Name: טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים של מזופיל תירס (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-06-23T12:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 38 s
Description: למדו פרוטוקול טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים ממזופיל תירס באמצעות PEG. השיטה מאפשרת טרנספקציה של מיליוני תאים עם יעילות של 20-50% לחקר ביוטכנולוגיה צמחית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי המכון הלאומי לחקר הגנום האנושי הכשרה בין-תחומית במדעי הגנום (מענק הכשרה T32 מס' HG000035 ל- J.T.) והמכון הלאומי לבריאות (NIGMS 1R35GM139532 ל- C.Q.) ועל ידי הקרן הלאומית למדע (RESEARCH-PGR IOS-1748843 ו- PlantSynBio 2240888 ל- CQ). אנו מודים לאנדראה גאלובאטי מאוניברסיטת ראטגרס על מתנת זרעי התירס.

1. גידול החומר הצמחי
<ol><li>שטפו את גרעיני התירס פעמיים במי ברז. משרים את הגרעינים במי ברז למשך הלילה בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>למחרת, מלאו מגש פתיחה של 72 תאים זרעים עם ורמיקוליט רטוב 1:1: אזוב כבול. שוטפים את הגרעינים פעם אחת ושותלים אותם בקצה הפקק, גרעין אחד בכל תא.</li>
	<li>לגדול בתנאים של יום ארוך (16 שעות אור, 8 שעות חשוכות) ב 25 °C במשך 3 ימים.</li>
	<li>מעבירים לחושך מתמיד ב 25 מעלות צלזיוס, וגדלים במשך 9-11 ימים.</li>
</ol>2. בידוד פלסמיד
<ol><li>הפוך E. coli מסחרי מוכשר כימית עם פלסמיד(ים) של עניין על פי הוראות היצרן.</li>
	<li>לגדל את E. coli שעבר טרנספורמציה ב 50 מ"ל של LB בינוני נוזלי עם אנטיביוטיקה מתאימה לילה ב 37 ° C עם רעיד.</li>
	<li>משחררים את האי-קולי על ידי צנטריפוגה למשך 10 דקות בטמפרטורה של 3,000 x גרם בטמפרטורת החדר. חלצו את הפלסמידים באמצעות ערכת בידוד DNA של פלסמיד midiprep הזמינה באופן מסחרי.</li>
	<li>הערך את ריכוז ה- DNA של פלסמיד באמצעות ספקטרופוטומטר מיקרו-נפח. הערה: חומר המתאים לטרנספקציה צריך להיות בריכוז של ≥800 ננוגרם/μL ו-A260/A280 של ≥1.8.</li>
</ol>3. בידוד פרוטופלסט
<ol><li>הכן 20 מ"ל של תמיסת אנזים.<ol><li>הוסף 2.18 גרם של מניטול, 0.30 גרם של צלולאז R-10, ו 0.06 גרם של macerozyme R-10 לצינור צנטריפוגה 50 מ"ל. הפוך כדי לערבב את האבקות. הוסף H2O נטול יונים ל- 15 מ"ל. הוסף 200 μL של 1 M MES, pH 5.7. מערבולת לערבב.</li>
		<li>חממו את התמיסה ב-55°C למשך 10 דקות. מצננים בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.</li>
		<li>הוסף 20 μL של 1 M CaCl2, 0.02 גרם של אלבומין בסרום בקר, ו 100 μL של 1 M β-mercaptoethanol.</li>
		<li>ממלאים עד 20 מ"ל עם H2O. יוצקים לתוך עטופה בנייר כסף 250 מ"ל.</li>
	</ol></li>
	<li>הוציאו את שתילי התירס מהחושך. חותכים אותם כמה סנטימטרים מעל הקרקע באמצעות סכין גילוח חדש. מניחים את הקצוות החתוכים במים. יש לשמור אותם בחושך בטמפרטורת החדר בזמן שאינם בשימוש.</li>
	<li>בחר את העלים השני והשלישי של כל שתיל, דואג להוציא עלים עם אזורים חומים או פגומים. בחר 12-16 דף. חותכים ~1 ס"מ מקצה כל עלה ומשליכים. לאחר מכן, חותכים קטע של 10 ס"מ מכל עלה. הערה: אם יש צורך ברקמה נוספת, השתמש בנפח נוסף של 20 מ"ל של תמיסת אנזים במיכל נוסף של 250 מ"ל. כמות גדולה מדי של חומר עלים בכמות נתונה של תמיסת אנזימים עלולה להפחית את הכדאיות.</li>
	<li>ערמו את חלקי העלים זה על גבי זה עם קצוות הבסיס יחד. הדקו את הצרור יחד בקצה הבסיס באמצעות תפס קלסר. מניחים את צרור העלים על פיסת נייר לבן.</li>
	<li>אוחזים את העלים ~ 1 ס"מ מהקצה הדיסטלי. בעזרת סכין גילוח חדש, חותכים את העלים מהקצה הדיסטלי בניצב לורידים לפרוסות דקות (0.5-1 מ"מ). הימנעו מחיתוך ישר למטה, אלא עשו פרוסות קצרות קדימה דרך הרקמה.<ol><li>החליפו את סכיני הגילוח בכל פעם ששאריות גלויות מתחילות להיות מונחות על הנייר. שאריות גלויות מעידות על מעיכה של הרקמה עקב להב עמום או טכניקה לקויה.</li>
	</ol></li>
	<li>לאחר חיתוך ~ 2 ס"מ מאורך צרור העלים, העבירו מיד את הפרוסות לכוס תמיסת האנזים. אל תאפשר לחומר להתייבש, מכיוון שהדבר יפחית את מספר הפרוטופלסטים המתקבלים. מערבלים בעדינות את תמיסת האנזים כדי להרטיב את החומר.<ol><li>הניחו מכסה רדיד אלומיניום מעל הכד כדי לחסום את האור. חזור על תהליך החיתוך וההעברה עד שכל החבילה נחתכת קרוב לתפס הקלסר.</li>
	</ol></li>
	<li>מעבירים את תמיסת האנזים לצנצנת פעמון. חדירת ואקום בין -50.8 kPa ל- -67.7 kPa ביחס ללחץ הסביבה למשך 3 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>מעבירים את הכד לשייקר שולחן. יש לנער ב-40 סל"ד במשך 2.5 שעות בטמפרטורת החדר. סובבו בעדינות את הכד ביד. כאשר מתעכל במלואו, תמיסת האנזים תיראה מעט חלבית. אם הפתרון עדיין ברור, המשיכו לרעוד ב-40 סל"ד עד שעה נוספת. אין לחרוג מ-3.5 שעות.</li>
	<li>במהלך העיכול, הכינו תמיסת מניטול + MES + MgCl2 (MMG), תמיסת פוליאתילן גליקול (PEG) ותמיסת דגירה.<ol><li>MMG: הוסף 5.47 גרם מניטול, 200 מיקרוליטר של 1 M MES, pH 5.7 ו- 750 μL של 1 M MgCl2 לצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל. ממלאים עד 50 מ"ל במערבולת H2O. מזוקקת להתמוססות. מניחים על קרח.</li>
		<li>תמיסת דגירה: הוסף 5.47 גרם מניטול, 200 מיקרוליטר של 1 M MES ב- pH 5.7, ו- 200 μL של 1 M KCl לצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל. ממלאים עד 50 מ"ל במערבולת H2O. מזוקקת להתמוססות. מניחים על קרח.</li>
