Name: השתלת שתיל מדרגית, גמישה וחסכונית (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-01-06T13:20:00.000+00:00
Duration: 9 min 33 s
Description: למדו שיטת השתלה מדרגית לחקר סיגנלים מרחוק בצמחים ללא ניסיון קודם. הפרוטוקול משתמש בחומרים זמינים במעבדות ביולוגיה מולקולרית ומציע שיעור הצלחה של 45%.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

תודה לחבייר ברומוס על ההכשרה הראשונית וההדרכה בהשתלת שתילי ארבידופסיס .

1. הכנת המכשיר
<ol><li>הפוך את מכשיר השתלת הסיליקון על ידי יציקת תמיסת אלסטומר סיליקון בצלחת פטרי מרובעת (100 מ"מ x 100 מ"מ). הכן 15 מ"ל של תמיסת האלסטומר, בהתאם להנחיות היצרן. הערה: ערכות אלסטומרים מסיליקון כוללות בדרך כלל נוזל על בסיס סיליקון וחומר ריפוי, שכאשר מערבבים אותם יחד מאפשרים לסיליקון להתמצק.</li>
	<li>הכינו את צלחת הפטרי המרובעת על-ידי הנחת ארבע חתיכות ישרות של חוט 29 G בצלחת הפטרי המרובעת, במרחק שווה זו מזו (איור 1A). ודא כי החוט שוכב סומק עם החלק התחתון של התבנית. כדי ליישר את החוט במלואו, גלגלו אותו על משטח אחיד וקשיח עם חפץ כבד ושטוח (למשל, מתלה צינורות מתכת). הערה: עניבות פיתול מכילות לרוב חוט 29 G וניתן להשתמש בהן לאחר הסרת ציפוי הנייר החיצוני באצטון.</li>
	<li>יוצקים את תמיסת האלסטומר הסיליקון המעורבת על גבי החוטים ומכסים בחלק העליון של צלחת הפטרי. תנו לסיליקון להחלים במשך 24-48 שעות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>מוציאים את יריעת הסיליקון מצלחת הפטרי בעזרת מלקחיים נקיים ועוברים למשטח שטוח ונקי.</li>
	<li>הסירו את החוטים מיריעת הסיליקון. הסירו את שכבת הסיליקון הדקה שנותרה בצד החיצוני של התעלה בעזרת מלקחיים דקיקים, כדי לאפשר לתעלה להיות פתוחה בצד אחד (איור 1A).</li>
	<li>חותכים את יריעת הסיליקון בניצב לתעלות לרצועות 3 מ"מ באמצעות מספריים נקיים. מעבירים כל רצועה למעטפת רדיד אלומיניום ואוטמים בסרט הדבקה אוטומטי.</li>
	<li>יש למרוח את הרצועות בטמפרטורה של 121°C למשך 30 דקות לפחות ולאחסן עד שהן מוכנות לשימוש.</li>
</ol>2. הכנת שתילים
<ol><li>לעקר ולוונליזציה של זרעים.<ol><li>יש להשהות עד 100 זרעי Arabidopsis ב-1 מ"ל של תמיסת אקונומיקה 50% המכילה 0.1% Tween 20 בצינור מיקרוצנטריפוגה בנפח 1.5 מ"ל, ולדגור במשך 5-10 דקות. מוציאים את תמיסת האקונומיקה באמצעות צנרת או שאיפה בתנאים סטריליים. שטפו את הזרעים עם 1 מ"ל של dH2O. הקפידו להפוך את הצינורות כדי לשטוף כראוי את הזרעים ולהסיר כל תמיסת אקונומיקה שנותרה בחלק העליון של הצינור. חזור על השטיפה 4x.</li>
		<li>השאירו כ 0.25 מ"ל מים בצינורות עם הזרעים ולאחסן ב 4 °C במשך 3 ימים בחושך.</li>
	</ol></li>
	<li>מקציפים את הזרעים כהכנה להשתלה.<ol><li>הכינו צלחת אגר MS 1% כדלקמן: עבור 1 ליטר של MS (0.5% סוכרוז) מוצק בינוני, מערבבים 4.4 גרם מלח MS, 5 גרם סוכרוז ו 10 גרם אגר ב 800 מ"ל מים, להתאים את ה- pH ל 5.7 עם KOH, ולאחר מכן להביא את נפח הכולל ל 1 L עם מים נוספים. Autoclave לפחות 20, דקה לפני לשפוך ~ 25 מ"ל לתוך צלחת פטרי מרובע.</li>
		<li>בתנאים סטריליים, העבירו את המספר המתאים של זרעים מוכנים לצלחת, בעזרת קצה פיפטה של 20 μL כדי לשאוף ולהעביר את הזרעים.</li>
		<li>הניחו רצועה סטרילית על משטח הצלחת כדי לכוון את מיקום הזרעים, כך שהזרעים מיושרים עם התעלות שעל הרצועה. מוציאים את הרצועה ברגע שהזרעים מצופים. הערה: צלחת מרובעת אחת בגודל 100 מ"מ x 100 מ"מ יכולה להכיל שתי שורות שתילים (איור 1B).</li>
