Name: מרפאוולוגיה רציפה ואימונוהיסטוכימיה על קריוסינות עוברי דג (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 20 s
Description: למד שיטת מרפאוולוגיה רציפה ואימונוהיסטוכימיה על קריוסינות עוברי דג זברה לזיהוי מדויק של אוכלוסיות תאים. שיטה זו משפרת את תאימות הנוגדנים ומורפולוגיית הרקמות למחקר בביולוגיה התפתחותית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

עבודה זו נתמכת על ידי NIH המענק 5K01OD021419-02 ו-NC סטייט המכללה לרפואה וטרינרית.

1. הכנה לעובר
<ol><li>תקן 48 h לאחר הפריה (hpf) כצ העוברים עוברי דגים שנוצרו על ידי השתלת blastula-to-blastula בין AB בר-סוג של העוברים בתוך 4% פאראפורמלדהיד (בהרוק) לילה עם נדנדה ב 4 ° c. לבצע שני 5 דקות שוטף עם נדנדה בטמפרטורת החדר באמצעות 500 μL של מלוחים 1x פוספט מחסן המכיל 0.1% של חומר מתכלה לא יונית (1x PBSt; לראות את הטבלה של חומרים) הערה: פאראפורמלדהיד הוא רעיל ומסרטן, וחייב להיות מסולק כראוי מתקנות מוסדיים. יש לבצע עבודה עם פאראפורמלדהיד במכסה כימי, ולהשתמש בציוד הגנה אישי מתאים (כפפות, חלוק מעבדה ומשקפי בטיחות).</li>
	<li>עוברים מייבשים על ידי שטיפת ברצף עם 500 μL של 30%, 50%, ו 70% מתנול (MeOH) מדולל עם 1x PBSt עבור 10 דקות כל אחד בטמפרטורת החדר עם נדנדה. העוברים דגירה ב 500 μL של 100% MeOH ב-20 ° c עבור לפחות 14 h. הערה: מתנול הוא רעיל צריך להיות מסולק כראוי על פי תקנות מוסדיים. יש לבצע את העבודה עם מתנול במכסה כימי, ולהשתמש בציוד הגנה אישי מתאים (כפפות, חלוק מעבדה ומשקפי בטיחות).</li>
	<li>מייבשים עוברים מחדש על ידי שטיפת ברצף עם 500 μL של 70%, 50%, ו 30% MeOH מדולל עם 1x PBSt עבור 10 דקות כל אחד בטמפרטורת החדר עם נדנדה. בצע שני 5 דקות שוטף עם 500 μL של 1x PBSt בטמפרטורת החדר עם נדנדה.</li>
	<li>הסר את ה-1x PBSt ו-דגירה ב 500 μL של 30% סוכרוז מדולל במים מאוהים בטמפרטורת החדר עם הנדנדה עד העוברים כיור לתחתית הצינור (כ 1 h). החלפת סוכרוז עם 500 μL של 15% דג ג'לטין/25% סוכות (15/25; לראות את הטבלה של חומרים) ו דגירה בטמפרטורת החדר עם נדנדה בלילה.</li>
	<li>החלף כמחצית מכמות הנפח של 15/25 עם הטמפרטורה האופטימלית בינונית (OCT) והדגירה בטמפרטורת החדר עם הנדנדה עד שהעוברים מטביעים את תחתית הצינור (כ 1 h).</li>
	<li>החלף כמחצית של עוצמת הקול עם מדיום OCT ו-דגירה בטמפרטורת החדר עם נדנדה עבור 1 h.. חזור על שלב זה פעם אחת</li>
	<li>במהלך שלבי דגירה עם 15/25 ו-OCT בינוני, להפוך או קפיצי את הצינור לפי הצורך כדי לשלב אלה ריאגנטים.</li>
</ol>2. הטמעת העובר והכנת הקריודורים
<ol><li>להעביר עוברים לתבנית פלסטיק (לראות את הטבלה של חומרים) עם מלקחיים, למזער כל העברה של התערובת 15/25-OCT. למלא את העובש בערך חצי מלא עם מדיום OCT בעדינות לערבב את העוברים במדיום OCT.</li>
	<li>הכנת בתבניות פלסטיק התווית והעברת העוברים הרצויים (בדרך כלל 1 \ u20123 עוברים) לתוך הריק, בתבניות פלסטיק מתויג, מזעור לשאת את מדיום OCT. לאחר העוברים הרצויים הם בתבנית פלסטיק, מילוי בעדינות עם מדיום OCT לחלק העליון של העובש.</li>
	<li>השתמש מלקחיים או 25 גרם מחטים כדי לארגן עוברים לכיוון הרצוי, באמצעות אור stereomicroscope להדמיה (איור 1A, B).</li>
	<li>הקפא את התבניות המוכנות על קרח יבש במיכל מבודד עם פלטפורמת מתכת. מניחים דלי קרח או מצנן קצף בעדינות מעל פלטפורמת המתכת כדי ליצור תא קר (איור 1C, D)</li>
	<li>
הכן 10 \ u201212 יקרומטר בהקפאה עבה באמצעות מערכת קריוסטט ב-20 ° c.
	<ol>
<li>הגדר בלוק אחד בכל פעם והשתמש במדיום OCT כדי להקפיא את הבלוק על הדיסק/צ'אק עם תחתית הבלוק הפונה לכיוון הלהב (איור 2 א). ודא שהבלוק מוקפא לחלוטין לדיסק (המדיום של OCT יהפוך לבן) לפני התחלת החסימה (איור 2B).</li>
		<li>מניחים את ההקפאה על שקופיות הזכוכית הטעונות (איור 2C, D) ומייבשים את השקופיות ללילה בטמפרטורת החדר.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. אימונולווקורנציה עבור pH3
<ol><li>בצע שלוש שטיפות של 5 דקות מהשקופיות ב-1x PBS במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin. אם הרקמות אינן מדבקה היטב לשקופית, בצע שוטף על-ידי הנחת שקופיות על משטח שטוח ובעדינות ליטוף 500 μL של 1x PBS על פני השטח. שופכים את 1x PBS בין שוטף על ידי מפנה בעדינות את השקופיות.</li>
	<li>התווה את המקטעים עם עט מחסום או עיפרון שעווה כדי לשמור על הנוזלים בשקופיות (איור 3).</li>
	<li>הנח את השקופיות על משטח שטוח בתא לח ופיפטה 200 μL של מאגר בלוקים למקטע על השקופיות. מודטה במאגר בלוק עבור 2 h בטמפרטורת החדר או לילה ב -4 ° c.</li>
	<li>להכין את דילול הנוגדן העיקרי (הארנב anti-pH3 הנוגדן, 1:200; ראה טבלה של חומרים) במאגר לחסום ולערבב היטב על ידי ליטוף. הקצה בעדינות את השקופיות כדי לנקז את מאגר החסימות, לחזור לחדר הלח והפיפטה 200 μL של פתרון הנוגדן העיקרי לכל מקטע אל השקופיות. עבור שליטה משנית בלבד, פיפטה 200 μL של בלוק מאגר על הסעיפים המתאימים.</li>
	<li>הסרת השקופיות ב -4 ° c לילה בחדר לח מלא במים מפוחים. סגרו את קצות התא הלח כדי לסייע בשמירה על הלחות.</li>
	<li>בצע שלוש שטיפות של 5 דקות מהשקופיות ב-1x PBS במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin. במהלך שטיפת הצעדים, להכין את דילול הנוגדן המשני (אנטי הארנב פלורסנט משנית המשלים, 1:2000; ראה טבלה של חומרים) בבלוק לחסום ומערבבים היטב על ידי ליטוף.</li>
	<li>הנח את השקופיות על משטח שטוח בתא לח ופיפטה 200 μL של פתרון נוגדן משני לכל מקטע אל השקופיות. מודיית את השקופיות בפתרון נוגדן משני בטמפרטורת החדר, מוגן מפני אור, עבור 30 דקות.</li>
	<li>בצע שלוש שטיפות של 5 דקות של השקופיות ב-1x PBS במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin, מוגן מפני אור. במהלך השטיפה, הכינו פתרון לצביעת הגרעין (ראו את טבלת החומרים).</li>