		<li>תמיסת PEG: הוסף 0.44 גרם מניטול, 1.0 גרם PEG ו-400 מיקרוליטר של 1 M CaCl2 לצינור צנטריפוגה של 15 מ"ל. ממלאים עד 4 מ"ל במערבולת H2O. מזוקקת לערבוב. יש לדגור בטמפרטורה של 37°C עם ניעור במשך 30 דקות עד להמסה מלאה. יש לשמור בטמפרטורת החדר.</li>
	</ol></li>
	<li>נערו את תמיסת האנזים במהירות 80 סל"ד למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>מניחים את הכד עם תמיסת האנזים על קרח. אין להסיר את כיסוי נייר הכסף. הוסף 20 מ"ל של MMG קר כקרח לתמיסת האנזים. סנן דרך מסננת תאים 40 מיקרומטר לתוך צינור צנטריפוגה 50 מ"ל. הערה: שמור את כל הפתרונות על קרח עבור השלבים הבאים עד להוספת ה- PEG. שמור את הפרוטופלסטים מכוסים בנייר כסף כדי למזער את החשיפה לאור.</li>
	<li>לפצל את התסנין לנפחים שווים של 10 מ"ל כל אחד. יוצקים כל נפח לתוך צינור צנטריפוגת זכוכית עגול, ומסתובבים כלפי מטה במשך 4 דקות ב 100 x גרם בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>השליכו את הסופרנאטנט והוסיפו 1 מ"ל MMG קר כקרח לכל צינור. השהה מחדש את הכדוריות על ידי ערבול עדין והקשה על הצינורות. שלבו את הדגימות לצינור צנטריפוגת זכוכית עגול אחד. הוסף MMG לנפח כולל של 5 מ"ל. יש לסחוט כלפי מטה במשך 3 דקות במהירות של 100 x גרם בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>יש לשטוף עם 5 מ"ל MMG, ולסובב כלפי מטה במשך 3 דקות במהירות של 100 x גרם בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>חזור על הכביסה עם 5 מ"ל MMG, וסחרור כלפי מטה במשך 3 דקות ב 100 x גרם בטמפרטורת החדר. לאחר סיבוב השטיפה השנייה, שימו לב אם הסופרנאטנט צלול. אם נשאר מעונן, בצעו שטיפה שלישית.</li>
	<li>להשעות מחדש את protoplasts ב 1 מ"ל של MMG. מכסים באופן רופף בנייר כסף ושומרים על קרח.</li>
	<li>לקבוע את תשואת protoplast ולבדוק את הכדאיות.<ol><li>בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל, הוסף יחד 4 μL של פרוטופלסטים ו- 72 μL של MMG.</li>
		<li>בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל, הוסף 1 μL של תמיסת מלאי דיאצטט פלואורסצאין 0.5% (FDA) ל- 49 μL של MMG כדי ליצור פתרון עבודה פי 20. הוסף 4 μL של תמיסת עבודה של ה- FDA לצינור עם הפרוטופלסטים המדוללים. דוגרים במשך 5 דקות בחושך בטמפרטורת החדר.</li>
		<li>טען 11 μL של תערובת protoplast על hemocytometer. מניחים מתחת למיקרוסקופ אור בהיר. אשרו חזותית שהתאים חסרים קירות תאים. לאחר מכן, לספור את מספר protoplasts. השתמש בספירה זו כדי להעריך את המספר הכולל של פרוטופלסטים שהושגו. לאחר מכן, יש לספור את מספר הפרוטופלסטים שזוהרים בירוק תחת אור UV כאשר הם מוכתמים ב-FDA. בידודים מוצלחים של פרוטופלסטים מניבים כדאיות של 70%-90%.</li>
	</ol></li>
</ol>4. טרנספקציה בתיווך PEG
<ol><li>החל מריכוז הפרוטופלסט המשוער משלב 3.17, התאם ל~10,000 פרוטופלסטים/μL. אם הריכוז נמוך, צנטריפוגה למשך 3 דקות ב 100 x גרם, והשהה מחדש ב- MMG לריכוז של ~ 10,000 פרוטופלסטים / μL.</li>
	<li>ערבבו ~1,000,000 פרוטופלסטים עם 15 מיקרוגרם DNA בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל. ממלאים את התערובת ב-MMG ל-114.4 מיקרוליטר, ודגרים על קרח במשך 30 דקות.</li>
	<li>השהה מחדש את הפרוטופלסטים על ידי הקשה על צד הצינור. הוסף 105.6 μL של תמיסת 25% PEG לפרוטופלסטים כדי להגיע למשקל/נפח סופי של 12% PEG. מערבבים בעדינות על ידי היפוך 5-10 פעמים. פרוטופלסטים בתמיסת PEG הם שבירים; אין לנער את הצינור. דוגרים במשך 10 דקות בחושך בטמפרטורת החדר. הערה: ניתן להגדיל את הטרנספקציה בכפולות של אמצעי האחסון שניתנו בשלבים 4.2 ובשלב 4.3. לדוגמה, 10 מיליון פרוטופלסטים ו-150 מיקרוגרם דנ"א יכולים להיות מושהים ב-1,444 מיקרוליטר MMG ומטופלים בתמיסת PEG של 1,056 מיקרוליטר בצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל.</li>
	<li>לדלל עם 5 כרכים של תמיסת הדגירה. מערבבים בעדינות על ידי היפוך. יש לסחוט כלפי מטה במשך 4 דקות במהירות של 100 x גרם בטמפרטורת החדר. הערה: אם מגדילים את קנה המידה, פצלו את הפרוטופלסטים למספר צינורות זכוכית בעלי תחתית עגולה המכילים לא יותר מ-10 מ"ל כל אחד כדי להבטיח כדוריות מלאות. הגדילו באופן פרופורציונלי את נפח תמיסת הדגירה המשמשת לשטיפה.</li>
	<li>מוציאים את הסופרנאטנט על ידי פיפטנט. יש לשטוף עם 1-5 מ"ל של תמיסת דגירה, ולסובב למטה במשך 3 דקות ב 100 x גרם בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>משעים מחדש את הפרוטופלסטים בתמיסת הדגירה לריכוז של 500-1,000 תאים/μL.</li>
	<li>לדגור על הפרוטופלסטים בחושך למשך הלילה (~ 16 שעות) בטמפרטורת החדר.</li>
</ol>5. שחזור Protoplast ואימות הבעה
<ol><li>סובבו את הפרוטופלסטים במשך 4 דקות במהירות של 100 x גרם בטמפרטורת החדר. הערה: במקרה של הגדלת קנה מידה, פצל את הפרוטופלסטים למספר צינורות זכוכית בעלי תחתית עגולה המכילים לא יותר מ-10 מ"ל כל אחד.</li>
	<li>יש לשטוף עם 1-5 מ"ל של תמיסת דגירה, ולסובב למטה במשך 3 דקות ב 100 x גרם בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>להשהות מחדש, ולשלב 1-5 מ"ל של פתרון הדגירה.</li>
	<li>אם הפרוטופלסטים נגועים בגן כתב פלואורסצנטי (למשל, GFP), קח aliquot כדי לבדוק את יעילות הטרנספקציה. באמצעות המוציטומטר, תחילה לספור את המספר הכולל של protoplasts באמצעות מיקרוסקופ אור בהיר. לאחר מכן, ספור את החלק של פרוטופלסטים פלואורסצנטיים תחת אור UV.</li>
	<li>צנטריפוגה את הפרוטופלסטים למשך 3 דקות ב 100 x גרם בטמפרטורת החדר. הערה: הפרוטופלסטים מוכנים כעת ליישומים במורד הזרם, כגון מיצוי RNA עם פנול ואיזותיוציאנט גואנידין.</li>
</ol>