		<li>ברגע שהצלחות עומדות, הניחו לנוזל להתאדות מתוך התווך המוצק והצטברו בתחתית הצלחת. לאחר שהזרעים מונחים על הצלחת, הניחו על מכסה הצלחת ואטמו צד אחד של הצלחת המקביל לשתי שורות הזרעים (מסומן על-ידי האזור המסומן בכחול באיור 1B) באמצעות פרפילם. עטפו סרט נושם על גבי הפרפילם וסביב כל שאר הקצוות של הצלחת.</li>
	</ol></li>
	<li>העמידו בזהירות שתי צלחות כשהצד האטום בפרפילם פונה כלפי מטה. הפרידו את שני הלוחות בתחתית על ידי הנחת צינור צנטריפוגה אופקי של 15 מ"ל ביניהם והדקו באמצעות גומייה. ודא שמשטחי הלוחות יוצרים זווית של 100°-110° עם משטח הספסל (איור 1C).</li>
	<li>אחסן את הצלחות בכיוון זה במשך 72 שעות בחושך מוחלט ב 21 ° C, כדי לאפשר hypocotyls שתיל לגדול ~ 5 מ"מ אורך. לאחר 72 שעות, הסר את הלוחות מהחושך וגדל תחת 16 שעות אור (עוצמה של 100 μE m-2 sec-1) ו 8 שעות מחזורים כהים במשך 2-4 ימים נוספים באותה טמפרטורה לפני grafting.</li>
	<li>שתל את השתילים בין 5 ל 7 ימים לאחר צלחת. מניחים רצועת השתלה מעל השתילים, ומתאימים את ההיפוקוטיל שלהם לתעלות. מקמו בעדינות את השתיל כך שצומת השורשים-היפוקוטיל ימוקם בתחתית רצועת הסיליקון כדי להכין את השתיל לחיתוך (איור 1D).</li>
</ol>3. הליך השתלה
<ol><li>הכינו סביבת עבודה סטרילית על ידי חיטוי היקף דיסקציה עם 70% אתנול וחציבה אוטומטית של שני זוגות מלקחיים עדינים וידית אזמל. יש לבצע את כל הליכי ההשתלה במכסה מנוע סטרילי ובעזרת היקף דיסקציה לפי הצורך. בצע את רוב ההשתלה באמצעות הגדלה של פי 10.5.</li>
	<li>הכינו את השריגים. השתמש בלהב אזמל טרי כדי לחתוך את ההיפוקוטיל בניצב כדי ליצור חתך ישר ונקי. דחפו את הלהב קדימה במקום ללחוץ למטה לתוך הצמח כדי למנוע מהשתיל להידחף לתוך האגר (סרטון 1).</li>
	<li>הסר את הצילומים. הקפד לשמור על החלק החתוך של הצילום hydrated על ידי הבטחת מגע עם משטח התקשורת. לחלופין, העבירו את הנבטה לאזור החזקה ייעודי, כגון החלק העליון של צלחת פטרי מלאה ב-dH2O סטרילי, עד שהיא מוכנה לשימוש.</li>
	<li>הכינו את השורשים. משכו בעדינות את השורש על ידי תפיסת השורש ברווח שנותר בין המלקחיים הסגורים וסיבובם, תוך השארת החלק החתוך של השורשים באמצע הרצועה (סרטון 2). הערה: השורש השביר ייפגע אם יימעך ישירות בין המלקחיים הסגורים, מה שיצריך לקשור את השורש בזווית החדה של קצות הפינצטה כדי לתפעל את הרקמה.</li>
	<li>הרימו בעדינות את הצילום הרצוי באמצעות המלקחיים העדינים והכניסו לחלק העליון של הערוץ. הערה: קריטי לאשר באופן חזותי את המגע בין הגזעים לשורשים כדי להשיג שתל מוצלח (סרטון 3).</li>
	<li>לאחר שכל השתלים נעשו, עטפו את הצלחות בפרפילם ובסרט נושם והקימו את הצלחות באותו אופן כמו קודם, מבלי להפריע לשתילים או לרצועות הסיליקון. בזהירות להעביר את הלוחות לתא צמיחה להגדיר על 26 ° C עם 16 שעות אור / 8 שעות מחזורים כהים.</li>
	<li>להעריך את השתילים המושתלים בתנאים סטריליים לאחר 7-10 ימים. בזהירות להסיר את רצועת הסיליקון באמצעות מלקחיים על ידי קילוף צד אחד, המאפשר את התעלות לשחרר את השתילים. הסר את כל השורשים ההרפתקניים הצומחים מן הנצר על ידי חיתוך אותם מן הנצר עם להב אזמל טרי או ריסוק אותם באמצעות מלקחיים עדינים. העריכו ויזואלית אם השורש נצמד היטב לנצר כדי ליצור שתל מוצלח (איור 2).</li>
	<li>העבר שתלים מוצלחים לאדמת ריבוי שתילים כדי לגדול כל עוד נדרש. מכסים את האדמה בפלסטיק שקוף למשך מספר ימים עם התבססות השתילים. לאחר העברת הצמחים לאדמה, לגדול תחת מחזורי אור וחושך שהוזכרו לעיל ב 21 °C (75 °F).</li>
</ol>