	<li>מניחים את השקופיות על משטח שטוח ופיפטה 200 \ u2012500 μL (בהתאם לגודל המדגם) של פתרון הצביעת הגרעיני על כל מקטע. מודיית את השקופיות בתמיסה מכתים גרעינית עבור 10 דקות, מוגן מפני אור.</li>
	<li>לנקז את הפתרון מכתים גרעינית ולטעון את השקופיות עם מדיה לא הקשחת פלורסנט הרכבה ושמיכות זכוכית. שמרו על השקופיות בחשכה ב-4 ° צ' עד לביצוע ההדמיה. הערה: התוצאות הטובות ביותר יתקבלו כאשר השקופיות מתמונות באותו יום או ביום שלמחרת.</li>
	<li>בעקבות IF, להמחיש ולדמות את השקופיות עם מיקרוסקופ מיקוד ומצלמה דיגיטלית באמצעות 555 ננומטר (אדום) ו 645 ננומטר (האדום הרחוק) מסנני פליטה 100x (הגדלה עינית 10x ו 10x ההגדלה היעד). שמור על עוצמת הלייזר עקבית במהלך ההדמיה.</li>
	<li>לאחר הדמיה, למקם את השקופיות במכולות בודדות של 1x PBS ולאחסן שטוח 4 ° c ללילה כדי להתכונן להסרת שמיכות. כשממקמים את השקופיות ב-1x PBS, בעדינות משקופיות את השקופיות כדי לסייע בהסרת הכיסויים. הערה: אל תלחץ על שמיכות או לנסות להסיר את שמיכות באופן ידני, כמו זה יכול להתפשר על איכות של סעיפים. יש להסיר את הכיסויים אופקית עם תנועה נכפית מינימלית.</li>
</ol>4. אימונוהיסטוכימיה על תווית דקטרן
<ol><li>לאחר הסרת הכיסויים, העבר בעדינות את השקופיות לתוך ה-PBS 1x החדש במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin. להסיר את ה-1x PBS ולבצע שלושה 5 דקות incubations של השקופיות ב-1x טריס מלוחים באגירה עם 0.1% של סטנט לא יוני (1x TBSt) בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>הכן 250 mL של 3% חמצן מימן (H2O2) מדולל במים מוכי המהול במיכל בגודל הראוי. מודיית את השקופיות ב 3% H 2O 2 פתרון בטמפרטורת החדר עבור 15 דקות. הערה: מי חמצן מימן הוא מאכל וחייב להיות מסולק כראוי על פי תקנות מוסדיים. יש להשתמש תמיד בציוד הגנה אישי מתאים (כפפות, מעיל מעבדה ומשקפי בטיחות).</li>
	<li>שטוף במהירות את השקופיות עם מים מפוהים. לבצע שלושה 5 דקות שוטף של השקופיות ב-1x TBSt. בזהירות לייבש את האזור סביב משטחי הרקמה ולהניח את השקופיות שטוח בתא לח. מתווה את חתכי הרקמה בעט מחסום או עיפרון שעווה כדי לשמור על הנוזלים בסעיפים במידת הצורך.</li>
	<li>החל מוכנים לשימוש 2.5% סרום החסימה שסופקו עם ערכת הנוגדן משני תיוג (לראות את הטבלה של חומרים) dropwise לכל מקטע. מודאת השקופיות בתא לח בטמפרטורת החדר במשך 20 דקות.</li>
	<li>להכין את הנוגדן העיקרי מדולל בנוגדן מדלל (ארנב אנטי מתויג dextran, 1:7500; לראות את הטבלה של חומרים) ולערבב על ידי ליטוף עדין. עצה עדינה של השקופיות כדי לנקז את מאגר החסימות, לייבש את האזור סביב המקטעים ולמקם את השקופיות בחדר לח.</li>
	<li>אין לשטוף לפני החלת הפתרון העיקרי נוגדן. פיפטה 200 μL של פתרון הנוגדן העיקרי לכל מקטע אל השקופיות ומודקות בתא לח ב -4 ° c בלילה. עבור שליטה משנית בלבד, פיפטה 200 μL של נוגדנים מדלל על הסעיפים המתאימים.</li>
	<li>עצה בעדינות את השקופיות כדי לנקז את פתרון הנוגדן העיקרי ולמקם ב-1x TBSt במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin. בצע שתי שטיפות של 5 דקות של השקופיות ב-1x TBSt. ייבוש האזור סביב המקטעים והמקום שטוח בחדר לח.</li>
	<li>החל מגיב מוכן לשימוש להפחתת הרקע לחסימה (עיין בטבלת החומרים) הנפתחת לכל מקטע. מודאת השקופיות בתא לח בטמפרטורת החדר במשך 20 דקות.</li>
	<li>עצה עדינה של השקופיות כדי לנקז את מאגר החסימות, לייבש בזהירות את האזור מסביב למקטעים, ולמקם את השקופיות בחדר לח. אין לשטוף לפני החלת הפתרון נוגדן משני.</li>
	<li>החל מוכן לשימוש בפתרון נוגדן משני (האנטי ארנבת peroxidase (HRP) נוגדן משני פולימר; לראות את הטבלה של חומרים) על כל מקטע dropwise ו-דגירה בתא לח בטמפרטורת החדר עבור 30 דקות.</li>
	<li>עצה בעדינות את השקופיות כדי לנקז את פתרון הנוגדן המשני ולמקם ב-1x TBSt במיכל המתאים, כגון צנצנת Coplin. בצע שתי שטיפות של 5 דקות מהשקופיות ב-1x TBSt.</li>
	<li>הכינו את המצע המכרומוגני HRP מיד לפני השימוש בהתאם לפרוטוקול היצרן (עיין בטבלת החומרים).</li>
	<li>נגב את האזור סביב המקטעים, הצב את השקופיות על משטח שטוח, והחל 200 μL של המצע הרומוגניים של HRP לכל מקטע. דגירה בטמפרטורת החדר עבור 3 דקות, הפעלת טיימר כאשר המצע הוחל על השקופית הראשונה (איור 4).</li>
	<li>לנקז את פתרון המצע ולשטוף את השקופיות בקצרה בצנצנת Coplin המכילה 1x PBS. הניחו את השקפים במים מפוהים במיכל מתאים, כגון צנצנת קופלין, ובצעו שני 5 דקות של שטיפת מים מלוחים בעצבנות עדינה.</li>
	<li>מנגד את השקופיות על ידי הצבת אותם במטאוקסילין מכתים את הפתרון של עד 30 s. הערה: המטאוקסילין רעיל וחייב להיות. מסולק מתקנות מוסדיים יש להשתמש תמיד בציוד הגנה אישי מתאים (כפפות, מעיל מעבדה ומשקפי בטיחות).</li>
	<li>מניחים את השקופיות במים מפוהים במיכל מתאים, כגון צנצנת קופלין, ומבצעות שלוש שטיפות של 5 דקות במים מלוחים. העבר את השקופיות למיכל המכיל את מי הברז של סקוט (ראה את הטבלה של חומרים) ו הדגירה עבור 1 דקות.</li>
	<li>מניחים את השקופיות במים מפוהים במיכל מתאים, כגון צנצנת קופלין, ומבצעות שלוש שטיפות של 5 דקות במים מלוחים.</li>
	<li>מייבשים את השקופיות באמצעות סדרת כיתות אתנול (אטואה) (מדולל במים מפוהים) וקסילן במכסה כימי. בצעו אחת 2 דקות דגירה ב 70% אטוח, שני 1 דקות incubations ב 95% אטוח, שני 1 דקות incubations ב 100% אטוח, ו 3 1 דקות incubations בתוך קסילן. הסר את השקופיות מ-קסילן והמקום שמיכות בזמן רטוב עם מדיום הרכבה toluene מבוסס במכסה כימי. הערה: קסילן וטולואן רעילים ודליקים וחייבים להיפטר כיאות מתקנות מוסדית. יש לבצע את העבודה עם קסילן וטולואן במכסה כימי, ולהשתמש בציוד הגנה אישי מתאים (כפפות, מעיל מעבדה ומשקפי בטיחות).</li>
	<li>בעקבות IHC, המחש והתמונה את השקופיות עם מיקרוסקופ אור מורכב ומצלמה דיגיטלית בהגדלה של 100x (הגדלה בעינית 10x והגדלה אובייקטיבית של 10 x). (איור 5).</li>
</ol>