<ol><li>Jiang, F., Zhu, J., Liu, H. -L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protoplasts%3A+A+useful+research+system+for+plant+cell+biology%2C+especially+dedifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Protoplasma%22%5BJournal%5D)">Protoplasts: A useful research system for plant cell biology, especially dedifferentiation.</a> Protoplasma. 250 (6), 1231-1238 (2013).</li>
<li>Wang, S., Tiwari, S. B., Hagen, G., Guilfoyle, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AUXIN+RESPONSE+FACTOR7+restores+the+expression+of+auxin-responsive+genes+in+mutant+Arabidopsis+leaf+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">AUXIN RESPONSE FACTOR7 restores the expression of auxin-responsive genes in mutant Arabidopsis leaf mesophyll protoplasts.</a> The Plant Cell. 17 (7), 1979-1993 (2005).</li>
<li>Hirner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+LHT1+is+a+high-affinity+transporter+for+cellular+amino+acid+uptake+in+both+root+epidermis+and+leaf+mesophyll%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis LHT1 is a high-affinity transporter for cellular amino acid uptake in both root epidermis and leaf mesophyll.</a> The Plant Cell. 18 (8), 1931-1946 (2006).</li>
<li>Hwang, I., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-component+circuitry+in+Arabidopsis+cytokinin+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Two-component circuitry in Arabidopsis cytokinin signal transduction.</a> Nature. 413 (6854), 383-389 (2001).</li>
<li>Tan, M. -L. M. C., Rietveld, E. M., van Marrewijk, G. A. M., Kool, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+leaf+mesophyll+protoplasts+of+tomato+cultivars+%28L.+esculentum%29%3A+Factors+important+for+efficient+protoplast+culture+and+plant+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Regeneration of leaf mesophyll protoplasts of tomato cultivars (L. esculentum): Factors important for efficient protoplast culture and plant regeneration.</a> Plant Cell Reports. 6 (3), 172-175 (1987).</li>
<li>Brandt, K. M., Gunn, H., Moretti, N., Zemetra, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+streamlined+protocol+for+wheat+%28Triticum+aestivum%29+protoplast+isolation+and+transformation+with+CRISPR-Cas+ribonucleoprotein+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">A streamlined protocol for wheat (Triticum aestivum) protoplast isolation and transformation with CRISPR-Cas ribonucleoprotein complexes.</a> Frontiers in Plant Science. 11, 769(2020).</li>
<li>Nadakuduti, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+methods+to+assess+in+vivo+activity+of+engineered+genome-editing+nucleases+in+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Evaluation of methods to assess in vivo activity of engineered genome-editing nucleases in protoplasts.</a> Frontiers in Plant Science. 10, 110(2019).</li>
<li>OECD, Food and Agriculture Organization of the United Nations. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OECD-FAO+Agricultural+Outlook+2021-2030%5BTitle%5D)+AND+%22OECD%2C+Food+and+Agriculture+Organization+of+the+United+Nations%22%5BJournal%5D)">OECD-FAO Agricultural Outlook 2021-2030.</a> OECD, Food and Agriculture Organization of the United Nations. , Paris, France. (2021).</li>
<li>Gallois, P., Marinho, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leaf+disk+transformation+using+Agrobacterium+tumefaciens-expression+of+heterologous+genes+in+tobacco%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Gene+Transfer+and+Expression+Protocols%22%5BJournal%5D)">Leaf disk transformation using Agrobacterium tumefaciens-expression of heterologous genes in tobacco.</a> Plant Gene Transfer and Expression Protocols. 49, 39-48 (1995).</li>
<li>Schäffner, A. R., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maize+rbcS+promoter+activity+depends+on+sequence+elements+not+found+in+dicot+rbcS+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Maize rbcS promoter activity depends on sequence elements not found in dicot rbcS promoters.</a> The Plant Cell. 3 (9), 997-1012 (1991).</li>
<li>Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+underlying+the+differential+expression+of+maize+pyruvate%2C+orthophosphate+dikinase+genes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms underlying the differential expression of maize pyruvate, orthophosphate dikinase genes.</a> The Plant Cell. 3 (3), 225-245 (1991).</li>
<li>Jores, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+plant+enhancers+and+their+constituent+elements+by+STARR-seq+in+tobacco+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of plant enhancers and their constituent elements by STARR-seq in tobacco leaves.</a> The Plant Cell. 32 (7), 2120-2131 (2020).</li>
<li>Jores, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+promoter+designs+enabled+by+a+comprehensive+analysis+of+plant+core+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Synthetic promoter designs enabled by a comprehensive analysis of plant core promoters.</a> Nature Plants. 7 (6), 842-855 (2021).</li>
<li>Ricci, W. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+long-range+cis-regulatory+elements+in+the+maize+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Widespread long-range cis-regulatory elements in the maize genome.</a> Nature Plants. 5 (12), 1237-1249 (2019).</li>
<li>Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signal+transduction+in+maize+and+Arabidopsis+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Signal transduction in maize and Arabidopsis mesophyll protoplasts.</a> Plant Physiology. 127 (4), 1466-1475 (2001).</li>
<li>Jeon, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+transient+expression+and+transformation+of+PEG-mediated+gene+uptake+into+mesophyll+protoplasts+of+pepper+%28Capsicum+annuum+L.%29%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%2C+Tissue+and+Organ+Culture%22%5BJournal%5D)">Efficient transient expression and transformation of PEG-mediated gene uptake into mesophyll protoplasts of pepper (Capsicum annuum L.).</a> Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 88 (2), 225-232 (2007).</li>
<li>Pindel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+isolation+conditions+of+Cymbidium+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Horticulturae%22%5BJournal%5D)">Optimization of isolation conditions of Cymbidium protoplasts.</a> Folia Horticulturae. 19, 79-88 (2007).</li>
<li>Ren, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+leaf+base+protoplast+isolation+and+transient+expression+systems+for+orchids+and+other+important+monocot+crops%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Highly efficient leaf base protoplast isolation and transient expression systems for orchids and other important monocot crops.</a> Frontiers in Plant Science. 12, 626015(2021).</li>
<li>Yoo, S. -D., Cho, Y. -H., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+mesophyll+protoplasts%3A+A+versatile+cell+system+for+transient+gene+expression+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis mesophyll protoplasts: A versatile cell system for transient gene expression analysis.</a> Nature Protocols. 2 (7), 1565-1572 (2007).</li>
</ol>

המחברים מצהירים כי אין אינטרסים מתחרים.

