-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
ריפוי פצעים בקרנית דגי זברה: משחיקה לניתוח הדמיה לסגירת פצעים
ריפוי פצעים בקרנית דגי זברה: משחיקה לניתוח הדמיה לסגירת פצעים
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Zebrafish Corneal Wound Healing: From Abrasion to Wound Closure Imaging Analysis

ריפוי פצעים בקרנית דגי זברה: משחיקה לניתוח הדמיה לסגירת פצעים

Full Text
3,233 Views
08:19 min
March 1, 2022

DOI: 10.3791/63605-v

Kaisa Ikkala1, Sini Raatikainen1, Frederic Michon1,2

1Institute of Biotechnology, HiLIFE,University of Helsinki, 2Institute for Neurosciences of Montpellier,Univ Montpellier

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates corneal wound healing by inducing ocular surface abrasion in zebrafish, a model organism that closely resembles human eye structure. The protocol describes the techniques used to create the abrasion and analyze cellular changes through scanning electron microscopy, revealing insights into cell shape modifications during the healing process.

Key Study Components

Research Area

  • Corneal biology
  • Wound healing mechanisms
  • Zebrafish as a model for ocular studies

Background

  • Importance of corneal transparency for vision
  • Zebrafish provide an accessible model for studying corneal pathogenesis
  • The need for effective techniques to assess wound healing

Methods Used

  • Corneal abrasion technique using an ocular burr
  • Zebrafish as the biological organism
  • Scanning electron microscopy for cellular morphology analysis

Main Results

  • Wound closure observed within three hours
  • Changes in cell shape and microridge structures near the wound site
  • Differences in microridge length in relation to cell position relative to the wound

Conclusions

  • Demonstrated how zebrafish can provide insights into corneal wound healing processes
  • Highlights the utility of this model for future pharmacological and biological research

Frequently Asked Questions

What is the significance of using zebrafish in this study?
Zebrafish are a well-established model for studying vertebrate development and disease, particularly for mechanisms relevant to human ocular conditions.
What methods were used to observe the wound healing?
The study used scanning electron microscopy to analyze changes in cell morphology following corneal abrasion.
How quickly does the wound close in zebrafish?
The wound closure was observed to occur within three hours post-abrasion.
What key cellular changes were observed during wound healing?
Changes in cell shape and microridge structure, with findings indicating a relationship between cell rearrangement and wound response.
What protocols are recommended for inducing corneal abrasion?
The protocol involves the use of an ocular burr to create the abrasion and requires specific preparation steps for anesthetizing the fish and cleaning the tools.
Can this model be used for pharmacological studies?
Yes, the zebrafish model is suitable for pharmacological studies to explore the effects of various chemicals on wound healing.
What broader implications does this research have?
This research enhances understanding of corneal biology and could inform therapeutic strategies for ocular diseases in humans.

פרוטוקול זה מתמקד בפגיעה במשטח העין של דגי הזברה באמצעות שחיקה כדי להעריך את סגירת הפצעים הבאים ברמה התאית. גישה זו מנצלת בר עיני כדי להסיר חלקית את אפיתל הקרנית ומשתמשת במיקרוסקופיית אלקטרונים סורקת כדי לעקוב אחר שינויים במורפולוגיה של התא במהלך סגירת הפצע.

שקיפות קרנית היא אינסטרומנטלית כדי לנקות את הראייה. בהקשר פתולוגי, שקיפות זו יכולה להיות אתגר. לימוד מנגנון פתוגנזה דורש מודלים פשוטים בעלי דמיון גבוה לאיבר האנושי.

בהיבטים אלה, דגי זברה הם מודל מצוין. וזה התיאור המפורט הראשון של שחיקה בקרנית בדגי זברה. טכניקה זו היא דרך פשוטה ומהירה לגרום לכניסה לפני השטח לעין.

ניתן לעקוב אחר סגירת הפצע בקלות לאחר שחיקה. כמו כן, כימיקלים, או גורמים ספציפיים, ניתן להוסיף למי הטנק כדי ללמוד את השפעתם על סגירת הפצע. כמו הפצע נוצר באופן ידני, השיטה דורשת קצת תרגול כדי להשיג תוצאות עקביות.

לפני הניסוי, הכן פתרון עבודה של 0.02%. להפשיר 2 מ"ל של 0.4% פתרון מניות. מוסיפים ל-40 מ"ל של מי מערכת.

ומניחים את הפתרון במיכל קטן. הכינו את בר העיניים על ידי בדיקה אם קצה הבר נקי. ואם יש צורך, להסיר פסולת תאים עם צמר גפן לח.

בצע חתך בצד של ספוג רך. ולהרטיב את הספוג עם מי מערכת. מניחים את הספוג על הבמה של מיקרוסקופ מנתח.

