Name: טכניקות ביופסיה בלוטת חלב שור (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-12-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 53 s
Description: למד טכניקות ביופסיה בלוטת חלב שור באמצעות מכשירי קור ומחט לדגימת רקמה תפקודית. שיטה זו מאפשרת ניתוח ביטוי גנים, היסטולוגיה וחקר מסלולי תקשורת הורמונליים בבקר חלב.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

מחקר זה נתמך על ידי תוכנית לאומית של תזונת בעלי חיים ו וירג'יניה טק. סיוע טכני של גברת טארה Pilonero ד ר ג'ולי Settlage, ד ר Izabelle טיישיירה הם הכירו בהכרת תודה.

כל השיטות המתוארות אושרו על ידי וירג'יניה טק אכפת חיה מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC).
1. סגל
<ol><li>יש לפחות שני עוזרים עם ניסיון כירורגי וטיפול פרה.</li>
	<li>הרכבת כל המסייעים לפחות שלוש פעמים, אם זה אפשרי באמצעות חומר cadaveric, לפני ביצוע הליכים הקשורים עם פרוטוקול זה בבעלי חיים. הערה: הכשרה צריך להתנהל ע"י מדריך כי כבר בעבר אימן וביצע את הטכניקה.</li>
	<li>יש וטרינר חיות גדולות על-יד עבור ניהול סמים, במקרה זה טיפול חירום הופך להיות הכרחי במהלך ההליך. מצבי חירום שעלולות להתרחש במהלך הליך זה כוללים אך אינם מוגבלים: דימום, α-2 אגוניסט יתר, בצקת ריאות, regurgitation, שאיפה של חומר המזון, כאב, התנגדות המטופל לדרוש הרדמה נוספת.</li>
</ol>2. הכנה של מכשירי ניתוח, ציוד, מתקן
<ol><li>מלאי ולרכוש כל ציוד וחומרי תכשיטנות (ראה טבלה של חומרים).</li>
	<li>נקי, וילונות כירורגי אוטוקלב ביופסיה מכשירים, מחזיקי אזמל, מגבות כירורגי, מלקחיים.</li>
	<li>יש לסחוט בגודל תקין המצנח שער כדי לרסן את הפרות.</li>
	<li>ליצור מרחב עבודה עם שולחן ליד תעלת לסחוט.</li>
	<li>ודא כי אזור העבודה נקי הגביל פרה דרך תנועה.</li>
	<li>לארגן ציוד ואספקה במרחב העבודה של לגישה נוחה.</li>
	<li>יש תאורה מתאימה בתוך מרחב העבודה.</li>
</ol>3. הכנה של חיות
<ol><li>יום אחד לפני הביופסיה מתוזמנת, לשטוף ולקרצף החיה, במיוחד עטין להסרת זבל והחומרים המלוכלכים.</li>
	<li>בצע את ההליכים עבור איפוק הומאני ובטוח של הבקר.</li>
	<li>לפני הביופסיה, שוב בזמן הביופסיה, להעריך את בריאות, מצב גופני וההתנהגות של החיה. הערה: בדיקה מינימלית כוללת טמפרטורה, הדופק, ואת המחירים הנשימה, כמו גם בחינת דרמטיטיס באתר כירורגית המוצע או באזורים אחרים של זיהום חיידקי. לאסוף דגימות חלב בכל רבעון ולבדוק mastitis.</li>
	<li>השתמש רק פרות בריאות.</li>
	<li>לגמרי לחלוב את הפרה.</li>
	<li>להעביר את החיה המצנח לסחוט, ממוקם באופן אידיאלי במרחק 2 h החליבה כדי למזער את נוכחות החלב בבלוטות.</li>
	<li>לרסן את החיה עם שער הראש.</li>
</ol>4. שיכוך כאבים וטשטוש
<ol><li>במקום מחבל התלייה חבל על ראשו של הפרה כדי למנוע אחורה וקדימה התנועה.</li>
	<li>להוציא את הראש של החיה לצד אחד, אקשור את החבל המצנח לסחוט באמצעות קשר שחרור מהיר כדי להחזיק את הראש במקום.</li>
	<li>לנקות את האזור של הזרקת עם מקלון אלכוהול איזופרופיל 70%, לנהל flunixin meglumine (1.1 ל 2.2 mg/kg של משקל גוף) דרך הווריד באמצעות עורק הצוואר 15-20 דקות מראש את הביופסיה. הערה: בפרוטוקולים מסוימים, תכשירים מנוהלים לאחר הביופסיה אם תרופות אנטי דלקתיות לא תשפיע על תוצאות המחקר.<ol>
<li>אתר ומוחלף.</li>
		<li>להעלות ומוחלף על ידי הפעלת לחץ בבסיס של החריץ צוואר.</li>
		<li>בדוק כדי לוודא שאין אין בועות במזרק.</li>
		<li>להכניס את המחט, ומוחלף מוגבה על צייר 0.5 מ של דם לתוך המזרק פעמיים ומערבבים עם התוכן. אם אין דם מראה במזרק, להעביר את המחט. אם המחט הוא תושב בווריד, להזריק את התוכן.</li>
		<li>הסר בעדינות את המחט.</li>
		<li>חלות גזה עם לחץ עדין על ההזרקה כדי למנוע דימום.</li>
	</ol>
</li>
	<li>ניהול חריגות השירותים הווטרינריים הידרוכלוריד לווריד (0.01 עד 0.05 mg/kg של משקל גוף) בתוך הכלי coccygeal כ 5-10 דקות לפני ביופסיה כדי לאפשר מספיק זמן עבור הקמת הרגעה. התראה: בדוק את החיה סימנים של בצקת ריאות. סימנים קליניים של בצקת ריאות כוללים מצוקה נשימתית, קוצר נשימה חמורות, קשיי נשימה, שיעול, ברוק הלאגר ו כחול הלשון. אם הם נצפו סימנים של בצקת ריאות, מומלץ להשתמש tolazine (2-4 mg/kg של משקל גוף) את ההשפעה חריגות השירותים הווטרינריים.
	<ol>
<li>הרימי את רגליה ולנקות את האזור של הזרקת עם מקלון אלכוהול איזופרופיל 70%.</li>
		<li>בדוק כדי לוודא שאין אין בועות במזרק.</li>
		<li>את המחט לתוך כלי הזנב, לצייר 0.2 מ"ל של דם לתוך המזרק ומערבבים עם התוכן על מנת להבטיח שהמחט הוא תושב בתוך הכלי. אם המחט הוא תושב בתוך הכלי, להזריק את תוכן המזרק.</li>
		<li>הסר בעדינות את המחט.</li>
		<li>חלות גזה עם לחץ עדין על ההזרקה.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. הכנת הביופסיה
<ol><li>יש עוזרת לקשור את הזנב עבור ההליך.</li>
	<li>בחר את אתר ביופסיה על עטין (בדרך כלל באזור העליון כדי למזער את אוסף של רקמת חיבור וכדי למנוע חדירה לתוך בלוטת בור המים, איור 1), ולהסיר כל חומר המלוכלכת או זבל מאתר שנבחרו ביופסיה.</li>
</ol><img alt="עטין פרה עם אזור מסומן המראה דלקת, המעיד על דלקת שד אפשרית." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig1v2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> איור 1 . התמונה של עטין פרה הממחישות את הביופסיה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a> 
<ol start="3"><li>לצפות, ימשש העור עם תשומת לב מיוחדת כדי לזהות כל כלי דם תת עורי גדול על מנת להימנע אלו כלי במהלך הביופסיה.</li>
	<li>קליפ על השיער מאזור 15 ס"מ על 15 ס"מ סביב האתר ביופסיה.</li>
	<li>הכינו את האזור ביופסיה עם povidone-יוד (0.75% יוד זמין) או chlorhexidine gluconate סקראב. לסירוגין עם אלכוהול איזופרופיל 70% לפחות שלוש פעמים כדי להסיר את כל פסולת גלויים ובלתי נראה. החל את הפתרון סקראב aseptic איזופרופנול בתנועה סיבובית בגישה הפוכה. ודא כי הפתרון סקראב חיטוי נותר במגע עם העור למשך 5 דקות לפחות.</li>
	<li>השתמש עם אינפוזיה פרפר סט עם מחט 18 גרם כדי להפקיד 6 מ של 2% לידוקאין הידרוכלוריד subcutaneously מקום החתך כדי ליצור קו-בלוק. לא לחדור לרקמות עמוקות יותר. הערה: המינון של לידוקאין משתנה בין 3 עד 8 מ.</li>
	<li>לאפשר הרדמה מקומית על להתפשט עבור 3 עד 5 דקות לבצע חזרה נוספת על פתרון סקראב ואלכוהול לפני החתך. תוך כדי המתנה, להכין את כלי הנגינה ביופסיה.</li>
</ol>6. נוהל ביופסיה
<ol><li>להשתמש טכניקות aseptic בעת טיפול בכלי ביופסיה ועבור את החתך.</li>
	<li>לשטוף את הידיים כדי להסיר את כל זיהום גלוי ולהחיל כפפות כירורגי סטרילי.</li>
	<li>לארגן את מכשירי ניתוח באזור סטרילי לפי סדר השימוש. יש אזמל מספר 10, גזה סטרילית, מכשיר ביופסיה התאספו, מגבת סטרילי hemostasis. הערה: בצע נוהל 1 לביצוע ביופסיה ליבה או פרוצדורה 2 לבצע ביופסיה מחט.
</li>
</ol><img alt="תרשים הרכבה של מערכת כרומטוגרפיה; רכיבים מסומנים וממוספרים לתהליך הפרדת DNA." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> איור 2 . ייצוג סכמטי של הרכבה וההתקנה של הכלי ביופסיה הליבה מתוארת על ידי נ ג פאר, et al. 9 בר בקנה מידה הוא 1 ס מ. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<ol start="4"><li>מכשיר ביופסיה הליבה (פאר ואח9)<ol>
<li>להרכיב את המכשיר ביופסיה הליבה תוך שימוש בכפפות סטריליות (איור 2).<ol>
<li>מניחים את חתיכות סטרילי 7 על תלוי סטרילי (איור 2 א).</li>
			<li>הכנס את הלהב (חלק 1) לתוך מערכת עגינה על היצירה 2 (איור 2B ). התראה: אין למקם את האצבעות ישירות בקו להב.
</li>
			<li>להוסיף קטע 3 על גבי פיסת 2 (איור 2C) להבטיח כי תחנת העגינה תיישר. הערה: שימו לב מערכת עגינה בקיר הפנימי של היצירה 4 (איור דו-ממדי).</li>
			<li>לעסוק הקצה הסופי של הלהב (חלק 1) לתוך מערכת עגינה של פיסת 4 (איור דו-ממדי).</li>
			<li>לדחוף קדימה חתיכת 4 ולבחון אם היצירה 4 נמצא ליד חלק 3 (2E איור).</li>
			<li>להוסיף חתיכת 5 על המכשיר (להב + קטע 2) (איור 2F).</li>
			<li>להבטיח כי מיושרים בתחנת העגינה (איור 2G).</li>
			<li>להכניס חתיכה 6 פסגת היצירה 2 (בצד הנגדי של הלהב) (איור 2 H)</li>
			<li>להבטיח כי מיושרים בתחנת העגינה (איור 2 H).</li>
			<li>הכנס את בורג הנעילה (חלק 7) בתחנת העגינה (איור 2I).</li>
			<li>לדחוף קדימה חתיכת 3 (שחור) כדי לכסות את בורג הנעילה. התראה: אין למקם את האצבעות על יציאת להב.
</li>
			<li>להפעיל את הכלי דוחף קדימה חתיכת 4 ולבחון את הלהב מחוץ הכלי.</li>
			<li>. תחזיר את היצירה 4 כדי לבטל את הלהב לתוך הכלי (מוכן לשימוש) הערה: הלהב להיות מופעלים רק כאשר הכלי שחדר את המרחק הרצוי בתוך הרקמה להיות ביופסיה.</li>
		</ol>
</li>
		<li>ודא הפרה מספיק מורדמת הביופסיה. מספיק הוא מורדם. צובטים את העור כדי להבטיח שום תגובה.</li>
		<li>עושים חתך אנכי 2-3 ס מ דרך העור ורקמות תת עורית של proximal כדי דיסטלי באמצעות איזמל מספר 10.</li>
		<li>לצרף את המכשיר ביופסיה תרגיל אלחוטיים בטכניקה סטרילי.</li>
		<li>למקם את המקדחה נגד הכלי ביופסיה ולבדוק אם הכלי מחובר היטב ל התרגיל.</li>
		<li>להבטיח ריסון הולם על-ידי הפרט לרומם את הזנב במהלך כל ההליך.</li>
		<li>הפעל את התרגיל באמצעות סיבוב עם כיוון השעון, מהירות נמוכה. הערה: הנוהל אינו סטרילי, המפעיל לא נותר סטרילי בעת שימוש את התרגיל.</li>
		<li>לקדם את הכלי ביופסיה כולו (כ- 7.5 ס"מ) לתוך עטין דרך החתך בזמן התרגיל לסובב את האגרה.</li>
		<li>לבטל את הנוהל ולהרחיב באופן ידני את היצירה 4 של הכלי.</li>
		<li>הפעל את התרגיל באמצעות סיבוב עם כיוון השעון, מהירות נמוכה.</li>
		<li>הסר את כלי המכיל רקמות הליבה של עטין.</li>
		<li>הפעילו לחץ חזק מיד על הפצע באמצעות מגבת נקיה של 20 דקות לפחות. הערה: יש עוזרת לבצע פעולה זו באמצעות האגרוף שלהם כדי להבטיח לחץ נאותה.</li>
		<li>להסיר את הרקמה ביופסיה כלי באמצעות פינצטה.</li>
		<li>לשמור את הדגימה מלוחים פוספט x 1 buffered ולהעריך את כמות הרקמה.</li>
		<li>לקחת סימנים חיוניים של הפרה כל 10 דקות לאחר הביופסיה במשך לפחות 30 דקות.</li>
		<li>בדוק אם יש דימום לאחר 20 דקות של הלחץ על הביופסיה. אם ישנן טיפות של דם להמשיך להפעיל לחץ למשך דקות נוספות 5-10.</li>
		<li>סגור את החתכים באמצעות מהדקים פלדת אל-חלד במרווחים של 5 מ מ אחרי כל הדימום הפסיק. השתמש בין 5 ו 8 סטייפלס.</li>
		<li>חלות על תחבושת תרסיס האזור ביופסיה.</li>
		<li>להתבונן החיה למשך 50 דקות לאחר ההליך.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
מכשיר ביופסיה מחט
	<ol>
<li>בצע הוראות היצרן של ההתקן.</li>
		<li>הסר את מחט הביופסיה החבילה באמצעות טכניקות סטרילי.</li>
		<li>למחוק את המחט, אם נזק נצפית.</li>
		<li>לצרף את המחט למכשיר.</li>
		<li>סגור את המכסה, דורך את המכשיר.</li>
		<li>ודא הפרה מספיק מורדמת הביופסיה. מספיק הוא מורדם. צובטים את העור כדי להבטיח שום תגובה.</li>
		<li>עושים חתך אנכי 1 עד 2 ס מ דרך העור ורקמות תת עורית של proximal כדי דיסטלי באמצעות איזמל מספר 10. הערה: חתך המכשיר מחט הביופסיה ניתן קטנים (1-2 ס מ) מזה עבור כלי ביופסיה הליבה.</li>
		<li>הכנס את מחט הביופסיה לתוך מקום החתך (בסביבות 10 עד 13 ס מ עור).</li>
		<li>הפעל את ההתקן מחט ביופסיה כדי לאסוף את הרקמה.</li>
		<li>הסר את המחט עטין.</li>
		<li>הפעילו לחץ מיידית, חזקה על הפצע באמצעות מגבת נקיה של 20 דקות לפחות.</li>
		<li>הסר את רקמת מחט ביופסיה באמצעות פינצטה.</li>
		<li>לשמור את הדגימה מלוחים פוספט x 1 buffered ולהעריך את כמות הרקמה.</li>
		<li>לקחת סימנים חיוניים בכל 10 דקות לאחר הביופסיה במשך לפחות 30 דקות.</li>
		<li>בדוק אם יש דימום לאחר 20 דקות של הלחץ על הביופסיה.</li>
		<li>סגור את החתכים באמצעות מהדקים פלדת אל-חלד אחרי כל הדימום הפסיק.</li>
		<li>חלות על תחבושת תרסיס האזור ביופסיה.</li>
		<li>להתבונן החיה למשך 50 דקות לאחר ההליך.</li>
	</ol>
</li>
</ol>7. ביופסיה שלאחר טיפול בבעלי חיים
<ol><li>לתעד את כל התרופות מנוהל על בעלי חיים. הערה: חלב אבדו במהלך תקופה של 36 שעות לאחר ההליך; בשר הנסיגה היה 4 תקופות גמילה ד עבור בשר בחלב עשויים להשתנות בהתאם למדינה או שיפוט, תרופות המשמשות. בדוק את החוקים המקומיים.</li>
	<li>לבדוק הנוכחות של דם פנימה את החלב במשך 7-10 d לאחר הביופסיה.</li>
	<li>יד קרישי דם רצועת מהעיר ביופסיה ב בחליבת הארס הבאים ולהבטיח את החלב המלא להסרת מתרחשת. הערה: נוכחות של קרישי דם מן העיר ביופסיה עבור 1-3 בחליבת הארס בעקבות ההליך צפוי. דם בכוס החלב עלולים להיות שנצפו עבור 1 עד 6 d לאחר הביופסיה.</li>
	<li>להתבונן חלב תשואות, במידת האפשר, היומון בודדים להאכיל צריכת עד תפרי ניתוח הוסרו.</li>
	<li>לפקח על החיה פעמיים ביום, טמפרטורת הגוף, הנשימה, הלב, ובאישיות עד תפרי ניתוח הוסרו.</li>
	<li>בדיקת הביופסיה פעמיים ביום על נפיחות, רגישות, סימנים של ניקוז עד תפרי ניתוח הוסרו. אם אלה הם נצפו, להתייעץ עם וטרינר. הערה: לשמור את הביופסיה נקי והחלה את התחבושת תרסיס כל אחד עד שלושה ימים לפי הצורך.</li>
	<li>הסר במקום החתך ד' 10-14 לאחר הביופסיה, בהתאם קצב הריפוי.</li>
	<li>להתייעץ עם וטרינר אם הם נצפו סימנים של זיהום מקומי או סיסטמי.</li>
</ol>

