן את הנימים לעיון עתידי כיצד לאתר את משטח אלקטרודת הדיסק בזווית של 45 מעלות בעת הנחת האלקטרודה ליד תאים למדידת אקסוציטוזיס. כדי לבצע הקלטה אמפרומטרית בתאים בודדים, התקן את המיקרו-אלקטרודה של דיסק סיבי הפחמן המשופעת והטרייה שנבדקה במחזיק האלקטרודה של שלב הראש המשמש עם פוטנציוסטט.

לפני השימוש, הנח כל מיקרו-אלקטרודה מסיבי פחמן בתמיסת בדיקה כדי לנטר את זרם מצב המחקר באמצעות וולטמטריה מחזורית. עבור סריקת וולטמטריה מחזורית, החל צורת גל פוטנציאלית משולשת מ-0.2 וולט שלילי ל-0.8 וולט חיובי כנגד אלקטרודת ייחוס כלוריד כסף-כסף ב-100 מילי-וולט לשנייה כדי להבטיח קינטיקה טובה של תגובה. לרישום אמפרומטריה של אקסוציטוזיס, הנח את צלחת הפטרי עם תאי כרומפין מתורבתים במאגר איזוטוני על מיקרוסקופ הפוך בכלוב פאראדיי.

השתמש בשלב חימום מיקרוסקופ כדי לשמור על טמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס במהלך ניסויי התאים. לאחר מכן, השתמש במכשיר מהדק תיקון בעל רעש נמוך כדי להפעיל פוטנציאל קבוע של 700 מילי-וולט חיובי באלקטרודת העבודה. להקלטת אקסוציטוזיס של תאי כרומפין, דיגיטציה של האות ב-10 קילו-הרץ והחל מסנן בסל פנימי במעבר נמוך בשני קילו-הרץ כדי לסנן את האות המוקלט.

שימו לב שאלקטרודת הדיסק הסגלגל צריכה להיות ממוקמת שטוחה על גבי התאים ובמקביל לפני השטח של צלחת הפטרי. כמו כן, אלקטרודות משופעות באותו יום כמו ניסויים כדי להבטיח משטח אלקטרודה נקי. כדי לעורר את אקסוציטוזיס התא, מקם מיקרופיפטה מזכוכית מלאה בתמיסת בריום כלוריד של חמישה מילי-מולרית במרחק של לפחות 20 מיקרומטר מהתא.

לאחר מכן, יש למרוח פולס הזרקה של חמש שניות של תמיסת בריום כלוריד של חמישה מילי-מולרית על פני התא כדי לעורר את אקסוציטוזיס התא. הנח את פיפטת הגזע בתמיסה ועורר את אקסוציטוזיס התא על ידי הפעלת דופק הזרקת בריום תוך רישום מעברי הזרם האמפרומטרי למשך כשלוש דקות. כדי להשוות את התגובות האקסוציטוטיות בתנאים איזוטוניים לתנאים היפרטוניים, דגרו את התאים למשך 10 דקות בתמיסת חיץ היפרטונית.

לאחר מכן, הפעל דופק הזרקת בריום כדי לעורר אקסוציטוזיס, ובצע שלוש דקות של הקלטה אמפרומטרית. לתגובה הפיכה של תאים, דגרו שוב על התאים למשך 10 דקות בתמיסת חיץ איזוטונית. לעורר את התאים על ידי הפעלת דופק הזרקת בריום ולבצע שלוש דקות של הקלטה של התגובה האקסוציטוטית.

כדי לייצר את האלקטרודות למדידות גודל קוונטי שלפוחיתית, הכינו אלקטרודה מסיבי פחמן בקוטר של חמישה מיקרומטרים. תחת מיקרוסקופ, השתמש באזמל כדי לחתוך את סיבי הפחמן הנמשכים החוצה מקצה הזכוכית כך שיישארו רק 30 עד 100 מיקרומטר. השתמש בלהבת בוטאן כדי להכין קצה חרוט להבה של אלקטרודת סיבי הפחמן.

כדי להשיג קצה אלקטרודה בצורת גליל חרוט באופן שווה, החזק את אלקטרודת סיבי הפחמן בצורת גליל תוך כדי סיבובה. והניחו את סיבי הפחמן המשתרעים מהזכוכית לתוך הקצה הכחול של להבת הבוטאן עד שקצה הפחמן מפתח צבע אדום. לאחר תחריט הלהבה, הנח את האלקטרודה מתחת למיקרוסקופ כדי להעריך את קצה האלקטרודה.

גודל קצה האלקטרודה החרוט צריך להיות בקוטר של כ-50 עד 100 ננומטר. לאחר מכן, הכנס את המיקרו-אלקטרודה הננומטרית הגלילית לתמיסת האפוקסי למשך שלוש דקות ולאחר מכן טבילה של 15 שניות של קצה האלקטרודה בתמיסת האצטון. זה מאפשר לאפוקסי לאטום את חלל הפער הפוטנציאלי בין סיבי הפחמן לדופן נימי הגז המבודדים.

בעוד האצטון מנקה את האפוקסי ממשטח האלקטרודה של סיבי הפחמן החרוטים. כדי לרפא את האפוקסי, אופים את האלקטרודות בתנור למשך הלילה בחום של 100 מעלות צלזיוס. לפני השימוש, בדוק את זרם המצב היציב של כל מיקרו-אלקטרודה מסיבי פחמן באמצעות וולטמטריה מחזורית.

