Name: הכנת תמציות תאים על ידי Cryogrinding במיל מקפיא אוטומטי (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-01-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min
Description: למדו שיטת טחינה קריוגנית להכנת תמציות תאים משמרות שמרים תוך שמירה על שלמות חלבונים. השיטה מבטיחה בידוד מולקולות ביולוגיות פונקציונליות ליישומים בביוכימיה ופרוטאומיקה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחקר במעבדת Gunjan נתמך על ידי מימון של המכונים הלאומיים לבריאות, הקרן הלאומית למדע ומשרד הבריאות של פלורידה. אנו מודים לסטודנט לתואר ראשון ג'ון פרקר על הסיוע הטכני.

1. הכנת פופקורן שמרים
<ol><li>לגדל תאי שמרים ב 0.5 L של מדיה YPD לצפיפות של 1 x 107 תאים / מ"ל. ספירת תאים באמצעות מונה קולטר או בכל אמצעי אחר.</li>
	<li>תאי צנטריפוגה למשך 10 דקות ב- 2,400 גרם ו- 4°C.</li>
	<li>לשטוף כל דגימה פעם אחת עם 500 מ"ל של מים 18 מגה אום מילי-קיו.</li>
	<li>כדורי תפנס ב-15 מ"ל של מאגר ליסיס קר כקרח [20 מ"מ HEPES-KOH pH 7.5, 110 מ"מ KCl, 0.1% טווין, 10% גליסרול, עם סוכן הפחתת נוסף טרי 10 מ"מ β-mercaptoethanol, קוקטייל מעכב פרוטאז, 10 מעכב פרוטאזום μM MG-132, 1 mM מעכב deacetylase נתרן butyrate ומעכבי פוספטאז (1 mM נתרן ונדאט, 50 mM נתרן פלואוריד, 50 m נתרן β-גליצרופוספט)]. לקבלת פרטים נוספים, עיין בטבלת החומרים. שמור תאים מחדש על קרח עד שהדגימות יהיו מוכנות לשלב הבא. הערה: ניתן להשתמש במגוון רחב של מאגרי ליזה המכילים מספר חומרי ניקוי שאינם יוניים עם הדגימות ומעכבים ספציפיים הכלולים בו בהתבסס על יישום במורד הזרם. הכללה של מעכבי פרוטאז ופרוטאסומאל הם קריטיים למניעת השפלה של חלבון, במיוחד לאחר תמציות מופשרים.</li>
	<li>להפוך פופקורן שמרים קפואים הצמד על ידי הוספת מתלה התא לאט טיפה אחת בכל פעם באמצעות פיפטה סרולוגית צונן מראש לתוך אחד או יותר 50 מ"ל צנטריפוגות צינורות נשמר על קרח יבש מלא IN2 עד ממש מתחת למסגרת. למעלה חנקן נוזלי בצינור לעתים קרובות כדי לפצות על אובדנו עקב אידוי מהיר. לעבוד באזור מאוורר היטב כדי למנוע את הסכנות הקשורות לחנק חנקן.<ol>
<li>במקום צינור 50 מ"ל, להשתמש מספר צינורות 50 מ"ל קשורים יחד (או כל מיכל עם פה גדול, כגון בקבוק צנטריפוגה פלסטיק גדול שיכול לסבול טמפרטורות קריוגנית) להכנתפופ-תירס (איור 1A). ככל שהמכל גדול יותר ופתחו, כך קל יותר להתכונן הפופקורן, כי זה מונע גיה"ש של הפופקורן כדי ליצור אגרגטים גדולים. טווח גודל של 0.3-0.5 ס"מ עבור הפופקורן הוא אידיאלי להשגת שחיקה נכונה / pulverization באמצעות טחנת המקפיא(איור 1B).</li>
		<li>ודא כי LN2 התאדה לחלוטין מן הצינורות המכילים את הפופקורן לפני אחסון אותם ב -80 °C. ניתן להפסיק לאחר הכנת פופקורן שמרים כפי שהם יציבים במשך כמה שנים כאשר מתוחזקים ב -80 ° C.</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61164/61164fig01.jpg"> איור 1:הכנת פופקורן שמרים. (א) שמרים "פופקורן" נעשה על ידי הקפאה dropwise של מתלה התא ב LN2. אנו משתמשים בצינורות 50 מ"ל המוחזקים יחד עם גומייה ומונחים בדלי קרח מלא בקרח יבש. הצינורות מלאים ב LN2 עד ממש מתחת למסגרת שלהם הם עטופים חנקן נוזלי לעתים קרובות כדי לשמור אותם כמעט מלא עד כל מתלי התא נעשה פופקורן(ב) הגודל של הפופקורן הוא קובע חשוב של יעילות שחיקה אופטימלית. טווח הגודל של הפופקורן צריך להיות בקוטר של בין 0.3 ל-0.5 ס"מ. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61164/61164fig01large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.</a>
2. קריוגרינדינג
<ol><li>כדי להתחיל, ודא שיש מספיק LN2 זמין כדי לצנן את טחנת המקפיא, לטחון בקבוקונים, אספקה ולהפעיל את המכונה עבור כל הדגימות. עבור פחות מחמש דגימות, 30-35 L של LN2 אמור להספיק. מלאו את תא טחנת המקפיאב-LN 2 עד לקו המילוי. אזהרה: כל הצעדים הכרוכים LN2 צריך להתבצע באזור מאוורר היטב ואת טחנת המקפיא עצמה צריך להיות ממוקם באזור כזה כדי למנוע סיכון של חנק. ללבוש ציוד מגן אישי כולל הנעלה נכונה, חלוק מעבדה, משקפי בטיחות, שכבת בסיס של כפפות ניטריל, אז כפפות תרמיות, ואחריו זוג נוסף של כפפות ניטריל. נקוט זהירות רבה בעת טיפול ב- LN2.</li>
	<li>סגור את מכסה טחנת המקפיא לאט, הימנעות התזה של LN2 ולאפשר כמה דקות עבור המכשיר להתקרר. ייתכן שיהיה צורך למלא את התא עם LN2 כדי לפצות על ההפסד עקב אידוי לפני שתמשיך לשלב הבא. הערה: מלא מחדש LN2 לפי הצורך רק עד לקו המילוי. אל תחפו את התא, כי זה יכול להיות גם מסוכן וגם מזיק למכונה. מערכות מילוי אוטומטיות זמינות עבור טחנת מקפיא שיכולה לחדש את ה-LN2 התאדה כצורך ישירות ממכל אחסון המחובר לטחנת המקפיא.</li>
	<li>טרום לצנן את בקבוקונים שחיקה גדולים ואת בר impactor מגנטי על ידי הטבעתם ב LN2 נשמר dewar קטן נפרד. תשמיד את כל ה-LN2 כאשר ה-LN2 יפסיק לבעבע. לאחר מכן מוסיפים את הפופקורן לדוגמה/שמרים למבחנה השוחקת ולאטום אותו בחוזקה עם שני תקעי קצה נירוסטה.<ol>
<li>אין למלא יותר משליש ממבחנה הטחינה עם המדגם כפי שיכול להפחית את היעילות של שחיקה. במקום זאת, ניתן לעבד דגימות גדולות יותר על-ידי חלוקתן לשני בקבוקונים או יותר וטחינתן באופן רציף. בקבוקונים שחיקה קטנים יותר יכול לשמש עבור דגימות קטנות יותר (עד 3 מ"ל).</li>