<ol><li>Whole-mount IHC protocol for zebrafish embryos [Internet]. GeneTex. , Irvine. Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.genetex.com/uploaddata/Protocol/Document/IHC-WM.pdf">http://www.genetex.com/uploaddata/Protocol/Document/IHC-WM.pdf</a> (2013).</li>
<li>Inoue, D., Wittbrodt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One+for+all--a+highly+efficient+and+versatile+method+for+fluorescent+immunostaining+in+fish+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">One for all--a highly efficient and versatile method for fluorescent immunostaining in fish embryos.</a> PLoS One. 6 (5), (2011).</li>
<li>Kogata, N., Howard, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+whole-mount+immunofluorescence+protocol+for+three-dimensional+imaging+of+the+embryonic+mammary+primordium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Mammary+Gland+Biology+and+Neoplasia%22%5BJournal%5D)">A whole-mount immunofluorescence protocol for three-dimensional imaging of the embryonic mammary primordium.</a> Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 18 (2), 227-231 (2013).</li>
<li>Santos, D., Monteiro, S., Luzio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((General+Whole-Mount+Immunohistochemistry+of+Zebrafish+%28Danio+rerio%29+Embryos+and+Larvae+Protocol%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">General Whole-Mount Immunohistochemistry of Zebrafish (Danio rerio) Embryos and Larvae Protocol.</a> Methods in Molecular Biology. 1797, 365-371 (2018).</li>
<li>Shive, H. R., West, R. R., Embree, L. J., Sexton, J. M., Hickstein, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+KRASG12V+in+Zebrafish+Gills+Induces+Hyperplasia+and+CXCL8-Associated+Inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Expression of KRASG12V in Zebrafish Gills Induces Hyperplasia and CXCL8-Associated Inflammation.</a> Zebrafish. 12 (3), 221-229 (2015).</li>
<li>Karlsson, J., von Hofsten, J., Olsson, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+transparent+zebrafish%3A+a+refined+method+to+improve+detection+of+gene+expression+during+embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biotechnology+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Generating transparent zebrafish: a refined method to improve detection of gene expression during embryonic development.</a> Marine Biotechnology (NY). 3 (6), 522-527 (2001).</li>
<li>Macdonald, R. Zebrafish Immunohistochemistry. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMacdonald%2C+R+%22Molecular+Methods+in+Developmental+Biology%22">Molecular Methods in Developmental Biology</a>. Guille, M. , 127th ed, Humana Press. New York. 77-88 (1999).</li>
<li>Santos, C., Pinto, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemical+Assessment+as+a+Tool+for+Investigating+Developmental+Toxicity+in+Zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemical Assessment as a Tool for Investigating Developmental Toxicity in Zebrafish (Danio rerio).</a> Methods in Molecular Biology. 1797, 461-476 (2018).</li>
<li>Shive, H. R., West, R. R., Embree, L. J., Azuma, M., Sood, R., Liu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((brca2+in+zebrafish+ovarian+development%2C+spermatogenesis%2C+and+tumorigenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">brca2 in zebrafish ovarian development, spermatogenesis, and tumorigenesis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (45), 19350-19355 (2010).</li>
<li>Shive, H. R., West, R. R., Embree, L. J., Golden, C. D., Hickstein, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BRCA2+and+TP53+collaborate+in+tumorigenesis+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">BRCA2 and TP53 collaborate in tumorigenesis in zebrafish.</a> PLoS One. 9 (1), (2014).</li>
<li>van der Loos, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+Immunoenzyme+Staining%3A+Methods+and+Visualizations+for+the+Observation+With+Spectral+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+and+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Multiple Immunoenzyme Staining: Methods and Visualizations for the Observation With Spectral Imaging.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 56 (4), 313-328 (2008).</li>
<li>van der Loos, C. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3avan+der+Loos%2C+CM+%22Immunoenzyme+Multiple+Staining+Methods%22">Immunoenzyme Multiple Staining Methods</a>. , Bios Scientific Publishers. New York. (1999).</li>
<li>OCT Embedding For Cryostat Sectioning Of Embryos or Larvae [Internet]. The Zebrafish Book, 5th edition. , University of Oregon Press. Available from:
 <a target="_blank" href="https://wiki.zfin.org/display/prot/OCT+Embedding+For+Cryostat+Sectioning+Of+Embryos+Or+Larvae">https://wiki.zfin.org/display/prot/OCT+Embedding+For+Cryostat+Sectioning+Of+Embryos+Or+Larvae</a> (2007).</li>
<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+Cells+and+Tissues+for+Fluorescence+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Methods+in+Microscopy%22%5BJournal%5D)">Preparation of Cells and Tissues for Fluorescence Microscopy.</a> Basic Methods in Microscopy. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. Spector and Goldman, editors (2006).</li>
<li>Torres, E. The Lack of Commercial Antibodies for Model Organisms (and How You Can Deal with It) [Internet]. BenchSci Blog. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://blog.benchsci.com/the-lack-of-commercial-antibodies-for-model-organisms-and-how-you-can-deal-with-it">https://blog.benchsci.com/the-lack-of-commercial-antibodies-for-model-organisms-and-how-you-can-deal-with-it</a> (2018).</li>
<li>Carmany-Rampey, A., Moens, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modern+mosaic+analysis+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Modern mosaic analysis in the zebrafish.</a> Methods. 39, 228-238 (2006).</li>
<li>Da’as, S. I., Balci, T. B., Berman, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mast+cell+development+and+function+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Mast cell development and function in the zebrafish.</a> Methods in Molecular Biology. 1220, 29-57 (2015).</li>
<li>Quan, F. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+distribution+and+in+vitro+activities+of+the+urotensin+II-related+peptides+URP1+and+URP2+in+zebrafish%3A+evidence+for+their+colocalization+in+spinal+cerebrospinal+fluid-contacting+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Comparative distribution and in vitro activities of the urotensin II-related peptides URP1 and URP2 in zebrafish: evidence for their colocalization in spinal cerebrospinal fluid-contacting neurons.</a> PLoS One. 10 (3), (2015).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWesterfield%2C+M+%22The+zebrafish+book.+A+guide+for+the+laboratory+use+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29%22">The zebrafish book. A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio)</a>. , 4th ed, University of Oregon Press. Eugene. (2000).</li>
<li>Sullivan-Brown, J., Bisher, M. E., Burdine, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embedding%2C+serial+sectioning+and+staining+of+zebrafish+embryos+using+JB-4+resin%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Embedding, serial sectioning and staining of zebrafish embryos using JB-4 resin.</a> Nature Protocols. 6 (1), 46-55 (2011).</li>
<li>JB-4 Embedding Kit. [Internet]. Polysciences, Inc. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/histology-microscopy/plastic-embedding-media-kits/jb-4-sup-r-sup-embedding-kits-reagents/jb-4supsup-embedding-kit/">http://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/histology-microscopy/plastic-embedding-media-kits/jb-4-sup-r-sup-embedding-kits-reagents/jb-4supsup-embedding-kit/</a> (2018).</li>
</ol>

