Name: הכנת נגיפי שפעת העופות H5 מסוג פסאודו עם שיטת העברת סידן פוספט ומדידת פעילות נטרול נוגדנים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-11-22T13:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 15 s
Description: חקור הכנת נגיפי פסאודו H5 של שפעת עופות ומדידת נוגדנים נטרלים באמצעות תאי HEK293 FT ושיטת העברת סידן פוספט. פרוטוקול זה מאפשר מחקר בטוח של תגובות חיסוניות לפיתוח חיסונים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי מענקי המחקר מפרויקט בניית יכולת החדשנות של מחוז ג'יאנגסו (BM2020019), הפרויקט המדעי והטכנולוגי של שנזן (לא. JSGG20200225150702770), תוכנית מחקר בעדיפות אסטרטגית של האקדמיה הסינית למדעים (XDB29030103), הפרויקט המדעי והטכנולוגי של גואנגדונג (מס '2020B1111340076) ותוכנית המחקר הפתוח של מעבדת מפרץ שנזן (לא. SZBL202002271003).

כל פעולות הניסוי הקשורות לפסאודו-וירוס בוצעו בתנאי ABSL2 במכון פסטר של האקדמיה הסינית למדעים בשנחאי (IPS, CAS). ניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתבסס על פרוטוקולים מוסדיים של הוועדה לטיפול ושימוש בבעלי חיים שאושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של IPS, CAS.
1. אריזה Pseudovirus עם transfection סידן פוספט
<ol><li>צור תרחיפים חד-תאיים של HEK293FT תאים (9 x 10,5 למ"ל) בתווך DMEM מלא (טבלה 1). הוסף 10 מ"ל של תרחיפים חד-תאיים לצלוחית T75, דגר את התאים באינקובטור של 37 מעלות צלזיוס, 5% פחמן דו חמצני (CO2) במשך 20 שעות לפני הטרנספקציה. הערה: מומלץ HEK293FT מעבר נמוך (<20 קטעים). ודא כי monolayer התא הוא 80-90% confluent.</li>
	<li>החלף את המדיום עם 10 מ"ל של מדיום שלם טרי המכיל כלורוקין (100 מיקרומטר) 2 שעות לפני transfection.</li>
	<li>ערבבו את הריאגנטים ואת הדנ"א של פלסמיד כפי שמוצג בטבלה 2 ובאיור 1: ddH 2 O, pCMV/R-HA, pCMV/R-NA, pHR-Luc, pCMV Δ 8.9, 2.5 M CaCl2ו-2x HEPES buffer. פיפטה למעלה ולמטה 5 פעמים בעדינות, לדגור על התערובת בטמפרטורת החדר (RT) במשך 20 דקות.</li>
	<li>מעבירים את התערובת לתווך שמעל התאים, ומנדנדים את הבקבוק בעדינות. לדגור על התאים באינקובטור התא במשך 15 שעות.</li>
	<li>החלף את המדיום עם 15 מ"ל של מדיום DMEM שלם טרי. לדגור על התאים באינקובטור של 37°C, 5% CO2 למשך 65 שעות. הערה: צבע התווך יהיה כתום בהיר או צהוב מעט, ולפחות 80% מהתא צריך להראות את האפקט הציטופתי (CPE) תחת מיקרוסקופ האור ההפוך.</li>
	<li>קצור את supernatant, וצנטריפוגה אותו ב 2095 x גרם במשך 20 דקות ב 4 ° C. לאסוף את supernatant, aliquot אותו, ולאחסן אותו ב -80 ° C.</li>
</ol>2. זיהוי ביטוי חלבון HA, NA ו- HIV-1 p24 של פסאודו-וירוס שפעת
<ol><li>זהה את ביטוי חלבון HA על ידי בדיקת Hemagglutinin (HA).<ol><li>הוסף 50 μL של PBS לעמודות 2-12, שורות A, B ו- C של לוח עגול בעל תחתית עגולה של 96 בארות. הערה: שורות A, B ו- C שייכות ל- 3 בדיקות שכפול עצמאיות, ועמודה 12 משמשת כפקד השלילי.</li>
		<li>הוסף 100 μL של pseudovirus לתוך הבארות של עמודה 1. מעבירים 50 μL מטור 1 לטור 2, מערבבים היטב על ידי פיטום למעלה ולמטה 5 פעמים, מבצעים את הדילולים הכפולים עד לטור 11 האחרון, ומשליכים את 50 μL הנוספים מטור 11.</li>
		<li>הוסף 50 μL של 0.5% אריתרוציטים לתוך כל באר, פיפטה אותו למעלה ולמטה בעדינות פעמיים. לדגור על הצלחת במשך 30-60 דקות ב RT או עד אריתרוציטים של בקרה שלילית טופס כתמים רגילים בתחתית הבאר.</li>
		<li>התבונן ורשום טיטרים HA של pseudovirus. הערה: יחידת HA של הפסאודו-וירוסים היא גורם הדילול הגבוה ביותר של הנגיף שיכול לגרום ל-100% המגלולציה של תאי הדם האדומים.</li>
	</ol></li>
	<li>זיהוי ביטוי חלבוני HA ו-NA על ידי בדיקת הכתם המערבי. הערה: כל שלבי הכתם המערבי מבוצעים על פי המדריך לשיבוט מולקולרי(מהדורה 4 ).</li>
	<li>זהה את ביטוי החלבון HIV-1 p24 על ידי ערכת ELISA של HIV-1 p24 (רשימת חומרים).<ol><li>הוסף 50 μL של חיץ lysis לתוך 450 μL של דגימה pseudovirus. מערבבים היטב.</li>