	</ol></li>
	<li>מניחים את בקבוקון הטחינה בתא טחנת המקפיא ונעלו אותה במקומה. סגור את המכסה.</li>
	<li>עבור שמרים ניצנים, לטחון את הדגימות עבור סך של שלושה מחזורים עבור 2 דקות / מחזור (עם 2 דקות הפסקה לקירור בין מחזורים) בקצב ריסוק של 14. כאשר המכשיר מפסיק לאחר השלמת המחזורים, לפתוח את מכסה טחנת המקפיא לאט ובזהירות לפתוח את הבקבוקון עם התא הקפוא אבקה lysate ולהסיר אותו מטחנת המקפיא. אם נעשה שימוש בקבוקונים קטנים מרובים, עבוד במהירות כדי להסיר בקבוקון אחד בכל פעם ולמקם אותם בקרח יבש. הערה: בדרך כלל אין צורך להתאים את פרמטרי הטחינה בעת שימוש בקבוקונים בגדלים שונים עם אותו סוג של מדגם. עם זאת, הפרמטרים שחיקה כגון מספר המחזורים וקצב שחיקה צריך להיות נקבע אמפירי עבור סוגי מדגם שונים, בהתאם לקלות שבה הם lyse. רוב התאים היונקים והרקמות הרכות יתכוונו ב-1-2 מחזורים בקצב ריסוק של 10. קשה יותר לריס דגימות כגון חיידקים, שמרים, זחלי זבובים וזבובי פירות בוגרים דורשים 3-6 מחזורים בקצב המרבי, בעוד רקמות קשות כגון עצם, שיניים, וכו 'עשוי לדרוש עד 10 מחזורים. aliquot קטן של מדגם הפשרה ניתן לראות תחת המיקרוסקופ לפני ואחרי שחיקה לספור את מספר שלמים, תאים unlysed כדי לקבוע את יעילות lysis. ניתוח מצוין של ההשפעה של פרמטרים cryogrinding על שחרור חלבונים ו-DNA שמרים ניצנים פורסם בעבר15.</li>
	<li>עובד במהירות כדי לא לאפשר את המדגם להפשיר, בזהירות לפתוח את אחד החלקים הסופיים (לבחור את אחד שנראה להיות רופף במקצת במהלך השחיקה) באמצעות כלי הפתיחה. לאחר מכן, השתמשו בזוג מפסים ארוכים (שמצוננים מראש בדלי עם קרח יבש) כדי להסיר את סרגל המשפיעים. לאסוף את הדגימה מרוסקת על ידי היפוך והקשה על בקבוקון שחיקה על צלחת פוליסטירן במשקל מקורר מראש עם LN2 ונותר על קרח יבש.</li>
	<li>לאחר שכל התא הקפוא אבקת lysate כבר התאושש בקבוקון שחיקה, לשפוך את אבקת lysate מן הצלחת שקילה בחזרה לתוך צינור 50 מ"ל ולהמשיך מיד לשלב הפשרה האיטי המתואר הבא לקבלת התוצאות הטובות ביותר. לחלופין, יש לאחסן את האבקה הקפואה הלת-מקפיאה למשך הלילה ב-80 מעלות צלזיוס, אם כי הדבר עלול לגרום להשפלה מסוימת.</li>
	<li>מכינים דלי קרח עם 50% של קרח ומים ומים ומניחים אותו על צלחת ערבוב עם ערבוב מגנטי. לשקוע מתלה תיל או מתלה מתאים אחר בהבלל קרח להחזיק את הדגימות.<ol>
<li>לאחר מכן, להפשיר לאט את הדגימות על אמבט slurry קרח עם תסיסה מתמדת של slurry באמצעות ערבוב מגנטי. הוסף קרח נוסף כדי להחליף את הקרח הנמס (ייתכן שיהיה צורך להשליך מים מסוימים כדי למנוע את הצפת דלי הקרח). מאז כמה מעכבים יש מחצית חיים קצרים במאגרים מים, להוסיף קוקטייל מעכב פרוטאז נוסף (ראה טבלת חומרים)ו 10 מעכב פרוטאזום μM MG-132 כדי lysate ברגע הדגימות להתחיל להפשיר (לאחר כ 30 דקות).</li>
		<li>הסר קרח שנוצר מחוץ לצינורות כל 5 דקות כדי לזרז את תהליך ההפשרה. שים לב כי הפשרה מהירה של הדגימות בטמפרטורת החדר ומעלה עלולה להוביל לירידה משמעותית.</li>
	</ol></li>
	<li>לאחר הדגימות הפשירו לחלוטין (זה עשוי לקחת הרבה יותר משעה בהתאם לכמות המדגם), צנטריפוגה lysate ב ~ 3,220 גרם במשך 20 דקות צנטריפוגה שולחן קירור ב 4 מעלות צלזיוס כדי להסיר את החלק הארי של פסולת התא מן lysate.</li>
	<li>מעבירים את הסופרנט ל-50 מ"ל צינורות צנטריפוגות פוליקרבונט שצינן מראש על קרח וצנטריפוגות הדגימות ב-16,000 גרם למשך 20 דקות ב-4°C (ראה טבלת חומרים).</li>
	<li>מעבירים רק את הסופרנט הברור המורכב מתמצית התא כולו המובהרת ממרכז העמודה הנוזלית בצינור לאט ובזהירות רבה, מבלי להפריע לשכבת הליפידיםהמעורפלת (איור 2), לצינורמקורר של 15 מ"ל באמצעות פיפטות סרולוגיות צוננות מראש. הימנע מהסרת כל lysate בצינור הצנטריפוגה כדי למנוע נשיאה של שומנים ופסולת. שאריות lysate בצינור צנטריפוגה ניתן צנטריפוגה מספר פעמים כדי לשחזר כמויות קטנות של תמצית לאחר כל סיבוב. הערה: שומנים יחד עם כל חלבונים denatured יופיע מעונן / חלבי ממוקמים בראש ממשק נוזלי / אוויר, ומדי פעם מעל הגלולה עצמה המורכב פסולת תאית מסיסה(איור 2).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61164/61164fig02.jpg"> איור 2: לחלץ שכבות בצינור צנטריפוגה. התכונות הגלויות העיקריות של תמצית התא כולו בצינור בעקבות צנטריפוגציה ב 16,000 גרם עבור 20 דקות מצוינים. השפע היחסי של כל תכונה תלוי בסוג המדגם, שלב הצמיחה של התאים (מעריכי לעומת נייח), כמות מאגר הליזה המשמש לשימוש חוזר בתאים ויעילות הליזה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61164/61164fig02large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.</a>
<ol start="12"><li>צנטריפוגה כל ליאז הנותרים במשך 5 דקות כדי לשחזר יותר של התמצית. חזור על זה 5 דקות צנטריפוגציה מספר פעמים במידת הצורך כדי לשחזר כמה שיותר תמצית ברורה ככל האפשר. השליכו את הליזיט מעונן המכיל שומנים קרוב לתחתית הצינור ליד הגלולה.</li>
	<li>השתמש בתמציות אלה עבור יישומים במורד הזרם כגון טיהור מורכב חלבון, פירוק מערכת החיסון וניתוח פרוטאומי.</li>
</ol>

