Name: התא העיקרי של אפיתל הפיגמנט ברשתית העכבר תרבויות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-16T13:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 35 s
Description: למדו שיטה פשוטה לבידוד וגידול תאי אפיתל הפיגמנט ברשתית מעיני עכברים תוך שמירה על תכונותיהם המקוריות. פרוטוקול זה מסייע לחוקרים לרכוש מיומנויות ניתוח הדרושות למחקר רטינלי.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

מחקר זה מומן בחלקו על ידי הקרן BrightFocus (ל- DS).

הליכים הכוללים נושאים בעלי חיים אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC) ב אוניברסיטת פיטסבורג
1. מכינים פתרונות
<ol><li>להכין את מדיום הגידול על ידי וחדשניות Dulbecco ששינה נשר בינוני (DMEM), גלוקוז גבוהות עם 10% סרום שור עוברית (FBS), 1% פניצילין/סטרפטומיצין, 2.5 מ מגלוטמין ו 1 x MEM שאינן חיוניות חומצות אמינו. לחמם את המדיה ב- 37 מעלות צלזיוס החממה לפני השימוש.</li>
	<li>להכין 2% (wt/כרך) dispase II הפתרון עובד:<ol>
<li>להכין פתרון מניות של 100 מ"ג/מ"ל dispase השני על ידי המסת 30 מ"ג של dispase השני בתוך 300 µL HEPES באגירה תמיסת מלח (50 מ מ HEPES/קו pH 7.4, 150 מ מ NaCl). אמצעי אחסון זה עבור 3-4 עכברים, שניתן יהיה גודלו או למטה בהתבסס על מספר עכברים לניסוי). מלאי זה ניתן לאחסן לפחות שבוע 1-4 מעלות צלזיוס.</li>
		<li>להכין הפתרון עובד של 2% dispase על-ידי הוספת µL 300 של 100 מ"ג/מ"ל dispase II המניה 1.2 מ של DMEM סטרילי, גלוקוז גבוה וסינון הפתרון דרך מסנן מיקרומטר 0.22. שלב זה יש לבצעו בזרם שכבתית ארון בתנאים סטריליים. לחמם את dispase מוכן II ב- 37 מעלות צלזיוס החממה לפני השימוש.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. קבלת בעיניים העכבר
<ol><li>המתת חסד העכבר באמצעות כל שיטה שאושרו ומניחים אותו על רכיב pad סופג.</li>
	<li>לבש כפפות, לשים באגודל ובאצבע סביב העין, דחף בעדינות את העור כדי proptose גלגל העין.</li>
	<li>הוסף את קצה מספריים בזווית שבין העור של גלגל העין, בזהירות לחתוך את העין. כדי למנוע זיהום, בקצרה לטבול את העין ב-70% אתנול.</li>
	<li>מיד במקום העין ב באגירה פוספט מלוחים (מגניב) בצלחת פטרי.</li>
	<li>חזור על שלבים 2.2-2.4 כדי להסיר את העין השנייה.</li>
</ol>3. עין לנתיחה
<ol><li>בזהירות הסר רקמת העין תחת המיקרוסקופ ויבתר. זה יכול להיעשות PBS או על הפטרי יבש.<ol>
<li>להשתמש מלקחיים הפתולוגיים כדי להרים את רקמות החיבור של גלגל העין, לגזור אותם באמצעות מספריים Vannas. Not גזור את sclera כי זה כמעט בלתי אפשרי להשיג את eyecups האחורי שלם אם חותכים את sclera.</li>
		<li>לאחר ניקוי רקמת חיבור, לשמור את העיניים וכתוצאה מכך ב- PBS לשלב הכביסה הבא. הערה: כל השלבים הבאים יש לבצעו בזרם שכבתית ארון בתנאים סטריליים.</li>
	</ol>
</li>
	<li>לשטוף את העיניים פעמיים ב מראש ומחוממת 37 ° C DMEM (גלוקוז גבוהה). להעביר בזהירות את העיניים לתוך ומחוממת מראש 37 ° C DMEM (גלוקוז גבוהה) באמצעות מלקחיים. מחוק לגמרי את העיניים בינוני והעברת לבינונית טריים בקערה חדשה.</li>
	<li>האחות DMEM (גלוקוז גבוהה) בינוני, דגירה העיניים שבה הפתרון עובד II ומחוממת מראש dispase 2% (wt/כרך) למשך 45 דקות בחממה 37 º C. הערה: בתוך כל השלבים הבאים, במקום ולטפל עיניים או eyecups במצע הגידול, אשר להגן על הרקמות, לספק מדיום טוב הקרע.</li>
	<li>הסר את הפתרון השני dispase, לשטוף את העיניים פעמיים בתוך מדיום הגידול על-ידי כ רפה בעברית המדיום הישן והוספת מדיום הגידול מראש ומחוממת-37 ° C החדשה (איור 1 א'). הערה: לאחר דיסוציאציה מאת dispase II, העיניים הופכים רכים.</li>
	<li>. תחזיק את העין עם מלקחיים, בחתך סביב serrata אורה של כל עין בעזרת מספריים Vannas תחת המיקרוסקופ ויבתר להציב את זרימה שכבתית בארון.<ol>