		<li>הוסף 300 μL של חיץ הכביסה לכל באר של microplate. הכו את הצלחת הפוכה כדי להסיר את חיץ הכביסה לחלוטין. חזרו על הכביסה 5 פעמים.</li>
		<li>הוסף 200 μL של התקן ודוגמאות לכל באר בנפרד. לדגור אותם ב 37 ° C במשך הלילה או במשך 2 שעות.</li>
		<li>שאפו את תכולת הצלחת ושטפו את הצלחת כמתואר בשלב 2.3.2. הערה: השאר באר אחת של לוח הבדיקה ריקה לשימוש כמצע ריק.</li>
		<li>הוסף 200 μL של נוגדנים גלאי p24 לכל באר. לדגור אותם ב 37 ° C במשך 1 שעה. שאפו ושטפו את הצלחת כמתואר בשלב 2.3.2.</li>
		<li>הוסף 100 μL של תמיסת עבודה סטרפטווידין-Peroxidase לכל באר, ודגר אותם ב 37 ° C במשך 30 דקות. שאפו ושטפו את הצלחת כמתואר בשלב 2.3.2.</li>
		<li>הוסף 100 μL של פתרון העבודה substate לכל באר, כולל המצע ריק היטב, ודגר אותם ב 37 ° C במשך 30 דקות. הערה: צבע כחול יתפתח בבארות.</li>
		<li>הוסף 100 μL של חיץ עצירה לכל באר. הערה: הצבע הכחול ישתנה לצהוב באופן מיידי.</li>
		<li>קרא את הצפיפות האופטית ב- 450 ננומטר תוך 15 דקות. רשום את titers p24 של pseudovirus</li>
	</ol></li>
</ol>3. טיטרציה Pseudovirus
<ol><li>צור תרחיפים חד-תאיים של תאי MDCK (5 x 104 למ"ל) בתווך DMEM מלא, הוסף תאים 1250, 2500, 5000, 10000, 20000 ו- 40000 לבארות שונות של צלחת שטוחה בעלת 96 בארות. לדגור על התאים באינקובטור של 37°C, 5% CO2 למשך 20 שעות.</li>
	<li>הוציאו את הפסאודו-וירוס מהמקרר בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס, הפשירו אותו על הקרח וערברו את הפסאודו-וירוס.</li>
	<li>הוסף 6 HAU (6x יחידות HA) pseudoviruses לכל באר של צלחת עגולה 96 באר וחדש כל באר עם DMEM מלא עד 120 μL.</li>
	<li>פיפטה מעלה ומטה את התערובת 5 פעמים כדי לערבב היטב. לדגור את צלחת תערובת ב 37 ° C, 5% CO2 אינקובטור במשך 1 שעה.</li>
	<li>מעבירים 100 μL מהתערובת לתאים בצלחת 96 בארות. החזירו את צלחת תרבית התאים לאינקובטור למשך 48 שעות, 60 שעות ו-72 שעות לאחר ההדבקה בנגיף.</li>
	<li>מוציאים את הצלחת מהאינקובטור ומבצעים את בדיקת הלוציפראז (טבלת חומרים).</li>
	<li>מוציאים את המדיום מבארות הצלחת בזהירות. לשטוף את התאים עם 200 μL של PBS ולהסיר את PBS ככל האפשר. הערה: הפוך את הצלחת והשלך את הסופרנאטנט על ידי סטירה הפוכה על נייר סופג. אם קו תאי הבדיקה לא הצליח להתחבר בחוזקה לתחתית, הסר את השאיפה הבינונית בזהירות.</li>
	<li>מוסיפים 50 μL של חיץ הליזיס לכל באר, ומנדנדים את צלחת התרבית מספר פעמים. אחסנו את הצלחת בטמפרטורה של -80°C למשך הלילה. הערה: יש לערבב נפח אחד של חיץ ליזיס 5x עם 4 נפחי מים כדי ליצור את מאגר הליזיס 1x. אזנו את מאגר הליזיס 1x ל-RT לפני השימוש. נענעו את הצלחת כדי להבטיח שהתאים מכוסים לחלוטין בחיץ הליזיס. תהליך ההקפאה-הפשרה היחיד יכול לעזור לתא להיות ליזה לחלוטין.</li>
	<li>מוציאים את הצלחת, מאזנים ב-RT למשך שעתיים. הערה: התא צריך להיות lysed לחלוטין.</li>
	<li>רוקדים את הצלחת מספר פעמים בעדינות, ומעבירים את כל הליזטים התאיים לצלחות אטומות בנות 96 בארות.</li>
	<li>מוסיפים 50 μL של המצע לכל באר, מנערים את הצלחת מספר פעמים בעדינות, ומערבבים היטב את המצע ואת חיץ הליזיס.</li>
	<li>מדוד את האור המופק תוך 5 דקות באמצעות לומינומטר. רשום את titers luciferase של pseudovirus. הערה: כאשר מוסיפים מצע תקין, האור נפלט כתוצר לוואי באמצעות תגובה כימית שבה לוציפרין מומר לאוקסילוציפרין על ידי האנזים לוציפראז. כמות האור המיוצרת פרופורציונלית לכמות האנזים לוציפראז.</li>
</ol>4. הכנת סרה חיסונית
הערה: הסרום החיסוני ישמש לניסויים הקשורים לתאים, והפעולה הניסיונית צריכה להתבצע בתנאים אספטיים.
<ol><li>הכינו 12 נקבות עכברי BALB/c בנות שמונה שבועות. חלקו את העכברים באופן שווה לשתי קבוצות. הערה: קבוצה אחת הייתה קבוצת DDV והשנייה הייתה קבוצת הביקורת השלילית.</li>
	<li>חיסון קבוצת DDV: פריים פעמיים תוך שרירית עם 100 מיקרוגרם של פלסמיד DNA ממוטב קודון המקודד A/Thailand/(KAN-1)/2004 (TH) חלבון HA בשבוע 0 ובשבוע 3 ולהגביר פעם אחת תוך צפקית עם 512 חלקיקים דמויי וירוס TH HAU (VLP) בשבוע 6.</li>