<ol><li>Khatun, M., Sorensen, P., Ingvartsen, K. L., Bjerring, M., Rontved, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+combined+liver+and+udder+biopsying+on+the+acute+phase+response+of+dairy+cows+with+experimentally+induced+E.+coli+mastitis%5BTitle%5D)+AND+%22Animal%22%5BJournal%5D)">Effects of combined liver and udder biopsying on the acute phase response of dairy cows with experimentally induced E. coli mastitis.</a> Animal. 7 (10), 1721-1730 (2013).</li>
<li>Buitenhuis, B., Rontved, C. M., Edwards, S. M., Ingvartsen, K. L., Sorensen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+depth+analysis+of+genes+and+pathways+of+the+mammary+gland+involved+in+the+pathogenesis+of+bovine+Escherichia+coli-mastitis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">In depth analysis of genes and pathways of the mammary gland involved in the pathogenesis of bovine Escherichia coli-mastitis.</a> BMC Genomics. 12, 130(2011).</li>
<li>Nickerson, S. C., Akers, R. M. Mammary Gland | Anatomy. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNickerson%2C+SC+%22Fuquay+JW%2C+Fox+PF+and+McSweeney+PLH+%28eds.%29%2C+Encyclopedia+of+Dairy+Sciences%2C+Second+Edition%22">Fuquay JW, Fox PF and McSweeney PLH (eds.), Encyclopedia of Dairy Sciences, Second Edition</a>. 3, Academic Press. San Diego. 328-337 (2011).</li>
<li>Akers, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+100-Year+Review%3A+Mammary+development+and+lactation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">A 100-Year Review: Mammary development and lactation.</a> Journal of Dairy Science. 100 (12), 10332-10352 (2017).</li>
<li>Ruegg, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+100-Year+Review%3A+Mastitis+detection%2C+management%2C+and+prevention1%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">A 100-Year Review: Mastitis detection, management, and prevention1.</a> Journal of Dairy Science. 100 (12), 10381-10397 (2017).</li>
<li>Zhao, X., Lacasse, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammary+tissue+damage+during+bovine+mastitis%3A+Causes+and+control%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Mammary tissue damage during bovine mastitis: Causes and control.</a> Journal of Animal Science. 86 (13), 57-65 (2008).</li>
<li>Knight, C. H., Hillerton, J. E., Teverson, R. M., Winter, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biopsy+of+the+bovine+mammary+gland%5BTitle%5D)+AND+%22British+Veterinary+Journal%22%5BJournal%5D)">Biopsy of the bovine mammary gland.</a> British Veterinary Journal. 148 (2), 129-132 (1992).</li>
<li>Lima, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+bovine+mammary+gland+biopsy+and+increased+milking+frequency+on+post-procedure+udder+health%2C+histology%2C+and+milk+yield%5BTitle%5D)+AND+%22Animal%22%5BJournal%5D)">Effects of bovine mammary gland biopsy and increased milking frequency on post-procedure udder health, histology, and milk yield.</a> Animal. 10 (5), 838-846 (2016).</li>
<li>Farr, V. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+the+routine+biopsy+of+bovine+mammary+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">An improved method for the routine biopsy of bovine mammary tissue.</a> Journal of Dairy Science. 79 (4), 543-549 (1996).</li>
<li>Weng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short+communication%3A+Repeated+mammary+tissue+collections+during+lactation+do+not+alter+subsequent+milk+yield+or+composition%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">Short communication: Repeated mammary tissue collections during lactation do not alter subsequent milk yield or composition.</a> Journal of Dairy Science. 100 (10), 8422-8425 (2017).</li>
<li>Peterson, D. G., Matitashvili, E. A., Bauman, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diet-induced+milk+fat+depression+in+dairy+cows+results+in+increased+trans-10%2C+cis-12+CLA+in+milk+fat+and+coordinate+suppression+of+mRNA+abundance+for+mammary+enzymes+involved+in+milk+fat+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nutrition%22%5BJournal%5D)">Diet-induced milk fat depression in dairy cows results in increased trans-10, cis-12 CLA in milk fat and coordinate suppression of mRNA abundance for mammary enzymes involved in milk fat synthesis.</a> Journal of Nutrition. 133 (10), 3098-3102 (2003).</li>
<li>Baumgard, L. H., Matitashvili, E., Corl, B. A., Dwyer, D. A., Bauman, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((trans-10%2C+cis-12+conjugated+linoleic+acid+decreases+lipogenic+rates+and+expression+of+genes+involved+in+milk+lipid+synthesis+in+dairy+cows%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">trans-10, cis-12 conjugated linoleic acid decreases lipogenic rates and expression of genes involved in milk lipid synthesis in dairy cows.</a> Journal of Dairy Science. 85 (9), 2155-2163 (2002).</li>
<li>Kasraeian, S., Allison, D. C., Ahlmann, E. R., Fedenko, A. N., Menendez, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+fine-needle+aspiration%2C+core+biopsy%2C+and+surgical+biopsy+in+the+diagnosis+of+extremity+soft+tissue+masses%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Orthopaedics+and+Related+Research%22%5BJournal%5D)">A comparison of fine-needle aspiration, core biopsy, and surgical biopsy in the diagnosis of extremity soft tissue masses.</a> Clinical Orthopaedics and Related Research. 468 (11), 2992-3002 (2010).</li>
<li>de Lima, L. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+technique+for+repeated+biopsies+of+the+mammary+gland+in+dairy+cows+allotted+to+Latin-square+design+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Veterinary+Research-Revue+Canadienne+De+Recherche+Veterinaire%22%5BJournal%5D)">A new technique for repeated biopsies of the mammary gland in dairy cows allotted to Latin-square design studies.</a> Canadian Journal of Veterinary Research-Revue Canadienne De Recherche Veterinaire. 80 (3), 225-229 (2016).</li>
<li>Ollier, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+intact+rapeseeds+or+sunflower+oil+in+high-forage+or+high-concentrate+diets+affects+milk+yield%2C+milk+composition%2C+and+mammary+gene+expression+profile+in+goats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">Whole intact rapeseeds or sunflower oil in high-forage or high-concentrate diets affects milk yield, milk composition, and mammary gene expression profile in goats.</a> Journal of Dairy Science. 92 (11), 5544-5560 (2009).</li>
<li>Soberon, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+increased+milking+frequency+on+metabolism+and+mammary+cell+proliferation+in+Holstein+dairy+cows%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dairy+Science%22%5BJournal%5D)">Effects of increased milking frequency on metabolism and mammary cell proliferation in Holstein dairy cows.</a> Journal of Dairy Science. 93 (2), 565-573 (2010).</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