<li>שמירה על גלגל העין בפתרון, הסר בזהירות הקרנית הקדמי על ידי הרחבת החתך סביב המעגל serrata אורה ומושך הקרנית הקדמי משם אחרי החתך כבר מלאה.</li>
		<li>הסר עדשה כמוסה של איריס המשויך פיגמנט האפיתל על ידי בעדינות משיכתן אל מחוץ עיינית עם מלקחיים teethed (איור 1b, 1 c).</li>
	</ol>
</li>
	<li>דגירה של eyecups אחורי שנוצר במצע הגידול למשך 20 דקות ב 37 ° C כדי להקל על הפרידה של הרשתית עצבית RPE.</li>
	<li>חותכים את eyecups אחורי 4 עלי כותרת מתחת למיקרוסקופ ויבתר להציב את זרימה שכבתית בארון. החתכים צריך להיות מספיק זמן לשטח את עיינית, אבל קצר מספיק כדי לשמור על הכותרת מחוברים (איור 1 d).<ol>
<li>לרדד את עיינית ולהסיר את הרשתית עצבית על ידי בעדינות משיכתו עם מלקחיים תוך החזקת הנותרים RPE-שכבה דמית-בסקלרה מתחם עם מלקחיים אחר (איור 1e). התחילו למשוך מהקצוות, ולא מן המרכז.</li>
	</ol>
</li>
	<li>העברת שכל רקמות חתוכות לרבעים לתוך תבשיל תרבות סטרילי חדש מלא מראש חימם מדיום הגידול 37 º C.</li>
</ol>4. בידוד תאי RPE ראשי
<ol><li>מחזיקים עלה כותרת אחד של המתחם RPE-שכבה דמית-בסקלרה חתוכות לרבעים עם בסדר סופר מלקחיים, לקלף בעדינות בין יריעות RPE. ללא פגע מן קרום המרתף המשמש כבסיס (הממברנה של ברוך) באמצעות סכין סהרון המיקרוכירורגית תחת המיקרוסקופ ויבתר להציב אותם זרימה שכבתית cabinet (איור 1f).<ol>
<li>להעביר את הסדינים RPE לתוך המנה סטרילי תרבות חדשה המכילה מדיום הגידול על-ידי שימוש micropipette P200. בעת העברת גליונות RPE, להרטיב את הטיפים פיפטה עם מדיום הגידול על-ידי pipetting מספר פעמים כדי למנוע רקמת נשאר בפנים הטיפ. RPE יהיה ניתן להבחנה ברורה מן דמית העין: RPE נראה יותר חום, בעוד שכבה דמית כהה יותר, נראה דביק ורך.</li>
		<li>לחלופין, השתמש עיכול אנזימטי דיסוציאציה עדין ללא מלקחיים כדי לנתק את RPE מן דמית העין14.</li>
	</ol>
</li>
	<li>לכבס את המצעים RPE 2 - 3 פעמים באמצעות מראש ומחוממת-37 מעלות צלזיוס מדיום הגידול בצלחת תרבות סטרילי. לאחר כל שלב כביסה, בזהירות לאסוף את הסדינים RPE תוך הימנעות לרקמות אחרות כגון פסולת הרשתית או דמית העין. בסוף בכביסה האחרונה לאסוף את הסדינים RPE עם micropipette P200 ולמקם אותם בצינור microcentrifuge של 1.5 mL החדש. הערה: יש צורך centrifuge את הסדינים RPE: הם יהיו משקעים על ידי הכבידה בתוך 1 דקות.</li>
	<li>הסר את מדיום הגידול הנוסף באמצעות micropipette P200. Resuspend התאים מדיום הגידול מראש ומחוממת טריים, בעדינות triturate אותם באמצעות micropipette P200. למנוע היווצרות בועות. השעיה תא בודד הוא אידיאלי, אך גם להימנע trituration מדי, אחרת תאי RPE אינם מסוגלים לשרוד. אנו ממליצים מאוד בעדינות trituration 40 - 50 פעמים.</li>
</ol>5. culturing תאי RPE
<ol><li>צלחת את התאים על צלחת תרבות.<ol>
<li>אם יישומים במורד הזרם של תאי RPE דרוש לשמירת הקוטביות שלהן, צלחת RPE תאים של עכברים 2 ב 12 מ מ אחד ממברנה פוליאסטר הוספה טעון מראש ב 12-ובכן תרבות צלחות. ציפוי התאים-צפיפות גבוהה רצוי כי במקרה זה תאי RPE מסוגלים לשמור את המאפיינים המקוריים, כגון צורת משושה פיגמנטציה.</li>
	</ol>
</li>
	<li>אין להעביר את הצלחת או לשנות את מדיום הגידול עבור ה 72 הראשון של culturing. לאחר 3 ימים, החלף את המדיום הישן עם מדיום הגידול מראש ומחוממת טריים. לאחר מכן לשנות את המדיום תרבות בכל יום אחר. ברגע תאי RPE confluency, להפחית את FBS במדיום גידול ל- 2%. הערה: התאים ניתן לפצל באמצעות טריפסין 0.25%. עם זאת, לאחר פיצול התאים עלול לאבד שלהם צורת משושה, פיגמנטציה, הקטעים הבאים. אנו לא ממליצים פיצול התאים, אך אם הדבר נדרש על-ידי היישומים במורד הזרם של התרבות, עליך לזכור כי התאים ראשי לא יכול להיות passaged ללא הגבלת זמן: הם ידועים דה-להבדיל לאחר 5-7 קטעים.</li>
</ol>