כפי שדווח בעבר, איכות החומר הצמחי המשמש לפרוטופלסטים חיונית להשגת פרוטופלסטים באיכות גבוהה16,17,18. חשוב לבחור עלים בריאים ללא פגם. עבודה זו השתמשה במחקר הפופולרי תירס זן B73. לא בדקנו זנים אחרים. שתילי התירס ששימשו לפרוטוקול זה גודלו בחושך מכיוון שעלים אטיולטים מייצרים פרוטופלסטים בעלי יכולת קיום גבוהה יותר 16 שעות לאחר הטרנספקציה בהשוואה לפרוטופלסטים מעלים ירוקים. עבור יישומים שאינם דורשים דגירה לילה, שימוש בחומר עלים ירוק או ירוק יהיה אפשרי.
שלב קריטי הוא חיתוך נכון של חומר העלה לפרוסות דקות לפני העיכול האנזימטי. תהליך זה מגדיל את שטח הפנים של תאי מזופיל להיחשף לתמיסת האנזים, מה שמגדיל את מספר הפרוטופלסטים המוחזרים. קצות העלים הדיסטליים מושלכים, ופרוסות דקות (≤1 מ"מ) נחתכות עם סכיני גילוח חדשים, אשר מוחלפים מיד כאשר הם מתחילים להקהות. עבור כמות נתונה של רקמה, פרוסות דקות יותר מניבות יותר פרוטופלסטים בתנאי שמשתמשים בטכניקה הנכונה כדי למזער את ריסוק העלים.
שטיפת הפרוטופלסטים בצורה נכונה חשובה גם היא, שכן הם עדינים למדי לאחר שעברו הסרת דופן התא. לאחר העיכול, כל התמיסות נשמרות על קרח, והפרוטופלסטים הכהים מוגנים מפני אור. האוסמולריות וה- pH חוצצים על ידי ביצוע השטיפות בתמיסת MMG. כדי לבודד את הפרוטופלסטים מהפסולת התאית הפחות צפופה, הצנטריפוגה מתבצעת ב 100 x גרם. פרוטופלסטים שצנטריפוגות במהירות של 200 x גרם מראות כדאיות דומה לאחר בידוד, אך כדאיות נמוכה יותר למחרת, והן משתנות כמחצית. אנו ממליצים לבדוק את הכדאיות של הפרוטופלסטים על ידי צביעה ב- FDA (fluorescein diacetate) מיד לאחר הבידוד; הכדאיות הנורמלית נעה בין 70%-90%. פרוטופלסטים עם כדאיות נמוכה מ-40% לאחר בידוד מניבים מעט טרנספורמנטים.

Pelleting ושטיפה קלים יותר כאשר עובדים עם protoplasts רבים כי גלולה גלוי בבירור מתקבל לאחר transfection. מסיבה זו, transfection מבוצעת עם 1 מיליון או יותר protoplasts. בעת הרחבת הפרוטוקול, יש לבחור כלי בגודל מתאים לשלבי הדגירה (1.5 מ"ל, 15 מ"ל או 50 מ"ל צינור צנטריפוגה), ולהגדיל את נפח התמיסה המשמשת לשלבי השטיפה בהתאם. בכל מקרה, כדאי לצנטריפוגה באליציטוטים של ≤10 מ"ל כדי להבטיח שהפרוטופלסטים לא יישארו בסופרנטנט. אחד החידושים של פרוטוקול זה הוא הסרת שלב הדגירה והשטיפה של שעה בתמיסת W5 המופיע בפרוטוקולים אחרים14,19, שהתברר כמיותר בידינו.
כפי שניתן לראות במחקרים אחרים, כמות ואיכות הדנ"א הן קריטיות להעברה מוצלחת19. עבור פלסמידים בטווח של 4-6 קילובייט, 15 מיקרוגרם DNA משמש לכל מיליון פרוטופלסטים. תכשירי DNA באיכות ירודה עלולים לגרום לירידה בכדאיות לאחר ההדבקה, ולכן אנו ממליצים להשתמש בערכת מיצוי DNA מסחרית בעת בידוד פלסמידים מחיידקים. הדגירה של הפרוטופלסטים למשך הלילה נעשית בטמפרטורת החדר בחושך כדי לאפשר שעתוק של ספריית הפלסמיד או הפלסמיד תוך מזעור מתח. לאחר דגירה של לילה, כמחצית ממספר הפרוטופלסטים המקוריים מתאוששים. פרוטופלסטים מדוללים לריכוז של 500-1,000 תאים/μL לצורך דגירה של לילה. פרוטופלסטים שהושארו לדגור לילה בריכוזים גבוהים מ-1,000 תאים/μL הם בעלי שיעורי התאוששות נמוכים יותר וכדאיות נמוכה יותר. בריכוזים גבוהים יותר, פסולת מפרוטופלסטים פגומים ומתים עלולה לתרום למותם של פרוטופלסטים שכנים. שטיפת הפרוטופלסטים לאחר דגירה של לילה משמשת הן להסרת פסולת זו והן להסרת הפלסמיד העודף.
פרוטוקולים כגון אלה יש את המגבלה כי לא כל מיני צמחים או סוגי רקמות מקובלים protoplasting. יתר על כן, הבדלים בביטוי גנים עשויים להיגרם על ידי תהליך protoplast.
לסיכום, פירטנו פרוטוקול פשוט וניתן להרחבה כדי לבודד ולהדביק מיליוני פרוטופלסטים בני קיימא מהיבול החקלאי העיקרי Z. mays. שיטה זו יכולה להדביק הרבה יותר פרוטופלסטים באמצעות PEG, עם יעילות טרנספורמציה גבוהה כמעט כמו שיטות מבוססות אלקטרופורציה15. המספר נטו הגדול יותר של טרנספורמטורים מאפשר בדיקה של מאות או אלפי מבנים בניסויים בקנה מידה גדול כגון מבחני כתב מקבילים מסיביים12,13. ניסויים עתידיים בקנה מידה גנומי בתירס יאפשרו למדענים להבין טוב יותר את ביטוי הגנים בתירס ואת בקרת הגנים.