<ol><li>Mudge, K., Janick, J., Scofield, S., Goldschmidt, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+history+of+grafting%5BTitle%5D)+AND+%22Horticultural+Reviews%22%5BJournal%5D)">A history of grafting.</a> Horticultural Reviews. 35, 437-493 (2009).</li>
<li>Holbrook, N. M., Shashidhar, V. R., James, R. A., Munns, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stomatal+control+in+tomato+with+ABA-deficient+roots%3A+Response+of+grafted+plants+to+soil+drying%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Stomatal control in tomato with ABA-deficient roots: Response of grafted plants to soil drying.</a> Journal of Experimental Botany. 53 (373), 1503-1514 (2002).</li>
<li>Notaguchi, M., Okamoto, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+long-distance+signaling+via+plant+vascular+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Dynamics of long-distance signaling via plant vascular tissues.</a> Frontiers in Plant Science. 6, 161(2015).</li>
<li>Ko, D., Helariutta, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shoot-root+communication+in+flowering+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Shoot-root communication in flowering plants.</a> Current Biology. 27 (17), 973-978 (2017).</li>
<li>Thomas, H. R., Frank, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connecting+the+pieces%3A+uncovering+the+molecular+basis+for+long-distance+communication+through+plant+grafting%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytologist%22%5BJournal%5D)">Connecting the pieces: uncovering the molecular basis for long-distance communication through plant grafting.</a> New Phytologist. 223 (2), 582-589 (2019).</li>
<li>Takahashi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small+peptide+modulates+stomatal+control+via+abscisic+acid+in+long-distance+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A small peptide modulates stomatal control via abscisic acid in long-distance signalling.</a> Nature. 556 (7700), 235-238 (2018).</li>
<li>Brumos, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+auxin+biosynthesis+is+a+key+regulator+of+plant+development%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Local auxin biosynthesis is a key regulator of plant development.</a> Developmental Cell. 47 (3), 306-318 (2018).</li>
<li>Corbesier, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FT+protein+movement+contributes+to+long-distance+signaling+in+floral+induction+of+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">FT protein movement contributes to long-distance signaling in floral induction of Arabidopsis.</a> Science. 316 (5827), 1030-1033 (2007).</li>
<li>Yin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Graft-union+development%3A+A+delicate+process+that+involves+cell-cell+communication+between+scion+and+stock+for+local+auxin+accumulation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Graft-union development: A delicate process that involves cell-cell communication between scion and stock for local auxin accumulation.</a> Journal of Experimental Botany. 63 (11), 4219-4232 (2012).</li>
<li>Turnbull, C. G. N., Booker, J. P., Leyser, H. M. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micrografting+techniques+for+testing+long-distance+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">Micrografting techniques for testing long-distance signalling.</a> The Plant Journal. 32 (2), 255-262 (2002).</li>
<li>Marsch-Martínez, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+flat-surface+collar-free+grafting+method+for+Arabidopsis+thaliana+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Methods%22%5BJournal%5D)">An efficient flat-surface collar-free grafting method for Arabidopsis thaliana seedlings.</a> Plant Methods. 9 (1), 14(2013).</li>
<li>Tsutsui, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micrografting+device+for+testing+systemic+signaling+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">Micrografting device for testing systemic signaling in Arabidopsis.</a> The Plant Journal. 103 (2), 918-929 (2020).</li>
<li>Xia, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elucidation+of+the+mechanisms+of+long-distance+mRNA+movement+in+a+Nicotiana+benthamiana%2Ftomato+heterograft+system%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Elucidation of the mechanisms of long-distance mRNA movement in a Nicotiana benthamiana/tomato heterograft system.</a> Plant Physiology. 177 (2), 745-758 (2018).</li>
<li>Li, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unidirectional+movement+of+small+RNAs+from+shoots+to+roots+in+interspecific+heterografts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Unidirectional movement of small RNAs from shoots to roots in interspecific heterografts.</a> Nature Plants. 7 (1), 50-59 (2021).</li>
<li>Ragni, L., Hardtke, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+but+thick+enough-the+Arabidopsis+hypocotyl+as+a+model+to+study+secondary+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Physiologia+Plantarum%22%5BJournal%5D)">Small but thick enough-the Arabidopsis hypocotyl as a model to study secondary growth.</a> Physiologia Plantarum. 151 (2), 164-171 (2014).</li>
<li>Chen, I. -J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemical+genetics+approach+reveals+a+role+of+brassinolide+and+cellulose+synthase+in+hypocotyl+elongation+of+etiolated+Arabidopsis+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Science%22%5BJournal%5D)">A chemical genetics approach reveals a role of brassinolide and cellulose synthase in hypocotyl elongation of etiolated Arabidopsis seedlings.</a> Plant Science. 209, 46-57 (2013).</li>
<li>An, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordinated+regulation+of+apical+hook+development+by+gibberellins+and+ethylene+in+etiolated+Arabidopsis+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Coordinated regulation of apical hook development by gibberellins and ethylene in etiolated Arabidopsis seedlings.</a> Cell Research. 22 (5), 915-927 (2012).</li>
<li>Vandenbussche, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethylene-induced+Arabidopsis+hypocotyl+elongation+is+dependent+on+but+not+mediated+by+gibberellins%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Ethylene-induced Arabidopsis hypocotyl elongation is dependent on but not mediated by gibberellins.</a> Journal of Experimental Botany. 58 (15-16), 4269-4281 (2007).</li>
<li>Vandenbussche, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Arabidopsis+mutant+alh1+illustrates+a+cross+talk+between+ethylene+and+auxin%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">The Arabidopsis mutant alh1 illustrates a cross talk between ethylene and auxin.</a> Plant Physiology. 131 (3), 1228-1238 (2003).</li>
<li>Deslauriers, S. D., Larsen, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FERONIA+is+a+key+modulator+of+brassinosteroid+and+ethylene+responsiveness+in+arabidopsis+hypocotyls%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Plant%22%5BJournal%5D)">FERONIA is a key modulator of brassinosteroid and ethylene responsiveness in arabidopsis hypocotyls.</a> Molecular Plant. 3 (3), 626-640 (2010).</li>
</ol>