<ol><li>Martínez-Morales, J. R., Rodrigo, I., Bovolenta, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eye+development%3A+a+view+from+the+retina+pigmented+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Bioessays%22%5BJournal%5D)">Eye development: a view from the retina pigmented epithelium.</a> Bioessays. 26, 766-777 (2004).</li>
<li>Lehmann, G. L., Benedicto, I., Philp, N. J., Rodriguez-Boulan, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+membrane+protein+polarity+and+trafficking+in+RPE+cells%3A+past%2C+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Plasma membrane protein polarity and trafficking in RPE cells: past, present and future.</a> Exp Eye Res. 126, 5-15 (2014).</li>
<li>Fronk, A. H., Vargis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+culturing+retinal+pigment+epithelial+cells%3A+a+review+of+current+protocols+and+future+recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Methods for culturing retinal pigment epithelial cells: a review of current protocols and future recommendations.</a> J Tissue Eng. 7, (2016).</li>
<li>Rizzolo, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Barrier+properties+of+cultured+retinal+pigment+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Barrier properties of cultured retinal pigment epithelium.</a> Exp Eye Res. 126, 16-26 (2014).</li>
<li>Lu, F., Yan, D., Zhou, X., Hu, D. N., Qu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+melanin-related+genes+in+cultured+adult+human+retinal+pigment+epithelium+and+uveal+melanoma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Vis%22%5BJournal%5D)">Expression of melanin-related genes in cultured adult human retinal pigment epithelium and uveal melanoma cells.</a> Mol Vis. 13, 2066-2072 (2007).</li>
<li>Boulton, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+melanin+and+lipofuscin+in+RPE+cell+culture+models%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Studying melanin and lipofuscin in RPE cell culture models.</a> Exp Eye Res. 126, 61-67 (2014).</li>
<li>Saini, J. S., Temple, S., Stern, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Retinal+Pigment+Epithelium+Stem+Cell+%28RPESC%29%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Human Retinal Pigment Epithelium Stem Cell (RPESC).</a> Adv Exp Med Biol. 854, 557-562 (2016).</li>
<li>Akrami, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+pigment+epithelium+culture%3Ba+potential+source+of+retinal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ophthalmic+Vis+Res%22%5BJournal%5D)">Retinal pigment epithelium culture;a potential source of retinal stem cells.</a> J Ophthalmic Vis Res. 4, 134-141 (2009).</li>
<li>Hu, J., Bok, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+cultured+human+fetal+retinal+pigment+epithelium+in+studies+of+the+classical+retinoid+visual+cycle+and+retinoid-based+disease+processes%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">The use of cultured human fetal retinal pigment epithelium in studies of the classical retinoid visual cycle and retinoid-based disease processes.</a> Exp Eye Res. , 46-50 (2014).</li>
<li>Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+photoreceptor+outer+segment+phagocytosis%3A+use+and+utility+of+RPE+cells+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: use and utility of RPE cells in culture.</a> Exp Eye Res. 126, 51-60 (2014).</li>
<li>Reichhart, N., Strauss, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ion+channels+and+transporters+of+the+retinal+pigment+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Ion channels and transporters of the retinal pigment epithelium.</a> Exp Eye Res. 126, 27-37 (2014).</li>
<li>Valapala, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lysosomal-mediated+waste+clearance+in+retinal+pigment+epithelial+cells+is+regulated+by+CRYBA1%2F%CE%B2A3%2FA1-crystallin+via+V-ATPase-MTORC1+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Autophagy%22%5BJournal%5D)">Lysosomal-mediated waste clearance in retinal pigment epithelial cells is regulated by CRYBA1/βA3/A1-crystallin via V-ATPase-MTORC1 signaling.</a> Autophagy. 10, 480-496 (2014).</li>
<li>Shang, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+amino+acid+transporter+SLC36A4+regulates+the+amino+acid+pool+in+retinal+pigmented+epithelial+cells+and+mediates+the+mechanistic+target+of+rapamycin%2C+complex+1+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">The amino acid transporter SLC36A4 regulates the amino acid pool in retinal pigmented epithelial cells and mediates the mechanistic target of rapamycin, complex 1 signaling.</a> Aging Cell. , (2017).</li>
<li>Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+culture+and+characterization+of+primary+mouse+RPE+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Isolation, culture and characterization of primary mouse RPE cells.</a> Nat Protoc. 11, 1206-1218 (2016).</li>
<li>Pfeffer, B. A., Philp, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+culture+of+retinal+pigment+epithelium%3A+Special+Issue%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Cell culture of retinal pigment epithelium: Special Issue.</a> Exp Eye Res. 126, 1-4 (2014).</li>
<li>Singh, S., Woerly, S., McLaughlin, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+and+artificial+substrates+for+retinal+pigment+epithelial+monolayer+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Natural and artificial substrates for retinal pigment epithelial monolayer transplantation.</a> Biomaterials. 22, 3337-3343 (2001).</li>
<li>Sonoda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+the+culture+and+differentiation+of+highly+polarized+human+retinal+pigment+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">A protocol for the culture and differentiation of highly polarized human retinal pigment epithelial cells.</a> Nat Protoc. 4, 662-673 (2009).</li>
<li>Ho, T. C., Del Priore, L. V., Kaplan, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+culture+of+retinal+pigment+epithelium+following+isolation+with+a+gelatin+matrix+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+eye+research%22%5BJournal%5D)">Tissue culture of retinal pigment epithelium following isolation with a gelatin matrix technique.</a> Experimental eye research. 64, 133-139 (1997).</li>
<li>Toops, K. A., Tan, L. X., Lakkaraju, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+detailed+three-step+protocol+for+live+imaging+of+intracellular+traffic+in+polarized+primary+porcine+RPE+monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">A detailed three-step protocol for live imaging of intracellular traffic in polarized primary porcine RPE monolayers.</a> Exp Eye Res. , 74-85 (2014).</li>
<li>Gibbs, D., Kitamoto, J., Williams, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+phagocytosis+by+retinal+pigmented+epithelium+that+lacks+myosin+VIIa%2C+the+Usher+syndrome+1B+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Abnormal phagocytosis by retinal pigmented epithelium that lacks myosin VIIa, the Usher syndrome 1B protein.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 100, 6481-6486 (2003).</li>
<li>Gibbs, D., Williams, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+culture+of+primary+mouse+retinal+pigmented+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Exp+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and culture of primary mouse retinal pigmented epithelial cells.</a> Adv Exp Med Biol. 533, 347-352 (2003).</li>
<li>Pitkänen, L., Ranta, V. P., Moilanen, H., Urtti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeability+of+retinal+pigment+epithelium%3A+effects+of+permeant+molecular+weight+and+lipophilicity%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Permeability of retinal pigment epithelium: effects of permeant molecular weight and lipophilicity.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 46, 641-646 (2005).</li>
<li>Mao, Y., Finnemann, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+photoreceptor+outer+segment+phagocytosis+by+RPE+cells+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of photoreceptor outer segment phagocytosis by RPE cells in culture.</a> Methods Mol Biol. 935, 285-295 (2013).</li>
</ol>