ביטוי גנים חולפים הוא כלי רב עוצמה בביולוגיה של הצמח. אולם קשה להדביק תאי צמח מאחר שהם מוקפים בדופן התא. מחסום זה לכניסת דנ"א אינו קיים בסוגי תאים נפוצים אחרים כגון תאי יונקים או חרקים. מחקרי עבר התמודדו עם אתגר זה על ידי שימוש בפרוטופלסטים: תאי צמח שדפנות התא שלהם עוכלו והוסרו. בניגוד לרקמת עלים לא מעובדת, פרוטופלסטים צמחיים קלים לעבודה בתרחיף ומתאימים לטכניקות טרנספקציה המתווכות על ידי אלקטרופורציה או פוליאתילן גליקול (PEG)1. תאי צמחים שומרים על רוב הפונקציונליות שלהם גם לאחר הסרת דופן התא. לפיכך, פרוטופלסטים משמשים במגוון צמחים לחקר תפקוד גנים וחלבונים2,3, להבנת העברת אותות4, ולזיהוי מטרות אפשריות לרבייה של צמחים5. פרוטופלסטים הם גם כלי נוח לסינון מבני עריכת גנום בזני יבול מגוונים, כולל חיטה ותפוח אדמה 6,7. בקיצור, בדיקות ארעיות בפרוטופלסטים הן הכרחיות לביוטכנולוגיה חקלאית.
תירס (Zea mays L.) הוא יבול הדגנים המוביל בעולם לפי טונות; ככזה, הוא מוקד עיקרי של מחקר בסיסי ויישומי במדעי הצמח8. עם זאת, שלא כמו בצמחי מודל כגון Nicotiana tabacum9, ביטוי טרנסגנים חולפים בעלי תירס שלמים אינו מבוצע באופן שגרתי. Protoplasting שימש כדי להשיג ולהדביק תאי מזופיל עלה תירס10,11. שיטות קודמות השיגו יעילות טרנספקציה של עד 75% באמצעות אלקטרופורציה וייצרו פרוטופלסטים נגועים בקנה מידה של עשרות אלפי10,15.
פרוטוקול זה מפרט כיצד לבצע פרוטופלסטים של מיליוני תאי מזופיל תירס ולהדביק אותם ביעילות דומה לשיטות קודמות. השלבים העיקריים הם גידול שתילי תירס שעברו אטיולציה, קצירת רקמת העלה, עיכול דופן תא הצמח והעברת DNA פלסמיד לתאים באמצעות PEG. תרומתו העיקרית של פרוטוקול זה היא היכולת להגדיל את הטרנספקציה הפרוטופלסטית תוך שמירה על כדאיות התא הנדרשת לבדיקות פונקציונליות. זה מאפשר שימוש בניסויים בקנה מידה גנומי, כגון מבחני כתב מקבילים מאסיביים, שיכולים לבחון את תפקודם של מאות אלפי אזורים ברחבי גנום התירס. שיטה זו שימשה לאחרונה לחקר ספריות גדולות של רכיבי DNA cis-regulatory כולל משפרים ומקדמים12,13,14.

<table><tbody><tr><td>צינורות מיקרוצנטריפוגה מדורגים 1.5 מ"ל</td><td>VWR</td><td>490004-444</td><td></td></tr><tr><td>15 מ"ל צינור צנטריפוגה חרוטי פלקון</td><td>קורנינג</td><td>05-527-90</td><td></td></tr><tr><td>250 מ"ל זכוכית פיירקס</td><td>פישר</td><td>50-121-5005</td><td></td></tr><tr><td>40 מ"ל מסננת תאי רשת ניילון</td><td>פישר</td><td>22363547</td><td></td></tr><tr><td>50 מ"ל צינור פלקון</td><td>קורנינג</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>72 מגש התפשטות</td><td>תאים T.O. פלסטיק</td><td>725607C</td><td></td></tr><tr><td>רדיד אלומיניום</td><td>VWR</td><td>89107-732</td><td></td></tr><tr><td>צנצנת פעמון</td><td>Bel-Art</td><td>F42022-0000</td><td></td></tr><tr><td>צנטריפוגה ספסלית</td><td>Eppendorf</td><td>5424-R</td><td></td></tr><tr><td>בטא-מרקפטואתנול</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250-250ML</td><td>ממיסים ב-H2O טהור במיוחד כדי ליצור פתרון מלאי של 1M. יש לאחסן בטמפרטורת החדר.</td></tr><tr><td>אלבומין בסרום בקר</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>סידן כלוריד דיהידרט (CaCl2*2H2O)</td><td>PhytoTech Labs</td><td>C135</td><td>מתמוסס ב-H2O טהור במיוחד ליצירת תמיסת מלאי של 1M. יש לאחסן בטמפרטורת החדר.</td></tr><tr><td>צלולאז אונוזוקה R-10</td><td>Duchefa Biochemie</td><td>C8001.0010</td><td></td></tr><tr><td>D-Mannitol</td><td>PhytoTech Labs</td><td>M562</td><td></td></tr><tr><td>היקף ניתוח</td><td>Reichert</td><td>Microstar IV</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescein Diacetate (FDA)</td> <td>Thermofischer Scientific</td><td>F1303</td><td>מתמוסס באצטון ב-0.5% משקל/נפח ליצירת תמיסת מלאי פי 1000. יש להגן מפני אור ולאחסן בטמפרטורה של -20 מעלות צלזיוס.</td></tr><tr><td>מערכות תאורה פלואורסצנטיות</td><td>לפני</td><td>Lumen200</td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ פלואורסצנטי</td><td>Leica</td><td>MDG36</td><td></td></tr><tr><td>צנטריפוגה בעלת קיבולת גבוהה</td><td>Eppendorf</td><td>5810 R</td><td></td></tr><tr><td>Macerozyme</td><td>Duchefa Biochemie</td><td>M8002.0005</td><td></td></tr><tr><td>מגנזיום כלוריד (MgCl2)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>M292-1KG</td><td>ממיסים ב-H2O טהור במיוחד ליצירת מלאי של 1M תמיסה. יש לאחסן בטמפרטורת החדר.</td></tr><tr><td>זרעי תירס</td><td>B73</td><td>USDA-ARS</td><td>https://npgsweb.ars-grin.gov/gringlobal/accessiondetail?accid=PI+550473</td></tr><tr><td>קליפ קלסר בינוני</td><td>Uline</td><td>S-24649</td><td></td></tr><tr><td>MES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M5287-250G</td><td>ממיסים ב-H2O טהור במיוחד כדי ליצור תמיסת מלאי של 1M. התאם את ה-pH ל-5.7 באמצעות KOH. יש להגן מפני אור ולאחסן בטמפרטורת החדר.</td></tr><tr><td>Micropipette 20-200 uL</td><td>Gilson</td><td>F123601G</td><td></td></tr><tr><td>ספקטרופוטומטר מיקרו-נפח</td><td>Nanodrop Thermofischer</td><td>Scientific ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>NEB 5-alpha מוכשר E. coli</td><td>ניו אינגלנד BioLabs</td><td>C2987H</td><td></td></tr><tr><td>נויבאואר המוציטומטר</td><td>Daigger Scientific</td><td>EF16034F</td><td></td></tr><tr><td>מס' 9 סכין גילוח חד-קצה</td><td>Excel</td><td>20009</td><td></td></tr><tr><td>שייקר אורביטלי</td><td>VWR</td><td>89032-104</td><td></td></tr><tr><td>פולי (אתילן) גליקול 4,000</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>81240-1KG</td><td></td></tr><tr><td>אשלגן כלורי (KCl)</td> <td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>P9541-1KG</td><td>ממיסים ב-H2O טהור במיוחד ליצירת תמיסת מלאי של 1M. יש לאחסן בטמפרטורת החדר.</td></tr><tr>מדשאה <td>ורמיקוליט NK בדרגה מקצועית</td><td>& גן</td><td>G208</td><td></td></tr><tr><td>צינור צנטריפוגה זכוכית עגול תחתון 30 מ"ל</td><td>Kimble Chase</td><td>45500-30</td><td></td></tr><tr><td>מתאם גומי לצינורות צנטריפוגה Corex</td><td></td><td>Corning CLS8445AO</td><td></td></tr><tr><td>Sphagnum טחב כבול</td><td>Premier Horticulture</td><td>0128P</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol Reagent</td><td>Thermofischer Scientific</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>Tygon ואקום צינורות</td><td>VWR</td><td>76336-844</td><td></td></tr><tr><td>מד ואקום</td><td>Wika</td><td>4269978</td><td></td></tr></tbody></table>

טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים של מזופיל תירס

Scalable Transfection of Maize Mesophyll Protoplasts

הטרנספקציה של תאי מזופיל תירס כרוכה לעתים קרובות בעיכול דפנות תאי הצמח ליצירת פרוטופלסטים ולאחר מכן החדרת דנ"א באמצעות אלקטרופורציה או פוליאתילן גליקול (PEG). שיטות קודמות פותחו כדי לייצר עשרות אלפי פרוטופלסטים נגועים בבת אחת. במאמר זה אנו מתארים שיטה פשוטה לבודד ולהדביק מיליוני פרוטופלסטים של מזופיל עלים בתירס (Zea mays L). תהליך יעיל זה מסיר כמה שלבים נפוצים לאורך זמן, כגון כביסה בקיר 5. בנוסף, שלבים כגון צנטריפוגה, טרנספקציה בתיווך PEG ואינקובציה שונו כדי לעבוד עם מספר גדול יותר של פרוטופלסטים. היכולת לבטא ספריות גדולות של מבני פלסמיד מאפשרת ניסויים בקנה מידה גנומי, כגון מבחני כתב מקבילים מסיביים בתירס.

הרקמה המתאימה ביותר לבידוד פרוטופלסטים היא העלים השני והשלישי של שתילים בני 10-11 ימים (איור 1). בעבודה זו השגנו כ-10 מיליון פרוטופלסטים מ-16 חלקי עלים, שכל אחד מהם היה באורך 10 ס"מ. מספר הפרוטופלסטים המבודדים תלוי במסת חומר העלה וברוחב פרוסות העלה המתעכלות בתמיסת האנזים.
תחת מיקרוסקופ אור בהיר, פרוטופלסטים שלא ניזוקו נראים בערך כדוריים, עם פלסטידים המנקדים את פני השטח (איור 2A). לפני שתמשיך transfection, הכדאיות ניתן לבדוק על ידי צביעת aliquot קטן של protoplasts עם diacetate fluorescein (FDA). פרוטופלסטים מוכתמים ב-FDA שפלואורסים תחת אור על-סגול נחשבים בני קיימא (איור 2B,C). לא כל הפרוטופלסטים שנראים לא פגומים הם עדיין בני קיימא, וייתכן שחלק מהפרוטופלסטים בני קיימא נמצאים בתהליך של גסיסה על-ידי פינוי (איור 2C). בתאים אלה, החללית מתנפחת ובסופו של דבר תיפלט מקרום התא.
איור 3 מראה פרוטופלסטים שעברו טרנספורמציה באמצעות pJT01, פלסמיד ביטוי תירס בנפח 4.3 קילו-בתים שנגזר מ-CD3-911 (ABRC)15. טרנספקציה גורמת לביטוי של sGFP המתויג עם אות לוקליזציה גרעינית מסוף C מ-c-Myc (איור 3A). שיעור הפרוטופלסטים המבטאים sGFP נמדד במהלך ניסויים מרובים באמצעות המוציטומטר. יעילות הטרנספקציה החציונית שהושגה בשיטה זו הייתה 40% לאחר דגירה לילית (n = 9, איור 4, טבלה 1), הדומה לשיטות15 שפורסמו בעבר. בהתאם ליישום הניסוי, אם ספריית הפלסמיד או הפלסמיד חסרה מדווח פלואורסצנטי, מומלץ לכלול בקרה חיובית כדי לאשר טרנספקציה.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig01.jpg"> איור 1: שתיל תירס מייצג שגדל בחשיכה במשך 10 ימים לאחר הנביטה. החיצים מציינים את העלים השני והשלישי, המתאימים ביותר לפרוטופלסטים. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig01large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig02.jpg"> איור 2: מיקרוסקופ פלואורסצנטי של יכולת הקיום של הפרוטופלסט לאחר בידוד . (A) תמונת שדה בהיר של פרוטופלסטים מיד לאחר הבידוד. (B) אות הפלואורסצנטיות של הפרוטופלסטים המוכתמים ב-FDA. (C) חפיפה של שדה בהיר ופלואורסצנטיות המראה את הפרוטופלסטים הקיימים. החץ מראה פרוטופלסט שעובר פינוי. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig02large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig03.jpg"> איור 3: מיקרוסקופ פלואורסצנטי של פרוטופלסטים שעברו טרנספקציה עם sGFP. (A) תמונת שדה בהיר של פרוטופלסטים לאחר טרנספקציה. (B) האות הפלואורסצנטי של הפרוטופלסטים הנגועים בתעלת GFP. (C) חפיפה של שדה בהיר ופלואורסצנטיות המראה את הפרוטופלסטים שעברו טרנספורמציה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig03large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig04.jpg"> איור 4: אחוז הפרוטופלסטים המראים פלואורסצנטיות GFP לאחר 16 שעות של דגירה. יעילות הטרנספקציה השתנתה בין ניסויים עצמאיים, כאשר היעילות הנמוכה ביותר נעה סביב 20% והגבוהה ביותר קרוב ל-50%. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig04large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>בדיקה</td>
			<td>תאי GFP נספרו</td>
			<td>סה"כ תאים שנספרו</td>
			<td>אחוז GFP</td>
		</tr><tr><td>1</td>
			<td>104</td>
			<td>261</td>
			<td>39.8</td>
		</tr><tr><td>2</td>
			<td>148</td>
			<td>298</td>
			<td>49.5</td>
		</tr><tr><td>3</td>
			<td>84</td>
			<td>258</td>
			<td>32.6</td>
		</tr><tr><td>4</td>
			<td>137</td>
			<td>271</td>
			<td>50.6</td>
		</tr><tr><td>5</td>
			<td>127</td>
			<td>299</td>
			<td>42.5</td>
		</tr><tr><td>6</td>
			<td>107</td>
			<td>235</td>
			<td>45.5</td>
		</tr><tr><td>7</td>
			<td>83</td>
			<td>360</td>
			<td>23.1</td>
		</tr><tr><td>8</td>
			<td>134</td>
			<td>549</td>
			<td>24.4</td>
		</tr><tr><td>9</td>
			<td>61</td>
			<td>201</td>
			<td>30.3</td>
		</tr><tr><td>התכוון</td>
			<td>109</td>
			<td>304</td>
			<td>36</td>
		</tr><tr><td>סטיית תקן</td>
			<td>29</td>
			<td>102</td>
			<td>10</td>
		</tr></tbody></table>טבלה 1: יעילות טרנספקציה פרוטופלסט מייצגת. נתונים מתשעה ניסויים ראשונים שנערכו לאחרונה במעבדת המחברים.
קובץ משלים 1: קובץ טקסט בפורמט GenBank עם רצף של pJT01. פלסמיד ביטוי sGFP של 4.3 קילובייט משמש כבקרה חיובית בפרוטופלסטים של תירס נגוע. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/pJT01_gfp_cmyc.gb.zip" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.</a>

כאן, אנו מציגים פרוטוקול בתפוקה גבוהה להעברה זמנית של מיליוני פרוטופלסטים של תירס לבדיקת ספריות גדולות של פלסמידים בתאי מזופיל תירס.