המחברים מצהירים כי אין ניגוד עניינים.

סיכום ומשמעות יצירת איחוד שתלים היא קריטית להשתלה מוצלחת, הדורשת מגע ישיר ובלתי מופרע בין השורש לסיון. הגודל המיניאטורי והשבריריות של שתילים של צמחים קטנים כגון Arabidopsis עושה את זה מאתגר מבחינה טכנית כדי לענות על דרישה זו. טכניקה אחת שפותחה בשיטות השתלת שתיל ארבידופסיס המוקדמות הייתה להחדיר הן את הנצר והן את השורש לתוך צווארון צינורות סיליקון קצר כדי לתמוך בצומת השתל10. בעוד ששיטה זו יעילה מאוד בהגנה על שני חלקי השתל מפני הפרדה, אין זו משימה קלה להחדיר את ה...

השתלה היא טכניקת גננות עתיקה שהפכה לפרקטיקה חקלאית מבוססת בשנת 500 לפנה"ס1. השתלת זנים שונים של צמחי יבול לשיפור היבול הייתה השימוש הראשון בטכניקה זו, וממשיכה לשמש למטרה זו כיום. בעשור האחרון, השתלה משכה כמות הולכת וגדלה של תשומת לב ככלי עבור ביולוגים מולקולריים לחקור איתות למרחקים ארוכים בצמחים 2,3,4,5. בעוד שהשתלת צמחים בוגרים היא קלה יחסית, השתלת צמחים זמן קצר לאחר הנביטה היא מאתגרת. למרות זאת, לעיתים נדרש להעריך את ההשפעות של איתות למרחקים ארוכים בתהליכים כגון התפתחות צמחים, תגובות סביבתיות ופריחה 6,7,8.
Arabidopsis thaliana נקבע כאורגניזם מודל בביולוגיה של צמחים מסיבות רבות, כולל גודלו הקטן יחסית, מה שהופך אותו קל לגדול בתוך מעבדה. עם זאת, גודלם הקטן ושבריריותם של שתילי ארבידופסיס הופכים את השתלת שתילים צעירים למאתגרת מאוד. במקרים רבים, נדרשת הכשרה מעשית נרחבת כדי להשיג בהצלחה שתלי שתילים. במהלך השנים חלו שיפורים מתודולוגיים רבים שזיהו תנאי גידול אידיאליים וטכניקות חדשות להגדלת שיעור ההצלחה של השתלת שתילים 9,10,11. הכלי האחרון שהוצג היה שבב השתלת שתיל Arabidopsis, המאפשר גם למשתמשים חסרי ניסיון להשיג רמות מקובלות של הצלחת השתלה12. בעוד התקדמות זו הורידה משמעותית את המחסום הטכני של השתלת שתילים, מכשיר השבב יקר, ומספר השתלים שניתן לבצע במקביל הופך במהירות ליקר ביותר.
בנוסף, מכשיר זה יכול לשמש רק עבור שתילי Arabidopsis שיש להם ממדים hypocotyl הדומים שתילים מסוג בר. בעוד ארבידופסיס הוא מין אבן היסוד בעולם הגנטיקה המולקולרית של הצמח, לאחרונה נעשתה עבודה במינים אחרים באמצעות השתלת שתילים. דוגמאות לכך כוללות השתלת פולי סויה והשעועית הנפוצה, טבק לעגבנייה וקנולה לארבידופסיס, ולאחר מכן דגימת שתי הרקמות עבור רנ"א קטן13,14. לכן, שיטת השתלה הנגישה לרוב המעבדות וניתנת להתאמה בקלות למגוון רחב של מיני צמחים ללא שינויים משמעותיים בטכניקה היא רצויה ביותר.
פרוטוקול זה מפרט שיטה המשתמשת בייצור פנימי של מכשיר השתלה פשוט המאפשר התאמה אישית מלאה של קוטר ואורך תעלת השתלה כדי להתאים לכל מורפולוגיית שתיל ברוב מיני הצמחים. הייצור של מכשירים אלה הוא זול מאוד מדרגי מאוד, כמו הרכיבים היחידים הדרושים הם אלסטומר סיליקון, חיווט או צינורות בגודל הנכון, להב דיוק גבוה, מיכל לשמש תבנית. בעקבות פרוטוקול ההשתלה המפורט כאן, משתמשים יכולים להשיג שיעורי השתלה מוצלחים של 45% (n = 105), בדומה לתוצאות ההשתלה שדווחו בעבר10,12.