DS קיבל מחקר מימון Bayer HealthCare, גרמניה ו פ הופמן-La Roche, שוויץ. המחברים הנותרים להכריז אין אינטרסים כלכליים מתחרים. עבודה זו נתמכת על ידי מחקר כדי למנוע עיוורון (מוגבל מענקים וילמר העין המכון, אוניברסיטת פיטסבורג).  עבודה זו נתמכת גם כספים סטארט-אפ ל DS עיניים, אוניברסיטת פיטסבורג.

פרוטוקול מפורט הציג מאפשרת הקמת אמין של העכבר הראשי תרבויות RPE להגיע confluency לאחר שבוע 1, להציג את מאפייני RPE העיקריים כגון צורת משושה פיגמנטציה לאחר 2 שבועות. תאי RPE שהושג יכול לשמש עבור מספר יישומים במורד הזרם כגון חילוף החומרים ויטמין A9, phagocytosis של מקטעי החיצוני קולט אור10 ו- תחבורה יון11, תאים אפיתל קוטביות2, lysosomal הומאוסטזיס, autophagy12,13. בהתאם ...

אפיתל הפיגמנט ברשתית (RPE) היא שכבה אחת של תאי אפיתל מקוטב הממוקם בין עצבי הרשתית דמית העין. הפונקציונליות של תאי RPE ויושר טפט RPE הם קריטיים עבור חזון כי RPE ממלא תפקיד חשוב בתהליכים מרובים כגון שמירה על המחסום דם-רשתית החיצוני, הובלת מים, יונים בין הרשתית ו מקלעת דמית העין, אור הקליטה, הגנה מפני סטרס חמצוני, שליטה על חילוף החומרים retinoid, phagocytosis המקטעים החיצוני של1,photoreceptors2. המיקום של RPE מאחורי העין, וכן תפקידה מחסום מניעת סמים מנוהל מערכתית עובר מהדם אל נוזל, להקשות ללמוד את המורכבות של ה RPE פונקציה ויוו. לפיכך, יש צורך גדול להקמתה של תרביות תאים RPE ללמוד תאי RPE גמיש, בסביבה מבוקרת3,4.
מספר קווי תאי RPE הוקמה קיימות, מתן דרך קלה ונוחה של קבלת ואחסון של התאים; עם זאת, תאים passaged יש כמה חסרונות לעומת תאים ראשי-2,-3,-4. ראשית, הם לעיתים קרובות מאופיינים על ידי שינויים מורפולוגיה תאים. לדוגמה, אף אחד ממחקרי התא הקיימים נמצאו בהכשרת מחקר אמין של המאפיינים מכשול RPE בשל האובדן של פנוטיפ קוטביות תא והעלמות חלקית של צמתי צר4. בנוסף אובדן קוטביות והתקשרויות לתא המתאים, הקווים תאי RPE לאבד במהירות שלהם פיגמנטציה בשל היעדרם של אנזימים melanogenesis מפתח ב RPE למבוגרים5. ניתן לשחזר את הפיגמנטציה, אבל ניתוח מקיף של המנגנון של פיגמנטציה מחדש אשר כוללים שילוב של מיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים, ג'ין ביטוי מבחני ניתוח וכימיקלים לאשר הנוכחות של מלנין מעולם כבר בביצוע6. מגבלה אחת יותר הוא הקווים תאי RPE חיי תאים המורחבת (לפעמים - אלמוות), בתנאים מסוימים יכול להפוך עצמי המתחדש תאי גזע multipotent כי ניתוק מן המצע טופס צף מושבות7, 8. מגבלה זו עושה את זה בלתי אפשרי להשתמש הקווים תא עבור השתלת ניסויים3.
בהתחשב החסרונות של הקווים תאי RPE הוקמה העיקרי תרביות תאים RPE המתקבל רקמות טרי עשוי לשמש מודל יותר ביולוגית רלוונטית ללמוד את RPE. ראשי תאי RPE שימשו לא רק ללמוד פונקציות ייחודיות RPE כגון ויטמין A חילוף החומרים9, phagocytosis של קולט אור מקטעי החיצוני10 ויון תחבורה11, אלא גם ללמוד ביולוגיה של התא בסיסיים כגון אפיתל התא קוטביות2 , הומאוסטזיס lysosomal autophagy12,13.
בחודשיים האחרונים של שנים היו מספר פרסומים על ביסוס ראשוני RPE תרבויות, המציין עניין הולך וגובר באזור זה של מחקר3,14,15. פרוטוקולים רבים עבור תאי RPE אדם ותאים RPE אנושיות כגון תאי RPE שור וחזירי היו שפורסמו16,17,18,19. עם זאת, קשה יותר להתמודד עם תאי RPE העכבר בשל גודלם קטן בהרבה. אף-על-פי מספר פרסומים תיארו פרוטוקולים בידוד תאי RPE העכבר14,20,21, עדיין ישנם חוקרים רבים נאבקים לבודד תאי RPE ללא זיהום של תאים דמית העין או תאים מפני פסולת עצבי הרשתית. כאן אנו מציגים את הפרוטוקול להקמת העכבר הראשי RPE תרבית תאים, לרבות קבלת העיניים של העכבר, דיסקציה של העיניים ובידוד של הסדינים RPE להניב את התאים עבור culturing. פרוטוקול וידאו זה יהיה שימושי במיוחד עבור חוקרים שמתחילים לעבוד עם העכבר הראשי RPE תרבויות, צריכים הדרכה על הטכניקות לנתיחה.