<ol><li>Botstein, D., Chervitz, S. A., Cherry, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yeast+as+a+model+organism%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Yeast as a model organism.</a> Science. 277 (5330), 1259-1260 (1997).</li>
<li>Dunn, B., Wobbe, C. R. Preparation of protein extracts from yeast. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDunn%2C+B+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22">Current Protocols in Molecular Biology</a>. , Chapter 13, Unit 13 (2001).</li>
<li>Holm, C., Meeks-Wagner, D. W., Fangman, W. L., Botstein, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid%2C+efficient+method+for+isolating+DNA+from+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">A rapid, efficient method for isolating DNA from yeast.</a> Gene. 42 (2), 169-173 (1986).</li>
<li>Nandakumar, M. P., Marten, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+lysis+methods+and+preparation+protocols+for+one-+and+two-dimensional+electrophoresis+of+Aspergillus+oryzae+intracellular+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Comparison of lysis methods and preparation protocols for one- and two-dimensional electrophoresis of Aspergillus oryzae intracellular proteins.</a> Electrophoresis. 23 (14), 2216-2222 (2002).</li>
<li>Silva, G. A. D., Bernardi, T. L., Schaker, P. D. C., Menegotto, M., Valente, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+yeast+DNA+extraction+by+boiling+and+freeze-thawing+without+using+chemical+reagents+and+DNA+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Brazilian+Archives+of+Biology+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Rapid yeast DNA extraction by boiling and freeze-thawing without using chemical reagents and DNA purification.</a> Brazilian Archives of Biology and Technology. 55, 319-327 (2012).</li>
<li>Baldwin, C., Robinson, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+Saccharomyces+cerevisiae+using+enzymatic+lysis+combined+with+high-pressure+homogenization%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+Techniques%22%5BJournal%5D)">Disruption of Saccharomyces cerevisiae using enzymatic lysis combined with high-pressure homogenization.</a> Biotechnology Techniques. 4 (5), 329-334 (1990).</li>
<li>Rigaut, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+generic+protein+purification+method+for+protein+complex+characterization+and+proteome+exploration%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">A generic protein purification method for protein complex characterization and proteome exploration.</a> Nature Biotechnology. 17 (10), 1030-1032 (1999).</li>
<li>Hudspeth, M. E., Shumard, D. S., Tatti, K. M., Grossman, L. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+purification+of+yeast+mitochondrial+DNA+in+high+yield%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Rapid purification of yeast mitochondrial DNA in high yield.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 610 (2), 221-228 (1980).</li>
<li>Szymanski, E. P., Kerscher, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Budding+yeast+protein+extraction+and+purification+for+the+study+of+function%2C+interactions%2C+and+post-translational+modifications%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Budding yeast protein extraction and purification for the study of function, interactions, and post-translational modifications.</a> Journal of Visualized Experiments. (80), e50921(2013).</li>
<li>Bzducha-Wróbel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+efficiency+of+different+disruption+methods+on+yeast+cell+wall+preparation+for+%CE%B2-glucan+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the efficiency of different disruption methods on yeast cell wall preparation for β-glucan isolation.</a> Molecules. 19 (12), 20941-20961 (2014).</li>
<li>Umen, J. G., Guthrie, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+role+for+a+U5+snRNP+protein+in+3%27+splice+site+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+%26+Development%22%5BJournal%5D)">A novel role for a U5 snRNP protein in 3' splice site selection.</a> Genes & Development. 9 (7), 855-868 (1995).</li>
<li>Smith, B. C., Fisher, D. L., Weedn, V. W., Warnock, G. R., Holland, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+systematic+approach+to+the+sampling+of+dental+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Forensic+Sciences%22%5BJournal%5D)">A systematic approach to the sampling of dental DNA.</a> Journal of Forensic Sciences. 38 (5), 1194-1209 (1993).</li>
<li>Sweet, D., Hildebrand, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+DNA+from+human+teeth+by+cryogenic+grinding%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Forensic+Sciences%22%5BJournal%5D)">Recovery of DNA from human teeth by cryogenic grinding.</a> Journal of Forensic Sciences. 43 (6), 1199-1202 (1998).</li>
<li>Lorenz, W. W., Yu, Y. S., Dean, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+of+RNA+isolation+from+loblolly+pine+%28P.+taeda+L.%29+and+other+conifer+species%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">An improved method of RNA isolation from loblolly pine (P. taeda L.) and other conifer species.</a> Journal of Visualized Experiments. (36), e1751(2010).</li>
<li>Singh, M. R., Roy, S., Bellare, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+Cryogenic+Grinding+on+Release+of+Protein+and+DNA+from+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Food+Engineering%22%5BJournal%5D)">Influence of Cryogenic Grinding on Release of Protein and DNA from Saccharomyces cerevisiae.</a> International Journal of Food Engineering. 5 (1), (2009).</li>
<li>Singh, R. K., Kabbaj, M. H., Paik, J., Gunjan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+levels+are+regulated+by+phosphorylation+and+ubiquitylation-dependent+proteolysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Histone levels are regulated by phosphorylation and ubiquitylation-dependent proteolysis.</a> Nature Cell Biology. 11 (8), 925-933 (2009).</li>
<li>Liang, D., Burkhart, S. L., Singh, R. K., Kabbaj, M. H., Gunjan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+dosage+regulates+DNA+damage+sensitivity+in+a+checkpoint-independent+manner+by+the+homologous+recombination+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Histone dosage regulates DNA damage sensitivity in a checkpoint-independent manner by the homologous recombination pathway.</a> Nucleic Acids Research. 40 (19), 9604-9620 (2012).</li>
<li>Singh, R. K., Gonzalez, M., Kabbaj, M. H., Gunjan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+E3+ubiquitin+ligases+that+regulate+histone+protein+levels+in+the+budding+yeast+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Novel E3 ubiquitin ligases that regulate histone protein levels in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae.</a> PLoS One. 7 (5), 36295(2012).</li>
<li>Gunjan, A., Verreault, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Rad53+kinase-dependent+surveillance+mechanism+that+regulates+histone+protein+levels+in+S.+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A Rad53 kinase-dependent surveillance mechanism that regulates histone protein levels in S. cerevisiae.</a> Cell. 115 (5), 537-549 (2003).</li>
<li>Gill, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+remains+of+the+Romanov+family+by+DNA+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Identification of the remains of the Romanov family by DNA analysis.</a> Nature Genetics. 6 (2), 130-135 (1994).</li>
<li>Alain, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+extractions+from+deep+subseafloor+sediments%3A+novel+cryogenic-mill-based+procedure+and+comparison+to+existing+protocols%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microbiological+Methods%22%5BJournal%5D)">DNA extractions from deep subseafloor sediments: novel cryogenic-mill-based procedure and comparison to existing protocols.</a> Journal of Microbiological Methods. 87 (3), 355-362 (2011).</li>
<li>Mohammad, F., Buskirk, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+Ribosome+Profiling+in+Bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Bio-Protocol%22%5BJournal%5D)">Protocol for Ribosome Profiling in Bacteria.</a> Bio-Protocol. 9 (24), 3468(2019).</li>
<li>Liew, Y. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+microRNAs+in+the+coral+Stylophora+pistillata%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Identification of microRNAs in the coral Stylophora pistillata.</a> PLoS One. 9 (3), 91101(2014).</li>
<li>Lopez de Heredia, M., Jansen, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+integrity+as+a+quality+indicator+during+the+first+steps+of+RNP+purifications%3A+a+comparison+of+yeast+lysis+methods%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biochem%22%5BJournal%5D)">RNA integrity as a quality indicator during the first steps of RNP purifications: a comparison of yeast lysis methods.</a> BMC Biochem. 5 (14), (2004).</li>
<li>Grant, L. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purified+plant+cell+walls+with+adsorbed+polyphenols+alter+porcine+faecal+bacterial+communities+during+in+vitro+fermentation%5BTitle%5D)+AND+%22Food+%26+Function%22%5BJournal%5D)">Purified plant cell walls with adsorbed polyphenols alter porcine faecal bacterial communities during in vitro fermentation.</a> Food & Function. 11 (1), 834-845 (2020).</li>
<li>Lolo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryogenic+grinding+pre-treatment+improves+extraction+efficiency+of+fluoroquinolones+for+HPLC-MS%2FMS+determination+in+animal+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+and+Bioanalytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Cryogenic grinding pre-treatment improves extraction efficiency of fluoroquinolones for HPLC-MS/MS determination in animal tissue.</a> Analytical and Bioanalytical Chemistry. 387 (5), 1933-1937 (2007).</li>
<li>Santos, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+Cd+and+Pb+in+food+slurries+by+GFAAS+using+cryogenic+grinding+for+sample+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+and+Bioanalytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Determination of Cd and Pb in food slurries by GFAAS using cryogenic grinding for sample preparation.</a> Analytical and Bioanalytical Chemistry. 373 (3), 183-189 (2002).</li>
<li>da Silva, E. G. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+method+for+the+determination+of+copper%2C+manganese+and+iron+in+seafood+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Food+Composition+and+Analysis%22%5BJournal%5D)">Fast method for the determination of copper, manganese and iron in seafood samples.</a> Journal of Food Composition and Analysis. 21 (3), 259-263 (2008).</li>
<li>Kamogawa, M. Y., Nogueira, A. R. A., Costa, L. M., Garcia, E. E., Nobrega, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+strategy+for+preparation+of+hair+slurries+using+cryogenic+grinding+and+water-soluble+tertiary-amines+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Spectrochimica+Acta+Part+B-Atomic+Spectroscopy%22%5BJournal%5D)">A new strategy for preparation of hair slurries using cryogenic grinding and water-soluble tertiary-amines medium.</a> Spectrochimica Acta Part B-Atomic Spectroscopy. 56 (10), 1973-1980 (2001).</li>
<li>Sillen, A., Hall, G., Richardson, S., Armstrong, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sr-87%2FSr-86+ratios+in+modern+and+fossil+food-webs+of+the+Sterkfontein+Valley%3A+Implications+for+early+hominid+habitat+preference%5BTitle%5D)+AND+%22Geochimica+Et+Cosmochimica+Acta%22%5BJournal%5D)">Sr-87/Sr-86 ratios in modern and fossil food-webs of the Sterkfontein Valley: Implications for early hominid habitat preference.</a> Geochimica Et Cosmochimica Acta. 62 (14), 2463-2473 (1998).</li>
<li>Nielsen-Marsh, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+preservation+of+osteocalcin+protein+and+mitochondrial+DNA+in+bison+bones+older+than+55+ka%5BTitle%5D)+AND+%22Geology%22%5BJournal%5D)">Sequence preservation of osteocalcin protein and mitochondrial DNA in bison bones older than 55 ka.</a> Geology. 30 (12), 1099-1102 (2002).</li>
</ol>