	<li>חיסון קבוצת ביקורת: פריים פעמיים תוך שרירית עם 100 מיקרוגרם DNA פלסמיד וקטורי ריק בשבוע 0 ובשבוע 3 ולהגביר פעם אחת תוך צפקית עם HIV-1 gag VLP בשבוע 6.</li>
	<li>לאסוף את דם העכבר 2 שבועות לאחר החיסון האחרון. הערה: כאן, העכברים היו מורדמים עם נתרן pentobarbital (65 מ"ג / ק"ג) בזמן איסוף הדם. לאחר איסוף הדם מהווריד התת-לסתי, העכברים הומתו מיד עםCO2.</li>
	<li>שמור את הדם ב RT במשך 2 שעות, ולאחר מכן 4 ° C במשך הלילה. צנטריפוגה ב 900 x גרם במשך 10 דקות ב 4 ° C ולאסוף את supernatant. נטרלו את הסרה על ידי הצבתה בטמפרטורה של 56°C למשך 30 דקות.</li>
	<li>אחסנו את סרה החיסון במקרר בטמפרטורה של -80°C לשימוש. הערה: עיין באיור משלים 1 עבור תרשים הזרימה המתאר את ההליכים העיקריים של חיסון עכברים.</li>
</ol>5. בדיקת נטרול פסאודו-וירוס (PN)
<ol><li>צור תרחיפים חד-תאיים של תאי MDCK (5 x 104 למ"ל) בתווך DMEM מלא, והוסף 100 μL של תרחיף התא לכל באר של צלחת שטוחה בעלת 96 בארות. לדגור על התאים באינקובטור של 37°C, 5% CO2 למשך 20 שעות.</li>
	<li>מוציאים את הפסאודו-וירוס והסרה מהמקרר בטמפרטורה של -80°C, מפשירים אותו על הקרח ומערבלים היטב.</li>
	<li>לדלל את sera בתווך השלם 20 פעמים, ולהוסיף 100 μL של מדיום DMEM שלם לבארות של צלחת עגולה 96 באר תחתית מעמודות 2-10.</li>
	<li>הוסף 200 μL של הסרה המדוללת לבארות של טור 2, העבר 100 μL מטור 2 לטור 3, דלל את הסרה כ- 1:20, 1:40, 1:80 וכו ', ל- 1:10240 ברציפות מטור 2 לטור 10, והשלכת 100 μL מטור 10.</li>
	<li>הוסף 100 μL של מדיום שלם DMEM לבארות של עמודה 11 כבקרה השלילית.</li>
	<li>מוסיפים 100 מיקרוליטר של פסאודו-וירוסים לכל באר, פיפטה מעלה ומטה את התערובת 5 פעמים ביסודיות, ודגרים על צלחת התערובת בטמפרטורה של 37°C, 5% CO2 למשך שעה אחת.</li>
	<li>מעבירים 100 μL של התערובת מהצלחת בעלת 96 הבאר בעלת תחתית עגולה לבאר המתאימה של צלחת תרבית התאים בעלת 96 הבארות. מחזירים את הצלחת לאינקובטור (37°C, 5% CO2) למשך 60 שעות.</li>
	<li>מוציאים את הצלחת מהאינקובטור. בצע את בדיקת luciferase כמתואר בשלבים 3.7-3.12.</li>
</ol>6. בדיקת קבצים מצורפים Pseudovirus
<ol><li>צור תרחיפים חד-תאיים של תאי MDCK (4 x 104 למ"ל) בתווך DMEM מלא, והוסף מתלי תאים של 100 μL לכל באר בלוח שטוח בעל 96 בארות. לדגור על התאים ב 37 ° C, 5% CO2 במשך 20 שעות.</li>
	<li>לדגור את pseudovirus עם sera ב DMEM המכיל 1% BSA ב 4 ° C במשך הלילה. הערה: נפח התערובת הוא 100 μL.</li>
	<li>חסום את תאי MDCK עם 100 μL לכל באר של DMEM המכיל 1% BSA ב 4 ° C במשך 1 שעות.</li>
	<li>חסן את תערובת הפסאודו-וירוס והסרום (100 μL) על השכבה החד-שכבתית MDCK ודגר עליה ב-4°C למשך שעתיים.</li>
	<li>שטפו את צלחת התא 4 פעמים עם PBS המכיל 1% BSA כדי להסיר כל וירוס לא קשור.</li>
	<li>Lyse את התאים עם 100 μL של חיץ luciferase lysis ב RT במשך 30 דקות.</li>
	<li>כמת את כמות הנגיף הכבול על התאים באמצעות ערכת ELISA של HIV-1 p24 כמתואר לעיל (סעיף 2.3).</li>
</ol>7. הערכה של כניסה ויראלית
<ol><li>צור תרחיפים חד-תאיים של תאי MDCK (5 x 104 למ"ל) בתווך DMEM מלא, והוסף 100 μL של תרחיף התא לכל באר של צלחת שטוחה בעלת 96 בארות. לדגור על התאים ב 37 ° C, 5% CO2 במשך 20 שעות לפני הבדיקה.</li>
	<li>חסן את הפסאודו-וירוס (100 μL) על שכבה חד-שכבתית MDCK בצלחת של 96 בארות ב-4°C למשך 6 שעות.</li>
	<li>שטפו את צלחת התא 4 פעמים עם PBS המכיל 1% BSA כדי להסיר פסאודו-וירוסים לא מאוגדים.</li>
	<li>הוסף 100 μL של סרה חיסונית בדילול סדרתי או סרה מעכברי חיסון דמה ב- DMEM המכיל 1% BSA לחד-שכבתי, ודגר על התא ב -4 מעלות צלזיוס למשך שעתיים.</li>
	<li>הסר את supernatant התא, ולשטוף את צלחת תרבית התא 4 פעמים עם PBS המכיל 1% BSA.</li>
	<li>הוסף DMEM טרי לתאים ודגור במשך 60 שעות באינקובטור 37°C, 5% CO2 .</li>
	<li>מדוד את פעילות הלוציפראז היחסית (RLA) של התאים כמתואר בשלבים 3.7-3.12. הערה: ערך ויראלי, כפי שצוין על ידי RLA, התבטא כאחוז מהקריאה המתקבלת בהיעדר סרה, שנקבע כ -100%.</li>
</ol>