The transfection of maize mesophyll cells often involves digesting the plant cell walls to create protoplasts and then inserting DNA via electroporation ...

Hello.Today אנחנו הולכים להראות לכם פרוטוקול שמייצר פרוטופלסטים של מיליוני תאי מזופיל תירס, ולהפוך אותם ביעילות גבוהה. השלבים העיקריים של הפרוטוקול הם תחילה לעכל ולהסיר את דופן התא הצמח, לשחרר את הפרוטופלסטים, ולאחר מכן להפוך את הפרוטופלסט באמצעות PEG. ההבדל הגדול בין פרוטוקול זה לאחרים הוא קנה המידה של הטרנספורמציה.רוב הפרוטוקולים בסופו של דבר עם בין 1, 000 ל 10, 000 protoplasts מותמר. עם זאת, הפרוטוקול שלנו נותן מיליוני פרוטופלסטים של תירס שעבר טרנספורמציה. כאן יש לנו שתילי תירס שגדלו בחושך במשך תשעה עד 11 ימים לאחר הנביטה.חותכים את השתילים ממש מעל פני הקרקע ומניחים במים. יש לשמור את הצמחים בחושך כאשר הם אינם בשימוש. בחר את העלים השני והשלישי של כל שתיל, דואג להוציא עלים עם אזורים חומים או פגומים.בחרו 12 עד 16 דפים, וחתכו סנטימטר מהקצוות. לאחר מכן חותכים קטע של 10 ס"מ מכל עלה. ערמו את חלקי העלים זה על גבי זה עם קצוות הבסיס יחד.הדקו את הצרור יחד בקצה הבסיס באמצעות תפס קלסר. מניחים את צרור העלים על פיסת נייר לבן. חותכים פרוסות עלים ברוחב 0.5 עד מילימטר.חשוב לחתוך פרוסות דקות ועקביות. לאחר חיתוך חלק מצרור העלים, מעבירים את הפרוסות לתמיסת האנזים. אל תאפשרו לחומר להתייבש.מערבלים בעדינות את תמיסת האנזים כדי להרטיב את החומר. מניחים נייר כסף מעל הכד כדי לחסום את האור. חזור על תהליך זה עד שכל החבילה נחתכת קרוב לתפס הקלסר.לאחר החיתוך, הפתרון צריך להיראות כך. מעבירים את תמיסת האנזים לצנצנת פעמון. יש לחדור לוואקום במשך שלוש דקות בטמפרטורת החדר.דוגרים על שייקר שולחני ב-40 סל"ד בטמפרטורת החדר למשך שעתיים וחצי. לאחר הדגירה, לתת את הפתרון מערבולת. זה צריך להיראות חלבי, המציין עיכול מוצלח.יש לדגור על השייקר השולחני במהירות 80 סל"ד בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות נוספות. מניחים את הכד עם תמיסת אנזים על קרח. עצור את העיכול על ידי הוספת נפח אחד של MMG קר כקרח.מסננים דרך מסננת תאים של 40 מיקרון לתוך צינור צנטריפוגה של 50 מיליליטר. לפצל את הפתרון לתוך aliquots של לא יותר מ 10 מיליליטר כל אחד. יוצקים לתוך צינורות זכוכית תחתונה עגולה ומקוררת.צנטריפוגה את הצינורות ב 100 G במשך ארבע דקות. הסר את supernatant, הקפד לא להפריע את הכדור. השהה מחדש, ולאחר מכן דגימות בריכה לשטיפות הבאות.לשטוף protoplasts פעמיים עם חמישה מיליליטר של MMG. סובב למטה בכל פעם ב 100 G במשך שלוש דקות. הגלולה צריכה להיות בצבע ירוק צהוב בהיר ויפה.תוכל להשהות מחדש את הגלולה על ידי ערבול עדין של הצינור. להשהות במיליליטר אחד של MMG, ולדלל aliquot קטן 10 עד 20x לספירה. חשוב להשהות מחדש הרבה לפני aliqouting, כמו protoplasts ישקע במהירות.לטעון את protoplasts מדולל לתוך hemocytometer. ספרו את הפרוטופלסטים תחת מיקרוסקופ אור. הכנה טובה לא תכיל הרבה לכלוך עודף שצף לאחר הכביסה.פרוטופלסטים טובים הם עגולים עם פלסטידים גלויים. השתמש בספירת התאים כדי לחשב את המספר הכולל. הכנה זו הניבה קצת יותר מ-10 מיליון פרוטופלסטים.אנו ממליצים לבדוק כדאיות באמצעות צבע דיאצטט פלואורסצאין. בידודים מוצלחים של פרוטופלסטים מניבים את הכדאיות בין 70% ל-90% מערבבים את הפרוטופלסטים עם הפלסמיד המעניין. דוגמה זו משתמשת במיליון פרוטופלסטים וב-15 מיקרוגרם דנ"א.דוגרים על קרח במשך 30 דקות. השהה מחדש על ידי הקשה על צד הצינור. הוסף תמיסת PEG כדי להגיע לריכוז סופי של 12%PEG.מערבבים בעדינות על ידי היפוך מספר פעמים. פרוטופלסטים ותמיסת PEG הם שבירים, אז אל תנערו את הצינור. דוגרים בחושך בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.מדללים בחמישה כרכים של תמיסת דגירה, ומערבבים בעדינות בהיפוך. צנטריפוגה את הצינורות ב 100 G במשך ארבע דקות. יש לשטוף פעם אחת עם מאגר דגירה של מיליליטר אחד.היזהר לא להפריע את הכדור. סובב למטה ב 100 G במשך שלוש דקות. השהיה מחדש במאגר הדגירה לריכוז של 500 עד 1000 תאים למיקרוליטר.יש לדגור בחושך למשך הלילה בטמפרטורת החדר. למחרת, סובב למטה ב 100 G במשך ארבע דקות. יש לשטוף פעמיים בתמיסת דגירה צוננת.יש לסובב כלפי מטה בכל פעם במשך שלוש דקות ב-100 G בטמפרטורת החדר. השהה מחדש, ולאחר מכן טען aliquot קטן על hemocytometer לבדיקה הסופית. ראשית, ספור את המספר הכולל של פרוטופלסטים תחת שדה בהיר.כעת, שימו לב לחלק הפרוטופלסטים שזוהרים תחת UV כדי לאמת טרנספקציה. הפרוטופלסטים מבטאים את כתב ה-GFP שלנו. עכשיו, בואו נקבל כמה מדדים על יעילות הטרנספקציה.בהכנה זו, השגנו 10 מיליון פרוטופלסטים בסך הכל, מתוכם הדבקנו 1 מיליון. למחרת, התאוששנו 335, 000. מתוכם, היה לנו שיעור טרנספורמציה של 30.3% זה משאיר אותנו עם סך של כ -100, 000 פרוטופלסטים המבטאים GFP.יעילות ההעברה יכולה להשתנות. כפי שניתן לראות בתרשים, אנו רואים באופן שגרתי יעילות בין 20% ל-50% בקרב תכשירים חוזרים. פרוטוקול זה מאפשר איסוף וטרנספורמציה של מיליוני פרוטופלסטים מזופילים של תירס.אחד החלקים הטובים ביותר של הפרוטוקול הוא היכולת שלו להתרחב. על ידי שינוי קנה מידה של כמות הנפח כמו גם מספר הפרוטופלסטים המשמשים בטרנספורמציה, אתה יכול להגדיל את הטרנספורמציה שלך ביותר מסדר גודל ממה שהראינו היום. נכון להיום, ניסוי הצינור היחיד הגדול ביותר שלנו התחיל עם 20 מיליון פרוטופלסטים ו-200 מיקרוגרם דנ"א, והסתיים עם 3.1 מיליון פרוטופלסטים שעברו טרנספורמציה למחרת.פרוטוקול תפוקה גבוהה זה שימושי במיוחד כאשר אתה צריך לבדוק מבני פלסמיד רבים ושונים, אך משתפי פעולה השתמשו בפרוטוקול זה למטרות שאינן דורשות את היכולת להתרחב, כגון תכנון מעגלי גנים סינתטיים ותירס. תודה שצפית בסרטון שלנו. אנחנו מקווים שזה עזר.