<table><tbody><tr><td><חזק>חיות</חזקות></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2 ~ 3 שבועות עכברים</td><td></td><td></td><td></td> פראיים בני 3 שבועות</tr><tr><td><חזקים>שם</חזקים></td><td><חזקים>חברה</חזקים></td><td><חזקים>מספר קטלוגי</חזק></td><td><חזק>הערות</חזק></td></tr><tr><td><חזק>ריאגנטים</חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>מדיום נשר מעובד (DMEM) של Dulbecco, גלוקוז גבוה</td><td>GIBCO</td><td>11965092</td><td></td></tr><tr><td>Dispase II</td><td>Sigma</td><td>D4693</td><td></td></tr><tr><td>סרום בקר עוברי (FBS)</td><td>סיגמא</td><td>F4135</td><td></td></tr><tr><td>פניצילין-סטרפטומיצין (10,000 יח'/מ"ל)</td><td>GIBCO</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>MEM תמיסת חומצות אמינו לא חיוניות (100X)</td><td>GIBCO</td><td>11140050</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת מלח חוצצת פוספט (PBS), 1X, pH 7.4</td><td>GIBCO</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Cellgro</td><td>61-034</td><td></td></tr><tr><td>KOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1310-58-3</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Ambion</td><td>AM9759</td><td></td></tr><tr><td>L-גלוטמין (200 מ"מ)</td><td>GIBCO</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>אתיל אלכוהול</td><td>פישר 111000200</td><td></td><td></td></tr><tr><td>נוגדן RPE65</td><td>מתנה מד"ר מייקל רדמונד</td><td></td><td></td></tr><tr><td>פלואורסצאין פלואידין&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>F432</td><td></td></tr><tr><td>עיזים נגד ארנב IgG (H+L), קמח אלקסה 568&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>A11011&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>סרום עיזים</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde (PFA)</td><td>Polysciences, Inc</td><td>00380</td><td></td></tr><tr><td>ZO-1 נוגדן פוליקלונלי</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>40-2200</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Catalog מספר</חזק></td><td><חזק>הערות</חזק></td></tr><tr><td><חזק>מכשירים וציוד</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>למינרי ארון זרימה</td><td>בייקר</td><td>סטרילGARD SG403A</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ ניתוח (סטריאומיקרוסקופ זום)</td><td></td><td>חממת ניקון</td> SMZ1500 <td></td></tr><tr><td>CO2 עם עיקור אוויר חם</td><td>קלסר</td><td>C150</td><td></td></tr><tr><td>צנטריפוגה</td><td>Eppendorf</td><td>5702</td><td></td></tr><tr><td>צלחות פטרי</td><td>Fisher Scientific</td><td>0875712</td><td></td></tr><tr><td>מוסיף ממברנה פוליאסטר 12 מ"מ טעון מראש בצלחות תרבית 12 בארות, גודל נקבוביות: 0.4 & מיקרו; m,</td><td>קורנינג</td> סטרילי משולב <td>COR-3460</td><td></td></tr><tr><td>Westcott מספריים טנטוטומיה, להבים std,</td><td>מכשירי STEPHENS חדים</td><td>S7-1320</td><td></td></tr><tr><td>מלקחיים תפרים Castroviejo 0.12 מ"מ</td><td>Stroz מכשירי עיניים</td><td>E1796</td><td></td></tr><tr><td>סכין ישרה סהר</td><td>Beaver-Visitec International</td><td>373808</td><td></td></tr><tr><td>Dumont פינצטה #5, 11 ס"מ, ישר, 0.1x0.06 מ"מ קצות, Dumostar</td><td>World Precision Instruments</td><td>500233</td><td></td></tr><tr><td>מספריים ואנה, 8 ס"מ, 45&deg; זווית, Standard</td><td>World Precision Instruments</td><td>500260</td><td></td></tr><tr><td>Millex-GS יחידת מסנן מזרק, 0.22 ומיקרו; מ</td><td>Millipore</td><td>מזרק SLGL0250S</td><td></td></tr><tr><td>, 5 מ"ל</td><td>BD</td><td>309632</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ מעבדה הפוך&nbsp; Leica DM IL LED</td><td>&nbsp; לייקה&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>פיפטה</td><td>גילסון</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מחסום וקצות פיפטות לא מסוננות</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