<ol><li>Wang, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+prime+and+virus-like+particle+boost+from+a+single+H5N1+strain+elicits+broadly+neutralizing+antibody+responses+against+head+region+of+h5+hemagglutinin%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">DNA prime and virus-like particle boost from a single H5N1 strain elicits broadly neutralizing antibody responses against head region of h5 hemagglutinin.</a> The Journal of Infectious Diseases. 209 (5), 676-685 (2014).</li>
<li>Wang, G., Yin, R., Zhou, P., Ding, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+of+the+immunization+with+the+sequence+close+to+the+consensus+sequence+and+two+DNA+prime+plus+one+VLP+boost+generate+H5+hemagglutinin+specific+broad+neutralizing+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Combination of the immunization with the sequence close to the consensus sequence and two DNA prime plus one VLP boost generate H5 hemagglutinin specific broad neutralizing antibodies.</a> Plos One. 12 (5), 0176854(2017).</li>
<li>Li, Q., Liu, Q., Huang, W., Li, X., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+status+on+the+development+of+pseudoviruses+for+enveloped+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Reviews+in+Medical+Virology%22%5BJournal%5D)">Current status on the development of pseudoviruses for enveloped viruses.</a> Reviews in Medical Virology. 28 (1), 1963(2018).</li>
<li>Duvergé, A., Negroni, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudotyping+lentiviral+vectors%3A+When+the+clothes+make+the+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Pseudotyping lentiviral vectors: When the clothes make the virus.</a> Viruses. 12 (11), 1311(2020).</li>
<li>Carnell, G. W., Ferrara, F., Grehan, K., Thompson, C. P., Temperton, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudotype-based+neutralization+assays+for+influenza%3A+A+systematic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Pseudotype-based neutralization assays for influenza: A systematic analysis.</a> Frontiers in Immunology. 6 (161), (2015).</li>
<li>Trombetta, C., Perini, D., Mather, S., Temperton, N., Montomoli, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+serological+techniques+for+influenza+vaccine+evaluation%3A+Past%2C+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccines%22%5BJournal%5D)">Overview of serological techniques for influenza vaccine evaluation: Past, present and future.</a> Vaccines. 2 (4), 707-734 (2014).</li>
<li>Wei, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Next-generation+influenza+vaccines%3A+opportunities+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Drug+Discovery%22%5BJournal%5D)">Next-generation influenza vaccines: opportunities and challenges.</a> Nature Reviews Drug Discovery. 19 (4), 239-252 (2020).</li>
<li>Krammer, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influenza%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Disease+Primers%22%5BJournal%5D)">Influenza.</a> Nature Reviews Disease Primers. 4 (3), (2018).</li>
<li>Wei, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+broadly+neutralizing+H1N1+influenza+antibodies+by+vaccination%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Induction of broadly neutralizing H1N1 influenza antibodies by vaccination.</a> Science. 27 (329), 1060-1064 (2010).</li>
<li>Chernov, V. M., Chernova, O. A., Sanchez-Vega, J. T., Kolpakov, A. I., Ilinskaya, O. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mycoplasma+contamination+of+cell+cultures+vesicular+traffic+in+bacteria+and+control+over+infectious+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Naturae%22%5BJournal%5D)">Mycoplasma contamination of cell cultures vesicular traffic in bacteria and control over infectious agents.</a> Acta Naturae. 6 (3), 41-51 (2014).</li>
<li>Michael, R. G., Joseph, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMichael%2C+RG+%22Molecular+Cloning%3A+A+Laboratory+Manual+%28Fourth+Edition%29%22">Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Fourth Edition)</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2012).</li>
<li>Kumar, P., Nagarajan, A., Uchil, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transfection+of+mammalian+cells+with+calcium+phosphate-DNA+coprecipitates%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Transfection of mammalian cells with calcium phosphate-DNA coprecipitates.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (10), (2019).</li>
<li>Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+phosphate+transfection%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Calcium phosphate transfection.</a> Current Protocols in Molecular Biology. 9, (2003).</li>
<li>Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transfection+of+DNA+into+eukaryotic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Transfection of DNA into eukaryotic cells.</a> Current Protocols in Molecular Biology. 9, 11-19 (1996).</li>
<li>Kachkin, D. V., Khorolskaya, J. I., Ivanova, J. S., Rubel, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+method+for+isolation+of+plasmid+DNA+for+transfection+of+mammalian+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+and+Protocols%22%5BJournal%5D)">An efficient method for isolation of plasmid DNA for transfection of mammalian cell cultures.</a> Methods and Protocols. 3 (4), 69(2020).</li>
<li>Luciferase assay system. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.promega.com.cn/products/luciferase-assays/reporter-assays/luciferase-assay-system">https://www.promega.com.cn/products/luciferase-assays/reporter-assays/luciferase-assay-system</a> (2021).</li>
<li>Corning 96-Well Solid Black or White Polystyrene Microplates. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates">https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates</a> (2021).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