לסופרים אין מה לחשוף.

מגבלה של לימוד חלבונים מקומיים שמרים היא התסיסה הלא יעילה של תאי שמרים בשל קיר התא הקשה שלהם. למרות שפותחו מספר שיטות, השיטה העקבית והיעילה ביותר בידיים שלנו היא cryogrinding של תאי שמרים פלאש קפוא כמו פופקורן. שיטה זו מאפשרת הכנה אמינה של תמציות תאים שלמים באיכות גבוהה שמרים ניצנים בהשוואה לשיטות ליזיס אחרות. התוצאות המייצגות הראו כי קריוגרינדה עדיפה על שיטה מכנית פופולרית לליזיס שמרים המעסיקה כרסום חרוזים ב-4°C (איור 3A ו-3B). Cryogrinding ביעילות lysses תאי שמרים בעוד הדג...

שמרים הוא אורגניזם מודל פופולרי עבור מחקרי חלבון, כפי שהוא אורגניזם אאוקריוטי פשוט עם שפע של כלים גנטיים וביוכימיים זמינים עבורחוקרים 1. בשל קיר התאים היתון שלהם, אחד האתגרים העומדים בפני החוקרים הוא בהתפלה יעילה של התאים מבלי לפגוע בתכולת התא. שיטות שונות זמינות לקבלת תמציות חלבון באמצעות שיבוש של תאי שמרים הכוללים אנזימה (zymolyase)2,3, ליזיסכימי 4, ליזיס פיזי על ידי הקפאתהפשרה 5, מבוסס לחץ(עיתונותצרפתית) 6,7 ,מכני (חרוזיזכוכית, מטחנתקפה) 8,9, sonication מבוסס10 ו cryogenic2,11. היעילות של ליזיס התא ותפוקת החלבון יכולה להשתנות במידה ניכרת בהתאם לטכניקה המועסקת, ובכך להשפיע על התוצאה הסופית או על התאמת היישום במורד הזרם הרצוי עבור lysate. כאשר לומדים חלבונים לא יציבים, יש שינויים לאחר התרגום חולף, או רגישים לטמפרטורה, חשוב במיוחד להשתמש בשיטה שתמזער אובדן או ירידה במדגמים במהלך ההכנה.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>טכניקת הכנת חילוץ</td>
			<td>פרטים</td>
			<td>יתרונות</td>
			<td>חסרונות</td>
			<td>ניתוח במורד הזרם</td>
			<td>הפניה</td>
		</tr><tr><td>עיתונות צרפתית: הומוגניזר בלחץ גבוה (aka Microfluidizer) עם טיפול נזימטי באמצעות Zymolyase</td>
			<td>זימוליז-20T, הומוגניזר מיקרופלוייזר בלחץ גבוה. המשבש מורכב משאבה אוויר מונחה, בלחץ גבוה (יחס 1:250; נדרש לחץ אוויר 0.6-l MPa) ותא שיבוש מיוחד עם יחידת לחץ גב נוספת. גודל מדגם מינימלי של 20 מ"ל נדרש לעיבוד.</td>
			<td>השיבוש הכולל הסופי שהושג באמצעות הפרוטוקול המשולב התקרב 100 % עם 4 עובר בלחץ של 95 MPa, לעומת רק 32 % שיבוש עם 4 עובר ב 95 MPa באמצעות הומוגניזציה בלבד ללא Zymolyase.</td>
			<td>אינו מתאים ליישומים בקנה מידה קטן. האנזימים יכולים להיות יקרים להכנות בקנה מידה גדול.</td>
			<td>טיהור חלבונים</td>
			<td>6</td>
		</tr><tr><td>מכה חרוז: תאים שטופלו Zymolyase lysed עם חרוזי זכוכית במכשיר fastprep</td>
			<td>בערך נפח שווה של קר, יבש, חומצה שטף 0.5 מ"מ זכוכית חרוזים מתווסף נפח נתון של כדורי תא במאגר lysis ואת התאים משובשים על ידי תסיסה ידנית נמרצת.</td>
			<td>זה שימושי במיוחד בעת ביצוע תמציות מתרבויות שמרים קטנות רבות ושונות למטרות ציון ולא לטיהור חלבונים.</td>
			<td>במהלך הליך חרוז זכוכית, חלבונים מטופלים בחומרה גרימת קצף נרחב המוביל denaturation חלבון. כמות שבירה תאים משתנה, בעוד proteolysis, כמו גם שינוי של החלבונים עשויים לנבוע חימום של התמצית מעל 4 מעלות צלזיוס במהלך השבירה מכנית.</td>
			<td>בעיקר DNA & RNA מנתח, אבל גם ניתוח חלבון על ידי denaturing ג'ל electropheoresis, עם או בלי כתמים מערביים.</td>
			<td>8</td>
		</tr><tr><td>טיפול Zymolyase ואחריו lysis באמצעות שילוב של הלם אוסמוטי הומוגניזציה Dounce</td>
			<td>לאחר עיכול אנזימטי של קירות התא, spheroplasts הם lysed עם 15 כדי 20 משיכות של עלי הדוק (סיווג 1 עד 3 μm) ב homogenizer Dounce.</td>
			<td>יתרון לשימוש זנים protease לקוי כגון BJ926 או EJ101. זוהי הדרך העדינה ביותר לשבור תאי שמרים ולכן היא מתאימה ביותר להכנת תמציות שיכולות לבצע פונקציות אנזימטיות מורכבות (למשל, תרגום, שעתוק, שכפול DNA) ולכן יש לשמור על שלמות המבנים המקרומולקולריים (למשל, ריבוזומים, חביות). זה גם שימושי לבידוד גרעינים שלמים שניתן להשתמש בהם עבור מחקרי כרומטין (בלום ופחמן, 1982) או עבור תמציות חלבון גרעיני (לו וקורנברג, 1987).</td>
			<td>החסרונות העיקריים של הליך הליזה spheroplast הם שזה מיגע ויקר יחסית, במיוחד עבור הכנות בקנה מידה גדול (>10 ליטר), ותקופות הדגירה הארוכות יכול להוביל פרוטאוליזה או שינוי חלבון.  עבור תכשירים כרומטין, הם נראים באיכות משתנה או נמוכה יותר מאלה המיוצרים על ידי צנטריפוגה דיפרנציאלית (מבוסס על שלמות סולם נוקלאוזום).</td>
			<td>בידוד גרעינים שלמים עבור מחקרי כרומטין, תמציות שיכולות לבצע פונקציות אנזימטיות מורכבות, תמציות הדורשות את שלמות מבנים מקרומולקולריים, תמציות חלבון גרעיני.</td>
			<td>2</td>
		</tr><tr><td>שיבוש תאים של תאים קפואים פלאש על ידי שחיקה חנקן נוזלי באמצעות מרגמה / עלי או בלנדר</td>
			<td>תאים קפואים מיד בחנקן נוזלי ולאחר מכן lysed על ידי שחיקה ידנית במרגמה באמצעות עלי, או באמצעות בלנדר Waring בנוכחות חנקן נוזלי.</td>
			<td>הפרוטוקול מהיר וקל. זה יכול להכיל כמויות שונות של תאי שמרים כולל תרבויות גדולות מאוד. היתרון העיקרי שלה הוא כי תאים נלקחים באופן מיידי מהמדינה הגדלה באופן פעיל לתוך חנקן נוזלי (-196 ° C), הפחתת פעילויות אנזימים משפילים כגון פרוטאזים וגרעין, כמו גם פעילויות לשנות חלבונים (למשל, פוספטאזים וkinases). הוא מתאים במיוחד להכנת תמציות תאים שלמים מתרבות שמרים אחת לטיהור חלבונים בקנה מידה גדול.</td>
			<td>קצת מבולגן ועלול להיות מסוכן לחוקר רשלני. דגימות קטנות (כלומר, 10- עד 100 מ"ל שמרים תרביות) אינן מעובדות בקלות כי אין מספיק מסה של גושי תאים קפואים כדי לשבור ביעילות בבלנדר. זה זמן רב כדי לעבד דגימות בודדות ולנקות את הציוד בין שימושים.</td>
			<td>תמציות תאים שלמים מתרבות שמרים אחת לטיהור חלבונים בקנה מידה גדול.</td>
			<td>2</td>
		</tr><tr><td>תסיסה אוטומטית, טחנת חרוזים</td>
			<td>pH 5.0, 50 °C, 24 שעות, 200 סל"ד / Ø 0.5 מ"מ, 5 × 3 דקות/3 דקות</td>
			<td>תמצית מהירה ויעילה, במיוחד להכנת תמצית בקנה מידה קטן</td>
			<td>יצירת חום מובילה לפירוק והשפלה של מקרומולקולות. נדרש ציוד מכות חרוזים.</td>
			<td>ניתוחים בקנה מידה קטן.</td>
			<td rowspan="2">10</td>
		</tr><tr><td>אוטוליזה, Sonication</td>
			<td>pH 5.0, 50°C, 24 שעות, 200 סל"ד, 4 × 5 דקות/2 דקות, פולס 80%, הספק 80%</td>
			<td>ציוד Sonication זמין בדרך כלל ברוב המוסדות.</td>
			<td>יצירת חום מובילה לפירוק והשפלה של מקרומולקולות. נדרש ציוד Sonication. האטה איטית יכולה להימשך יותר מ-24 שעות.</td>
			<td>הכנות קיר תא שמרים.</td>
		</tr><tr><td>תהליך הרתיחה והקפאת ההפשרה</td>
			<td>אין צורך בציוד מיוחד מלבד מקפיא סטנדרטי ובלוק חימום או אמבט מים חמים.</td>
			<td>יעיל, ניתן לשחזור, פשוט ולא יקר.</td>
			<td>יצירת חום מובילה לפירוק והשפלה של מקרומולקולות.</td>
			<td>ניתוחי די.אן.איי על ידי פי.סי.איי.</td>
			<td>5</td>
		</tr></tbody></table>טבלה 1: השוואת שיטות זמינות להכנת תמציות שמרים.
Cryogrinding (aka טחינה cryogenic / כרסום cryogenic) מועסק בדרך כלל כדי לאחזר חומצות גרעין, חלבונים או כימיקלים מדגימות רגישות לטמפרטורה באופן אמין לניתוחים כמותיים או איכותיים. הוא שימש בהצלחה עבור יישומים מרובים בתחומים מגוונים כולל ביוטכנולוגיה, טוקסיקולוגיה,מדע זיהוי פלילי 12,13, מדעי הסביבה, ביולוגיה צמח14 ומדעי המזון. בידוד של מקרומולקולות ביולוגיות שלמות תלוי בדרך כלל באופן קריטי בטמפרטורה. טמפרטורות נמוכות מאוד להבטיח כי proteases ו nucleases להישאר פעיל, וכתוצאה מכך בידוד אמין של חלבונים שלמים, חומצות גרעין ומקרומולקולות אחרות לניתוחים הבאים. אכן, טחנת מקפיא בדרך כלל שומרת על טמפרטורת מדגם של -196 °C (נקודת הרתיחה של LN2),ובכך למזער DNA / RNA או ירידה בחלבון והשפלה.
טחנת המקפיא משתמשת בתא שחיקה אלקטרומגנטי שמזיז במהירות מוט מתכת מוצק או גליל הלוך ושוב בתוך בקבוקון המכיל את הדגימה כדי להיות מרוסק בין אטמי קצה נירוסטה. המכשיר יוצר והופך במהירות שדה מגנטי בתוך תא הטחינה. כאשר השדה המגנטי נע הלוך ושוב, המגנט מוחץ את הדגימה כנגד התקעים ובכך משיג את ה"קריוגרינדינג" ואת הריסת הפופקורן. טחנת המקפיא מחליפה את המרגמה והעלי ומאפשרת עיבוד רציפה של דגימות מרובות (או עד 4 דגימות קטנות יותר בו-זמנית) עם יכולת רבייה גבוהה ומומנעת את השונות של המשתמש למשתמש הקשורה לטחינה ידנית. לאחר עיבוד הדגימות, ניתן להשתמש בתמציות התא עבור מגוון יישומים במורד הזרם.