התא העיקרי של אפיתל הפיגמנט ברשתית העכבר תרבויות

Primary Cell Cultures from the Mouse Retinal Pigment Epithelium

אפיתל הפיגמנט ברשתית (RPE) הוא אפיתל רב תפקודי מקוטב מאוד הממוקם בין עצבי הרשתית דמית העין. . זה גיליון אחד של תאי פיגמנט hexagonally ארוז, המחוברים באמצעות צמתי צר... הפונקציות העיקריות של RPE כוללים ספיגת אור, phagocytosis מקטעי החיצוני של קולט אור המחסן, אגירה המרחבי של יונים, הובלה של חומרים מזינים, יונים, מים, כמו גם מעורבות פעילה במחזור חזותי. עם כזה פונקציות חשובות ומגוונות, חשוב באורח קשה ללמוד את הביולוגיה של תאי RPE. מספר קווי תאי RPE הוקמו; עם זאת, תאים passaged מונצחים ידועים במהירות לאבד חלק מאפיינים פיזיולוגיים מורפולוגיים של תאי RPE טבעי. לפיכך, ראשי תאים מתאימים יותר ללמוד היבטים שונים של ביולוגיה של התא RPE ותפקוד. תרבית תאים RPE העיקרי של העכבר הוא שימושי מאוד עבור חוקרים מאז מודלים העכבר נמצאים בשימוש נרחב במחקרים ביולוגיים, אולם איסוף RPE תאים מן העכבר גם מאתגר מאוד בשל גודלם הקטן. כאן, אנו מציגים פרוטוקול להקמת תרביות תאים RPE העכבר הראשי הכוללת העקירה, דיסקציה של העיניים ובידוד של הסדינים RPE להניב את התאים עבור culturing. שיטה זו מאפשרת שחזור היעילה תא. תאי RPE המתקבל שני עכברים יכולים להגיע confluency על אחד הוספה ממברנה פוליאסטר של 12 מ מ, טעון מראש בצלחת תרבות לאחר שבוע של תרבות להציג חלק מהמאפיינים המקוריים של RPE בתום תאים כגון צורת משושה, פיגמנטציה לאחר שני שבועות של תרבות.

העכבר הראשי RPE התרבות נוצרו מ- 2 עכברים ב 12 מ מ ממברנה פוליאסטר הוספה מגיע ל 90-95% confluency לאחר שבוע 1 בתרבות. לאחר 2 שבועות של תרבות, התאים הגיעו 100% confluency והתחלתי ליצור פסיפס של תאים משושה, פיגמנט ו- bi-nucleated. על ידי 3 שבועות של תרבות, התאים המשיך כדי ליצור את הצורה והסגנון של פיגמנטציה, עם זאת, לאחר 4 שבועות חלק התאים יש hyperpigmented (איור 2).
טוהר התרבות תאי RPE ראשי יכול להיות...

אפיתל הפיגמנט ברשתית (RPE) הוא אפיתל רב תפקודי של העין. כאן אנו מציגים פרוטוקול ליצירת תרביות תאים ראשי נגזר RPE מאתר...

The retinal pigment epithelium (RPE) is a highly polarized multi-functional epithelium that is located between the neural retina and the choroid of the ...