<table><tbody><tr><td>צינורות חרוטיים 15 מ"ל</td><td>VWR International Inc</td><td>10026-076</td><td></td></tr><tr><td>ACETONE (HPLC & ממס מוסמך ACS) 4 ליטר</td><td>VWR</td><td>BJAH010-4</td><td></td></tr><tr><td>BactoAgar</td><td>Sigma</td><td>A1296-500g</td><td></td></tr><tr><td>Dow SYLGARD 184 סיליקון אנקפסולנט שקוף 0.5 ק"ג ערכת</td><td>Dow</td><td>2646340</td><td></td></tr><tr><td>D-סוכרוז (ביולוגיה מולקולרית), 1 ק"ג</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP220-1</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Snap-Cap Microcentrifuge Flex-Tube צינורות (1.5 מ"ל), חבילה של 500</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>20901-551 / 05-402</td><td></td></tr><tr><td>פישרברנד דיוק גבוה #4 סגנון אזמל ידית</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>12-000-164</td><td></td></tr><tr><td>פישרברנד ללא עופרת קלטת חיטוי</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>15-901-111</td><td></td></tr><tr><td>פישרברנד מרובע פטרי צלחות פישר</td><td>סיינטיפיק</td><td>FB0875711A</td><td></td></tr><tr><td>Leica זום 2000 סטריאו מיקרוסקופ</td><td>מיקרוסקופ מיקרוסקופ מרכזי</td><td>L-Z2000</td><td></td></tr><tr><td>קלטת מיקרופור</td><td>3M</td><td>B0082A9FEM</td><td></td></tr><tr><td>Murashige ו-Skoog בזאלי בינוני</td><td>Sigma</td><td>M5519-10L</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Genesee Scientific</td><td>16-101</td><td></td></tr><tr><td>אשלגן הידרוקסיד</td><td>VWR International Inc</td><td>AA13451-36</td><td></td></tr><tr><td>Redi-earth Plug and Seedling Mix</td><td>Sun Gro Horticulture</td><td>SUN239274728CFLP</td><td></td></tr><tr><td>סקוטס אוסמוקוט פלוס</td><td>האמרט אינטרנשיונל</td><td>7630600</td><td></td></tr><tr><td>עיצוב כירורגי מס' 22 להב אזמל פחמן</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>22-079-697</td><td></td></tr><tr><td>טווין 20, 500 מ"ל</td><td>פישר סיינטיפיק</td><td>BP337500</td><td></td></tr><tr><td>פינצטה DUMONT STYL55 DUMOXEL POLS 110 מ"מ</td><td>VWR</td><td>102091-580</td><td></td></tr></tbody></table>

השתלת שתיל מדרגית, גמישה וחסכונית

Scalable, Flexible, and Cost-Effective Seedling Grafting

השתלת שתילים בשלב מוקדם הפכה לכלי פופולרי בגנטיקה מולקולרית לחקר יחסי שורשים-נבטים בתוך צמחים. השתלת שתילים בשלב מוקדם של צמח המודל הקטן, Arabidopsis thaliana, היא מאתגרת מבחינה טכנית וגוזלת זמן רב בשל גודלם ושבריריותם של שתיליו. אוסף הולך וגדל של שיטות שפורסמו מתארות טכניקה זו עם שיעורי הצלחה משתנים, קושי ועלויות נלוות. מאמר זה מתאר הליך פשוט להכנת מכשיר השתלה לשימוש חוזר פנימי באמצעות תערובת אלסטומרים מסיליקון, וכיצד להשתמש במכשיר זה להשתלת שתילים. בזמן פרסום זה, כל מכשיר השתלה לשימוש חוזר עולה רק $0.47 בחומרים מתכלים לייצר. באמצעות שיטה זו, מתחילים יכולים לקבל שתילים מוצלחים הראשונים שלהם בתוך פחות מ 3 שבועות מתחילתו ועד סופו. הליך נגיש זה יאפשר למעבדות גנטיקה מולקולרית של צמחים לבסס השתלת שתילים כחלק נורמלי מתהליך הניסוי שלהם. בשל השליטה המלאה שיש למשתמשים ביצירה ועיצוב של מכשירי השתלה אלה, טכניקה זו יכולה להיות מותאמת בקלות לשימוש בצמחים גדולים יותר, כגון עגבניות או טבק, אם תרצה בכך.

היבטים שונים של עיצוב רצועת ההשתלה נבדקו כדי לזהות את תנאי ההשתלה האופטימליים הדורשים את המיומנות הטכנית הנמוכה ביותר (טבלה 1). כל ניסויי ההשתלה הושלמו על 0.5% סוכרוז MS בינוני, אשר דווח בעבר כמדיום השתלה אידיאלי11,12.
לא ניתן להשיג גידול אופטימלי של שתילים באמצעות נביטה ברצועה באיטרציה הראשונה של רצועת הסיליקון, התעלות הסגורות נוצרו על ידי השארת שכבת הסיליקון הדקה שנותרה על גב תעלות הרצועה לאחר הסר...