תאי HEK293FT משמשים בדרך כלל כתאי אריזה לייצור פסאודו-וירוסים. זיהוי מיקופלסמה קבוע חיוני במהלך תרבית התא. זיהום מיקופלסמה יכול להפחית באופן דרסטי את תפוקת הפסאודו-וירוס ולפעמים קרוב לאפס. בהשוואה לזיהומים אחרים, זיהומי מיקופלסמה אינם מובילים לשינויים בערך ה- pH או לעכירות של מדיום תרבית התא. אפילו ריכוז גבוה של מיקופלסמה אינו נראה בעיניים בלתי או תחת מיקרוסקופ. שלוש שיטות פופולריות לזיהוי מיקופלסמה הן תרבית מיקופלסמה, צביעת DNA עם DAPI פלואורסצנטי או Hoechst 33258, ותגובת שרשרת פולימראז (PCR). PCR הגברת DNA מיקופלסמה בד...

מאז 1996, נגיפי H5 מסוג A/goose/Guangdong/1/96-lineage מאוד פתוגניים של שפעת העופות (HPAI) גורמים להתפרצויות שפעת מתמשכות בעופות ובעופות בר, ואחראים להפסדים סוציו-אקונומיים עצומים בתעשיית העופות העולמית. לפעמים, בני אדם גם נדבקים בו, מתמודדים עם שיעור תמותה גבוה 1,2. עם זאת, מחקר וירוס HPAI הוא לעתים קרובות מעוכב, בהתחשב בכך שזה לא יכול להיות מטופל מחוץ למעבדות בטיחות ביולוגית רמה 3. כדי לטפל בבעיה זו, פסאודו-וירוסים מאומצים כחלופה לנגיפים מסוג פרא בחלק מהניסויים של מחקרי H5 HPAI. פסאודו-וירוסים בטוחים מספיק כדי להתאמן במעבדות ברמת בטיחות ביולוגית 2.
פסאודו-וירוסים H5 HPAI שייכים לנגיפים כימריים המורכבים מליבות וירוסים חלופיים, מעטפות שומנים עם פני השטח של גליקופרוטאינים מנגיפי שפעת, וגנים מדווחים. ליבות פסאודו-וירוס נגזרות בדרך כלל מנגיף הכשל החיסוני האנושי הלנטי-ויראלי (HIV), רטרו-וירוסים כגון וירוס לוקמיה מורין (MLV) ונגיף סטומטיטיס שלפוחית השתן (VSV)3. באופן ספציפי, מערכת האריזה של HIV-1 נמצאת בשימוש נרחב לייצור פסאודו-וירוס שפעת, שבו הגנים העיקריים שסופקו הם gag ו- pol. גן ה- HIV gag מבטא חלבוני ליבה. הגן pol מבטא את האינטגראז ואת השעתוק ההפוך, שניהם נחוצים לביטוי הגן המדווח בתאים מותמרים. תוך חיקוי הגנום של הנגיף החלופי, הגן המדווח מאומץ לתוך ליבת הפסאודו-וירוס בצורת RNA. גן הכתב יבטא את החלבון בתאים המארחים. ניתן להשתמש ברמות ביטוי הגנים של גנים מדווחים כדי למדוד יעילות זיהום פסאודו-וירוס 3,4. המדווח העיקרי הוא לוציפראז גחלילית כדי למדוד את יחידות הלומינסנציה היחסית (RLU) או פעילות הלוציפראז היחסית (RLA) בתאים מותמרים. כתבים אחרים כגון lacZ, Gaussia, ו Renilla luciferase משמשים גם, רק במידה פחותה5.
פסאודו-וירוסים הם כלים אידיאליים לחקר נוגדנים מנטרלים נגד נגיפי H5 HAPI. כדי למדוד את עוצמת הנוגדנים המנטרלים, נעשה שימוש במבחני ניטרול פסאודו-וירוס (PN)6. Hemagglutinin (HA) ו neuraminidase (NA) הם גליקופרוטאינים על פני השטח של שפעת A וירוס 7,8. ה-HA מורכב מתחום ראש כדורי לקשירת קולטנים ותחום גזע לאיחוי ממברנה. חלבון NA יש את פעילות sialidase כדי להקל על שחרור וירוס 7,8. בדיקת נוירופתיה היקפית יכולה למדוד נוגדנים מנטרלים המופנים לחלבוני HA. נוגדנים מנטרלים המכוונים לאזור הראש והגזע של HA יכולים להיות מזוהים גם על ידי התקשרות נגיפית ומבחני כניסה. בהשוואה לנגיפים מסוג פראי, לניסויי נטרול פסאודו-וירוסים יש ערכי זיהוי רגישים יותר, ניתן לטפל בהם בבטחה במעבדת בטיחות ביולוגית ברמה 2, ובדרך כלל קלים יותר לתפעול בפועל.
פרוטוקול זה מציג בפירוט את הנהלים והצעדים הקריטיים של H5 HPAI pseudovirus ההכנות ומבחני PN. כמו כן, הוא דן בפתרון בעיות, הגבלה ושינויים של בדיקות אלה. במחקר זה, זן A/Thailand/1(KAN)-1/2004(TH) מנגיפי H5N1 HPAI שימש כדוגמה. כדי להשיג את סרה החיסון המשמשת בבדיקות, פרוטוקול זה בחר בחלבון HA שמקורו בזן TH כאימונוגן לחיסון עכברים.