הליבה ושיטות ביופסיה מחט תוארו ב9,זה פרוטוקול16. הערכה מפורטת של בעלי חיים בריאות, השכיחות של mastitis14 לפני הביופסיה נדרשת עבור שני הליכים. למטרות מחקר, ביצוע הטכניקה בבעלי חיים עם סימנים ברורים של דלקת או מחלות זיהומיות להימנע. פעולה זו תקטין את הסיכון לסיבוכים במהלך ולאחר ביופסיה. כל ביופסיה והתקניהם צריך להיות נקי מחוטא, מעוקר כדי למנוע זיהום של הביופסיה. לפני ההליך, זה הכרחי למזער את האתר כירורגית זיהומים (. SSI). באופן כללי, SSI מזוהה עם תחלואה בעלי חיים אבודים ודרכי עלויות ייצור גבוהות יותר לפרות חלב. מחקרים דיווח בעבר שיטות למניעת SSI עקב הביופסיה כולל חיתוך השיער סביב באזור הניתוח, שטיפת האזור ביופסיה כדי להסיר זיהום9,14, באמצעות סוכנים חיטוי (70% אלכוהול, יוד כירורגי לשפשף9, 2% chlorhexidine אצטט פתרון14, 10% povidone יוד8) להכנת העור. במחקרים מסוימים, הניהול של אנטיביוטיקה אומצה במהלך7 או מיד לאחר ביופסיה9; עם זאת, טיפול אנטיביוטי מונע לא שימש בשנת העבודה הנוכחית, אין זיהומים של הביופסיה נצפו. כדי למנוע זיהום של הביופסיה פצע, הזנב צריך להיות מאובטח כדי למנוע מגע עם הביופסיה עד התחבושת תרסיס הוחל. ב פרוטוקול זה, סיכות יוסרו כ 10 עד 14 d לאחר הביופסיה.
לפני ביופסיה הליבה, חשוב כמו שצריך להגדיר את הכלי ולחבר אותו הנוהל; בחר מהירות סיבוב איטי, בחר את סיבוב קדימה ולאחר אל תשתמש מצב הפוך של התרגיל. במהלך ההליך, חשוב להשתמש לחץ דיגיטלי משני צידי החתך כדי להפריד את הקצוות העור ויש חתך ארוך מספיק כדי לאפשר כניסה כלי ללא קשר עם העור או רקמת חיבור. אם הליך זה לא נעשה, שאכטה בקצוות החתך במהלך הסיבוב של המכשיר ביופסיה הליבה עלול להתרחש ולגרום טראומת רקמות עור נוספות אשר יגביר את הסיכון של זיהום, עלולה לעכב את ריפוי הפצע. ביופסיה נוכח בהליכים המתוארים תחת פרוטוקול זה בוצעו על ידי מנתח מוסמך בעלי חיים גדולים. ההליכים בוצעו בהצלחה (איור 5). בשתי הטכניקות הן יחסית קל ומהיר לביצוע לעומת הליך כריתה כירורגית.
דימום מאזור הביופסיה נפוצים לאחר ביופסיה MG פרות חולבות8,9,10,14. בפרוטוקול הנוכחי, הדימום ציין היה מינימלי (איור 4), אשר ייתכן עקב יישום של נאותה (חזקה) לחץ על הפצע מיד לאחר הניתוח. לחץ חזק על פחות 20 דקות נדרש, זה ייתכן שתידרש עבור יותר מ 30 דקות במקרים מסוימים. אם בינוני עד דימום חמור הוא ציין לאחר יישום של הלחץ על הביופסיה, מומלץ להמשיך בלחץ, פנו מיד וטרינר.
כמו hemostasis הוא גורם חשוב להפחתת התחלואה פרה, מחקר אחד ארוז רפידות hemostatic לתוך האתר ביופסיה כדי לשלוט הדימום9. אולם, השימוש רפידות hemostatic באופן כזה יש פוטנציאל סיכון גבוה עבור מיקרוביולוגית מזהמים בסביבה רפת. מחקר אחר14 חלה לחץ ידני על הביופסיה בין ביופסיות חוזרות ונשנות, לאחר סגירת ביופסיה של העור, והיא חלים קרח על האתר כבר לפחות שעתיים לאחר הביופסיה. בפרוטוקול הנוכחי, לחץ חזק מוחל על הביופסיה למשך 20 עד 25 דקות היה הולם לשליטה בדימום.
טכניקה מוצלחת ביופסיה צריך לגרום מינימום בדם החלב אשר נמשכת לתקופה קצרה של זמן לאחר ההליך. כדי למנוע הפרעה של הפרשת חלב במהלך זיהומים אכזבה ודלקת חלב, יש להסיר קרישי דם intramammary ביד בנוכחות אחר מתוך10,רבע ביופסיה14. בפרוטוקול הנוכחי, נצפתה הדם פנימה את החלב עד 48 שעות לאחר הביופסיה. עם זאת, במחקר בשימוש מספר גדול יותר של בעלי חיים, דם בכוס החלב נצפתה ברוב המכריע של פרות פחות מ- 6 ימים. בעלי חיים מעטים הראו דם החלב לאחר 6 ימים8. מסיבה זו, התבוננות יומי של חלב המראה הוא הכרחי עבור 6 d לאחר ההליך. חיות לא לא להפגין סימני דלקת mastitis כאשר דגימת רקמה גדול הושג14. עם זאת, מחקרים קודמים אשר ביצעו ביופסיות חוזרות על אותה חיה באמצעות מחט נמצא שכי שכיחות הזיהום mastitis היה בכ-12% בעקבות הליך8. בפרוטוקול הנוכחי, גם בעלי חיים היו סימנים חזותיים של mastitis קליניים זיהום לאחר הניתוח. יש גם בעיה קטנה סיכוי כי מקום החתך יכול להידבק לאחר הביופסיה.
Tolazoline הידרוכלוריד, סם מבטל את ההשפעות של הרגעה, צריכה להיות זמינה במקרה של מנת יתר של חריגות השירותים הווטרינריים. מנה מופרזת של חריגות השירותים הווטרינריים עלול לגרום לבצקת ריאות. סימנים קליניים של בצקת ריאות כוללים מצוקה נשימתית חמורה קוצר נשימה, קשיי נשימה, שיעול, sputum הלאגר. אם הם נצפו סימנים של בצקת ריאות, מומלץ להשתמש tolazine (2-4 mg/kg של משקל גוף) את ההשפעה חריגות השירותים הווטרינריים.
בפרוטוקול הנוכחי מתאר את הטכניקה לבצע ביופסיית-מחט והן הליבה ביופסיה. באופן כללי, היתרון של ביופסיה הליבה לעומת ביופסיית-מחט הוא גדול יותר רקמת מדגם (0.75-1 גרם)9 עם מינימום השפעה שלילית על בריאות עטין. מחט הביופסיה היא שיטה פחות פולשנית מאשר מכשיר ביופסיה הליבה. עם זאת, ביופסיה מרובים מנסה להשיג כמות גדולה של רקמות באמצעות שהליך ביופסיה מחט עלולה להגביר את הסיכון של דימום העיקריים לאחר ההליך, וכן קרישי דם בתוך החלב. בשתי הטכניקות גרם תחלואה מינימלית פרה, הושגו בקלות עם הכשרה מינימלית של צוות כירורגי. שינוי לטווח קצר חלב מדי יום התשואה (8-10% ירידה), קומפוזיציה9 והאטרקציות הפחתת צריכת הזנות14 צפוי לאחר הליבה ואת המחט ביופסיות, בהתאמה. מגבלות של ההליך ביופסיה מחט הן נפח קטן של הרקמה המוסרת עם המחט. המכשיר צריך להיות מופעל רק כאשר המחט בתוך רקמת להיות ביופסיה ניסיונות מרובים לעיתים קרובות נחוצים לקבל כמות מספקת של רקמות, אשר מגביר את הסיכון של דם חלב, mastitis לאחר ההליך. מגבלות של הביופסיה הליבה כוללים סיכון גבוה יותר של דימום לאחר ההליך אם כמות גדולה של רקמות (> 200 מ ג) מתקבל. בנוסף, הכלי הביופסיה קשה יותר לאסוף. הדורש הכשרה נאותה לפני השימוש.