פרוטוקול זה מתאר שיטת השתלת שתילים חזקה שאינה דורשת ניסיון או הכשרה קודמים וניתן לבצע אותה בעלות נמוכה מאוד תוך שימוש בחומרים הנגישים בקלות ברוב מעבדות הביולוגיה המולקולרית.

Early-stage seedling grafting has become a popular tool in molecular genetics to study root-shoot relationships within plants. Grafting early-stage ...

השתלת זריעה בשלב מוקדם היא כלי רב עוצמה לקביעת איתות למרחקים ארוכים בצמחים. אנו מקווים כי שיטה זו תסייע באימוץ מוצלח של השתלת זריעה ללא הכשרה מעשית. התחילו בהכנת צלחת פטרי מרובעת, בגודל 100x100 מילימטרים ליציקת אלסטומר הסיליקון.קח חוט מד 29 בעניבות פיתול לאחר הסרת ציפוי הנייר החיצוני על החוט עם אצטון. ויישרו את החוט במלואו על ידי גלגולו על משטח קשה ואחיד עם חפץ שטוח וכבד, כמו מתלה צינורות מתכת. לאחר מכן, הניחו ארבע חתיכות של חוטים מיושרים במרחק שווה זה מזה בצלחת הפטרי המרובעת, והבטיחו שהחוטים יהיו שטוחים בתחתית המנה.יוצקים את תמיסת אלסטומר הסיליקון המעורבת על גבי החוטים בצלחת הפטרי ומניחים את הכיסוי על הצלחת. לאחר שאפשרו לסיליקון להחלים במשך 24 עד 48 שעות בטמפרטורת החדר, הסירו את יריעת הסיליקון מצלחת הפטרי בעזרת מלקחיים נקיים והעבירו אותה למשטח נקי ושטוח. הסירו את החוטים מיריעת הסיליקון.כדי לוודא שהתעלות פתוחות בצד אחד, השתמשו במלקחיים עדינים כדי לנקות את שכבת הסיליקון הדקה שחוסמת את הצד הפתוח של הערוצים. חותכים את יריעת הסיליקון בניצב לתעלות לרצועות שלושה מילימטר באמצעות מספריים נקיים. מניחים כל רצועה במעטפת רדיד אלומיניום ואוטמים אותה בסרט הדבקה אוטומטי.יש לבצע אוטוקלאבינג לרצועות בטמפרטורה של 121 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות לפחות לפני אחסונן עד לצורך. כדי לעקר ולחרר את הזרעים, יש לקחת מיליליטר אחד של תמיסת אקונומיקה 50% המכילה 0.1% Tween 20 בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מיליליטר ולהשהות בה עד 100 זרעי ערבידופסיס. דוגרים על תרחיף הזרעים בטמפרטורת החדר למשך חמש עד 10 דקות.לאחר הדגירה, לשאוף או פיפטה החוצה את תמיסת אקונומיקה בתנאים סטריליים. שוטפים את הזרעים במיליליטר אחד של מים מזוקקים מעוקרים. הקפד להפוך את הצינורות כראוי בעת שטיפת הזרעים.כדי להסיר תמיסת אקונומיקה שנותרה בחלק העליון של הצינור, חזור על השטיפה ארבע פעמים. השאירו כ 250 מיקרוליטר מים עם הזרעים בצינור, ואחסנו את הזרעים בחושך בארבע מעלות צלזיוס במשך שלושה ימים. לאחר מכן, לפני ציפוי הזרעים, הניחו את הרצועות הסטריליות על פני צלחת הטרשת הנפוצה שהוכנה כדי להנחות את יישור הזרעים עם התעלות שעל הרצועות.לאחר מכן, בעבודה בתנאים סטריליים, להשתמש קצה פיפטה 20 מיקרוליטר כדי לשאוף ולהעביר את המספר המתאים של זרעים מוכנים על הצלחת. לאחר שהזרעים מצופים, מסירים את הרצועות הסטריליות. מכסים את הצלחת.וחותמים את אחד מצידי הצלחת במקביל לשורות הזרעים עם פרפילם. עטפו סרט נושם על גבי הפרפילם וסביב כל הקצוות האחרים של הצלחת כדי לאפשר חילופי אוויר במהלך הדגירה. כוונו בזהירות שתי צלחות במאונך כשצדדיהן האטומים בפרפילם פונים כלפי מטה.הפרידו אותם בתחתית על ידי הצבה אופקית של צינור צנטריפוגה של 15 מיליליטר ביניהם, תוך שהם מאבטחים אותם יחד למעלה עם גומייה. ודא שמשטחי הפלטה יוצרים זווית של 100 עד 110 עם משטח הספסל. אחסנו את הצלחות בכיוון זה במשך 72 שעות בחושך מוחלט בטמפרטורה של 21 מעלות צלזיוס כדי לאפשר לשתילים לגדול באורך של כחמישה מילימטרים.