<table><tbody><tr><td>צינורות פוליקרבונט 50 מ"ל עם מכסי בורג</td><td>בקמן</td><td>357002</td><td>צינורות צנטריפוגה</td></tr><tr><td>BD Bacto Peptone</td><td>BD Biosiences</td><td>211677</td><td>שמרים YPD רכיב</td></tr><tr><td>מדיה BD Bacto תמצית שמרים</td><td>BD Biosiences</td><td>212750</td><td>שמרים YPD רכיב מדיה</td></tr><tr><td>בקמן אוונטי</td><td>בקמן</td><td>B38624</td><td>צנטריפוגה במהירות גבוהה</td></tr><tr><td>בקמן JLA-9.1000</td><td>בקמן</td><td>366754</td><td>רוטור</td></tr><tr><td>D-(+)-דקסטרוז</td><td>נטול מים MP ביו-רפואי</td><td>901521</td><td>שמרים רכיב מדיה YPD</td></tr><tr><td>Eppendorf A-4-44</td><td>Eppendorf</td><td>22637461</td><td>רוטור דלי מתנדנד</td></tr><tr><td>צנטריפוגה מקוררת Eppendorf 5810 R</td><td>Eppendorf</td><td>22625101</td><td>צנטריפוגה מקוררת</td></tr><tr><td>גליצרול</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>G5150-1GA</td><td>מדיר נפח ומחמיר</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>FisherBiotech</td><td>BP310-100</td><td>חוצץ</td></tr><tr><td>נוגדן HIS6</td><td>Novagen</td><td>70796</td><td>נוגדן לתגית HIS</td></tr><tr><td>KCl</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P9541-1KG</td><td>מלח לשמירה על חוזק יוני</td></tr><tr><td>MG-132</td><td>CALBIOCHEM</td><td>474790</td><td>מעכב פרוטאזום</td></tr><tr><td>קוקטייל מעכב פוספטאז ThermoFisher</td><td> Scientific</td><td>A32957</td><td>קוקטייל מעכב פוספטאז</td></tr><tr><td>Ponceau S</td><td>SIGMA</td><td>P7170-1L</td><td></td></tr><tr><td>קוקטייל מעכב פרוטאז</td> כתמי חלבון <td>ThermoFisher Scientific</td><td>A32963</td><td>קוקטייל מעכב פרוטאז</td></tr><tr><td>רוטור JLA 25.500</td><td>בקמן</td><td>JLA 25.500</td><td>רוטור</td></tr><tr><td>נתרן בוטיראט</td><td>EM Science</td><td>BX2165-1</td><td>מעכב היסטון דאצטילאז</td></tr><tr><td>נתרן פלואוריד</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S6521</td><td>מעכב פוספטאז</td></tr><tr><td>נתרן ואנדאט</td><td>MP ביו-רפואי</td><td>159664</td><td>מעכב פוספטאז</td></tr><tr><td>נתרן ובטא;-גליצרופוספט</td><td>אלפא Aesar</td><td>13408-09-8</td><td>מעכב פוספטאז</td></tr><tr><td>Spex Certiprep 6850 טחנת מקפיא</td><td>SPEX מדגם הכנה</td><td>6850</td><td>טחנת מקפיא</td></tr><tr><td>TALON Metal Affinity שרף</td><td>BD Biosiences</td><td>635502</td><td>למשיכת חלבונים מתויגים HIS</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>VWR International</td><td>VW1521-07</td><td>חומר ניקוי לא יוני</td></tr> <tr><td>ובטא;-מרקפטואתנול</td><td>AMRESCO</td><td>M131-250ML</td><td>חומר הפחתה</td></tr></tbody></table>