לניסויים, השתמש רק באלקטרודות המציגות זרם רמה סביב 1.5 עד 2.5 ננו-אמפר. למדידות אמפרומטריה תוך-תאית, מקם את התאים מתחת למיקרוסקופ והשתמש באותן הגדרות ניסיוניות של הפוטנציוסטט. למנוע נזק פיזי משמעותי לתא.

הכנס את המיקרואלקטרודה הגלילית הננו-קצה לתא על ידי הוספת כוח מכני עדין. מספיק כדי לדחוף את האלקטרודה דרך קרום הפלזמה של התא ולתוך הציטופלזמה של התא באמצעות מיקרומניפולטור. לאחר ההחדרה, וכאשר קרום התא אטום סביב האלקטרודה הגלילית, התחל את הרישום האמפרומטרי במקום בתא החי.

בפוטנציאל החמצון המופעל על האלקטרודה, שלפוחיות נספגות למשטח האלקטרודה ונקרעות באופן סטוכסטי. לפיכך, אין צורך בגירוי כלשהו כדי להתחיל תהליך זה. כדי לקבוע את ההשפעה האוסמוטית על הגודל הקוונטי השלפוחית, אסוף את מדידות הציטומטריה התוך תאית מקבוצת תאים שהודגרו במאגר איזוטוני ובהיפרטוני באמצעות תנאי הניסוי.

ההשפעה של אוסמולליות חוץ-תאית על פעילות אקסוציטוזיס מוצגת כתדירות אירועי אקסוציטוזיס כאשר תאי כרומפין מגורים בתמיסת בריום בתנאים איזוטוניים, לאחר מכן היפרטוניים ולבסוף בתנאים איזוטוניים. נתונים אלה מראים עיכוב בפעילות אקסוציטוזיס בתאים החווים לחץ אוסמוטי וניתן להשיג התאוששות חלקית לאחר חזרת התאים לסביבה איזוטונית. ניסוי הבקרה מראה את תדירות אירועי האקסוציטוזיס לאחר שלושה גירויים רצופים של בריום בתאי כרומפין בתנאים איזוטוניים.

זה מראה שגירוי בריום מרובה במסגרת הזמן המשמשת בניסויים אלה גורם להפחתה בפעילות האקסוציטוזיס על ידי גירוי תאים עוקב. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד לבצע שיטות אנליטיות משלימות אלה המאפשרות לך להשוות כיצד שלפוחיות הפרשה ותהליך האקסוציטוזיס מושפעים משינויים בסביבה החוץ-תאית.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

מדעי המוח גיליון 132 תאים Chromaffin לחץ אוסמוטי ליבה צפופה שלפוחית ריכוז נוירוטרנסמיטר גודל quantal אקסוציטוזה amperometry cytometry תאיים במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים

Related Videos

כימות זמניות של ביטוי MAPK מושרה בתאי שמרים יחיד

07:59

כימות זמניות של ביטוי MAPK מושרה בתאי שמרים יחיד

Related Videos

8.9K Views

TIRFM וGFP-בדיקות pH רגיש להערכת נוירוטרנסמיטר שלפוחיות Dynamics בתאי SH-SY5Y נוירובלסטומה: הדמיה נייד וניתוח נתונים

13:47

TIRFM וGFP-בדיקות pH רגיש להערכת נוירוטרנסמיטר שלפוחיות Dynamics בתאי SH-SY5Y נוירובלסטומה: הדמיה נייד וניתוח נתונים

Related Videos

11.2K Views

חוקר תא פיטום הפרשת הגרגרים; מיוסינתזה לExocytosis

16:01

חוקר תא פיטום הפרשת הגרגרים; מיוסינתזה לExocytosis

Related Videos

13.7K Views

ממברנה שיפוץ של שלפוחית ענקית בתגובה מעברי צבע יון סידן לשפות אחרות

08:15

ממברנה שיפוץ של שלפוחית ענקית בתגובה מעברי צבע יון סידן לשפות אחרות

Related Videos

8.3K Views

הדמיה FITC-לתוספי כעיתונאית אקסוציטוזה מוסדר

04:50

הדמיה FITC-לתוספי כעיתונאית אקסוציטוזה מוסדר

Related Videos

13.3K Views

כימות פרמטרים Spatiotemporal של אקסוציטוזיס תאי בתאים Micropatterned

10:21

כימות פרמטרים Spatiotemporal של אקסוציטוזיס תאי בתאים Micropatterned

Related Videos

6.5K Views

זיהוי וניתוח אוטומטיים של אקסוציאטוזיס

13:28

זיהוי וניתוח אוטומטיים של אקסוציאטוזיס

Related Videos

3.9K Views

הערכת רגישות מבנית של אזורים לא מסודרים במהותם בתגובה לעקה היפראוסמוטית בתאים חיים באמצעות FRET

05:13

הערכת רגישות מבנית של אזורים לא מסודרים במהותם בתגובה לעקה היפראוסמוטית בתאים חיים באמצעות FRET

Related Videos

1.4K Views

טכניקות Patch-Clamp לניתוח שלפוחית אנדוליזוזומלית בודדת

05:47

טכניקות Patch-Clamp לניתוח שלפוחית אנדוליזוזומלית בודדת

Related Videos

1.2K Views

הכנת פרוסות בהיפוקמפוס של חולדות חריפה העכברים הטרנסגניים לחקר שינויים Synaptic במהלך ההזדקנות עמילואיד פתולוגיה

14:57

הכנת פרוסות בהיפוקמפוס של חולדות חריפה העכברים הטרנסגניים לחקר שינויים Synaptic במהלך ההזדקנות עמילואיד פתולוגיה

Related Videos

95.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code