. למחברים אין מה לגלות

הצגנו שיטה הרומן לשילוב immunofluorescence ואימונוהיסטוכימיה המייצגת צעד חשוב קדימה בביצוע ניסויים בלוקליזציה של העברת דגים בהקפאה. יש חוסר קריטי של פרוטוקולים קיימים לוקליזציה האופטימיזציה לשימוש עם עוברים קטנים וחומרים קריוסמנות17,18, שניהם בשימוש נפוץ במחקרים מולקולריים14. פרוטוקולי לוקליזציה קיימים מתמקדים בעיקר בהדמיה בו של שני fluorophores17,18. בעוד פרוטוקולים אלה יכולים לפעול היטב, התועלת שלהם מוגבלת על ידי זמינות של נוגדנים כי (אני) ניתן להשתמש ב-דג זברה ו (ii) תואמים IF.
אנו חשים כי שימוש בהקפאה עבור עוברי דגים מספק יתרון משמעותי במונחים של מורפולוגיה רקמות שנשמרו. כמו ihc הוא נפוץ יותר בשימוש על סעיפים פרפין מאשר קריוסעיפים7,8, חקירה נוספת של שיטות ihc מבוססות של קריוסעיף לאיתור של ביטוי חלבון מוצדקת. השימוש בהר כולו אם הוא שיטה נפוצה להמחיש רמות הביטוי בעוברי הדגים דג זברה, והוא מתואר באופן נפוץ יותר בספרות מאשר אם באמצעות קריוסעיפים1,2,3,4, . בן 19 עם זאת, לפרוטוקולי הטעינה השלמה יש מגבלות, כולל היעדר לוקליזציה מדויקת של חלבונים המתבטאת ברקמות עמוקות והפוטנציאל לביטוי ברמת המשטח לביטוי חלבון עלום ברקמות עמוקות יותר. בעקביות הבחנו תחזוקה מצוינת של מורפולוגיה תאית בעקבות הקפאה, הקפאת, ורציפים IF ו-IHC. עבור יישומים הדורשים לוקליזציה מדויקת של ביטוי החלבון ברמת התא הבודד, יש יתרון משמעותי בהליכים מבוססי המקטעים כפי שתיארנו בפרוטוקול זה. הטבעה שרף מספק אפשרות חלופית עבור ביצוע IF או ihc בחני בסעיפים משלב מוקדם של העוברים השלבים20. מקטעי שרף לספק שימור מעולה של מורפולוגיה רקמות לעומת קריודורים, ומקטעי רקמות דקים יחסית יכול להיות מוכן. עם זאת, היצרנים בדרך כלל לא ממליצים על השימוש בסעיפים שרף עבור מבוסס על מבוססי-אימונואומר, כמו מרכיבים מסוימים של שרפים לא ניתן להסיר מן הסעיפים ועשויים מסכה לאתר כריכת נוגדנים21.
בעוד הפרוטוקול כולו חיוני לניתוח מדויק ומוצלח של דפוסי הביטוי, כמה צעדים ספציפיים הם קריטיים להצלחה ניסויית. הצעד הקריטי הראשון הוא טיפול של עוברים במהלך הטבעה באוקטובר13,14. זה יכול להיות מאתגר לכוון כל העובר במישור הרוחבי אותו, כך סעיפים הם חותכים בערך באותו אזור עבור כל העוברים. מצאנו כי באמצעות מחטים מד קטן לבצע תנועות קטנות, מכוון דרך מדיום OCT צמיג עבור כיוון העובר הוא מעולה לשימוש מלקחיים, שהם גדולים מדי ולתפוס יותר מדי OCT בינונית. צעד קריטי שני מתרחש במהלך הירידה של בלוקים קפואים, כפי שהוא יכול להיות קשה להשיג מקטעים באיכות גבוהה המכילים את הרקמה הרצויה (ים) ללא הכשרה משמעותית וניסיון. לפיכך, אנו ממליצים על שימוש בדגימות מבחנים עד לשליטה בטכניקה. צעד קריטי שלישי הוא coverslip הסרת, אשר יש את הפוטנציאל להפריע או להסיר דגימות רקמה. מצאנו כי שילוב של עצבנות עדינה כדי לשחרר את שמיכות והסרה איטית של השקופית מן המכל PBS היא הגישה היעילה ביותר עבור הסרת coverslip. יד עדינה ויציבה היא הטובה ביותר; החוקרים עשויים לגלות כי כמה ניסוי וטעייה יש צורך ללמוד כיצד להסיר שמיכות ביעילות.
שלבים חשובים נוספים בפרוטוקול כוללים אופטימיזציה של נוגדן (נוגדנים ראשוניים ומשניים עבור IF ו-IHC assays) וחשיפה של שקופיות למצע כרומוגניים וכתמי נגד. מחקר מעמיק לגבי ספציפיות הנוגדן העיקרי ריכוז היעד הוא חיוני; בדרך כלל, עדיף לאסוף דגימות לא יקרות מספיק עבור לפחות שני ניסויים נפרדים עבור IF ו-IHC שיבוצעו כדי לייעל ריכוזי הנוגדן העיקרי לפני תחילת השילוב IF/IHC. כולל שליטה חיובית ושלילית ידועה עבור כל נוגדן ראשוני הוא חיוני בכל ניסוי כדי להבטיח כי הן IF ו-ihc בחני מופיעים כראוי. התאמות ריכוז נוגדן משני עשוי להיות גם הכרחי. אופטימיזציה של חשיפה של מקטעי רקמות למצע כרומוגניים וכתמים לצורך שיטת IHC נדרשת, מאחר שהנחיות היצרן מתארות לעתים קרובות מגוון רחב של זמני חשיפה אפשריים. לא כל כרומוגנס יכול להיות תואם כתמי נגד ופיגמנטציה רקמה אנדוגניים, המחייב תכנון קפדני לגבי בחירת כרומוגן.
קיימים שינויים פוטנציאליים רבים שניתן להחילם על הפרוטוקול המתואר, וביצעת בהצלחה פרוטוקול זה עם צירופים אחרים של נוגדנים שלא ניתן היה להשתמש בהם עבור IF. כאמור, לחומרים כרומוגניים יש תאימות ברורה לכתמי-נגד ספציפיים. גילינו כי מרכיבים אלה ניתן לשינוי בקלות בפרוטוקול. בנוסף, הפרמטרים של דגירה הנוגדן הם גמישים למדי, וניתן להגדיל או להקטין בהתאם לעוצמת הצביעה הרצויה. ניתן גם לשנות את תהליך ההטבעה. למרות שאנו מתמקדים במקטעים רוחבי, העוברים יכולים בקלות להיות מכוונים לכל כיוון כדי לטפל ברקמות מסוימות של עניין. לבסוף, קיימות מספר נקודות השהיה אפשריות בפרוטוקול זה. עוברים יבשים ניתן לאחסן 100% MeOH ב-20 ° c במשך כמה חודשים; בלוקים קפואים ניתן לאחסן ב-80 ° צ' עד שלושה חודשים; וניתן לאחסן שקופיות מוכנות ב-80 ° c עד תשעה חודשים בתיבת שקופיות.
בשל המורכבות היחסית של פרוטוקול IF/IHC המשולב, קיימים מקורות אפשריים מרובים של וריאציה או שגיאה העשויים לדרוש פתרון בעיות, החל מאיכות הרקמה ועד לניסיון החוקר לטיפול במדגם. רוב השלבים הקריטיים המתוארים לעיל נחשבים לקריטיים כיוון שהם דורשים אופטימיזציה ברמת המשתמש הבודדת או שהם דורשים מיומנות, מיומנות וניסיון מסוימים. עם זאת, גילינו כי מכתים רקע לא ספציפי ועוצמת אות נמוכה הם הנושאים המשמעותיים ביותר הדורשים אופטימיזציה. כמו בכל פרוטוקול IF או IHC, הטיפול בבעיות אלה עשוי לגזול זמן רב ולעבוד באופן אינטנסיבי, וניתן לשלבו עם שיטה זו מאחר ששתי הטכניקות משולבות. מסיבה זו, אנו ממליצים מאוד למטב את IF ו-IHC בנפרד לפני שממשיכים עם הפרוטוקול המשולב.
בעוד אנו מנבא כי שיטה זו תהיה שימושית עבור מגוון רחב של ניסויים, יש מגבלות פוטנציאליות. ביצוע מוצלח של הליך זה תלוי בשמירה על דגימות רקמה שלמות באמצעות שני ניסויים רציפים הכוללים מספר שטיפת שלבים. מסיבה זו, כל בעיה שתיווצר במהלך הטיפול בבעיות או ברקמה, לרבות שקופיות ישנות יותר שעלולות לרדת באיכות, תגביל באופן משמעותי את יכולתם של החוקרים לבצע בהצלחה פרוטוקול זה. למרות שניתן לאחסן שקופיות ב-80 ° צ' עד תשעה חודשים, הדבקות ברקמות מירידה במשך הזמן והייתה לנו את ההצלחה הטובה ביותר עם שקופיות המשמשות בתוך חודש של הכנה או באופן אידיאלי, למחרת. הגבלה שנייה היא טביעת הרגל הקטנה של עוברי הדגים. למרות שמצאנו את הניסוי הזה כדי להיות שימושי להמחיש חלבונים כי הם בשפע יחסית העוברים בשלב מוקדם, חלבונים כי הם ביטוי בלתי עקבי או ברמות נמוכות עלול להיות קשה מאוד ללכוד בסעיף. בסופו של דבר, מאז הפרוטוקול משתמש 10 \ u201212 יקרומטר שכדורים, הוא מתאים ביותר להערכה של ביטוי חלבון במבנים גדולים יותר, כגון גרעינים, במקום רכיבים תת-סלולריים קטנים יותר.
לסיכום, פרוטוקול IF/IHC המשולב שלנו יהיה יתרון עבור מגוון רחב של מחקרים בשלב מוקדם של עוברי דגים, והוא מייצג חדשנות חשובה בניתוח ביטוי חלבונים מדויקים בדגימות כאלה. השיטה שלנו, המוצגת בהצלחה באיור 5, תאפשר לחוקרים לשמר את המבנה העדין של עוברי בשלב מוקדם של העוברים בהקפאה בתוך העבודה עם מגוון מוגבל במקצת של נוגדנים העיקרי זמין כעת, כי הם אומת לשימוש ב-IF או IHC במין זה. פרוטוקול זה עשוי להיות שימושי עבור מחקרים של דגים אחרים ומינים אמפיחיים (למשל, מאקה ו xenopus spp.), אשר הוגבלו על ידי מגבלות דומות לזמינות הנוגדן, והיא עשויה להיות ישימה עבור דגמי יונקים מסורתיים כ ובכן.