ודאו מספיק מקום עבודה לשימוש בבר. ומספיק הארה מהצד ומעלה כדי לראות את פני השטח של העין בצורה נכונה. מניחים בעדינות את הדג מרדים עם כף לתוך החתך על הספוג עם הראש בולט מפני השטח ספוג.

בזהירות להתקרב לפני השטח של העין עם קצה הבר. ולהתחיל להזיז את הקצה על פני השטח של העין בתנועה מעגלית. כאשר השחיקה נעשית, בזהירות למקם את הדגים במי המערכת הטריים המכילים משכך כאבים להתאוששות.

יש לנקות את הבר מיד לאחר השימוש עם צמר גפן לח. הרם את הדג בנקודת הזמן הרצויה ומקם אותו בתמיסת 0.02%tricaine. שמור על החיה בתמיסה עד שהתנועה האופרקולרית תיפסק לחלוטין והדגים לא יגיבו למגע.

מניחים את הדג על צלחת פטרי עם כפית, ומחזיקים אותו עם פינצטה. לערוף את ראשם של הדגים עם מספריים מנתחים. הימנע ביצוע שריטות על פני השטח של העין.

שים את הרקמה לתוך צינור מדגם המכיל 0.1 M נתרן פוספט. ולשטוף אותו עם חיץ נקי, כך שאין דם נשאר בתמיסה. לתקן את הרקמה ב 2.5% glutaraldehyde ב 0.1 M נתרן פוספט במשך 24 שעות ב 4 C.הסר את פתרון התיקון ולשטוף את המדגם מספר פעמים עם 0.1 M נתרן פוספט.

לנתח את המדגם על ידי הצבתו על טיפה של 0.1 M נתרן פוספט על צלחת ניתוח. חותכים את דגימת הראש לשניים עם מספריים מנתחים עדינים. לחלופין, לאסוף את העיניים על ידי הצבת בזהירות את קצות פינצטה בסדר לתוך ארובות העין מצד העין.

לאחר מכן, לשלוף את העין מן השקע ולהסיר רקמה נוספת. העבר את הדגימה המנותחת לתוך צינור המכיל 0.1 M נתרן פוספט. ודא שאין רקמה נוספת בצינור המדגם, כפי שהוא עשוי לדבוק בחלק העליון של העין במהלך עיבוד מדגם.

מקם את הטעינה עם הכרטיסייה על מחזיק. והמחזיק בבסיס של מיקרוסקופ מנתח. מניחים בעדינות את דגימת הרקמה על ההר עם פינצטה עדינה, קרנית פונה כלפי מעלה.

מצופה את הדגימה בפלטינה באמצעות המכשיר המתאים. ולאחסן את הדגימות בטמפרטורת החדר עד הדמיה. השג תמונות של ההגדלה הרצויה.

ולהשתמש תמונות 2000 עד 2500x לניתוח. התאם את הבהירות והניגודיות כדי לראות בבירור את כל גבולות התא והמיקרו-רידג'ים. והימנעו מחשיפת יתר של אזורים בתמונה.

פתח את תמונת TIFF עם פיג'י ImageJ 1.53. והשתמש בסרגל קנה מידה כדי להגדיר את קנה המידה. צרו קו השווה לסרגל קנה המידה בעזרת הכלי קו.

בחר נתח. לאחר מכן, הגדר קנה מידה. והקלד את המרחק הידוע.

לאחר מכן, פתח את מנהל ההחזר על ההשקעה באמצעות תפריט ניתוח, כלים. עבור גודל התא והעגלות, בחר נתח, הגדר מידות, מתארי צורה. והשתמשו בכלי זכוכית מגדלת כדי לראות את התאים תחת הגדלה.

בחרו תאים בעזרת הכלי מצולע והוסיפו כל בחירה למנהל ההחזר על ההשקעה. לבסוף, מדוד את התאים שנבחרו ושמור את המדידה. כדי להמשיך בניתוח microridge, ודא שהתמונה היא בתבנית של 8 סיביות על-ידי לחיצה על תפריט תמונה, סוג.

לאחר מכן, בחרו בתא בעזרת הכלי מצולע. ונקה את הרקע על-ידי לחיצה על ערוך ולאחר מכן נקה בחוץ. החלק את התמונה פעם עד שלוש פעמים על-ידי בחירה באפשרות 'תהליך', 'החלק'.

והתאמו את הבהירות והניגודיות מ-Image, Adjust, Brightness/Contrast, כך שהמיקרו-רידג'ים יבלטו בצורה ברורה ככל האפשר. סובב את התמונה על ידי לחיצה על תהליך, מסננים, סובבים. ולהפוך אותו בינארי על ידי לחיצה על תהליך, בינארי, הפוך בינארי.