ביופסיה היא הליך לקצור מקטע הליבה של רקמה מתוך מקצועות רפואיים או למטרות מחקר. . זו טכניקת פולשנית והשימוש בהם נפוץ כדי לאסוף את רקמת כחלופה המתת חסד1 כדי לאפשר ניתוח של תגובות רקמות טיפול או גורמים אחרים של עניין. דגימות של רקמות בלוטת חלב פרה (מ ג) הם חיוניים עבור חלב מחקר ביטוי גנים וחלבונים, היסטולוגיה, ארגון organelles הסלולר איתות המסלולים, תהליכים מטבוליים בתגובה לשינויים בניהול או סביבה. בנוסף, MG רקמות יש צורך לאבחן מחלות זיהומיות מסוימות, כגון שור mastitis הנגרמת על ידי זיהומים חיידקיים2ומחקר.
עטין של בקר מכיל ארבע בלוטות נפרדים, כל בלוטת מכיל מערכת הפרשה חלב עצמאית שנקראו parenchyma. Alveoli, צינורות אוורור, רקמת חיבור נמצאים parenchyma החלב. Alveoli מיקרוסקופיים מבנים כדוריים חלולים המורכבות לתאי האפיתל על גבי המשטח הפנימי (luminal), myoepithelial מיוחדים תאים על משטח חיצוני (הבסיס). Alveoli אחראים סינתזה הפרשת חלב. רקמת חיבור סיבית נוכח parenchyma יכול להפריד בין קבוצת alveoli מקבוצות אחרות של alveoli, כל קבוצה נקרא lobule3. מספר גורמים יכולים להשפיע את ההתפתחות והתפקוד של הרוסים כולל פיזיולוגיה של בעלי חיים, תזונה, ניהול, גנטיקה, סביבה4. Mastitis גם הוא גורם קריטי המשפיעה לרעה MG פונקציה וחלב איכות5. רעלים שפורסמו על ידי פתוגנים mastitic יכול לגרום לנזק alveoli, זירוז נמק וכתוצאה מכך שינויים ביוכימיים, היסטולוגית ב רקמות מ ג6. לפיכך, היסטולוגיה של תהליכי חילוף החומרים של כל alveoli או lobule במ ג עשויה להיות שונה באופן משמעותי מאחרים. ככזה, ביופסיות כי הם מדגמים מייצגים של בלוטת החלב כולו הם רצויים. ביופסיות קטן עשוי ללכוד רק lobule יחיד או בודדים המכתש, הגבלת המידע שיתקבל מדעית או אבחון. למטרות מחקר, זה הכרחי להיות מודע לכך ביופסיה החלב מספק 'תמונה' של מאפייני הרקמה אבל ביופסיה שלמאחה לא יכולה לאפיין את סה כ פונקציה החלב בהיעדרו של הערכות של בלוטת חלב הכולל המוני.
מספר כלים ביופסיה פותחו במהלך 30 השנים האחרונות לשימוש בבני אדם. כיום, עיבודים של מכשירים אלה זמינים לשימוש עם בעלי חיים. עבור בקר לחלב, דגימות של רקמות MG הושגו באמצעות טכניקות שונות כולל כריתה כירורגית (עמום)7, ביופסיה-מחטים-1,-8ו- core ביופסיה מכשירים9,10. לפיכך, MG טכניקות ביופסיה של פרות חולבות מניקות יש מעבר מיגדרי משגרות באמצעות הרדמה שכיבה עם ניתוח כירורגי באמצעות electrocautery hemostasis ב 19927 לאוסף של הליבה ביופסיות תחת עמידה הרגעה9, 10,11,12. ביופסיה כירורגית היא שיטה פולשנית, אשר יכול להיות יקר יש שכיחות גבוהה יותר של סיבוכים כמו שטף דם, פצע בעיות, הגידול התפשט13. כיום, הליבה ביופסיה, ביופסיית-מחט (המכונה גם ביופסיה טרו-קאט) נרחב שאומצו חלופות ביופסיה כירורגית כמו. היתרונות של ביופסיות מחט והליבה בהשוואה ביופסיה כירורגית כוללים: ההליך היא פולשנית; לסיבוכים נדירים; הרדמה כללית לא נדרש; הנוהל הוא relativley מהירה; זמן ההחלמה הוא קצר; יש מינימלית תופעות שליליות על בריאות עטין, וכן השפעות לטווח קצר בלבד על חלב תשואה ו הלחנה8,9,10; העלות היא ביופסיה כירורגית פחות מ13.
הליך הביופסיה ליבה אחד, תיאר בשנת 1996 להשתמש בצינורית פלדת אל-חלד סטרילית, עם להב לשליפה נשלף כדי להסיר כמות נציג של רקמות מן הרוסים שור ללא הרדמה כללית9,10,11 ,12. במהלך ההליך, המכשיר היה מחובר תרגיל אלחוטיים ליצירת על מהירות נמוכה, תנועה סיבובית אשר נקיה ליבה של רקמות כמו הכלי היה מתקדם לתוך הרקמה. היתרון היה גדול יותר רקמה לטעום (70 מ מ x 4 מ מ בקוטר כ- 0.75-1 g) 9. מחקר האחרונות10 הראה כי ההליך ביופסיה מתוארת על ידי פאר נ ג.et al. 9 יכול לשמש לביצוע חוזרות אוספים רקמות מ ג ללא השפעה שלילית על בריאות עטין וביצועים של פרות חולבות מניקות. לאחרונה, בוצע מחקר14 ב פרות חולבות כדי להעריך ביופסיות חוזרות ונשנות של הרוסים באמצעות נקז גדול יותר (31 ס מ קוטר ארוך, החיצוני של 9.5 מ מ, קוטר פנימי של 8 מ"מ) עם ואקום שהוחל בצינורית נירוסטה פנימי כדי לאסוף את הביופסיה . בשיטה זו משתמשים הרגעה (חריגות השירותים הווטרינריים) בהרדמה מקומית (2% לידוקאין הידרוכלוריד).
מחט הביופסיה היא טכניקה אחרת כדי לאסוף את רקמת החלב. מספר מחקרים אימצו שיטה זו. מחקר אחד1 השתמשו הרגעה (detomidine), הרדמה מקומית (1% לידוקאין) במסגרת ההליך. לאחר הביופסיה, הפרות קיבל טיפול אנטיביוטי מניעתי. בלוטת החלב היה לעסות באופן ידני לפני ואחרי החליבה. הדם בתוך החלב נצפתה עבור עד 84 שעות לאחר הביופסיה. כמות והרכב החלב הושפעו לתקופה קצרה של זמן. לאחרונה, מחקר משמש מחט הביופסיה לביצוע ביופסיות חוזרות MG ב-8פרות חלב. הרגעה (1% איזופרומאזין, תוך שרירית), בהרדמה מקומית (הידרוכלוריד לידוקאין 2%, תת עורית) נוהלו החיות. החיות שלא קיבלו תרופות intramammary או אנטיביוטיקה לפני או אחרי הניתוח, לא נמצאו סימנים של זיהום באתר ביופסיה במהלך התקופה לאחר ניתוח. במחקר זה, ביופסיות חוזרות MG שור באמצעות מחט הייתה השפעה שלילית קטין על ייצור חלב ובריאות עטין של פרות חולבות. באופן כללי, ביופסיית-מחט נראה שיטה פחות פולשנית מאשר מכשיר ביופסיה הליבה. עם זאת, כאמור, זה חיוני הטכניקה ביופסיה לקצור במדגם מייצג של הרקמה MG. המגבלה של ביופסיה מחט היא כי כמות קטנה של רקמת MG שור מתקבל (בערך 20-25 מ"ג)8,15.
כמעט כל המחקרים להשתמש בשילוב של α-2 אגוניסט הרגעה עם הרדמה מקומית8,9,10, אם הביופסיה הייתה באמצעות מחט או גרעין גדול יותר. במ ג שור, רוב עצביים הקשורים עם העור. העצבוב לרקמת parenchymal היא במידה רבה באמצעות מתיחה רצפטורים מסוג דלילה סיבי עצב לזהות כאב כירורגית חדה. כתוצאה מכך, המנגנונים הפיזיולוגיים של כאב עקב ניתוח מניפולציה של הרוסים היא דרך העור, רקמות תת עוריות3 ורקמות עמוק לא כגון רקמות parenchymal. עבור ביופסיות, לכן רק צורך מקומי עזים ומתנגד העור ורקמות תת עורית, כמו חדירה של הרדמה מקומית לתוך רקמות עמוק לא להפחית באופן משמעותי את הכאב כירורגי. לאחר הכנת המתאים לאזור ביופסיה, אי נוחות בעלי חיים הוא, בעיקר, הקשורים עם איפוק.
אוסף של דוגמאות גדול עשוי להגביר היווצרות המטומה ולהגביר את הסיכון לזיהומים בתוך MG parenchyma. לכן, פרי-סוכן פרוטוקולים לעיתים קרובות כוללים ניהול של אנטיביוטיקה parenteral7, למרות שזה לא תפיסתה8. להשיג את hemostasis הוא גם גורם חשוב להפחתת התחלואה פרה. במחקר הנ ל באמצעות של ליבה גדולה ביופסיה כלי14, לחץ ידני היה מוחל על הביופסיה, חזייה פרה שימשה כדי להחיל קרח על הפצעים כבר לפחות שעתיים בעקבות ההליך. למרות כמות גדולה של רקמות שנקטפו, הפחתות התשואה צריכת וחלב הזנה קלה בלבד נצפו ולאחר ההליך חזר על עצמו כל שלושה שבועות ללא השפעות שליליות על הבריאות פרה.
חוקרים ביצוע ביופסיה MG שחלתיות בפרות חלב צריך לשקול את איכות האבחון או אנליטיים הביופסיה וכתוצאה מכך, קלות טכניקה, ותחלואה פרה. טכניקות ניתוחיות מדויק ומתוכנן מראש הם הכרחי כדי להשיג מטרות אלה. עד היום, MG ביופסיה מחקרים התמקדו המתאר את תוצאות הביופסיה, בניגוד המתארת את הטכניקה ביופסיה עצמה, ו תיאורים עבור פרות חולבות מניקות חוסר בפרטים מספיק על מנת לאפשר שכפול. לכן, המטרה של עבודה זו היתה לתאר ביופסיית-מחט והטכניקות גדול הליבה ביופסיה בפירוט מספיק כדי לאפשר שכפול הומאני ובטוח של MG ביופסיה של הבקר.