scalable-transfection-of-maize-mesophyll-protoplasts

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

שיטה לבידוד סוגי תאים מסוימים של חומר צמחי מודגם. טכניקה זו מעסיקה קווי סמן מהונדס המבטא חלבוני ניאון בסוגי תאים מסוימים, הסלולר דיסוציאציה Fluorescence מיון הופעל תא. בנוסף, ההתקנה גידול מוקמת כאן המאפשרת...

מיון פלואורסצנטי תא פעיל של Protoplasts הצמח

הסחר בין Macromolecular בתאי צמח ניתן להעריך על ידי transiently לבטא חלבון fluorescently-tagged עניין וניתוח ההפצה התוך ואת אינטר שלה על ידי מיקרוסקופיה confocal.

תא אל תא Macromolecular התחבורה Assay ב Planta ניצול ההפגזה Biolistic

מקור: בירנינק, ב. מ. ואחרים. הזרקה ישירה של שתילי תירס באמצעות הזרקה של וירוס הפסיפס של זנב שועל רקומביננטי ושיבוטים זיהומים של וירוס פסיפס קנה הסוכר. J. Vis. Exp. (2021)הסרטון הזה מדגים את העברת שיבוטים ויראליים רקומביננטיים בתיווך אגרובקטריה לשתילי תירס לצורך השתקת גנים. הוא מתאר את תהליך זיהום האגרובקטרים , התפשטות וירוסית מערכתית ושינויים פנוטיפיים המונעים מהפרעות RNA.

העברת שיבוטים ויראליים רקומביננטיים בתיווך אגרובקטריום לשתילי תירס להשתקת גנים

A-תפוקה גבוהה, אוטומטית, מתודולוגיה ייצור וטרנספורמציה טבק פרוטופלאסט מתוארת. המערכת הרובוטית מאפשרת ביטוי גנים מקביל מסיבי וגילוי במודל BY-2 המערכת שאמורה להיות לתרגום לגידולים שאינם מודל.

פלטפורמה רובוטית עבור תפוקה גבוהה בידוד פרוטופלאסט וההשנאה

לשיטות הקיימות לשינוי צמחים יש ישימות מוגבלת. הטכנולוגיה החדשנית שמקורה בפפטיד המוצעת כאן מבטיחה הן פשטות והן יעילות בהחדרת חלבון או גנים אקסוגניים לתאים התוך-תאיים הרצויים של צמחים שלמים.

פפטיד הנגזרות שיטה לתחבורה גנים וחלבונים מעבר נייד מחסומי Organellar בצמחים

פיתחנו פרוטוקול פשוט ויעיל עבור הכנת כמויות גדולות של סויה protoplasts ללמוד מנגנוני איתות ולניהולו מורכבים בתאים חיים.

שיטה פשוטה עבור בידוד של סויה Protoplasts, ליישום ניתוחים ביטוי גנים ארעית

עבודה זו מתארת את שכפול של זן סוס טרויאני פחמון זקן התירס למסירה באתרו של חלבונים תירס מופרשים לתוך שלושה סוגים שונים של רקמות תירס.

בעזרת פחמון זקן התירס כמו סוס טרויאני ב באתרו משלוח של תירס חלבונים

גנים מורפולגניים הצמח יכול לשמש כדי לשפר את הטרנספורמציה גנטית של גנוטיפים הסרבן. המתואר כאן הוא Agrobacterium-תיווך הטרנספורמציה גנטית (quickcorn) פרוטוקול עבור שלושה חשובים הציבור תירס שורות.

Agrobacterium-תיווך המעבר העובר בלתי בוגר של הסרבן מתוך תירס שורות באמצעות גנים מורפולגניים

פרוטוקול הזרקה מבוסס אגרובקטריום (אגרובקטריה) מוצג לחיסון של וירוס פסיפס זנב שועל ווירוסי פסיפס קני סוכר לשתילי תירס. חיסון באופן זה מוביל לזיהום ויראלי, השתקת גנים הנגרמת על ידי וירוס של גנים סמן, ו overexpression ויראלי של GFP.

אגרוינוקולציה ישירה של שתילי תירס על ידי הזרקה עם וירוס פסיפס זנב שועל רקומביננטי ווירוס פסיפס קנה סוכר שיבוטים זיהומיות

כתב יד זה מפרט פרוטוקול חיסון אופטימלי המשתמש בנדן עלי תירס מנותק למחקרים ציטולוגיים, פיזיולוגיים ומולקולריים הניתנים לשחזור של אינטראקציות תירס עם פתוגנים צמחיים פטרייתיים. מעטה העלים מאפשר תצפית בזמן אמת על אינטראקציות תאיות בין הצמח החי לפטרייה ברקמות לא מקובעות.

נדן תירס מנותק להדמיית תאים חיים של זיהום על ידי פתוגנים פטרייתיים של תירס פוליארי

למדו פרוטוקול טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים ממזופיל תירס באמצעות PEG. השיטה מאפשרת טרנספקציה של מיליוני תאים עם יעילות של 20-50% לחקר ביוטכנולוגיה צמחית.

טרנספקציה ניתנת להרחבה של פרוטופלסטים של מזופיל תירס

גלה סרטונים נוספים