המטרה הכוללת של הליך זה היא להדגים דרך מעשית להשיג תאי אפיתל פיגמנט ברשתית מעיני עכברים, ולתרבית אותם במבחנה תוך שמירה על תכונותיהם המקוריות. שיטה זו תסייע לחוקרי RPE להשיג מיומנויות דיסקציה הנדרשות להקמת תרביות תאי RPE בעכברים, ולהדגים כיצד לעשות זאת בדרך קלה. היתרון העיקרי של הליך זה הוא שהוא פשוט ואפשרי.הדבר היחיד שנדרש הוא תרגול, וההדגמה החזותית של בידוד RPE והמיקרוסקופיה מדגימה פשוטו כמשמעו כיצד להשיג את הכישורים הנדרשים. כדי לבודד את גלגלי העיניים של העכבר, יש להמית תחילה שני עכברים בכל שיטה מאושרת, וללבוש כפפות להניח אותו על כרית סופגת. מקם אגודל ואצבע מורה סביב העין ודחף בעדינות את העור כדי לבלוט החוצה את גלגל העין.לאחר שגלגל העין בולט, תחבו את קצה המספריים הזוויתיים בין העור לגלגל העין וחתכו בזהירות את הרקמה סביב העין עד לשחרורה. לאחר מכן, טבלו לזמן קצר את העין המבודדת באתנול 70% וטבלו אותה ב-PBS בצלחת פטרי. לאחר איסוף שתי העיניים מכל אחד מהעכברים, המשך בדיסקציה.תחת המיקרוסקופ המנתח, הסר בזהירות את רוב רקמת החיבור מסביב לעין. אין צורך להשאיר את העין שקועה בשלב זה. לשם כך, השתמש במלקחיים תפורים כדי להרים את רקמות החיבור מגלגל העין, וחתוך אותן באמצעות מספריים של Vannas.אל תחתוך את הסקלרה מכיוון שכמעט בלתי אפשרי להשיג את כוסות העיניים האחוריות השלמות אם הסקלרה נחתכת. לאחר ניקוי רקמת החיבור, טבלו את גלגלי העיניים ב-PBS ועברו לעבודה בארון זרימה למינרי בתנאים סטריליים. כעת, השתמשו במלקחיים כדי להעביר את העיניים לתוך צלחת של DMEM חם המכיל ריכוז גבוה של גלוקוז.לאחר 20 עד 30 שניות, החלף את תמיסת הכביסה באמצעות שאיפה לשטיפה שנייה. העבירו את גלגלי העיניים לתמיסת עבודה מחוממת 2%Dispase II בשפופרות של 15 מ"ל ותנו לעיניים לדגור בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 45 דקות כדי להתנתק. לאחר הדגירה, גלגלי העיניים צריכים להיות רכים.לאחר מכן, שטפו את העיניים פעמיים באותו כלי עם מדיום גידול מחומם. לאחר השטיפה השנייה, החליפו את מצע הגידול במדיום טרי, והעבירו את גלגלי העיניים והמדיום לכלי חדש להמשך החיתוך. המשך לעבוד בספסל נקי בעזרת מיקרוסקופ דיסקציה.התחל את הדיסקציה על ידי אבטחת העין עם מלקחיים ובצע חתך סביב ה-ora serrata באמצעות מספריים של Vannas. שמור על גלגל העין בתמיסה, הסר בזהירות את הקרנית הקדמית על ידי הארכת החתך סביב היקף ה-ora serrata. לאחר השלמת החיתוך, משוך את הקרנית הקדמית.לאחר מכן, הסר את קפסולת העדשה ואת האפיתל הפיגמנטי של הקשתית הנלווית על ידי משיכתה בעדינות מכוס העין באמצעות מלקחיים עם שיניים. לאחר מכן, חזור על הדיסקציה על העיניים הנותרות ודגר את כוסות העיניים האחוריות במדיום גידול למשך 20 דקות ב-37 מעלות צלזיוס כדי להקל על הפרדת הרשתית העצבית מה-RPE. לאחר 20 דקות, חותכים את כוסות העיניים האחוריות לארבעה עלי כותרת.בצע את החתכים ארוכים מספיק כדי לשטח את העין, אך קצרים מספיק כדי לשמור על עלי הכותרת מחוברים. לאחר מכן, שטחי את גביעונית העין כדי להסיר את הרשתית העצבית. אבטח את קומפלקס הכורואיד הנותר של RPE עם היד הלא דומיננטית ומשוך בעדינות רבה את הרשתית מהקצוות.לאחר הסרת הרשתית העצבית, העבירו את קומפלקס הסקלרה הכורואיד RPE לרבע לתוך צלחת תרבית סטרילית חדשה מלאה במצע גידול חם. בצלחת הפטרי, אבטח עלי כותרת אחד של קומפלקס הכורואיד RPE הרבע עם מלקחיים עדינים במיוחד, ובעזרת סכין סהר מיקרו-כירורגית, קלף בעדינות את יריעות ה-RPE השלמות מקרום הבסיס הבסיסי. יש להבחין בבירור בין ה-RPE החום לבין הכורואיד הכהה, הדביק והרך.לאחר מכן, הרטיבו קצה מיקרופיפטה p200 עם מצע גידול והשתמשו בקצה כדי להעביר את יריעות ה-RPE לתוך הכלי החדש המכיל מצע גידול מחומם. כעת, שטפו את יריעות ה- RPE שלוש פעמים במדיום גידול מחומם. לאחר כל שלב שטיפה, אסוף בזהירות את יריעות ה-RPE תוך הימנעות מרקמות אחרות, כגון פסולת מהרשתית או הכורואיד.לאחר הכביסה האחרונה, העבירו את יריעות ה- RPE לצינור של 1.5 מ"ל, ואפשרו להן לשקע על ידי כוח הכבידה. לאחר מכן, בארון הזרימה הלמינרית הסר את מצע הגידול הנוסף ותלה מחדש את התאים במצע גידול חם טרי. כעת, טריטורציה עדינה של הרקמה באמצעות מיקרופיפטה p200 מבלי ליצור בועות.טריטורציה בין 40 ל-50 פעמים, בדיוק מספיק כדי ליצור תרחיף תא בודד. היזהר מכיוון שיותר מדי טריטורציה עלולה להיות קטלנית. כעת, צלחו את תאי ה-RPE שנאספו משני העכברים בתוספת קרום פוליאסטר אחת של 12 מ"ל בבאר של צלחת תרבית של 12 בארות.רצוי צפיפות תאים גבוהה כדי שתאי ה-RPE ישמרו על צורתם המשושה והפיגמנטציה שלהם. תרבית RPE ראשונית של עכבר שהוקמה משני עכברים בתוספת ממברנת פוליאסטר 12 מ"מ הגיעה למפגש של 90 עד 95% לאחר שבוע בתרבית. לאחר שבועיים בתרבית, התאים היו 100% מתכנסים והחלו ליצור פסיפס של תאים פיגמנטיים משושים ודו-גרעיניים.בשבוע השלישי, התאים המשיכו להשתנות בצורתם ובפיגמנטציה. עם זאת, לאחר ארבעה שבועות חלק מהתאים הפכו להיפרפיגמנטיים. טוהר תרבית תאי ה-RPE הראשונית הוערך באמצעות נוגדן RPE65, המסמן רטינואיד איזומרוהידרולאז, אנזים קריטי למחזור הראייה של בעלי חוליות.שלמות התא לצמתים של התא וצורת התא המשושה הודגמה על ידי צביעה עם פלואידין. צמתים הדוקים הודגמו על ידי ניתוח ביטוי חלבון ZO-1, שניתן היה לדמיין באמצעות כתם אמינו ולאמת על ידי כתמים מערביים. בסך הכל, התרביות מסוגלות להתרבות, לשמור על פיגמנטציה וצורתן המשושה תוך יצירת צמתים הדוקים וביטוי סמנים פונקציונליים, כגון RPE65.לאחר צפייה בסרטון זה, אתם אמורים להבין היטב כיצד לבודד תאי RPE מעיני העכבר ולתרבית אותם כראוי במבחנה. לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך שלוש שעות אם היא מבוצעת כראוי. בזמן ניסיון הליך זה, חשוב לזכור תמיד לשמור על העיניים רטובות ולנסות לפעול מהר ככל האפשר.

primary-cell-cultures-from-the-mouse-retinal-pigment-epithelium

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנו מספקים שיטה לשחזור עבור monolayers culturing ומחוברות של העובר תאים אנושיים אפיתל הפיגמנט ברשתית (hfRPE) תאים התערוכה מורפולוגיה, פיזיולוגיה, קוטביות, וחלבון וביטוי גנים דפוסים של רקמת יליד מבוגר. עבודה זו הורחבה במודל חיה של מחלות עיניים שונות.