לאחר מכן, הסר את ההתקנה מהחושך ושמור אותה תחת מחזור אור של 16 שעות ושמונה שעות חושך למשך יומיים עד ארבעה ימים באותה טמפרטורה לפני ההשתלה. שתל את השתילים בין חמישה לשבעה ימים לאחר הצלחתם. מניחים רצועת השתלה מעל השתילים, ומתאימים את ההיפוקוטיל שלהם לתעלות.מקמו בעדינות את השתיל, כך שצומת השורש-היפוקוטיל נשאר בתחתית רצועת הסיליקון כדי להכין את השתיל לחיתוך. עבודה במכסה מנוע סטרילי בעזרת היקף דיסקציה, להכין את scions עבור grafting. בעזרת להב אזמל טרי, יוצרים חתך ישר, נקי, מאונך לרוחב ההיפוקוטי.הימנעו מללחוץ ולדחוף את השתיל לתוך האגר. לאחר מכן, להסיר את המצנח ולשמור את החלק החתוך של המצנח hydrated על ידי הבטחת מגע עם משטח התקשורת. לחילופין, ניתן להעביר את המצנח לצלחת פטרי מלאה במים מזוקקים סטריליים.כדי להכין את השורשים, תפסו בזהירות את השורש בתוך החלל שבין המלקחיים הסגורים וסובבו בעדינות כדי למשוך אותו, תוך השארת החלק החתוך של השורשים באמצע הרצועה. לאחר מכן, הרימו בעדינות את המצנח הרצוי באמצעות המלקחיים העדינים והכניסו אותו לחלק העליון של התעלה. חזותית, לאשר את הקשר בין scion ו rootstock כדי לקבל שתל מוצלח.לאחר שכל השתלים בוצעו, עטפו את הצלחות בפרפילם ובסרט נושם, והציבו את הצלחות באותו אופן כפי שהודגם קודם מבלי להפריע לשתילים או לרצועות הסיליקון. בזהירות להעביר את הלוחות לתא צמיחה להגדיר על 26 מעלות צלזיוס עם מחזור אור 16 שעות ושמונה שעות חושך. לאחר שבעה עד 10 ימים, העריכו את השתילים המושתלים בתנאים סטריליים באמצעות מלקחיים כדי לקלף בזהירות את רצועת הסיליקון מצד אחד ולשחרר את השתילים מהתעלות.הסר כל שורשים הרפתקניים הצומחים מן הנצר על ידי חיתוך אותם עם להב אזמל טרי או ריסוק אותם עם מלקחיים עדינים. שוב, העריכו ויזואלית אם השורש נקשר היטב לנצר ויצר שתל מוצלח. מעבירים את השתלים המוצלחים לאדמת ריבוי שתילים ומכסים את הקרקע בפלסטיק שקוף למשך מספר ימים בזמן שהשתילים מתבססים.אפשרו לצמחים לגדול תחת מחזורי האור והחושך שהוזכרו קודם לכן בטמפרטורה של 21 מעלות צלזיוס. ניסויי השתלה לקביעת פרוטוקול ההשתלה האופטימלי גילו שיעור הצלחה כולל של 25% כאשר הזרעים נבטו ישירות על רצועות הסיליקון עם תעלות סגורות. כיוון מחדש של הזרעים כדי לשמור על העוברים והצבעה רדיקלית כלפי מטה במהלך הנביטה הגדילו מעט את יעילות ההשתלה ל -33% עם הסרת סגירת הסיליקון על התעלות כדי לאפשר מגע בין הזרע למדיום הגידול, 85% מהשתילים נבטו בהצלחה.עם זאת, שיעור הצלחת ההשתלה נותר על 31%, מה שמצביע על כך שלא ניתן להשיג גידול אופטימלי של שתילים באמצעות נביטה ברצועה. באופן מעניין, הפרוטוקול שהודגם שבו שתילים טופחו אנכית על צלחת ההשתלה לפני שהוכנסו לתעלות הפתוחות ברצועות הניב שיעור הצלחה כולל של השתלה ל -48% במהלך שני הניסויים הראשונים. בהתחשב באחוזי ההצלחה הנמוכים יותר של הניסוי השלישי והקטן יחסית, שניתן לייחס לשינויים קלים באתרי ההשתלה, נמצא כי הצלחת ההשתלה הכוללת היא 45%, בדומה לשיטה בה טופחו השתילים על לוחות אופקיים, נחתכו על משטח מוצק והוחדרו לרצועות השתלה.עם זאת, הפרוטוקול המוכח גוזל פחות זמן באופן יחסי. באמצעות פרוטוקול זה, מעבדות חדשות להשתלת שתילים יכולות ליצור במהירות מספר רב של התקני תמיכה להשתלה תוך יכולת להתאים אישית את המכשיר כך שיתאים לצרכים הספציפיים שלהן בקלות.