לאחר מכן, שלד את התמונה בשחור לבן על-ידי בחירת תהליך, בינארי, שלד. השתמש בפונקציה שלד מנותח כדי למדוד את הפרמטרים microridge ולשמור את הערכים. אזור הפצע סגור בשלוש שעות לאחר הפציעה.

אבל האתר שבו גבולות הפצע מחוברים נשאר גלוי. התוצאות הראו כי על מיקרורידיום אפיתל הקרנית משופשף ניתן לראות בכמה תאים מוארכים ליד אתר הפצע. באזורים היקפיים מסוימים, המיקרורכסים הולכים לאיבוד ממרכז התא.

השוואה בין שני האזורים ההיקפיים, הראתה תאים מוארכים עם מיקרורידג'ים ממוצעים קצרים יותר, מה שמצביע על סידור מחדש של תאים כתגובה לפציעה. תוצאות אלה מצביעות על כך ששינויים בצורת התא מתואמים עם שינוי מיקרורידג ' ומדגישים את ההטרוגניות בתוך אפיתל הקרנית בתגובת הפצע. זכור כי הניתוח דורש אימון כדי לבצע פצע הומוגני לשחזור.

בנוסף למיקרוסקופיה אלקטרונית, הרקמה יכולה לשמש להיסטולוגיה, כתמים אימונולוגיים והכלבה במקום. אלה יספקו תובנה נוספת בתא ושינויים מולקולריים במהלך ריפוי הפצע. שימוש בדגי זברה מרחיב את הידע שלנו בביולוגיה של הקרנית.

יתר על כן, מודל זה מצוין למחקרים פרמקולוגיים, וניתן להשתמש בו כדי להבין יותר על התפתחות העין.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

ביולוגיה גיליון 181 קרנית אפיתל שחיקה בר עינית סגירת פצעים SEM דגי זברה.

Related Videos

מידול ניוון והתחדשות הרשתית בדגי זברה באמצעות פגיעת לייזר מוקדית

02:56

מידול ניוון והתחדשות הרשתית בדגי זברה באמצעות פגיעת לייזר מוקדית

Related Videos

629 Views

פציעה דקירת פצע של דג הזברה telencephalon מבוגרים: שיטה לחקר המוח של בעלי החוליות Neurogenesis והתחדשות

09:16

פציעה דקירת פצע של דג הזברה telencephalon מבוגרים: שיטה לחקר המוח של בעלי החוליות Neurogenesis והתחדשות

Related Videos

16K Views

Explants Keratocyte דג הזברה לחקר הגירה קולקטיבית סלולארי וReepithelialization בריפוי פצע עורית

09:35

Explants Keratocyte דג הזברה לחקר הגירה קולקטיבית סלולארי וReepithelialization בריפוי פצע עורית

Related Videos

10.4K Views

לכידת תיקון רקמות דג הזברה זחלים עם הזמן לשגות Brightfield stereomicroscopy

14:29

לכידת תיקון רקמות דג הזברה זחלים עם הזמן לשגות Brightfield stereomicroscopy

Related Videos

11.4K Views

הקמת קלינית רלוונטי Ex Vivo דגם ניתוח קטרקט מוק לחקירת תיקון פצע אפיתל במייקרו-סביבה של ילידים

07:53

הקמת קלינית רלוונטי Ex Vivo דגם ניתוח קטרקט מוק לחקירת תיקון פצע אפיתל במייקרו-סביבה של ילידים

Related Videos

7K Views

התקן הדמיה חיה לטווח ארוך עבור משופרת מניפולציה ניסויית של הזחלים דג זברה

14:05

התקן הדמיה חיה לטווח ארוך עבור משופרת מניפולציה ניסויית של הזחלים דג זברה

Related Videos

9.2K Views

אפיתל שחיקה הקרנית עם עינית Burr כמודל עבור קרנית ריפוי פצעים

07:28

אפיתל שחיקה הקרנית עם עינית Burr כמודל עבור קרנית ריפוי פצעים

Related Videos

21.2K Views

הדמיה חיה של קולטני כימוקין בנויטרופילים של דגי זברה במהלך תגובות לפצעים

06:48

הדמיה חיה של קולטני כימוקין בנויטרופילים של דגי זברה במהלך תגובות לפצעים

Related Videos

2.8K Views

מודל שחיקה אפיתליאלית לחקר ריפוי פצעי הקרנית

04:45

מודל שחיקה אפיתליאלית לחקר ריפוי פצעי הקרנית

Related Videos

3.8K Views

מודל פציעת פצע דקירה של הטקטום האופטי הבוגר באמצעות דגי זברה ומדאקה לניתוח השוואתי של יכולת התחדשות

06:12

מודל פציעת פצע דקירה של הטקטום האופטי הבוגר באמצעות דגי זברה ומדאקה לניתוח השוואתי של יכולת התחדשות

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code