מודלים ניסויית לחקר פיזיולוגיה פתופיזיולוגיה פיגמנט רשתית אפיתל

בסרטון זה נדגים כיצד לבודד בתאי גזע הרשתית מן אפיתל ריסי העין העכבר לגדל אותם בתרבית כדי ליצור כדורים רשתית משובט. התחומים כי הם מבודדים להחזיק את המאפיינים העיקריים של בתאי גזע: התחדשות עצמית multipotentiality.

בידוד של גזע תאים רשתית העין של העכבר

רשתית עצבית של עכבר בגילים 8 ימים היא על גבי בלוק ג'לטין 4%. לאחר הבידוד של שכבת קולטי האור (200 מיקרומטר) על ידי vibratome, הקולטניים האור הם זורעים לאחר ניתוק מכאני והאנזימטית לתרבות. שכבת קולטי האור יכולה לשמש ל, ניתוחים ביוכימיים מולקולריים או השתלה.

Vibratome חתך רשתית העכבר להכין תרבויות קולטי אור

הפרוטוקול מתאר explants organotypic שלרשתית נוירוהעכבר , מעובד יחד עם אפיתל פיגמנט הרשתית שלה (RPE), במדיום R16 מוגדר, ללא סרום ואנטיביוטיקה. שיטה זו פשוטה יחסית לביצוע, זולה יותר וגוזלת זמן בהשוואה לניסויי vivo, וניתן להתאים אותה ליישומים ניסיוניים רבים.

טווח ארוך, טיפוח ללא סרום של אורגנוטיפי עכבר רשתית explants עם אפיתל פיגמנט רשתית שלם

פרוטוקול זה, אשר דווח במקור על ידי פרננדז-Godino ואח '. בשנת 20161, מתאר שיטה לבודד ביעילות ותרבות העכבר RPE תאים, אשר יוצרים מונולייר RPE פונקציונלי מקוטב בתוך שבוע על לוחות Transwell. ההליך לוקח בערך 3 שעות.

ניתוח יעיל ותרבות של תאי אפיתל פיגמנט רשתית העכבר הראשי

כתב יד זה מתאר פרוטוקול פשוט לבידוד תאי אפיתל פיגמנטציה ברשתית (RPE) מעיני עכבר באופן מדורג. הפרוטוקול כולל אנוקליזציה ונתיחה של עיני עכבר, ולאחר מכן בידוד, זריעה והתרבות של תאי RPE.

בידוד של תאי אפיתל פיגמנטים ברשתית של עכברים ראשוניים

כאן מוצגת שיטה קלה למעקב לתרבית תאי אפיתל פיגמנט רשתית חזיריים ראשוניים במבחנה .

תרבית ראשונית של תאי אפיתל פיגמנט רשתית חזירית

אנו מתארים שיטה פשוטה ויעילה לבידוד תאים של אפיתל פיגמנט הרשתית (RPE) מעיניהם של שרקנים צעירים בעלי פיגמנט. הליך זה מאפשר מעקב אחר מחקרי ביולוגיה מולקולרית על RPE המבודד, כולל ניתוח ביטוי גנים.

בידוד תאי אפיתל פיגמנט ברשתית מעיני חזיר גינאה

פרוטוקול זה מתאר את ההליך להשגה וטיפוח של תאי אפיתל פיגמנט רשתית ראשוניים (RPE) מעיניים חזיריות ממקור מקומי. תאים אלו מהווים חלופה איכותית לתאי גזע ומתאימים למחקר רשתית במבחנה .

בידוד תאי אפיתל פיגמנט רשתית חזיריים ראשוניים למידול חוץ גופי

כתב יד זה מתאר פרוטוקול מפורט לבידוד תאי גליית הרשתית מעיני עכבר. הפרוטוקול מתחיל באינקולציה ודיסקציה של עיני עכבר, ואחריו בידוד, זריעה וטיפוח של תאי מולר.

בידוד תאי גליית גליה ראשוניים ברשתית העכבר

אפיתל פיגמנט ברשתית (RPE) פועל כמחסום מכריע בין הכורואיד לרשתית, ומקדם את בריאותם ותפקודם של סוגי תאי רשתית, כגון פוטורצפטורים. במאמר זה אנו מתארים פרוטוקול פשוט ויעיל לבידוד וטיפוח RPE של מורין בוגר.

שיטה פשוטה לבידוד ותרבית של תאי אפיתל פיגמנט ברשתית מעכברים בוגרים

למדו שיטה פשוטה לבידוד וגידול תאי אפיתל הפיגמנט ברשתית מעיני עכברים תוך שמירה על תכונותיהם המקוריות. פרוטוקול זה מסייע לחוקרים לרכוש מיומנויות ניתוח הדרושות למחקר רטינלי.

התא העיקרי של אפיתל הפיגמנט ברשתית העכבר תרבויות

גלה סרטונים נוספים