scalable-flexible-and-cost-effective-seedling-grafting

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

מקור: בירנינק, ב. מ. ואחרים. הזרקה ישירה של שתילי תירס באמצעות הזרקה של וירוס הפסיפס של זנב שועל רקומביננטי ושיבוטים זיהומים של וירוס פסיפס קנה הסוכר. J. Vis. Exp. (2021)הסרטון הזה מדגים את העברת שיבוטים ויראליים רקומביננטיים בתיווך אגרובקטריה לשתילי תירס לצורך השתקת גנים. הוא מתאר את תהליך זיהום האגרובקטרים , התפשטות וירוסית מערכתית ושינויים פנוטיפיים המונעים מהפרעות RNA.

העברת שיבוטים ויראליים רקומביננטיים בתיווך אגרובקטריום לשתילי תירס להשתקת גנים

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לייצר שתלי כלי רקמה מהונדסת, כי הם פונקציונליים להשתלה לעכברים על ידי זריעה כפולה תאי גזע pluripotent מושרה באופן חלקי (PiPSC) - נגזר תאי שריר חלק וPiPSC - תאי האנדותל נגזרו על bioreactor פיגום כלי decellularized.

דור והארכת כלי רקמות מהונדסות במודל עכבר

כלי דם מהונדסים Scalable ישפרו ישימות קליניות. באמצעות מדריכי 3D מודפס ניכרים בקלות, טבעות של שריר חלק בכלי דם נוצרו ומוערמות לצורה צינורי, ויצרו שתל וסקולרית. שתלי יכול להיות בגודל כדי לענות על המגוון של ממדים עורקים אנושיים כלילית פשוט על ידי שינוי גודל המדריך מודפס 3D.

Scaling של שתלי כלי דם שהונדס בשיטות מדריכי 3D מודפס ואת שיטת נחת הטבעת

מערכת פשוטה רב-תכליתי, בעלות נמוכה במבחנה הידרופוני בהצלחה אופטימלי, הפעלת ניסויים בקנה מידה גדול בתנאים סטריליים. מערכת זו מקלה על היישום של חומרים כימיים פתרון וספיגה יעילה שלהם על ידי השורשים ללימודי מולקולרית, ביוכימיה ו פיזיולוגיים.

עלות נמוכה גמיש מערכת הידרופונית להערכת תגובות צמח מולקולות קטנות בתנאים סטריליים

כאן אנו מציגים פרוטוקול מפורט להכנת ביעילות הומו - ו heterografts בין אבטיח דלעת הבקבוק, בנוסף לשיטות של דגימה רקמה, דור נתונים, ניתוח נתונים, עבור החקירה של הקור מגיבים מיקרו Rna.

יצירת הומו - ו Heterografts בין אבטיח דלעת הבקבוק לחקר מיקרו Rna קר-תגובה

רקמות מהונדסות מסתמכות במידה רבה על רשתות כלי דם נאותות כדי לספק חומרים מזינים וגזים חיוניים ולהסיר פסולת מטבולית. בעבודה זו, פרוטוקול זריעה צעד אחר צעד של תאי אנדותל ותאי תמיכה יוצר רשתות כלי דם מאורגנות מאוד בפלטפורמת תפוקה גבוהה לחקר התנהגות כלי שיט מתפתחת בסביבה תלת-ממדית מבוקרת.

זריעת תאים Stepwise על פיגומים Tessellated ללמוד כלי דם מונבטים

פרוטוקול זה נועד לספק מידע הדרכה עבור הפצת כלת של קנאביס סאטיבה L. על ידי יישום מערכות aeroponic. השיטה המתוארת כאן כוללת את כל האספקה והפרוטוקולים הדרושים כדי לשחזר בהצלחה תכונות מורפולוגיות וכימיות רצויות בסוג הקנאביס.

שימוש במערכות אירופוניות להפצת כליות של קנאביס

המאמר מתאר פרוטוקול חילוץ עוברים להתחדשות של עוברים לא בשלים הנגזר מההכלאה הבין-מינית של Cucurbita pepo ו- Cucurbita moschata.  ניתן לשכפל את הפרוטוקול בקלות והוא יהווה משאב חשוב לתוכניות גידול סקווש.

פרוטוקול הצלת עוברים להכלאה בין-מינית בסקווש

אנו משתמשים בכלי מעבדה פשוטים כדי לבחון את ארכיטקטורת מערכת השורשים (RSA) של Arabidopsis ו- Medicago. העציצים גדלים באופן הידרופוני על גבי רשת ומפוזרים באמצעות מברשת אמנותית כדי לחשוף את ה-RSA. התמונות מצולמות באמצעות סריקה או מצלמה ברזולוציה גבוהה, ולאחר מכן מנותחות באמצעות ImageJ כדי למפות תכונות.

פרוטוקול פשוט למיפוי תכונות ארכיטקטורת מערכת שורש הצמח

כאן, אנו מציגים פרוטוקול בתפוקה גבוהה להעברה זמנית של מיליוני פרוטופלסטים של תירס לבדיקת ספריות גדולות של פלסמידים בתאי מזופיל תירס.

טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים של מזופיל תירס

כאן, אנו מספקים את הפרוטוקול המפורט של שיטת טרנספורמציה חד-שלבית בתיווך Agrobacterium tumefaciens לייצור צמחים מרוכבים.

שיטה יעילה וניתנת לשחזור לייצור צמחים מרוכבים על ידי טרנספורמציית שורשים שעירים מבוססי קנה שורש אגרובקטריום

למדו שיטת השתלה מדרגית לחקר סיגנלים מרחוק בצמחים ללא ניסיון קודם. הפרוטוקול משתמש בחומרים זמינים במעבדות ביולוגיה מולקולרית ומציע שיעור הצלחה של 45%.

השתלת שתיל מדרגית, גמישה וחסכונית

גלה סרטונים נוספים