הדג הוא אורגניזם מודל חסון מאוד, המשמש כיום לאורך מגוון רחב של דיסציפלינות במחקר ביו-רפואי. בפרט, פיתוח חיצוני מהיר ו הרי של עוברי דגים לספק כלי מצוין עבור במחקרים vivo. להלן, אנו מתארים שיטה לניתוח האימונוכימיקלים הרציפים (IF) ו אימונוהיסטוכימיה (IHC) ניתוחים של עוברי הדגים בהקפאה. הליך זה משתמש ביישום רציף של שני נוגדנים בשקופית אחת, ומאפשר זיהוי מדויק של חלבונים מותאמים לשפות אחרות ברמה התאית תוך שימור מקטעי רקמות. פרוטוקול זה שימושי במיוחד עבור מחקרים עם מודל דג זברה, מאז מספר קטן יחסית של נוגדנים אומתו לשימוש ביישומים IF ו/או ihc בדגים בהשוואה לדגמי העכבר.
התבוננות באינטראקציות בין-סלולריות היא מרכיב חיוני במחקרים רבים, והיא עשויה לספק תובנות מפתח למנגנונים מולקולריים הפועלים במישור הסלולר הפנוטיפים ברמה הארגונית. בנוסף, ביטוי החלבון יכול לספק מידע על הפונקציה התאית, במיוחד כאשר בוחן ביטוי של מספר חלבונים בו בתוך התא (לוקליזציה משותפת). למרות מלאה-הר ihc ואם הם בשימוש נפוץ טכניקות לניתוח ביטוי חלבון ב-דג זברה עוברי1,2,3,4,5, הליכי הר שלם יכול להיות בעייתי להשגת נתונים מדויקים ללוקליזציה. בניסיון שלנו, זה יכול להיות קשה להבדיל בין שכבות של רקמה לבין הביטוי חלבון ביטוי ברמה תא יחיד בתוך כל המינים. תוכנות לדימות יכולות בדרך כלל להיות מסוגלים להבדיל בין צביעת פני שטח לעומת כתמים עמוקים יותר. ביטויים של חלבון ברמה שאינה מפני השטח יכולים להיות מטושטשים על-ידי ביטוי ברמה גבוהה יותר של משטח בוהק, המוביל אי-דיוקים בקוונפיקציה. בנוסף, שיטות הניקוי המסורתי ביותר של הדגים הם רעילים למדי6 ולכן פחות רצוי לשימוש.
טכניקות מבוססות נוגדן, כגון IF ו-IHC, משמשות לעתים קרובות כדי לזהות ביטוי חלבונים בחומר מנות, מפשט את הזיהוי של אוכלוסיות תאים דיסקרטית המבטאים חלבון מסוים בתוך רקמות מורכבות. Ihc משמשת בדרך כלל ללוקליזציה, לעתים קרובות באמצעות שני נוגדנים שונים מצוכרים במינים מארחים שונים ודמיינו עם כרומוגנים בצבעים שונים4,7,8,9 , 10. עם זאת, שימוש במספר כרומוגנס יכול להוביל לצביעת רקע לא ספציפי או אי-תאימות של צבעים11,12.
פיתחנו פרוטוקול הרומן לגילוי של חלבונים מרובים על ידי רציף IF ו-ihc על מנות בשלב מוקדם של עוברי דג דג זברה. קריוסיסירהמתאימה במיוחד לרקמות העדינות כגון עוברי הדגים והקריוקטרונים מעולים לחלקים משובצים בפרפין בעלי מראה מבוסס-פלואורסצנטית13,14. בחרנו למטב את IF ו-IHC משולבים במקום אם או IHC בצבעים כפולים, כדי לעקוף את בעיית חוסר התאימות של הנוגדנים לסוג של שיטת התאמה בודדת. בעיות אלה רלוונטיות במיוחד עבור מחקר מעורבים דגים עקב מספר מוגבל של נוגדנים זמינים מסחרית כי הם מאומתים לשימוש ב-דג זברה. למעשה, מחקר של ארבע חברות גדולות הראו כי נוגדנים זמינים מסחרית לשימוש בעכבר היה על 112,000 לעומת כ 5,300 לשימוש ב-דג זברה15. בסופו של דבר, בחרנו לפתח פרוטוקול שניתן לבצע על הקפאה אחת, שהיא חיונית כשעובדים עם דגימות רקמות קטנות או מוגבלות כגון המתקבלים מעוברי הדגים.
פרוטוקול זה תוכנן כדי להעריך את ההתנהגות ההתרבות של תאי התורם ב 48 h אחרי הפריה שלאחר ההפריה העוברי דגים שנוצרו על ידי השתלת blastula-to-blastula כפי שמתואר על ידי Carmany ראמאלפי ו Moens16. עוברי תורם הוזרק על הבמה תא אחד עם המשלים תוספי בתווית לפני השתלת תאים תורמים לעוברי הנמען. השתמשנו באימונוכימיה עבור Ser 10 זרחניים histone H3 (pH3) כדי לזהות תאים מתרבים ואחריו אימונוהיסטוכימיה על התווית תוספי לזהות תאים תורמים בצ העוברים עוברי דגים. זיהוי סדרתי של pH3 ו תוספי בתווית בתוך מדור הקפאה אחד איפשר לנו לזהות ולכמת תאים בודדים הביעו שני סמנים.
פרוטוקול IF/ihc זה רציף עבור דג ההקפאה יספק כלי שימושי עבור חוקרים דג זברה המבקשים פרוטוקול לוקליזציה עבור ביטוי חלבון. הבעיות שפרוטוקול זה נועד לטפל בהן, כגון דגימות של רקמה קטנה וזמינות מוגבלת של נוגדנים, אינן ייחודיות לדגם דג זברה. לפיכך, ייתכן ששיטה זו תהיה שימוש עבור כל חוקר שרוצה לבצע את הפעולות הרציפות IF/IHC.
הצהרת אתיקה:
כל מחקרים בעלי חיים אושרו על ידי הוועדה טיפול בעלי חיים מוסדיים והשתמש, צפון קרוליינה סטייט, ראלי, צפון קרוליינה, ארצות הברית.

<table><tbody><tr><td>15/25</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>15% ג'לטין דגים/25% סוכרוז w/v, עשוי ב-dH2O</td></tr><tr><td>נוגדן משני Alexa 555</td><td>Invitrogen</td><td>A21429</td><td>המשמש בדילול של 1:2,000 במאגר בלוק עבור</td></tr><tr><td>נוגדן IF מדלל</td><td>Dako</td><td>S3022</td><td></td></tr><tr><td>Background Buster</td><td>Innovex</td><td>NB306</td><td></td></tr><tr><td>מאגר בלוק (IF)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>5% סרום עיזים רגיל, 0.1% טריטון X-100 ב-1x תאי PBS</td></tr><tr><td>תוכנת הדמיה Sens תוכנת הדמיה</td><td>Olympus</td><td>cellSens</td><td>המשמשת עם מיקרוסקופ אור</td></tr><tr><td>מורכב עוברי דג זברה כימרי</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>AB כימרה מסוג בר עוברי דג זברה נותחו ב-48 hpf&nbsp;</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ אור מורכב</td><td>Olympus</td><td>BX51</td><td>בשימוש עם מצלמה דיגיטלית ותוכנת הדמיה cellSens ללכידת תמונה לאחר</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ פלואורסצנטי קונפוקלי</td><td>IHC Leica</td><td>DM 2500</td><td>בשימוש עם מצלמה דיגיטלית ותוכנת הדמיה פלואורסצנטית מתקדמת של Leica Application Suite לצילום תמונה לאחר</td></tr><tr><td>תבניות פלסטיק חד פעמיות IF, 15 מ"מ x 15 מ"מ x 5 מ"מ</td><td>טד פלה</td><td>27147-2</td><td></td></tr><tr><td>מצלמה דיגיטלית, מיקרוסקופ אור</td><td>Olympus</td><td>DP27</td><td></td></tr><tr><td>מצלמה דיגיטלית, מיקרוסקופ פלואורסצנטי</td><td>Leica</td><td>TCS SPE</td><td></td></tr><tr><td>אתנול</td><td>Koptec</td><td>V1001</td><td></td></tr><tr><td>ג'לטין דגים</td><td>Sigma</td><td>G7041</td><td></td></tr><tr><td>שקופיות זכוכית</td><td>פישר</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>מי חמצן, 30%</td> <td>פישר</td><td>H325-100</td><td></td></tr><tr><td>ערכת זיהוי פולימר ImmPRESS HRP</td><td>וקטור</td><td>MP-7401</td><td>נוגדן משני נגד ארנב, פולימר HRP</td></tr><tr><td>Leica Application Suite תוכנת הדמיה פלואורסצנטית מתקדמת</td><td>Leica</td><td>LAS AF 2.3.6</td><td>תוכנת הדמיה בשימוש עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי קונפוקלי</td></tr><tr><td>מתנול</td><td></td><td>פישר A452-4</td><td></td></tr><tr><td>שונה המטוקסילין</td><td>תרמו</td><td>72804</td><td></td> של מאייר</tr><tr><td>סרום עיזים רגיל</td><td>MP Biomedical</td><td>191356</td><td></td></tr><tr><td>OCT בינוני</td><td>רקמה-Tek/Fisher</td><td>4583/4585</td><td></td></tr><tr><td>נוגדן אנטי-אורגון ירוק</td><td>בדיקות מולקולריות/Life Technologies</td><td>A889</td><td>בשימוש בדילול של 1:7500 עבור IHC</td></tr><tr><td>Oregon Green Dextran</td><td>Invitrogen</td><td>P7171</td><td>בשימוש ב-2.5% ב-0.2 M KCl</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde, 4%</td> <td>Acros Organics</td><td>416780030</td><td>מיוצר במעבדה ב-1x PBS</td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher</td><td>SP15</td><td></td></tr><tr><td>1x תמיסת מלח עם חוצץ פוספט</td><td>תוצרת מעבדה</td><td>N/A</td><td>50 מ"ל 10x PBS, עד 500 מ"ל נפח עם dH2O</td></tr><tr><td>10x מי מלח עם חוצץ פוספט</td><td>תוצרת מעבדה</td><td>N/A</td><td>שימוש בפרוטוקול קולד ספרינג הארבור</td></tr><tr><td>1x PBSt</td><td>תוצרת מעבדה</td><td>N/A</td><td>50 מ"ל 10x PBS, 1 מ"ל 10% Tween 20, עד 500 מ"ל נפח עם dH2O</td></tr><tr><td>אנטי-Ser10 נוגדן היסטון H3 זרחני</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-8656-R</td><td>בשימוש בדילול 1:500 עבור IF</td></tr> מדעי <tr><td>מיקרוסקופיית האלקטרונים</td><td>של מי הברז של סקוט</td><td>26070-06</td><td>השתמשו בהצלחה במותגים אחרים בנוסף ל-EMS</td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Amresco</td><td>335</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Fisher</td><td>BP337</td><td></td></tr><tr><td>TO-PRO3</td><td>Invitrogen</td><td>T3605</td><td>בשימוש ב-1:1,000 ב-1x PBS עבור IF</td></tr><tr><td>1x תמיסת מלח Tris-buffered</td><td>תוצרת</td> מעבדה <td>N/A</td><td>50 מ"ל 10x TBS, עד 500 מ"ל נפח עם dH2O</td></tr><tr><td>10x תמיסת מלח Tris-buffered</td><td>תוצרת המעבדה</td><td>N/A</td><td>85 גרם NaCl, 61 גרם בסיס Tris, עד 1 ליטר נפח עם dH2O</td></tr><tr><td>1x TBSt</td><td>תוצרת המעבדה</td><td>N/ </td><td>A 50 מ"ל 10x TBS, 1 מ"ל 10% Tween 20, עד 500 מ"ל נפח עם dH2O</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Acros Organics</td><td>327371000</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vector</td><td>H-1000</td><td>מדיה הרכבה לא מתקשה</td></tr><tr><td>וקטור NovaRed מצע</td><td>וקטור</td><td>SK-4800</td><td>HRP מצע</td></tr><tr><td>קסילן</td><td>פישר</td><td>X3P-1GAL</td><td></td></tr></tbody></table>