הכנת תמציות תאים על ידי cryogrinding במיל מקפיא אוטומטי

Preparation of Cell Extracts by Cryogrinding in an Automated Freezer Mill

הקלות של מניפולציה גנטית ושימור אבולוציוני חזק של מכונות תאיות אאוקריוטיות שמרים ניצנים Saccharomyces cerevisiae הפך אותו אורגניזם מודל גנטי טרום תוה. עם זאת, מכיוון שבידוד חלבון יעיל תלוי בשיבוש אופטימלי של תאים, השימוש ב שמרים לניתוח ביוכימי של חלבונים תאיים נפגע על ידי קיר התא שלו שהוא יקר לעיכול אנזימטי (באמצעות lyticase או zymolyase), וקשה לשבש מכנית (באמצעות מקף חרוזים מסורתי, עיתונות צרפתית או מטחנת קפה) מבלי לגרום לחימום של דגימות, אשר בתורו גורם לפירוק חלבון והשפלה. למרות שחיקה ידנית של תאי שמרים תחת חנקן נוזלי (LN2) באמצעות מרגמהועלי מונע התחממות יתר של דגימות, זה עבודה אינטנסיבית וכפוף לשונות בתא lysis בין המפעילים. במשך שנים רבות, אנחנו כבר בהצלחה הכנת תמציות שמרים באיכות גבוהה באמצעות cryogrinding של תאים במפעל מקפיא אוטומטי. הטמפרטורה של -196 °C שהושגה עם השימוש LN2 מגן על החומר הביולוגי מפני השפלה על ידי פרוטאזים וגרעין, המאפשר אחזור של חלבונים שלמים, חומצות גרעין ומקרומולקולות אחרות. כאן אנו מתארים טכניקה זו בפירוט עבור תאי שמרים ניצנים אשר כרוך הראשון הקפאת השעיה של תאים במאגר lysis דרך תוספת dropwiseשלה לתוך LN 2 כדי ליצור טיפות קפואות של תאים המכונה "פופקורן". פופקורן זה הוא מרוסק לאחר מכן תחת LN2 במפעל מקפיא כדי ליצור קפוא "אבקה" לחלץ אשר מופשר לאט והבהיר על ידי צנטריפוגה כדי להסיר פסולת מסיסה. תמציות וכתוצאה מכך מוכנים ליישומים במורד הזרם, כגון טיהור חלבון או חומצה נוקלית, ניתוחים פרוטאומיים, או מחקרים שיתוף ערך חיסוני. טכניקה זו ישימה באופן נרחב להכנת תמצית תאים ממגוון של מיקרואורגניזמים, רקמות צמחים ובעלי חיים, דגימות ימיות כולל אלמוגים, כמו גם בידוד DNA/RNA מדגימות מאובנים משפטיות ואדמה.

השווינו שתי שיטות שונות לליזיס תאי שמרים, כל כך כרסום חרוזי זכוכית ב-4°C ושיטת קריוגרינה אוטומטית ב-196°C, כדי להעריך את חלבוני ההחלמה היחסית בתמציות התא שהוכנו בשתי השיטות. עבור מחקר זה, בחרנו להשתמש בזן שמרים ניצנים YAG 1177 (MAT lys2-810 leu2-3,-112 ura3-52 his3-Υ 200 trp1-1[am] ubi1-1::TRP1 ubi2-Υ2::ura3 ubi3-ura3-ubi3-ura316 נושאת פלסמיד בעל עותק גבוה המבטא טנדם HIS-MYC מתויג Ubiquitin (HIS-MYC-Ub) כדי שנוכל להעריך את היעילות של שחזור של חלבונים מתויגים בכל מק...

אנו מתארים שיטה אמינה להכנת תמציות תאים שלמים שמרים או תאים אחרים באמצעות טחנת מקפיא cryogenic הממזערת השפלה והשפלה של חלבונים. תמציות התא מתאימות לטיהור של תסביכי חלבון פונקציונליים, ניתוחים פרוטאומיים, מחקרים לפירוק חיסוני וזיהוי שינויים בחלבון labile.

הכנת תמציות תאים על ידי Cryogrinding במיל מקפיא אוטומטי

The ease of genetic manipulation and the strong evolutionary conservation of eukaryotic cellular machinery in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae ...