<table><tbody><tr><td>1% צ'יקן אריתרוציטים</td><td>ביו-ערוץ</td><td>BC-RBC-C001</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>96 בארות צלחות תרבית תאים (תחתית שטוחה)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>167008</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>96 בארות צלחות תרבית תאים (תחתית עגולה)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>163320</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>אלגרה X-15R</td><td>בקמן קולטר</td> <td>-</td> <td>ציוד/צנטריפוגה</td></tr><tr><td>מזרקי אינסולין</td><td>BD BD</td><td>324910</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>סידן כלוריד נטול מים</td><td>AMRESCO</td><td>1B1110-500G</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>כלורוקווין דיפוספט</td><td>Selleck</td><td>S4157</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Modified Eagle Medium (DMEM)</td> <td>Gibco</td><td>12100-046</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>סרום בקר עוברי</td><td>Gibco</td><td>16000-044</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>HEK293FT</td><td>Gibco</td><td>R700-07</td><td>קו תאים</td></tr><tr><td>חומצה ללא HEPES</td><td>אמרסקו</td><td>0511-250G</td><td>ריאגנט</td></tr><tr><td>HIV-1 p24 אנטיגן ELISA</td><td>ZeptoMetrix</td><td>ערכת ריאגנט</td><td>801111</td></tr><tr><td>מקפיא מערכת בדיקת לוציפראז חבילת</td><td>Promega</td><td>E4530</td><td>Reagent kit</td></tr><tr><td>MDCK.1</td><td>ATCC</td><td>CRL-2935</td><td>תא</td></tr><tr><td>קו מיקרוצנטריפוגה צינורות 1.5 מ"ל</td><td>תרמו פישר מדעי</td><td>509-GRD-Q</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>Nunc צינורות צנטריפוגה חרוטית 15 מ"ל</td><td>תרמו פישר מדעי</td><td>339650</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>Nunc צינורות צנטריפוגה חרוטיים 50 מ"ל</td><td>תרמו פישר מדעי</td><td>339652</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>Nunc EasYFlask 75 ס"מ2</td><td>Thermo fisher חומר</td><td>מתכלה</td>מדעי <td></td></tr><tr><td>156499 Penicillin-Streptomycin</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>קצות פיפטה מגיב</td></tr><tr><td>(10 &mu; L)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>TF102-10-Q</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>קצות פיפטה (100 &mu; L)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>TF113-100-Q</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>קצות פיפטה (1000 &mu; L)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>TF112-1000-Q</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>צנרת סרולוגית (5 מ"ל)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>170355N</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>צנרת סרולוגית (10 מ"ל)</td> <td>תרמו פישר מדעי</td><td>170356N</td><td>חומר מתכלה</td></tr><tr><td>טריפסין / EDTA</td><td>Gibco</td><td>25200-072</td><td>מגיב</td></tr><tr><td>Varioskan פלאש</td><td>תרמו פישר מדעי</td> <td>--ציוד</td> <td>/ קורא מיקרופלייט</td></tr><tr><td>חממת מעיל מים</td><td>תרמו פישר מדעי</td><td>3111</td><td>ציוד / חממת תאים</td></tr><tr><td>פנטוברביטל נתרן</td><td>מלח סיגמא</td><td>57-33-0</td><td>מגיב</td></tr></tbody></table>

הכנת נגיפי שפעת העופות h5 מסוג פסאודו עם שיטת העברת סידן פוספט ומדידת פעילות נטרול נוגדנים

Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity

מאז 1996, נגיפי H5 מסוג A/goose/Guangdong/1/96-lineage מאוד פתוגניים של שפעת העופות (HPAI) גורמים להתפרצויות שפעת בעופות ובעופות בר. לעיתים, גם בני אדם נופלים קורבן לכך, מה שמוביל לתמותה גבוהה. עם זאת, מחקר וירוס HPAI מעוכב לעתים קרובות, בהתחשב בכך שהוא חייב להיות מטופל בתוך מעבדות בטיחות ביולוגית רמה 3. כדי לטפל בבעיה זו, פסאודו-וירוסים מאומצים כחלופה לנגיפים מסוג פרא בחלק מהניסויים של מחקרי H5 HPAI. Pseudoviruses להוכיח להיות הכלים האידיאליים לחקר נוגדנים מנטרלים נגד וירוסים HPAI H5. פרוטוקול זה מתאר את ההליכים והצעדים הקריטיים של ההכנות הפסאודו-וירוס H5 HPAI ומבחני נטרול פסאודו-וירוס. כמו כן, הוא דן בפתרון בעיות, הגבלה ושינויים של בדיקות אלה.

HA, NA ו- HIV-1 p24 ביטוי חלבון של פסאודו-וירוס שפעת כדי לזהות את יעילות האריזה הנגיפית, מלאי פסאודו-וירוס של שפעת זוהה לראשונה על-ידי בדיקת HA (איור 2A). יחידות HA למיליליטר של פסאודו-וירוסים של שפעת הן 643 (טבלה 3). בדיקות כתם מערבי ומבחני ELISA סנדוויץ' שימשו לבדיקת ביטוי חלבון HA, NA ו- HIV-1 p24. לאחר מכן חושבו היחסים של יחידת HA וכמות p24 gag עבור pseudoviruses. תוצאות בדיקת הכתם המערבי הראו שהיו 4 סוגי חלבונים: חלבוני HA0, HA1, HA2 ו-NA (אי...

כאן אנו מתארים פרוטוקול לאריזת פסאודו-וירוס ולמדידת פעילות נטרול נוגדנים.

הכנת נגיפי שפעת העופות H5 מסוג פסאודו עם שיטת העברת סידן פוספט ומדידת פעילות נטרול נוגדנים

Since 1996, A/goose/Guangdong/1/96-lineage highly pathogenic avian influenza (HPAI) H5 viruses have been causing flu outbreaks in poultry and wild birds. ...