מרפאוולוגיה רציפה ואימונוהיסטוכימיה על קריוסינות עוברי דג

Sequential Immunofluorescence and Immunohistochemistry on Cryosectioned Zebrafish Embryos

חקירת אינטראקציות בין-סלולריות דורשת לעתים קרובות תיוג בדיד של אוכלוסיות תאים ספציפיות ולוקליזציה של חלבונים מדויקים. העובר הדג הוא כלי מצוין לבדיקת אינטראקציות כאלה עם מודל vivo. כל הר אימונוהיסטוככימיים ואימונוכימיקלים מיושם לעתים קרובות בעוברי דגים דג זברה להעריך את הביטוי חלבון. עם זאת, זה יכול להיות קשה להשיג מיפוי מדויק של חלבונים שיתוף מקומי במרחב תלת מימדי. בנוסף, מחקרים מסוימים עשויים לדרוש שימוש בשני נוגדנים שאינם תואמים לאותה טכניקה (למשל, נוגדן 1 מתאים רק לאימונוהיסטוכימיה ונוגדן 2 מתאים רק לimmunofluorescence). מטרת השיטה המתוארת בזאת היא לבצע מרפאוולוגיה רציפה ו/או אימונוהיסטוכימיה על חלקי קריוקיים שמקורם בשלב מוקדם של עוברי דגים. כאן אנו מתארים את השימוש של סיבובים רציפים של immunofluorescence הדמיה, אימונוהיסטוכימיה, הדמיה עבור הקפאה בודד על מנת להשיג זיהוי מדויק של ביטוי חלבון ברמת תא בודד. מתודולוגיה זו מתאימה לכל מחקר בשלב מוקדם של עוברי דגים שדורשים זיהוי מדויק של מטרות חלבון מרובות בתאים בודדים.

פיתחנו את הפרוטוקול כדי לזהות ולנתח חלבון ביטוי בתאי תורמים בודדים 48 h לאחר הפריה כימראריק דג זברה העוברים שנוצרו על ידי השתלת blastula-to-blastula בין מסוג AB פראי בצורת דג זברה. ניתוח מוצלח של ביטוי חלבון ברמה תא אחד נדרש הכנה של קריודורים עם עוברים מונחה כראוי (איור 1 ואיור 2) וזהיר, יישום רציף של שיטות IF ו-ihc אלה הקפאה מקטעים (איור 3 ואיור 4). שימוש בנוגדנים ספציפיים כדי לזהות בו תאים מתרבים (anti-pH3, איור 5A, B) ותאים תורמים (האנטי מתויג Dextran, איור 5a) ניתן להשתמש כדי לזהות ולכמת תאים תורמים כי הם באופן פעיל מתרבים ( איור 5E). חיוני ליצור תמונות באיכות גבוהה לאחר הן IF (איור 2A, B) ו-Ihc (איור 2a) כדי לזהות במדויק תאים בודדים. יש להשתמש בתוכנית ניתוח תמונה כדי לבצע כיסוי תמונה (איור 5E). בהתאם לתוכנית ניתוח התמונה בשימוש, ייתכן שניתן יהיה לבצע ספירות אוטומטיות של תאים המסומנים בתווית צריך להיות הצורך בקוונפיקציה.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59344/59344fig1.jpg"> איור 1: הכנת גושי OCT קפואים. (A) 50x תצוגה מיקרוסקופית של עוברים ב OCT בתבנית קריוגניים מוכן להקפאה. החץ האדום מצביע על ראש של מיקום העובר של דג של דג זברה נגד המשטח התחתון של העובש; חץ שחור מציין את הזנב מצביע לעבר המשתמש. (ב) תבניות פלסטיק עם עוברים ו-OCT הונחו על פלטפורמת מתכת מקורר. (ג) קצף קרח דלי הניח על צורות פלסטיק כדי ליצור תא קפוא. (ד) OCT הופך לבן משקוף לאחר שהבלוק קפוא לחלוטין. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59344/59344fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59344/59344fig2.jpg"> איור 2: קריוסקר של גושי OCT קפואים. (א), יישום של OCT טרי על דיסק קריוסטט ומיקום של בלוק קפוא על אוקטובר, סובב 180 ° מכיוון ההקפאה של הבלוק. (ב) השקפה צדדית של הבלוק מוקפא כדי לחסום את הדיסק. (ג) מבט לחסום את החסימה עם צלחת הגליל בעמדה. (ד) איסוף סעיפים באמצעות שקופית טעונה מפלטפורמת המתכת של הקריוסטט. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59344/59344fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59344/59344fig3.jpg"> איור 3: תצוגה של מקטעים מוכנים לאחר מיקום בשקופית. החץ מצביע על מחסום הידרופובי, וקו מנוקד מסמן את האזור המכיל סעיפים בתוך המתחם המכשול. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59344/59344fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59344/59344fig4.jpg"> איור 4: הכנה ליישום המצע כרומוגניים במהלך IHC. השקופית מונחת על משטח שטוח המכוסה בניילון, כדי לאפשר יישום אחיד של המצע כרומוגניים, תוך שהיא מכילה כל התעלה של חומר מסוכן. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59344/59344fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59344/59344fig5.jpg"> איור 5: נציג IF ו-IHC התיוג של הקריוסינות 48 hpf כצ העוברים עוברי דגים שנוצרו על ידי השתלת blastula-to-blastula בין AB מסוג פראי בצורת העוברי דג. (א) אם לזהות Ser 10 זרחניים Histone H3 (אנטי pH3, 1:200) ביטוי 48 hpf העובר דג. אדום = pH3 תאים חיוביים; כחול = גרעינים. חיצים צהובים מציינים דוגמאות של תאים חיוביים. (ב) חיסור של הכתם הגרעיני הכחול בתמונה הדיגיטלית (התוכנה imagej) מגביר ויזואליזציה של תאים pH3-חיוביים לכימות וכיסוי תמונה. (ג) שליטה שלילית (נוגדן משני בלבד) עבור שיטת IF בהקפאה 48 hpf כלאריק דג זברה העובר. סרגל קנה מידה מייצג 50 יקרומטר (ישים לכל החלוניות). (ד) ihc כדי לזהות תוספי מתויג (האנטי מתויג תוספי, 1:7500) בצ 48 hpf דג זברה העובר שנוצר על ידי השתלת blastula-to-blastula בין מסוג AB פראי-בצורת דג זברה. עוברי תורם הוזרק עם המשלים תוספי בתווית בשלב אחד לפני השימוש עבור השתלת blastula-to-blastula. אדום מציין את התאים המסומנים באמצעות המשלים של תוספי; כחול מציין גרעינים. חיצים צהובים מציינים דוגמאות של תאים חיוביים. (E) כיסוי של לוח B (IF עבור pH3) ו-לוח C (ihc לתווית תוספי) המראה לוקליזציה של pH3 ביטוי ותיוג תוספי בתאים בודדים. חיצים צהובים מציינים דוגמאות של תאים כפולים חיוביים. (ו) שליטה שלילית (נוגדן משני בלבד) עבור שיטת ihc בהקפאה 48 hpf כימראריק דג זברה העובר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59344/59344fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>