שמרים הוא אורגניזם מודל פופולרי, לא רק עבור מחקרים גנטיים, אלא גם עבור מחקרים ביוכימיים של חלבונים מקרומולקולות אחרות שחולצו סוג הבר זני שמרים מוטנטים. עם זאת, בשל קירות התא הקשוחים שלהם, אתגר מרכזי העומד בפני החוקרים הוא תזה יעילה זו של תאי שמרים מבלי לפגוע בתכנים התאיים. הבידוד של מקרומולקולים ביולוגיים שלמים הוא בדרך כלל קריטי, תלוי בטמפרטורה.הכנת התמציות בטמפרטורה נמוכה מבטיחה כי פרוטאזות תאיים ונוקלאאזים להישאר פעיל, וכתוצאה מכך בידוד אמין של חלבון שלם, חומצות גרעין, מקרומולקולות אחרות עבור תזה מספקת. שיטות שונות זמינות להשגת תמציות שמרים באמצעות תיזה אנזימטית, כימית ופיזית. עם זאת תזה אנזימטית יקרה בשל הדרישה של אנזימים מטוהרים לעכל את קיר התא, ובכך להגביל את השימוש במספר קטן יותר של תאים.בהמשך יש לעקוב מקרוב אחר התגובות האנזימטיות כדי למנוע עיכול יתר ותוספי תזה מוקדמים של התאים. שיטות כימיות באמצעות סוכני denaturing חזקים, אם כי יעיל, לגרום denaturation של חלבונים וככזה, אינם מתאימים לבידוד של קומפלקסים חלבון או אנזימים פונקציונליים. שיטות פיזיות, כגון תזה תחת לחץ גבוה בעיתונות הצרפתית יכול להתבצע בקור בארבעה צלזיוס אבל זה לא קר מספיק כדי למנוע השפלה ו denaturation של כל החלבונים המקומיים.שיטות פיזיות פופולריות אחרות הן שימוש במכתש ועלי, בלנדר או מטחנת קפה לטחינת תאי שמרים המתווסכלים במאגר תזה וקפואים כ טיפות או שחיקה ותערובת של חזיות זכוכית ושמרים במפעל מקצף תריס מהיר או תזה על ידי sonication. עם זאת, שחיקה ידנית היא עבודה אינטנסיבית ותפוקת החלבון וכתוצאה מכך יכול להשתנות במידה ניכרת בהתאם לטכניקות המשמשות בעוד תזה על ידי sonication או שחיקה בבלנדר, מטחנת קפה, או טחנת מקצף חרוזים מייצרת כמות משמעותית של חום, וכתוצאה מכך השפלה חלבון השפלה. לכן, כדי להשיג תותבת תאי שמרים עם חלבונים במצבם המקורי עם denaturation מינימלי השפלה עבור יישומים כמו טיהורים של קומפלקסים חלבון פונקציונלי, בדיקות ביוכימיות או זיהוי של שינויים חולפים שלאחר התרגום, חיוני להשתמש בשיטת תותבת מדרגית בקלות כי יהיה למזער את ייצור החום תוך מתן תזה יעילה ללא קשר לכמות התאים.כאן אנו מתארים שיטה הכוללת שימוש במפעל מקפיא קריו לתזה של תאים בחנקן נוזלי במינוס 196 צלזיוס כדי ליצור תמציות תאים קפואים ובכך לאפשר התאוששות של מקרומולקולות פונקציונליות שלמות, כגון חלבונים או DNA ו- RNA, בטמפרטורות נמוכות מאוד הממזערות השפלה והשפלה. שיטה זו יכולה להיות מותאמת בקלות לשימוש עם כל סוג של תא או דגימת רקמה מכל מין, כולל דגימות משפטיות ואפילו עתיקות התאושש מאתרים ארכיאולוגיים או נמצא קפוא. טחנת המקפיא משתמשת בתא שחיקה אלקטרומגנטי מוליכי-על שמזיז במהירות מוט מתכת מוצק קדימה ואחורה בתוך קובץ פוליקרבונט המכיל את הדגימה כדי להימחץ בין תקעי קצה נירוסטה.שיטת תות תאים פיזית זו מאפשרת תזה יעילה יותר ותוצאות מתרבות בתמצית באיכות טובה יותר. תאי שמרים גדלו בריכוז של 10 מיליון תאים למיליון. תאי שמרים אלה הונחו בקבוק צנטריפוגה מקורר מראש וסובבו במשך 10 דקות ב 2, 400 G.Once הספין הושלם, decant supernatant מבלי להפריע לתאים גלולה.גלולה זו הייתה resuspended בכמות קטנה של מים קרים קרח, כמחצית הנפח הראשוני של התרבות לשטוף את התאים. התאים המתווסכלים שוב סובבו למטה לעוד 10 דקות ב 2, 400 G. פעם הספין הבא הושלם, אנחנו, שוב, decant כל supernatant מבלי להפריע גלולה. גלולה זו לאחר מכן יהיה resuspended ו 15 ML של חיץ תזה קרה קרח.ודא כי גלולה הוא resuspended לחלוטין. התאים המתווסכלים צריכים להישאר על קרח בצינור מסומן מראש עד מוכן לשלב הבא. יש ללבוש תמיד ציוד מגן אישי בעת טיפול בחנקן נוזלי, כגון משקפי בטיחות, הגנה על היד ומעילי מעבדה.כדי למקסם את הקריטריון שלנו, לעתים קרובות אנו לובשים זוג כפפות תרמיות לבנות דחוק בין שני זוגות של כפפות ניטריל. לשנות את הכפפות החיצוניות ניטריל לעתים קרובות, כפי שהם לקרוע בקלות לאחר שנחשף חנקן נוזלי. במעבדה שלנו, אנחנו מעבירים אליקוט של חנקן נוזלי למיכל חנקן נוזלי קטן של חמישה ליטר.חנקן נוזלי נשפך לאחר מכן לתוך צינור 50 ML כי כבר מקורר מראש על קרח יבש. לאחר צינור 50 ML מלא חנקן נוזלי, אנו מוסיפים את תמצית השמרים לאט, באופן חכם טיפה לצינור במרווחים 1.5 מיליליטר. כדי למזער את היווצרות כדורי פופקורן גדולים, השעיית השמרים מתווספת בתנועה מעגלית.כדי למנוע עוד יותר היווצרות של כדורי פופקורן גדולים, אנו משתמשים בממטרים גדולים כדי להבטיח את כל כדורי הם בין 0.3 ו 0.5 ס"מ קוטר. בגלל חנקן נוזלי הוא תמיד מתאדה, הקפד מילוי הצינור עם חנקן נוזלי לפני הוספת כל 1.5 מיליון aliquot של השעיית שמרים. לאחר כל השעיית שמרים נעשה פופקורן לאפשר את הצינור עם פופקורן לשבת ללא המכסה במשך שתיים עד שלוש דקות כדי לאפשר לכל חנקן נוזלי שיורית להתאדות.כדי להיות בטוח כי כל החנקן הנוזלי התאדה, לסגור את המכסה כמעט לחלוטין לנער בעדינות. אם יש רעש של שרוק, זה מצביע על כך שהחנקן הנוזלי עדיין לא התאדה לחלוטין. פתח את המכסה עוד דקה בערך כדי לאפשר לחנקן הנוזלי הנותר להתאדות לפני סגירת המכסה בחוזקה.שאריות נוזל בצינור עלולות לגרום לפיצוץ אם המכסה סגור בטרם עת. פופקורן שמרים זה יכול להיות מאוחסן כמעט ללא הגבלת זמן מינוס 80 מעלות צלזיוס לפחות חמש דגימות, להבטיח כי יש לך 30 עד 35 ליטר של חנקן נוזלי זמין. ממלאים את טחנת המקפיא לקו המלא וסגרו את המכסה כדי לאפשר לטחנת המקפיא לצנן מראש במשך כמה דקות.שוב, זכור תמיד ללבוש ציוד מגן אישי כאשר מתמודדים עם חנקן נוזלי. בקבוקוני שחיקה פוליקרבונט, תקעי קצה נירוסטה, בר המשפיע חייב להיות מקורר מראש עם חנקן נוזלי. שמור רכיבים אלה שקועים עד החנקן הנוזלי מפסיק לבעבע.זכור לשמור את כל דגימות הפופקורן על קרח יבש עד שכל תהליך הטחינה יושלם. מוציאים את כל החנקן הנוזלי מבקבוקוני הטחינה ומעבירים את הפופקורן לבקבוקון. אל תשכחו למקם בר משפיע מגנטי בבקבוקון השוחקת גם כן.לאטום את בקבוקון שחיקה על ידי הצבת בזהירות את תקע נירוסטה באופן שווה על קצה הבקבוקון שחיקה. אנחנו דופקים כל קצה של בקבוקון הטחינה על לוח לחם מעץ עם גב גומי סופג רטט כדי להבטיח כי תקעי הקצה ממוקמים כראוי והם איטום בקבוקונים שחיקה בחוזקה. חשוב לאבטח את תקעי הקצה כדי להבטיח שהם לא ישתחררו ויאפשרו לדגימות לשפוך בטחנת המקפיא במהלך תהליך השחיקה.מניחים בקבוקון שחיקה בתא הטחינה של טחנת המקפיא וננעלים במקום. סוגרים את מכסה טחנת המקפיא וטוחנים את הדגימה במשך שלושה מחזורים בשתי דקות למחזור, בקצב ריסוק של 14. לאחר מחזורי שחיקה הושלמו לפתוח את הבקבוקון עם lysate תא אבקה קפוא.כדי למנוע את הפשרת ה-lysate, עבוד במהירות ובזהירות כדי לפתוח את אחד התקעים הסופית באמצעות כלי הפתיחה. לאחר הבקבוקון פתוח, להסיר את בר המשפיע ולהעביר במהירות את תמצית אבקה קפואה על צלחת שקילה פלסטיק מקורר מראש. לשחזר כמה שיותר של תמצית קפואה ככל האפשר על ידי דפיקות הבקבוקון על לוח הלחם מעץ.לאחר הסרת כל האבקה מהבקבוקון, מעבירים במהירות את כל תמציות האבקה לצינור 15 מ"מ המסוקרן מראש על קרח יבש. למרות שעדיף להמשיך עם הפשרה ושימוש תמציות מיד כדי למזער את השפלת החלבון, ליזאת אבקה קפואה ניתן לאחסן לילה במינוס 80, במידת הצורך. להפשיר את האבקה lysate לאט תרחיף קרח כי הוא מופץ ברציפות באמצעות בר ערבוב מגנטי בדלי קרח.כדי להקל אפילו הפשרה, להסיר קרח המתפתח בצד החיצוני של הצינורות לעתים קרובות, על כל חמש דקות בערך. ברגע שהתמציות מתחילות להפשיר בקוקטייל מעכב פרוטאז 1X ו-10 מעכבי פרוטאזום מיקרומולריים MG132 למניעת השפלת חלבונים. לאחר הדגימות מופשרות לחלוטין, אשר יכול לקחת יותר משעה, לסובב את הדגימות ב 3, 220 G במשך 20 דקות בארבע מעלות צלזיוס.ספין זה יסיר את רוב פסולת התא מהליסאט. כאשר הספין הוא להשלים להעביר את supernatant לתוך בקבוקי פוליקרבונט כי כבר צונן מראש על הקרח להשליך את גלולה. צנטריפוגה supernate ודגימות ב 16, 000 G בארבע מעלות צלזיוס במשך 20 דקות כדי להבהיר את התמצית.לאחר השלמת הספין, לשחזר רק את supernatant ברור בזהירות מאמצע העמודה הנוזלית מבלי להפריע לשכבה מעוננת המכילה את החתיכה על גבי או את הפסולת גלולה בתחתית הצינור צנטריפוגה. מעבירים את הלט הברור לצינור 15 מ"ל צונן מראש. הנוזל המעונן הנותר יכול להיות לאחרונה במשך חמש דקות באותה מהירות כדי לאפשר התאוששות של כמה יותר של lysate הסיטונאי.התמציות מוכנות כעת לשימוש בניסויים, כגון טיהור קומפלקסים של חלבונים ו immunoprecipitation. השווינו שתי שיטות שונות של ת ליסיס תאי שמרים, כלומר כרסום חרוזי זכוכית בארבעה צלזיוס ושיטת שחיקת קריו אוטומטית במינוס 196 צלזיוס כדי להעריך את החלבונים ותמציות התאים התאוששו יחסית שהוכנו בשתי השיטות. ממחקר זה בחרנו להשתמש זן שמרים ניצנים נושאת פלסמיד עותק גבוה להביע טנדם HIS-MYC מתויג בכל מקום.אז אנחנו יכולים להעריך את הזיקה של התאוששות של חלבונים מתויגים polyubiquitinated מתמציות סיטונאיות, בעקבות טיהור זיקה באמצעות טאלון קובלט שלו תג זיקה חרוזים ואחריו כתמים מערביים עם נוגדן תג HIS חד שבטי. חלבונים Polyubiquitinated כי הם בדרך כלל קצרי מועד מאוד בשל השפלה מהירה שלהם על ידי מכונות פרוטאיוזום בכל מקום ובכך מציעים דרך טובה מאוד להשוות את האיכות של תמציות סיטונאיות שהוכנו בשיטות שונות. כפי שאנו רואים על ידי החצי הימני של קרום מוכתם Ponceau, מצאנו תפוקת חלבון הכולל גבוה יותר בתמציות הסיטונאי שהוכן על ידי פרוטוקול טחנת מקפיא cryo כפי שנשפט על ידי כתמים אינטנסיביים יותר Ponceau לאורך נתיב התמצית הסיטונאי.זה ברור במיוחד בחלקים התחתונים והחלקים העליונים של טחנת המקפיא כל תמציות נתיבים. בנוסף, כפי שמוצג על ידי החצי הימני של כתם המערבי תג HIS, ראינו התאוששות טובה יותר של חלבון בכל מקום HIS-MYC ואחריו למשוך למטה באמצעות חזיות טאלון מן התמציות הסיטונאי שהוכנו על ידי שחיקה קריוגנית. אנו מסיקים כי טחנת המקפיא קריוגניים עדיף על שיטות אחרות להכנת תמציות תאים, במיוחד כאשר macromolecules פונקציונלי נדרשים עבור יישום במורד הזרם.