פרוטוקול זה מתאר את ההליכים ואת השלבים הקריטיים של H5 פתוגן גבוה, שפעת העופות, תכשירי וירוס פסאודו ומבחני נטרול וירוסים מדומים. כמו כן, הוא דן במגבלת פתרון הבעיות ובשינויים של בדיקות אלה. פתוגנים פתוגניים מאוד חייבים להתבצע במעבדת בטיחות ביולוגית ברמה שלוש, בעוד שניתן לטפל בנגיפים מדומים בבטחה במעבדת בטיחות ביולוגית ברמה שתיים.כדי להתחיל, בצע השעיה של תא יחיד של תאי HEK293 FT בתווך DMEM מלא. הוסף 10 מיליליטר של תרחיף התא הבודד לצלוחית T75, ולאחר מכן דגירה ב 37 מעלות צלזיוס. שעתיים לפני הטרנספקציה, להחליף את המדיום הישן עם 10 מיליליטר של מדיום שלם טרי עם כלורוקין.מערבבים את הריאגנטים ואת הדנ"א של פלסמיד כמתואר בכתב היד, ואז מעבירים את התערובת לתווך שמעל התאים ומתנדנדים בעדינות. לאחר הדגירה, להחליף את המדיום עם 15 מיליליטר של מדיום DMEM שלם טרי. לאחר 65 שעות, קוצרים את הסופרנאטנט באמצעות צנטריפוגה.לאסוף את supernatant ו aliquot אותו. כדי לזהות ביטוי חלבון המגלוטינין, הוסף 50 מיקרוליטר של PBS לעמודות שתיים עד 12 של צלחת תחתונה עגולה היטב 96. הוסף 100 מיקרוליטר של וירוס מדומה לתוך הבארות של עמודה אחת.לאחר מכן להעביר 50 מיקרוליטר של וירוס מדומה מעמודה אחת לתוך הבארות של עמודה שתיים. בצעו את הדילול הכפול עד לטור 11 ואחריו ערבוב עדין. לאחר מכן השליכו את 50 המיקרוליטרים הנוספים מעמודה 11.הוסיפו 50 מיקרוליטר של 0.5% אריתרוציטים לכל באר ולאחר מכן ערבוב עדין. לאחר 30 עד 60 דקות של דגירה בטמפרטורת החדר, לצפות ולתעד titers hemagglutinin של וירוס pseudo. עבור טיטרציה וירוס מדומה, בצע השעיה של תא בודד של חמש פעמים 10 לתאים הרביעי למיליליטר של תאי MDCK בתווך DMEM שלם.הוסף 1, 250, 2, 500, 5, 000, 10, 000, 20, 000, ו 40, 000 תאים לבארות שונות של צלחת 96 תחתית שטוחה. לאחר הדגירה, להפשיר ולערבל את וירוס פסאודו. הוסף שישה HAU של וירוסים מדומים לכל באר של צלחת תחתונה עגולה היטב 96 ולחדש כל באר עם DMEM מלא עד 120 מיקרוליטר.מעבירים 100 מיקרוליטר מהתערובת לתאים בצלחת 96 הבאר. לדגור על צלחת התרבית במשך 48, 60, ו 72 שעות עבור זיהום ויראלי ולבצע בדיקת luciferase. כדי לבצע את הבדיקה luciferase, לשטוף את התאים על ידי הסרת המדיום בזהירות ולשטוף אותו עם 200 מיקרוליטר של PBS.הסר כמה שיותר PBS ולאחר מכן הוסף 50 מיליליטר של חיץ הליזיס לכל באר. למחרת, אזנו את הצלחות בטמפרטורת החדר למשך שעתיים, ואז נענעו את צלחות התרבית מספר פעמים והעבירו את כל הליזטים של התא לצלחות אטומות של 96 בארות. מוסיפים 50 מיקרוליטר של המצע לכל צלחת ומערבבים היטב.רשום את titers luciferase של וירוס pseudo באמצעות luminometer. הוסף 100 מיקרוליטר של תרחיף תא בודד של תאי MDCK לכל באר של צלחת 96 תחתית שטוחה ולדגור אותו במשך 20 שעות ב 37 מעלות צלזיוס. לאחר הדגירה, מפשירים ומערבלים את הנגיף המדומה ואת הסרה המאוחסנים במינוס 80 מעלות צלזיוס.לדלל את sera 20 פעמים בתווך שלם. הוסף 100 מיקרוליטר של מדיום DMEM לעמודות שלוש עד 10. מוסיפים 200 מיקרוליטר של סרה מדוללת לבארות של הטור השני ולבצע דילול סדרתי.לאחר מכן הוסף 100 מיקרוליטר של מדיום DMEM לעמודה ה -11 כבקרה השלילית. מוסיפים 100 מיקרוליטר של וירוסים מדומים לכל באר ומערבבים אותה. מעבירים 100 מיקרוליטר מהתערובת מהצלחת התחתונה העגולה היטב 96 לבאר המתאימה של צלחת תרבית התאים 96 באר.לאחר 60 שעות של דגירה ב 37 מעלות צלזיוס, לבצע את הבדיקה luciferase. בדיקת hemagglutinin הראתה כי 643 יחידות HA למיליליטר של נגיפי פסאודו שפעת נמצאים במלאי וירוס פסאודו שפעת. היחסים של HA ו- Gag P24 היו בטווח הנורמלי.בדיקת הכתם המערבי הראתה נוכחות של ארבעה סוגי חלבונים, כולל חלבוני HA0, HA1, HA2 ו-NA, מה שמצביע על הדמיון בין נגיפי פסאודו של שפעת לזה של וירוסים מסוג פראי. תוצאות טיטרציה של וירוס פסאודו מצביעות על כך שהתנאים המתאימים לפעילות הלוציפראז היחסית הגבוהה ביותר כוללים הזנה של 5, 000 תאים בבאר של צלחת באר 96 ואיתור קריאות פעילות לוציפראז יחסיות לאחר 60 שעות של הדבקה בנגיף. סרה חיסונית מקבוצת ה- DDV הציגה טיטרים מנטרלים גבוהים נגד נגיף מדומה A Thailand 1 Can 104, ואילו סרה מקבוצת הביקורת לא הציגה פעילות נטרול כלשהי.הפעילות המנטרלת של סרה החיסון הייתה חזקה בהשוואה לסרה הביקורתית, מה שמצביע על כך שנוגדנים רבים הופנו לראש החומצה ההיאלורונית בסרה החיסונית. ההבדלים המשמעותיים בין סרה החיסון לבין קבוצת הביקורת במהלך הערכת הכניסה הנגיפית מצביעים על כך שהנוגדנים מופנים לאזור גזע החומצה ההיאלורונית בסרה. בעת ביצוע הליך זה, זכור לשמור על ה- pH של תמיסת הטרנספקציה ועל מדיום התרבית יציב.

preparation-pseudo-typed-h5-avian-influenza-viruses-with-calcium

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

אימונולוגיה וזיהומים

Source: Chang, X., et al. Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity. J. Vis. Exp. (2021)This video demonstrates a luciferase-based pseudovirus titration assay to determine the optimal target cell density for maximum infection. By comparing luminescence across cell densities, the method ensures high assay sensitivity and reproducibility for downstream applications.