<table><tbody><tr><td>70% אלכוהול איזופרופיל&nbsp;</td><td>וולמארט&nbsp;</td><td>565106257</td><td>תרסיס תרסיס 1 ליטר</td></tr><tr><td>להרג והרחקת זבובים</td><td>MWI</td><td>14339</td><td>בקבוק אחד (במידת הצורך)</td></tr> <tr><td>מחטי ביופסיה, 12 גרם ופעמים; 16 ס"מ</td><td>C. R. Bard</td><td>MN1216</td><td></td></tr><tr><td>2 סט עירוי פרפרים (מחט 18 גרם)</td><td>פישר</td><td>22-258087</td><td>1</td></tr><tr><td>כלי תרבית תאים</td><td>פישר</td><td>08-772E</td><td>4</td></tr><tr><td>מקדחה אלחוטית (מהירות נמוכה)</td><td>היטאצ'י& נ.ב.פ;</td><td>&nbsp; DS10DFL&nbsp;</td><td>1</td></tr><tr><td>מכשיר ביופסיה ליבה, Farr et al. (1996)</td><td></td><td></td><td>2, ייצור מתכת בהתאמה אישית. לבקשת הכלי צור קשר עם המחברים.</td></tr><tr><td>פרות</td><td></td><td></td><td>בקר בריאות</td></tr><tr><td>Flunixin meglumine</td><td>MWI/VetOne</td><td>501018</td><td>1.1 עד 2.2 מ"ג/ק"ג משקל גוף</td></tr><tr><td>שולחן מתקפל&nbsp; &nbsp;</td><td>אמזון</td><td></td><td>1</td></tr><tr><td>מלקחיים</td><td>פישר</td><td>09-753-50</td><td></td></tr><tr><td>1 כפפות לא סטריליות&nbsp;</td><td>פישר</td><td>17-200-845</td><td>9, תלוי גודל</td></tr><tr><td>מברשת קשה&nbsp;</td><td>אספקת סאליבן</td><td>18270</td><td>1, לרחוץ את הפרות</td></tr><tr><td>שער ראש&nbsp;</td><td></td><td></td><td>1, מותאם אישית לפרות חלב</td></tr><tr><td>לידוקאין הידרוכלוריד 2% להזרקה&nbsp;</td><td>נעשה שימוש ב-MWI/VetOne</td><td>510212</td><td>6 מ"ל,&nbsp; מ-3 עד 8 מ"ל</td></tr><tr><td>שטיפת גוף לבעלי חיים</td><td>eZall Technologies</td><td>39384</td><td>1, לשטיפת הפרות</td></tr><tr><td>מחט 18 גרם&nbsp; (1 עד 1/5 אינץ')</td><td>פישר</td><td>14-821-15A</td><td>6</td></tr><tr><td>מחט 20 גרם (1 עד 1/5 אינץ')</td><td>פישר</td><td>14-815-526</td><td>6</td></tr><tr><td>תמיסת מלח חוצצת פוספט (0.9%)</td><td>פישר</td><td>20-012-043</td><td>1 ליטר</td></tr><tr><td>משחת יוד פובידון</td><td>ג'פרס</td><td>#VED1A</td><td>500 גרם (במידת הצורך)</td></tr><tr><td>תמיסת קרצוף יוד פובידון (0.75% יוד)</td><td>MWI/VetOne</td><td>510094</td><td>1</td></tr><tr><td>ליטר מכשיר ביופסיה רב פעמי&nbsp;</td><td>C. R. Bard</td><td>MG1522</td><td>1</td></tr><tr><td>הלטר חבלים</td><td>חווה וחווה נסקו</td><td>C10852</td><td>2, להבי אזמל בגודל פרה</td></tr><tr><td>(#10)</td><td>MWI</td><td>033870</td><td>2</td></tr><tr><td>מחזיקי אזמל</td> <td>MWI</td><td>602008</td><td>1</td></tr><tr><td>נרתיק חיטוי אטום עצמי 10 x 5.5 אינץ'.</td><td>פישר</td><td>19-130-0038</td><td>1 מארז של 800</td></tr><tr><td>ספוגי גזה כותנה סטריליים</td><td>פישר</td><td>22-037-986</td><td>4</td></tr><tr><td>רפידות גזה סטריליות</td><td>פישר</td><td>19-090-735</td><td>4</td></tr><tr><td>כפפות כירורגיות סטריליות&nbsp;</td><td>כפפות כירורגיות</td><td>19-166-679</td><td>3,&nbsp; תלוי גודל</td></tr><tr><td>מגבות כירורגיות סטריליות</td><td>פישר</td><td>50-118-0339</td><td>6</td></tr><tr><td>סטטוסקופ</td><td>ליטמן מאסטר קלאסי II</td><td>1392</td><td>1</td></tr><tr><td>קוצץ כירורגי</td><td>אוסטר A5</td><td>078005-010-003</td><td>1, הכנת החיה לביופסיה</td></tr><tr><td>להבי קוצץ כירורגיים (#40</td>) <td>אוסטר&nbsp;</td><td>78919-016</td><td>1, הכנת בעל החיים לביופסיה</td></tr><tr><td>מסיר סיכות כירורגי</td><td>MWI</td><td>541</td><td>1</td></tr><tr><td>מהדק כירורגי טעון מראש</td><td>MWI</td><td>17713</td><td>5</td></tr><tr><td>מזרקים של 10 מ"ל</td><td>פישר</td><td>14-823-224</td><td>3</td></tr><tr><td>מזרקים של 2 מ"ל</td><td>פישר</td><td>22-028854</td><td>3</td></tr><tr><td>מזרקים של 20 מ"ל</td><td>פישר</td><td>22-034507</td><td>3</td></tr><tr><td>מזרקים של 5 מ"ל</td><td>פישר</td><td>22-028855</td><td>3</td></tr><tr><td>מדחום</td><td>Agri-Pro Enterprises Inc</td><td>72000</td><td>1</td></tr><tr><td>טולזין הידרוכלוריד</td><td>Akorn בריאות בעלי חיים</td><td>61311-486-10</td><td>2 עד 4 מ"ג/ק"ג משקל גוף (במידת הצורך)</td></tr><tr><td>פינצטה&nbsp;</td><td>פישר</td><td>14-955-025</td><td>1, לטיפול בדגימת הרקמה</td></tr><tr><td>צינור מים</td><td>Miracle-Gro, Walmart</td><td>554990501</td><td>1, לשטיפת הפרות</td></tr><tr><td>תחבושת אירוסול עמידה במים (אבקת אלומיניום 40 מ"ג)</td> <td>MWI</td><td>010728</td><td>בקבוק אחד&nbsp;</td></tr><tr><td>קסילזין הידרוכלוריד</td><td>MWI/VetOne</td><td>510650</td><td>0.01 עד 0.05 מ"ג/ק"ג משקל גוף</td></tr></tbody></table>