פרוטוקול זה ממחיש החיסונית רציפים של האנטי ואימונוהיסטוכימיה על קריודורים מן השלב המוקדם של העוברים ומאפשרים לניתוחי לוקליזציה מדויקים באוכלוסיות תאים ספציפיות.

Investigation of intercellular interactions often requires discrete labeling of specific cell populations and precise protein localization. The zebrafish ...

פרוטוקול זה מדגים הליך חדשני עבור immunofluorescence רציף אימונוהיסטוכימיה על cryosections מן embroys דגי זברה בשלב מוקדם, המאפשר ניתוחי לוקליזציה מדויקת באוכלוסיות תאים ספציפיות. היתרון העיקרי של פרוטוקול זה הוא הגמישות שלו. הוא משלב טכניקות אימונופלואורסצנטיות ואימונוהיסטוכימיה באמצעות קריוסקופיה אחת כדי למקסם את מורפולוגיה של רקמות, לוקליזציה שותף של ביטוי ותאימות נוגדנים.פרוטוקול זה יכול להיות מיושם על דגים אחרים או מודלים אמפיביים כמו חוקרים אלה לעתים קרובות להתמודד עם סיבוכים דומים עם זמינות נוגדנים ולעתים קרובות לבצע סוגים דומים של ניסויים. עבודה עם cryosections עובר בשלב מוקדם יכול להיות מסובך שכן הם קטנים cryosectioning יכול להיות מאתגר, אבל הכנה מתקדמת ותרגול יעזור להקל על כל מאבקים בשיטה זו. ישנם שלבים מרובים בפרוטוקול שלנו הדורשים טיפול וטיפול מסוימים והוא יכול להיות קשה לשלוט מבלי לראות מישהו להדגים את הטכניקות.כדי להתחיל, להעביר הקודם קבוע ומוכן ארבעים ושמונה שעות לאחר הפריה עוברי זברה כימרית מצינור עם 15 25 OCT תערובת לתבנית פלסטיק באמצעות מדפים למזער כל העברה של התערובת. ממלאים את התבנית כמחצית עם מדיום OCT ומערבבים בעדינות את העוברים בה. הכינו תבניות פלסטיק מסומנות והעבירו את העוברים הרצויים לתבניות הפלסטיק הריקות המסומן, תוך מזעור השאיבה של מדיום OCT.ואז בעדינות למלא עם מדיום OCT לראש התבניות עם עוברים. עבודה תחת מיקרוסקופ סטריאו אור עבור הדמיה, להשתמש במחטים כדי לארגן עוברים בכיוון הרצוי. לאחר מכן מניחים את התבניות המוכנות במיכל מבודד עם פלטפורמת מתכת ומקפיאים אותן על קרח יבש.מניחים דלי קרח בעדינות על פלטפורמת המתכת כדי ליצור תא קר להקפיא במשך כ 30 דקות. באמצעות קריוסטט להגדיר מינוס 20 מעלות צלזיוס, לחתוך את העוברים מוטבע 10 כדי 12 micrometer קריוסקופים עבים תוך בדיקת עומק החלק מעת לעת על מיקרוסקופ כדי לפקח על מיקום ורקמות. מניחים את החלקים על מגלשות זכוכית טעונות ואוויר לייבש אותם בטמפרטורת החדר לילה.לשטוף את השקופיות שלוש פעמים במשך חמש דקות ב 1X PBS במיכל מתאים. הניחו את השקופיות על משטח שטוח בתא לח. השתמש בעט מחסום כדי לחלק לרמות את המקטעים כדי לשמור נוזל על השקופיות.פיפטה 200 מיקרוליטרים של מאגר בלוקים לכל מקטע ודגירה במאגר בלוקים למשך שעתיים בטמפרטורת החדר. מכינים את דילול הנוגדנים העיקרי וחוגרים ומערבבים היטב על ידי צינורות. להטות בעדינות את השקופיות כדי לנקז את מאגר הבלוק ולחזור לתא הלח.פיפטה 200 microliters של פתרון נוגדנים ראשוני לכל קטע על השקופיות ו 200 microliters של חיץ בלוק אל החלקים המתאימים כבקרה. הדגירה את המגלשות בארבע מעלות צלזיוס לילה בתא לח מלא במים deionized הקפד לאטום את הקצוות של התא כדי לעזור לשמור על לחות. לשטוף את השקופיות שלוש פעמים במשך חמש דקות ב 1X PBS במיכל מתאים.מכינים את דילול הנוגדנים המשני במהלך הכביסה וחוגרים ומערבבים היטב על ידי צינורות. לאחר הנחת השקופיות על משטח שטוח בתא לח, להוסיף 200 microliters של פתרון נוגדנים משני לכל קטע. הדגירה את המגלשות בתת פתרון נוגדנים משני בטמפרטורת החדר בחושך במשך 30 דקות.לשטוף את השקופיות שלוש פעמים במשך חמש דקות ב 1X PBS במיכל מתאים. לאחר הנחת השקופיות על משטח שטוח, מוסיפים את תטגם הכתמים הגרעיני על כל קטע ומכסים אותו במשך 10 דקות. לאחר ניקוז פתרון הויטראז' הגרעיני, הר את המגלשות עם מדיה פלורסנטית לא מקשיחה ותפתק כיסוי זכוכית.הקפד לשמור אותם בחושך בארבע מעלות צלזיוס עד הדמיה. מניחים את השקופיות במיכלים בודדים עם PBS 1X ולאחסן שטוח בארבע מעלות צלזיוס לילה, תוך תסיסה בעדינות כדי לשחרר את הכיסוי מחליק מספיק כדי שהם ירדו כאשר נסער. הקפד לא ללחוץ על תלוש הכיסוי או לנסות להסיר את החלקת הכיסוי באופן ידני, אך המתן עד שהם יורדים עם תנועה כפויה מינימלית.לאחר הסרת תלושי הכיסוי, העבר בעדינות את השקופיות למיכל עם PBS 1X טרי. הסירו את ה-PBS 1X והדקירו את השקופיות בתמיסת מלח עם חיץ טריס 1X עם 0.1% של חומר שטח לא יוני שלוש פעמים במשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. הדגירה את המגלשות בתסמת מי חמצן של 3% בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות.לאחר מכן להניח את השקופית שטוחה ולהוסיף מאגר בלוק טיפה חכם על פני השטח. הקצה בעדינות את השקופיות כדי לנקז את מאגר החסימות. מייבשים את האזור סביב החלקים ומ מניחים את המגלשות בתא לח.מוסיפים 200 מיקרוליטרים של תותב נוגדנים ראשוני לכל חלק על המגלשות ודגירה בתא לח בארבע מעלות צלזיוס בן לילה. בעדינות להטות את השקופיות כדי לנקז את פתרון הנוגדנים העיקרי לשטוף פעמיים במשך חמש דקות ב 1X TBST. לאחר מכן להחיל מוכן להשתמש ברקע הפחתת חסימת רגנט טיפה חכם לכל קטע, ו דגירה בתא לח בטמפרטורת החדר במשך 20 דקות.הקצה בעדינות את השקופיות כדי לנקז את מאגר החסימות. ייבשו בזהירות את האזור סביב החלקים והצבו את המגלשות שטוחות בתא לח. יש למרוח תסימון נוגדנים משני לכל חלק ולהדגור בתא לח בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות.בעדינות להטות את השקופיות כדי לנקז את פתרון הנוגדנים המשני לשטוף פעמיים במשך חמש דקות ב 1X TBST. לאחר ייבוש האזור סביב המקטעים, מניחים את השקופיות על משטח שטוח ומוסיפים 200 מיקרוליטרים של המצע הכרומוגני HRP לכל מקטע. התחל שעון משנה כאשר המצע הוחל על השקופית הראשונה ודגירה בטמפרטורת החדר במשך שלוש דקות.רוקן את פתרון המצע. שוטפים את השקופיות בקצרה במיכל מתאים עם PBS 1X ולשטוף אותם במים deionized פעמיים במשך חמש דקות עם תסיסה עדינה. נטרל את השקופיות על ידי הצבתן בתווית הכתמת המטוקסילין למשך עד 30 שניות ושטף שלוש פעמים במשך חמש דקות כל אחת במים מיונים.להדק את המגלשות במיכל המכיל טאפווטר של סקוט במשך דקה אחת ולאחר מכן לשטוף שוב שלוש פעמים במשך חמש דקות במים deionized. לייבש את המגלשות דרך סדרה של ציוני אתנול מדולל במים deionized וקצילן במכסה המנוע כימי. לאחר הסרת השקופיות מ xylene מיד להוסיף מדיום הרכבה מבוסס toluene ולהמקם להחליק כיסוי.כדי להבטיח הצלחה בעת כיסוי מחליק, חשוב לעבוד מצד אחד של השקופית לצד השני תוך הורדת לאט את החלקת הכיסוי כדי למנוע בועות אשר לטשטש את הרקמה. לבסוף, דמיינו ודמיין את השקופיות באמצעות מיקרוסקופ אור מורכב ומצלמה דיגיטלית בהגדלה של פי 100. נוגדנים ספציפיים המשמשים כאן לגילוי בו זמנית של תאים מתרבים ותאי תורם שזוהו וכמתו תאים תורמים המתרבים באופן פעיל.לאחר שפעת חיסונית ואימונוהיסטוכימיה חיוני ליצור תמונות באיכות גבוהה על מנת לזהות במדויק תאים בודדים. תוכנית לניתוח תמונות שימשה לביצוע שכבת-על של תמונה. בעת ניסיון הליך זה חשוב ביותר כראוי כתם נגד כתמים שקופיות במהלך אימונוהיסטוכימיה.לאחר הליך זה ניתן לבצע שיטות נוספות כשינויים בפרוטוקול המקורי, כגון שימוש בשילובי נוגדנים שונים, סוגי רקמות או מינים שונים. ניתן גם לנתח תמונות במגוון דרכים להשגת נתונים רלוונטיים. טכניקה זו אפשרה לנו להסתכל על לוקליזציה שותף ורקעים גנטיים מרובים כדרך לחקור אינטראקציות בין תאים לתאים ונוכל ליישם באופן דומה לטכניקות אחרות הדורשות ניתוח מפורט של לוקליזציה.רבים מהריגנטים באימונוהיסטוכימיה מסוכנים ויש לטפל בהם בהתאם. עבודה עם אתנול, קסילן, הרכבה נוקשה צריך להתבצע בשכונה. פסולת DAB יש להיפטר כמו פסולת מסוכנת ושטיפת דואר DAB צריך להיות מולבן.