Determining Optimal Target Cell Density Using a Luciferase-Based Pseudovirus Infection Assay

Source: Chang, X., et al. Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity. J. Vis. Exp. (2021).This video demonstrates a luciferase-based assay to quantify pseudovirus infection in epithelial cells. The pseudovirus encodes the luciferase gene, which is expressed in infected cells. After washing, and cells are incubated with lysis buffer at an ultra-low temperature, and then thawed to induce lysis.

Assessing Pseudovirus Infection Using Luciferase Reporter Assay

סרטון זה מדגים בדיקות מיקרו-נטרול למדידת נוגדנים מנטרלים באמצעות תאי כליות כלבים Madin-Darby המבטאים יתר על המידה חומצה סיאלית מקושרת α2,6 בסרה. בדיקה זו משמשת לעתים קרובות עבור סרולוגיה אנושית...

בדיקת מיקרו-נטרול למדידת נוגדנים מנטרלים בסרום אנושי

סרטון זה מדגים טכניקה ליצירת גרסאות מילוט של נוגדנים חד-שבטיים של נגיף השפעת המנטרל. תרחיף וירוס מנוטרל נוגדנים מוזרק לביצי תרנגולת עובריות כדי להפיץ גרסאות בריחה באופן סלקטיבי. התוצאה היא אוכלוסיית וירוסים בעיקר של וריאנטים בריחה, שאושרו באמצעות בדיקת Hemagglutination.

יצירת וריאנטים של הימלטות מנגיף השפעת מפני נוגדנים מנטרלים

מחקר זה מתאר   מבוססי הדמיה assay מיקרו-נטרול לנתח את היחסים בין אנטיגני וירוסים. פרוטוקול מעסיקה וסורק ויש לו ארבעה שלבים, כולל טיטרציה, quantitation טיטרציה, נטרול, ו quantitation הניטרול. את assay עובד היטב עם שפעת A במחזור הנוכחי (H1N1) pdm09, A (H3N2), ווירוסים B.

אופטימיזציה של Assay כמותי מיקרו-נטרול

וירוסים שפעת A (IAVs) הם חשובים פתוגנים הנשימה האנושית. כדי להבין את פתוגניות של IAVs וכדי לבצע בדיקות פרה גישות חיסון הרומן, חייתיים מחקה פיזיולוגיה אנושית נדרשים. כאן, אנו מתארים שיטות להערכת iav ב פתוגנזה, התגובות ההורמונאלית, יעילות החיסון באמצעות מודל של העכבר של זיהום.

מחקרים וירוס שפעת A במודל של עכברים של זיהום

אנו מתארים שיטה שבאמצעותה אנו מזהים שאריות קריטי הנדרש עבור האיגוד של נוגדנים חד-שבטיים אנושית או מאתר שמכוונות את hemagglutinin נגיפי שפעת A וירוסים. הפרוטוקול ניתן להתאים glycoproteins משטח אחר וירוס, נוגדנים נטרול המתאימים שלהם.

דור של בריחה וריאציות של נטרול נוגדנים חד-שבטיים של וירוס שפעת

נוגדנים נטרול שפעת לתאם עם הגנה של דלקות שפעת. מבחני Microneutralization למדוד נוגדנים נטרול של sera אנושי, משמשים לעתים קרובות על שפעת אנושית סרולוגיה. אנו מתארים וזמינותו של microneutralization באמצעות MDCK-SIAT1 תאים כדי למדוד נטרול נוגדן titers עכשווי וירוסים A(H3N2) 3C.2a ו- 3C.3a בעקבות חיסון שפעת או זיהום.

מבחני מדידת שפעת בנטרול תגובות נוגדנים וירוסים A(H3N2) סרה האנושי על-ידי Microneutralization באמצעות תאים MDCK-SIAT1

פרוטוקול זה מתאר תהליך ניסיוני כדי לייצר מעטפת מדבקת ויראלי מידבקת (עמ') עם גליקורופנים מעטפות משתי שפעת זנים וכיצד לקבוע את הנגועים. פרוטוקול זה מאוד להתאמה כדי לפתח pps של כל סוג אחר של וירוסים עטוף עם מעטפה שונה גליקורופנס.

ייצור של שפעת מדבקת גבוהה-Titer חלקיקים מוקלדים עם מעטפה גליקורופנס מH5N1 פתוגניים מאוד H7N9 וירוסים העופות

וירוסים מדומים (PVs) הם נגיפים פגומים בשכפול המשמשים לחקר אינטראקציות בין וירוס מארח בתנאים בטוחים יותר מאשר טיפול בנגיפים אותנטיים. מוצג כאן פרוטוקול מפורט המראה כיצד ניתן להשתמש ב- SARS-CoV-2 PVs כדי לבדוק את יכולת הנטרול של נסיוב החולים לאחר חיסון COVID-19.

וירוסים מדומים ככלי מולקולרי לניטור תגובות חיסוניות הומורליות נגד SARS-CoV-2 באמצעות בדיקת נטרול

הפרוטוקול מתאר שיטה לתרבית תאי T של עופות במבחנה על ידי בידוד תאי T זיכרון מברווזים נגועים, מה שמאפשר יצירת תאי T ספציפיים של ברווז מטוהרים מאוד. בנוסף, הוקמה שיטת צביעת ציטוקינים תוך-תאית (ICS) למדידה מדויקת של הפרשת IFN-γ בתאי T של ברווז.

במבחנה תרבית לתאי T ברווז ספציפיים ל-H5N1 וזיהוי תגובות חיסוניות בשיטת צביעת ציטוקינים תוך תאית

חקור הכנת נגיפי פסאודו H5 של שפעת עופות ומדידת נוגדנים נטרלים באמצעות תאי HEK293 FT ושיטת העברת סידן פוספט. פרוטוקול זה מאפשר מחקר בטוח של תגובות חיסוניות לפיתוח חיסונים.

הכנת נגיפי שפעת העופות H5 מסוג פסאודו עם שיטת העברת סידן פוספט ומדידת פעילות נטרול נוגדנים

גלה סרטונים נוספים