טכניקות ביופסיה בלוטת חלב שור

Bovine Mammary Gland Biopsy Techniques

עטין פרה ביופסיות לאפשר לחוקרים לאסוף דגימות רקמה ללמוד ביולוגיה של התא כולל ביטוי גנים, ניתוח היסטולוגית, איתות המסלולים, ותרגום חלבונים. מאמר זה מתאר שתי טכניקות לביופסיה של בלוטת חלב פרה (מ ג). שלוש פרות חלב בריא של הולשטיין היו הנושאים. לפני ביופסיות, פרות היו לחלוב, לאחר מכן מאופקים מצנח הבקר. מקבל (flunixin meglumine, 1.1 ל 2.2 mg/kg של משקל גוף) היה מנוהל באמצעות תוך ורידי צוואר [IV] הזרקת 15-20 דקות מראש כדי ביופסיה. עבור לעמוד הרגעה, חריגות השירותים הווטרינריים הידרוכלוריד (0.01-0.05 mg/kg של משקל גוף) הוזרק באמצעות כלי coccygeal 5-10 דקות לפני ההליך. ברגע שלמאחה מטושטשת, הביופסיה היה מוכן גילוח ורחיצה כירורגית, מרדימים באופן מקומי עם 6 מ של לידוקאין 2% הידרוכלוריד באמצעות הזרקה תת עורית. באמצעות הטכניקה aseptic, חתך אנכי של 2-3 ס מ בוצע באמצעות איזמל מספר 10. הליבה וכלים ביופסיה מחט שימשו. הכלי ביופסיה ליבה היה מצורף תרגיל אלחוטיים, מוכנס לתוך הרקמה מ"ג דרך החתך באמצעות פעולת תרגיל clock-wise. הכלי ביופסיה מחט הוכנס באופן ידני הוילונות. מיד לאחר הניתוח, עוזרת הפעילה לחץ באזור הניתוח למשך 20 עד 25 דקות באמצעות מגבת נקיה להשיג את hemostasis. תפרי ניתוח פלדת אל-חלד שימשו להתנגד החתך בעור. במקום היו 10 ימים הוסר post-procedure. היתרונות העיקריים של ביופסיות מחט והליבה הוא שתי הגישות הן הליכים זעיר פולשניים שיכולים להתבצע בבטחה ב פרות בריאות. תפוקת החלב בעקבות הביופסיה לא הושפע. הליכים אלה דורשים זמן החלמה קצרה, התוצאה פחות סיכונים של סיבוכים. מגבלות מסוימות עשויות לכלול דימום אחרי הביופסיה הזיהום על הביופסיה. יישומים של טכניקות אלה כוללים אוסף רקמה עבור אבחון קליני, למטרות מחקר, כגון התרבות התא הראשי.

בפרוטוקול הנוכחי, הטכניקה ביופסיה הליבה הפיק דגימת הרקמות של 200 עד 600 מ"ג בעוד ביופסיית-מחט הפיק דגימות של 10-30 מ"ג לכל ביופסיה. החיות נצפו פעמיים ביום למשך 10 d לאחר ההליך. אין סיבוכים אירעה במהלך ההליך או בתקופה שלאחר הניתוח, עם פרמטרים חיוניים של הפרות נותרת בגבולות הנורמה (קצב הנשימה ממוצע = ± 31.4 הגנה 7.04 (SD) נשימות לכל מין, קצב הלב ממוצע = 75.9 פעימות ± 8.9 דקות, וממוצע טמפרטורה רקטלית = ± 38.2 0.68 ° C, איור 3).
בעקבות לחץ ידני על האזור ביופסיה להשיג את hemostasis (כ- 25 דקות), הפצע פתוח הראה דימום מינימלי (איור 4). הפרות קיבלו את הדיאטה באותו ad libitum, החיות הוחזקו במתקן דיור אותו במהלך התקופה שלאחר הניתוח. החיות לא הראה סימנים של זיהום באתר ביופסיה; היה ללא כאב, דימום, נפיחות, ניקוז או טמפרטורות גבוהות (איור 5). הפצע החלים בתוך 8 עד 10 ד' של הביופסיה (איור 5C).
חיה אחת פיתחה גירוי בעור קטין עקב פצע שפשוף על יום 8 לאחר ההליך. את הפרה טופל על-ידי ניקוי הביופסיה באמצעות פתרון povidone יוד ואלכוהול איזופרופיל 70%. סיכות פלדה אל חלד הוסרו כדי לאפשר ניקוז, povidone יוד משחה (1%) היה מוחל פעמיים ביום דרך האתר ביופסיה d 2-3. גירוי העור נעלמה 2 d לאחר החלת משחה povidone יוד, הפצע נרפא עם אין סיבוכים נוספים.
קרישי דם הוסרו בידי חסינותו של חלב מהעיר ביופסיה לפני מכונת חליבה. בפרוטוקול הנוכחי, הנוכחות של קרישי דם בתוך החלב נצפתה עבור עד שלושה בחליבת הארס (בערך 36 שעות) לאחר הביופסיה. זיהום בדם של חלב נצפתה עבור עד 48 שעות לאחר הביופסיה. היו אין ההבדלים החזותיים שנצפה בין ביופסיות מחט והליבה יחסית כמות הדם בתוך החלב. החיות לא הראה על ירידה משמעותית בתנובת חלב לאחר ההליך (איור 6). הרכב החלב הממוצע היה 4.37% שומן,  3.34% חלבון ו 4.64% לקטוז. ספירת תאים סומטיים של חלב ממוצע (SCC) היה פחות מ-200,000 תאים לכל mL.
הרקמה MG שהושג יכול לשמש למטרות מחקריות שונות כגון תרביות תאים הראשי (איור 7).
<img alt="נשימה, דופק, טמפרטורה לעומת ימים לאחר ביופסיה; עלילת פיזור; כלי ליבה לעומת מחט." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig3.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> איור 3 . הערכה של אינדיקטורים בעלי חיים בריאות לאחר ביופסיה בלוטת חלב פרה- <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a> 
<img alt="אנטומיה של בקר, בדיקת בריאות עטינים, תצפית נפיחות, הערכה וטרינרית, גידול חלב." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig4v2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 4"> איור 4 . ביופסיה מראה האתר לאחר לחץ ידני היה מוחל על האזור ביופסיה להשיג את hemostasis. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="ריפוי ביופסיית מחט לעומת ליבה לאורך זמן; תרשים המציג תפרים 3, 6 ו-10 ימים לאחר ההליך." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig5.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 5"> איור 5 . ביופסיה באתר הצילומים. ביופסיה (א) אתר בתלת-ממד לאחר ההליך. ביופסיה (B) באתר 6 d לאחר ההליך. ביופסיה (C) האתר 10 d לאחר ההליך הממחישות הפצע נרפא במידה מספקת. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="תפוקת חלב לעומת זמן ביופסיה; תרשים פיזור עם רגרסיה, המציין שונות כלי, P=0.99." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig6.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 6"> איור 6 . ייצור החלב היומית לפני ואחרי ביופסיה בלוטת חלב פרה (n = 3 פרות). מודל לינארי העריך כי 10 ימים לפני הביופסיה החיות המיוצר 23.35 ק ג של חלב ביום. התשואה חלב לא השתנה באופן משמעותי (P &gt; 0.05) מ- 10 ימים לפני כעשרה ימים לאחר הביופסיה למרות עלייה קלה של חלב התשואה נצפתה (עלייה של 0.0005 kg/d של חלב עבור כל יום מ- 10 ימים לפני הביופסיה). שלוש חיות שהיו בשימוש פרוטוקול זה; חיה אחת היה ביופסיה פעמיים (חיה 1: ליבה ביופסיה בצד שמאל של עטין, מחט ביופסיה בצד ימין של עטין) והיו שתי חיות ביופסיה פעם (חיה 2 ו- 3: רק על הצד הימני של עטין באמצעות ההליך ליבה או מחט). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="תרבית תאים חד-שכבתית, תמונת מיקרוסקופ, מחקר מורפולוגיה תאית, כלי מחקר ביולוגי." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58602/58602fig7.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 7"> איור 7 . להחליפן בתמונות של תרבות ראשי שור בתאי אפיתל החלב. סולם בר הוא 100 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58602/58602fig7large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

מאמר זה מציג ביופסיה בלוטת חלב שור באמצעות כלים ביופסיה הליבה ואת המחט. רקמות שנקטפו יכול לשמש עבור תרבית תאים או להעריך פיזיולוגיה החלב וחילוף החומרים כולל ביטוי גנים, ביטוי חלבונים, חלבונים שינויים, אימונוהיסטוכימיה מטבוליט ריכוזים.

Bovine mammary gland biopsies allow researchers to collect tissue samples to study cell biology including gene expression, histological analysis, ...