sequential-immunofluorescence-immunohistochemistry-on-cryosectioned

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

הר שלמים הכלאה באתרו היא אחת הטכניקות הנפוצה ביותר בביולוגיה התפתחותית. כאן, אנו מציגים ברזולוציה גבוהה פלורסנט כפול פרוטוקול הכלאה באתרו לניתוח דפוס הביטוי המדויק של גן יחיד לקביעת חפיפה של תחומים הביטוי של שני גנים. אנו כוללים propidium גרעיני יודיד נגד כתם להדגיש ארגון רקמות.

דג הזברה שלמים הר ברזולוציה גבוהה פעמיים פלורסנט באתרו הכלאה

השיטה מתוארת על photoactivate תאים בודדים המכיל חלבון פלואורסצנטי בכלוב באמצעות שני פוטונים קליטה מתוך טי: לייזר ספיר מתנד femtosecond. כדי למפות גורל התא photoactivated, אימונוהיסטוכימיה משמשת. טכניקה זו יכולה להיות מיושמת לכל סוג תא.

תא בודד הגורל מיפוי של דג הזברה

דרך מהירה לבצע immunostaining לב עוברי דג הזברה הוא תיאר. לעומת הגישה הר שלם immunostaining, שיטה זו מגדילה באופן דרמטי את החדירה של נוגדנים, אשר מאפשר קבלת תמונות ברזולוציה גבוהה החושפים מבנים הסלולר / subcellular בלב תוך זמן עיבוד מופחת בהרבה.

Immunostaining הלב גזור עוברי דג הזברה

שתואר כאן הוא פרוטוקול להדמיה חצי אוטומטית של הקרינה רקמות ספציפיות בעוברי דג הזברה.

הדמיה חצי אוטומטית של הקרינה רקמות ספציפיות בעוברי דג הזברה

עובר דג הזברה הוא מודל מצוין למחקר בביולוגיה התפתחותית. במהלך עובר, דג הזברה מתפתחת עם מסת חלמון, אשר מציבה אתגרים תלת ממדים לתצפית מדגם וניתוח. פרוטוקול זה מתאר כיצד ליצור הכנות הר שטוחות דו ממדים של הר שלם באתרם דגימות (לוואי) מוכתמות דג הזברה עובר.

הר הכנה שטוחה לתצפית וניתוח של עובר דג הזברה דוגמאות ויטראז בהר שלם<em&gt; באתרו</em&gt; הכלאה

הדמיית ההתנהגות הדינמית של אברונים ומבנים תת-תאיים אחרים in vivo יכולה לשפוך אור על תפקודם במצבים פיזיולוגיים ומחלות. כאן, אנו מציגים שיטות לתיוג גנטי של שני אברונים, צנטרוזומים ומיטוכונדריה, והדמיית הדינמיקה שלהם בעוברי דג זברה חיים באמצעות מיקרוסקופיה רחבת שדה וקונפוקלית.

הדמית מבני subcellular בעובר דג הזברה החייה

טכניקות מתוארים כדי immunostain-אפיטופים phospho כולן עוברי דג הזברה ולאחר מכן לנהל לוקליזציה confocal ניאון בשני צבעים במבנים הסלולר קטן כמו cilia העיקרי. טכניקות לתיקון והדמיה יכול להגדיר את המיקום ואת קינטיקה של המראה או הפעלה של חלבונים ספציפיים.

Phospho-אפיטופים Immunostaining באיברים ריסי של עוברי דג הזברה שלמים הר

Immunolabeling שיטות כדי לנתח אוכלוסיות נפרדות של microtubules במוח דג זברה המתפתח מתוארים כאן, אשר חלים באופן נרחב לרקמות אחרות. הפרוטוקול הראשון מתאר שיטה ממוטב עבור immunolabeling microtubules יציבה ודינמית. פרוטוקול השני מספק שיטה כדי התמונה ולכמת nascent microtubules במיוחד.

השימוש Immunolabeling כדי לנתח Microtubules יציב, דינמי, המתהווה של העובר דג זברה

פיתוח cilia חיוני organogenesis נכונה. פרוטוקול זה מתאר שיטת אופטימיזציה תווית, דמיינו תאים ciliated של דג זברה.

להמחיש Multiciliated בתאים דג זברה באמצעות פרוטוקול משולב של פלורסנט הר שלמה בחיי עיר הכלאה, Immunofluorescence

כאן, אנו מציגים פרוטוקול עבור נוגדן הפלורסנט בתיווך זיהוי של חלבונים בהכנות שלמות של עוברי הדגים והזחלים.

כל הר אימונוהיסטוכימיה בזיבפיש עוברים וזחלים

פרוטוקול זה מתאר כיצד להשיג תמונות על ידי שילוב הכלאה באתרו ואימונוהיסטוכימיה של חלקים עובריים של דגי זברה. הכלאה באתרו בוצעה לפני הקפאה, ואחריה הכתמת נוגדנים. כדאי לזהות את דפוסי הביטוי של שני גנים בדגי זברה אם יש מיעוט נוגדנים.

ב Situ הכלאה בשילוב עם אימונוהיסטוכימיה בעוברי דגי זברה Cryosectioned

למד שיטת מרפאוולוגיה רציפה ואימונוהיסטוכימיה על קריוסינות עוברי דג זברה לזיהוי מדויק של אוכלוסיות תאים. שיטה זו משפרת את תאימות הנוגדנים ומורפולוגיית הרקמות למחקר בביולוגיה התפתחותית.

מרפאוולוגיה רציפה ואימונוהיסטוכימיה על קריוסינות עוברי דג

גלה סרטונים נוספים