preparation-cell-extracts-cryogrinding-an-automated-freezer

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנחנו כאן להמחיש כיצד להשתמש אלקטרונים cryotomography (ECT) כדי ללמוד את ultrastructure של תאים חיידקיים של כמעט ילידי מדינות, כדי "macromolecular" (~ 4 ננומטר) החלטה.

אלקטרונים Cryotomography של תאים חיידקיים

מקור: Wiegand, D. J., et al. ביטוי חלבון נטול תאים באמצעות החיידק Vibrio natriegens הגדל במהירות. J . Vis. Exp. (2019).סרטון זה מדגים את הכנת תמצית התאים מ-Vibrio natriegens, חיידק הגדל במהירות הידוע בקצב סינתזת החלבון הגבוה שלו. הגלולה החיידקית נשטפת ומושעה מחדש במאגר ליזה לפני סוניקציה על קרח כדי למנוע פירוק תאי. הליזאט עובר צנטריפוגה כדי להפריד פסולת תאים בלתי מסיסה, ותמצית התאים נאספת, מוקפאת ומאוחסנת לשימוש עתידי.

הכנת תמצית תאים גולמיים מ-Vibrio natriegens

כאן אנו מתארים פרוטוקולים לשבש בתאי יונקים ידי כרסום מצב מוצק בטמפרטורה קריוגני, לייצר תמצית התא מן אבקת התא וכתוצאה מכך, ולבודד קומפלקסים חלבונים של עניין על ידי לכידת זיקה על חרוזים פאראמגנטיים בקנה מידה מיקרון מצמידים נוגדנים.

לכידת חלבון זיקה מורכבת מ בתאי יונקי Cryomilled

כתב יד זה מתאר שיטה קלה לשימוש בעלות הנמוכה cryofixation המאפשרת הדמית תאי השעיה ידי מיקרוסקופי אלקטרוני הילוכים.

מקפיא פלאנג: כלי עבור מחקרי ultrastructural ו Immunolocalization של תאי השעית הילוכים מיקרוסקופים אלקטרונים

מכשיר ושיטות ההכנה של אמצעי אחסון מדגם בגודל nanoliter במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים מוצג. אין מדרגות נייר סופג נדרשים, וכך להימנע ההשלכות מזיקה שיכולה להיות חלבונים, הפחתת הדגימה אובדן ולאפשר הניתוח של תא בודד lysate עבור פרוטאומיקס חזותי באופן משמעותי.

הכנת הדוגמא ולמחקר במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים

שיטה מתישה קריוגניים כדי לעבד כפות מורתיות באמצעות טחנת חנקן נוזלי המקפיא פותחה כדי לשפר את התשואה והאיכות של RNA או חלבון שחולצו מן הרקמות ולאפשר ניתוח של פרופילים מולקולריים הקשורים דלקתיות תגובות.

פרוטוקול הקפאה-מתישה לעיבוד כפות העכבר כדי להעריך מסלולים מולקולריים של דלקת רקמות במודל דלקת מפרקים קולגן המושרה

מוצג כאן הוא פרוטוקול עבור תרבות התא על ממברנות הסיליקון ניטריד ו-לקפוא לפני לפני הדמיה רנטגן קרני הקרינה עם סינכרוטרון nanoprobe רנטגן הקריוגני. כאשר רק טמפרטורת החדר בניתוח ננו מסופק, הדגימות הקפואות יכול להיות נוסף מיובש להקפיא. אלה הם צעדים קריטיים כדי לקבל מידע על הרכב היסודות תאיים.

תרבות התא על ממברנות הסיליקון נידהר וקריופיקציה עבור סינכרוטרון X-ray פלואורסצנטית ננו-ניתוח

פרוטוקול זה מתאר את שיטת ה-קריואיפקס, בה חלבון ממברנה APEX2 מתויג יכול להיות מקומי על ידי שידור אלקטרון מיקרוסקופ בתוך מבנה מיטבי משומר התא.

שיטת ה-קריואיפקס לניתוח מיקרוסקופ אלקטרוני של לוקליזציה של חלבון ממברנה בתוך תאים שהשתמרו באופן מבנית

אנו מציגים טכניקה לייצוב מהיר של מתחמים תרגומיים (ביוסינטזה של חלבונים) עם קשרים צולבים פורמלדהידים בתאי שמרים ויונקים חיים. הגישה מאפשרת לנתח מתווכים ארעיים ואינטראקציות דינמיות של RNA:חלבון. ניתן להשתמש במתחמים המקושרים ביישומים מרובים במורד הזרם, כגון בשיטות פרופיל מבוססות רצף עמוק, מיקרוסקופיה וספקטרומטריית מסה.

קיבוע מהיר ב- Vivo ובידוד מתחמים תרגומיים מתאי אוקריוטיים

כאן, אנו מציגים צינור לכרסם קרן יונים ממוקדת מתאם תלת-ממדי על הנחיית הכנת דגימות תאיות לטומוגרפיה קריו-אלקטרונית. המיקום התלת-ממדי של חלבונים בעלי תיוג פלואורסצנטי נקבע תחילה על ידי מיקרוסקופ קריו-פלואורסצנטי, ולאחר מכן מיועד לכרסום. הפרוטוקול מתאים לתאי יונקים, שמרים וחיידקים.

הכנת הדגימה על ידי כרסום קרן יונים ממוקדת תלת-ממדית לטומוגרפיית קריו-אלקטרונים ברזולוציה גבוהה

שיטה זו מספקת פרוטוקול נגיש וגמיש להכנת רשתות מיקרוסקופ אלקטרונים (EM) עבור קריוטומוגרפיה תאית באתרה ומיקרוסקופ אור ואלקטרונים מתאמי (CLEM).

הכנת דגימה לקריוטומוגרפיה באתרו של תאי יונקים

למדו שיטת טחינה קריוגנית להכנת תמציות תאים משמרות שמרים תוך שמירה על שלמות חלבונים. השיטה מבטיחה בידוד מולקולות ביולוגיות פונקציונליות ליישומים בביוכימיה ופרוטאומיקה.

הכנת תמציות תאים על ידי Cryogrinding במיל מקפיא אוטומטי

גלה סרטונים נוספים