ביופסיה, כפי שאני חושב שרובכם יודעים, היא הסרת קצת רקמה מאיבר העניין, וב למקרה הזה, זו בלוטת החלב. דגימת הביופסיה שימושית מאוד אם אתה הולך לעשות דברים כמו ניתוח ביטוי גנים, אם אתה הולך לעשות דברים כמו לקחת חלק מהרקמה ולעשות ניתוח היסטולוגי, להסתכל על המבנה ברמה המיקרוסקופית של בלוטת הקמרית, גם מאוד שימושי כדי לקבוע דברים כמו איתות מסלולים הקשורים לפעולה הורמונלית, למשל אז אחת האזהרות שאתה צריך להיות מודע כאשר אתה עושה כל סוג של דגימת רקמת חלב, הוא לקחת דגימה כי הוא באמת מייצג? כי, אתה יכול ללכוד אונה, אשר יהיה כמו אשכול של ענבים, או שאתה יכול ללכוד כמה alveoli בודדים כי באמת לא מייצגים את הנורמלי, כך, התקווה שיש לך כאשר אתה עושה ביופסיה החלב שלך היא שאתה אוסף רקמה על-טבעית, וזה רק מילה מפוארת לומר את הרקמה הפונקציונלית אחראי לייצור חלב דוגמה מייצגת.רוב קצות העצבים החושיים בלוטת החלב קשורים לעור, ולכן חשוב להבין ולהעריך את זה, ברגע שעשית את ההכנה הנכונה של האזור שבו אתה הולך לעשות את החתך הראשוני, כדי להרשיע את העור, אז יש מעט מאוד בדרך של כל קצות עצב חושי הקשורים לרקמה parenchymal עצמו וכך אי הנוחות שהחיה תרגיש קשורה בעיקר לעור. אז, יש מגוון של דברים שניתן לעשות עם הרקמה הזאת, וזה בעצם מאפשר לאסוף מידע נוסף על איך החיה עובדת, לעומת מה ניתן להשיג פשוט התבוננות מה האכיל את החיה ואת התגובות בתפוקת חלבון חלב או תפוקת רכיב חלב. כל השיטות המתוארות אושרו על ידי ועדת הטיפול והשימוש בבעלי חיים מוסדיים של וירג'יניה טק.יום אחד לפני הביופסיה המתוכננת, לשטוף ולשפשף את החיה, במיוחד, udder, כדי להסיר זבל וחומר מלוכלך. להעריך את הבריאות, המצב הגופני, ואת ההתנהגות של החיה. השתמש רק בפרות בריאות.חולב לגמרי את הפרה. להעביר את החיה לתוך מצנח לסחוט, באופן אידיאלי בתוך שעתיים של חלילת כדי למזער את נוכחות החלב בבלוטות. רסן את החיה עם שער ראש.מניחים עצירת חבל על ראש הפרה כדי למנוע תנועה לאחור וקדימה. משוך את ראשו של החיה לצד אחד ולקשור את החבל למצנח לסחוט באמצעות קשר שחרור מהיר להחזיק את הראש במקום. נקה את אזור ההזרקה עם ספוגית אלכוהול איזופרופיל 70% ולנהל פלוניקסין meglumine 1.1 כדי 2.2 מיליגרם לקילוגרם של משקל הגוף דרך הווריד הצווארי, 15 עד 20 דקות לפני הביופסיה.אתר את וריד הצוואר. הרם את וריד הצוואר על ידי יישום של לחץ בבסיס החריץ הצווארי. בדוק כדי לוודא כי אין בועות במזרק.הכנס את המחט לתוך וריד הצוואר המוגבה ולמשוך 0.5 מיליליטר של דם לתוך המזרק פעמיים ומערבבים עם התוכן. אם אין מופעי דם במזרק, להעביר את המחט. אם המחט היא תושבת בווריד, להזריק את התוכן.בעדינות להסיר את המחט, להחיל גזה עם לחץ עדין על אתר ההזרקה כדי למנוע דימום. ניהול xylazine הידרוכלוריד דרך הווריד, 0.01 כדי 0.05 מיליגרם לקילוגרם של משקל גוף בכלי הזנב כחמש עד 10 דקות לפני הביופסיה כדי לאפשר מספיק זמן להקמת sedation. הרימו את הזנב ונקו את אזור ההזרקה בעזרת ספוגית אלכוהול איזורופיל של 70%.בדוק כדי לוודא כי אין בועות במזרק. הכנס את המחט לתוך כלי הזנב, לצייר 0.2 מיליליטר של דם לתוך המזרק, ומערבבים עם התוכן כדי להבטיח כי המחט היא תושב בכלי. אם המחט תושבת, להזריק את תכולת המזרק.הסר בעדינות את המחט. החל גזה עם לחץ עדין על אתר ההזרקה. זה באמת חשוב יש היפוך אלפא 2 על היד, כמו tolazoline, זה בגלל פרות חלב רגישים להשפעות של xylazine, ומנת יתר של קסילאזין יכול לגרום בצקת ריאות, אשר עלול להיות קטלני עבור פרה חלבית, אז לצפות הפרה שלך סימנים של הרדמה יתר ואם אלה מתרחשים, אז הכמות המתאימה של tolazoline עשוי להינתן.אנחנו רוצים שהפרות שלנו יעמדו במהלך הליך. יותר מדי קסילאזין עלול לגרום להם לשבת. יש עוזר לקשור את הזנב עבור ההליך, לבחור את אתר הביופסיה על udder, בדרך כלל באזור העליון כדי למזער את האוסף של רקמת חיבור כדי למנוע חדירה לתוך בור הבלוטה.שימו לב ודפי העור עם תשומת לב מיוחדת כדי לזהות כל כלי דם תת עוריים גדולים על מנת למנוע כלי אלה במהלך הביופסיה. קליפ השיער מאזור מרובע 15 על 15 ס"מ סביב אתר הביופסיה, להכין את אזור הביופסיה עם povidone-יוד, 0.75 אחוז יוד זמין, או קרצוף גלוקומט כלורקסידין. החלף את 70% אלכוהול isopropyl לפחות שלוש פעמים כדי להסיר את כל הפסולת גלוי ובלתי נראה.החל את פתרון קרצוף aseptic ואלכוהול isopropyl בתנועה מעגלית, באמצעות גישה מבפנים החוצה. ודא כי פתרון קרצוף חיטוי נשאר במגע עם העור לפחות חמש דקות. השתמש עירוי פרפר להגדיר עם מחט 18 G להפקיד שישה מיליליטר של שני אחוזים לידוקאין הידרוכלוריד תת עורית באתר החתך כדי ליצור בלוק קו.אין לחדור לרקמות העמוקות יותר. אפשר הרדמה מקומית להתפזר במשך שלוש עד חמש דקות, לבצע חזרה נוספת של פתרון לשפשף ואלכוהול לפני החתך. בזמן ההמתנה, הכינו את מכשירי הביופסיה.מה שאתה רוצה לעשות במונחים של מתן משכך כאבים הוא desensitize העור. הסיבה לכך היא שיש לנו יותר פנימיות עצבית לעור ולרקמות תת עוריות, ובפארנצ'ימה, אנחנו באמת מדברים רק על קולטני מתיחה, ואלה לא מרגישים כאב כירורגי כמו העור והרקמות התת עוריות. למעשה, אם בסופו של דבר אתה מכניס הרדמה מקומית דרך לתוך parenchyma, אתה עלול להגביר את הסיכון לדימום במהלך ההליך.השתמש בטכניקות אספטיות בעת טיפול בכלי הביופסיה ולחתך. לשטוף ידיים כדי להסיר את כל הזיהום הנראה ולהחיל כפפות כירורגיות סטריליות. מסדרים את המכשירים הכירורגיים באזור סטרילי לפי סדר השימוש.יש מספר 10 אזמל, גזה סטרילית, ולהרכיב את מכשיר הביופסיה מגבת סטרילית עבור הוימוסתזיס. הליך ראשון, מכשיר ביופסיה מרכזי. להרכיב את מכשיר הביופסיה הליבה באמצעות כפפות כירורגיות.מניחים את שבעת החלקים הסטריליים על וילון סטרילי. הכנס את הלהב למערכת העגינה בחתיכה 2. הכנס את חלק 3 על החלק השני, כדי להבטיח שתחנת העגינה תתיישר.הפעל את הקצה האחרון של הלהב לתוך מערכת העגינה של חלק 4. לדחוף קדימה חתיכה ארבע ולצפות אם חתיכה ארבע הוא ליד חתיכה שלוש. הכנס את חלק 5 להתקן.ודא שתחנת העגינה מיושרת. הכנס חלק 6 לראש החלק השני. ודא שתחנת העגינה מיושרת.הכנס את בורג הנעילה לתחנת העגינה. לדחוף קדימה חתיכה שלוש כדי לכסות את בורג הנעילה. הפעל את הכלי, דוחף קדימה חתיכה ארבע ולצפות הלהב מחוץ לכלי.משוך חתיכה ארבע אחורה כדי למשוך את הלהב לתוך הכלי. ודא כי הפרה היא מספיק מרגיעה ואתר הביופסיה הוא מספיק הרדמה, לצבוט את העור כדי להבטיח שום תגובה. בצע חתך אנכי של שניים עד שלושה סנטימטרים דרך העור ורקמות תת עוריות מ proximal לדיסטל באמצעות אזמל מספר 10.חבר את מכשיר הביופסיה למקדחה אלחוטית בטכניקות סטריליות. מניחים את המקדחה נגד כלי הביופסיה ולבדוק אם הכלי מחובר היטב למקדחה. להבטיח איפוק נאות על ידי בעל אדם לרומם את הזנב במהלך כל ההליכים.הפעל את התרגיל באמצעות סיבוב בכיוון השעון ומהירות נמוכה. לקדם את כלי הביופסיה כולו סביב 7.5 ס"מ לתוך הפתיל דרך החתך בזמן הכלי מסתובב. לכבות את המקדחה ולהרחיב באופן ידני את חלק 4 של הכלי, להפעיל את התרגיל באמצעות סיבוב בכיוון השעון ומהירות נמוכה, להסיר את המכשיר המכיל את ליבת הרקמה מן הפתיל.יש להפעיל לחץ חזק מיד על הפצע באמצעות מגבת סטרילית למשך 20 דקות לפחות. הכנס את ה cannula לתוך הרקמה. דחוף את הכלי קדימה כדי להפעיל את הכלי.סובב בסיבוב איטי בכיוון השעון. דגימת רקמה נמצאת עכשיו בתוך ה Cannula. הסר את הרקמה מכלי הביופסיה באמצעות פינצטה.שמור את הדגימה אחד X פוספט אגף מלוחים ולהעריך את כמות הרקמה. קח את הסימנים החיוניים של הפרה כל 10 דקות לאחר הביופסיה לפחות 30 דקות. בדוק אם יש דימום לאחר 20 דקות של לחץ באתר הביופסיה.אם יש טפטוף של דם, להמשיך להפעיל לחץ במשך חמש עד 10 דקות נוספות. סגור את החתכים באמצעות סיכות נירוסטה במרווחים של חמישה מילימטרים לאחר שכל הדימום הפסיק. יש למרוח תחבושת תרסיס על אזור הביופסיה.שימו לב לחיה במשך 50 דקות לאחר ההליך. הליך שני, מכשיר ביופסיה מחט. בצע את הוראות היצרן עבור ההתקן.הסר את מחט הביופסיה מהחבילה באמצעות טכניקות סטריליות. השלך את המחט אם נצפה נזק כלשהו. חבר את המחט למכשיר.סגור את המכסה ודרוך את המכשיר. ודא כי הפרה היא מספיק מרגיעה ואתר הביופסיה הוא מספיק הרדמה, לצבוט את העור כדי להבטיח שום תגובה. בצע חתך אנכי של 1-2 ס"מ דרך העור ורקמות תת עוריות מ proximal לדיסטל באמצעות אזמל מספר 10.הכנס את מחט הביופסיה לאתר החתך, בסביבות 10 עד 13 ס"מ מהעור. הפעל את מכשיר מחט ביופסיה כדי לאסוף את הרקמה. הסר את המחט מהתנופה.יש להפעיל לחץ חזק מיידי על הפצע באמצעות מגבת סטרילית למשך 20 דקות לפחות. לאחר הסרת הרקמה מהמחט, בצע את ההליך שתואר בעבר כדי לסגור את החתך. ההליך כולו לוקח בערך 45 דקות כדי לסיים, לכל בעל חיים.יש להסיר קרישי דם מהרובע הביופסיה. כמו כן, יש צורך לבחון את תפוקת החלב ואת צריכת המזון, במידת האפשר. תמיד להבטיח את בריאותו ורווחתו של החיה לפני, במהלך, ואחרי ההליך.לתעד את כל התרופות שניתן לבעלי החיים. בדוק נוכחות של דם בחלב במשך שבעה עד 10 ימים לאחר הביופסיה. רצועת יד קרישי דם מן הרבעון ביופסיה ב חלב הבאים ולהבטיח כי הסרת חלב מלאה מתרחשת.שימו לב לתפוקת החלב, ואם אפשר, את צריכת ההזנה היומית האישית עד להסרת סיכות כירורגיות. לפקח על החיה פעמיים ביום עבור טמפרטורת הגוף, נשימה ו קצב הלב, והתנהגות, עד סיכות כירורגיות הוסרו. בדוק את אתר הביופסיה פעמיים ביום עבור נפיחות, רגישות, וכל סימנים של ניקוז עד סיכות כירורגיות הוסרו.אם אלה נצפו, להתייעץ עם וטרינר. הסר את הסיכות מאתר החתך 10 עד 14 ימים לאחר הביופסיה, בהתאם לקצב הריפוי. יש להתייעץ עם וטרינר אם נצפו סימנים כלשהם לזיהום מקומי או מערכתי.לכן, ברגע הביופסיה נלקחת, הפרעת את הדם ולכן אספקת החומרים המזינים והחמצן לרקמה זו, ולכן אם אתה לא ממהר מאוד להסיר את ליבת הרקמה, ואיכשהו לעצור את פעילות הרקמה, הריכוזים שאתה יכול למדוד בשלב מאוחר יותר בזמן במעבדה לא יכול להיות באמת משקף את מה שקורה בבעל החיים בזמן הביופסיה. בדרך כלל, היינו במהירות להסיר את הרקמה, פלאש להקפיא אותו חנקן נוזלי כדי לנסות לשמר את הפעילות. הדבר השני שניתן לעשות עם הרקמה הזו, וזה למעשה משהו שעשינו עם הרקמה שאספנו, היה אפשר לבודד ולגדל את התאים הקיימים ברקמה הזו במערכת תרבות.במקרה שלנו, אנחנו מעוניינים בתאי האפיתל שבתוך הרקמה הזו, כי אלה התאים שלמעשה מסנתזים ומפרשים את רכיבי החלב, וכך, התאים האלה מפיסות הרקמות האלה הוכנסו לתרבות, ולמעשה, הם עדיין גדלים היום. בעלי החיים נצפו פעמיים ביום במשך 10 ימים לאחר ההליך. לא אירעו סיבוכים במהלך ההליך או בתקופה שלאחר הניתוח, כאשר פרמטרים חיוניים של הפרות נותרו בגבולות הנורמליים.המודלים ליניאריים מראים כי 10 ימים לפני הביופסיה, בעלי החיים ייצרו 23.35 ק"ג חלב ליום. בעלי החיים לא הראה שינויים משמעותיים בתפוקת החלב מ 10 ימים לפני 10 ימים לאחר הביופסיה. ביופסיית בלוטת החלב היא הליך זעיר פולשני, המאפשר לבעלי החיים זמן החלמה קצר.לכן, הליך ביופסיה זה יכול לשמש בניסויים תזונתיים רבים וסוגים אחרים של ניסויים שבהם אנו עשויים להשתמש באמצעים חוזרים ונשנים על בעלי החיים, כך למשל, אם יש לנו ארבע תקופות עם ארבעה טיפולים תזונתיים שונים, אנחנו יכולים בקלות ביופסיה פרות אלה ארבע פעמים שונות בסוף כל תקופה, המאפשר אולי שבוע של זמן מנוחה בין כל תקופה כדי להבטיח שבעלי החיים יחזרו לייצור הרגיל שלהם.

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

פרוטוקול שלנו מתאר כיצד לנתח את בלוטת החלב בטן עכברוש ואיך להכין mounts בלוטת החלב כולו. הוא גם מתאר כיצד לנתח מורפולוגיה בלוטת החלב באמצעות שלוש נקודות קצה (מספר ניצנים סוף סופני, התארכות בידול אפיתל) ולהשתמש התוצאות הללו כדי לחזות את הסיכון לסרטן השד אצל חולדות אשר נחשפו שינויים...

שינויים במורפולוגיה בלוטת החלב ואת הסיכון לסרטן השד אצל חולדות

הדמית זמן לשגות משמשת כדי להעריך את ההתנהגות של תאים ראשוניים preneoplastic חלב האפיתל הנגזרים ממודלי עכבר מהונדס גנטי של סיכון לסרטן שד על מנת לקבוע אם יש קשר בין פרמטרים התנהגותיים ספציפיים ונגעים גנטיים מובחנים.

הדמית זמן לשגות של תאי אפיתל חלב Preneoplastic ראשוניים הנגזרת ממודלי עכבר מהונדס גנטי של סרטן השד

מאמר זה מתאר טכניקות bronchoscopic בריאת השור תחת תנאי ניסוי, כלומר חיסון מודרך bronchoscopically, שטיפה ברונכואלוואולרית, צחצוח הסימפונות, וביופסית ריאות transbronchial.

ברונכוסקופיה מודרכת מבחינה ויזואלית, Intrabronchial הרכבת חיסון ו: ריאות שור במחקר ביו<em&gt; בVivo</em&gt; טכניקות דגימה

כאן, אנו מתארים טכניקה לאספקה מקומית של ריאגנטים לבלוטת החלב של הארנב באמצעות זריקה תוך-צינורית. בנוסף, אנו מתארים פרוטוקול להדמיה ואישור מסירה על ידי הדמיית אולטרסאונד ברזולוציה גבוהה של חומרי ניגוד.

משלוח Intraductal אל ארנב חלב בלוט

פרוטוקול זה מתאר שיטות לטיהור, quantitating, אפיון שלפוחית ​​תאיים (EVs) / exosomes מ שאינם חסיד / mesenchymal תאים אפיתל החלב ועל השימוש בהם כדי להעביר את בלוטת החלב יוצרי היכולת לתאי אפיתל החלב לומינל. EVS / exosomes נגזר גזע כמו תאי אפיתל החלב יכול להעביר תכונה זו התא לתאים לבלוע EVs / exosomes.

העברת בלוטת החלב ביצירת יכולת בין תאי אפיתל בסל החלב תאים לומיני החלב באמצעות שלפוחיות תאיים / אקסוסומות

התפתחות בלוטת החלב במכרסם הוערכה בדרך כלל באמצעות הערכות תיאוריות או על ידי מדידת תכונות פיזיות בסיסיות. צפיפות הענף היא אינדיקטור להתפתחות החלב שקשה לכמת באופן אובייקטיבי. פרוטוקול זה מתאר שיטה אמינה להערכת כמותית של מאפייני הבלוטות החלב.

כימות צפיפות הענף בבלוטת החלב עכברוש- mounts כולו באמצעות שיטת ניתוח Sholl

פיתחנו שיטה כדי להסיר בהצלחה, לעבד, קטע, כתם, להערכה histopathological, רקמת החלב שנקבע במקור על שקופיות כמו mounts שלם. שיטה זו עשויה לקדם את איסוף והערכה של בלוטת החלב כולו mounts במחקרים הנחייה מבחן הרבייה.

חתך בלוטות החלב שלמות מלא עבור זיהוי הנגע

כאן, אנו מציגים עבור בידודו של שלמה, שלמה עכבר פרוטוקול עטין לחקור מורפולוגיה ductal וביטוי מטריצה חוץ-תאית (ECM). בלוטות בטן העכבר #4 היו מופק עכברים nulliparous נקבה שבוע 8-10, קבוע בפורמלין במאגר נייטרלי, למחלקה והמוכתמות בעזרת אימונוהיסטוכימיה ECM חלבונים.

בידוד של בלוטות מוגדלות ללא פגע, כל עכבר לניתוח של בלוטת מורפולוגיה וביטוי מטריצה חוץ-תאית

כאן, אנו חולקים שיטות למדידת צריכת החמצן מיטוכונדריאלי, הגדרת המושג של energetics תזונתי, פרוטון הנזילה, הגורם העיקרי של חוסר היעילות בדור מיטוכונדריאלי של ATP. תוצאות אלו יכול להסביר 30% מהאנרגיה שקוע ניצול מזין כדי לעזור להעריך תפקוד מיטוכונדריאלי.

מדידת צריכת החמצן מיטוכונדריאלי הכבד ואת פרוטון הדליפה קינטיקה להעריך נשימה מיטוכונדריאלי ב בקר לחלב הולשטיין

פרוטוקול זה מתאר חלון הדמיה חדש של יונקים עם מכסה הניתן להחלפה (R.MIW). מיקרוסקופיה תוך-ורידית לאחר השתלת ה-R.MIW מאפשרת הדמיה אורכית ורב-יומית של בלוטת החלב הבריאה והחולה עם רזולוציה תאית בשלבי ההתפתחות השונים.

מיקרוסקופיה תוך-ורידית אורכית באמצעות חלון הדמיה של יונקים עם מכסה הניתן להחלפה

הפרוטוקול הנוכחי מתאר טכניקה קלה להדמיה תוך-חיונית של בלוטת החלב של עכבר מניק, באמצעות סריקת לייזר, מיקרוסקופ קונפוקלי ומולטיפוטון.

מיקרוסקופיה תת-תאית תוך חיונית של בלוטת החלב

למד טכניקות ביופסיה בלוטת חלב שור באמצעות מכשירי קור ומחט לדגימת רקמה תפקודית. שיטה זו מאפשרת ניתוח ביטוי גנים, היסטולוגיה וחקר מסלולי תקשורת הורמונליים בבקר חלב.

טכניקות ביופסיה בלוטת חלב שור

גלה סרטונים נוספים