Name: אפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות אורגניזם המודל הקנידרי Clytia hemisphaerica (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-10T13:25:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: למד שיטה לאפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות מדוזת Clytia hemisphaerica. הטכניקה כוללת יצירת פצעים, הזרקת צבעים ותרופות, ודימות תאי בזמן אמת לחקירת התנהגות תאית בסביבה טבעית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

E.E.L.L. נתמך על ידי מענק מהקרן הלאומית למדע PRFB 2011010. ברצוננו להודות לצויושי מומוז ואוולין הוליסטון על עזרתם להקים את מושבות קליטיה שלנו, לז'אן-בטיסט ריינייה על איסוף תמונות ריפוי המיקרו-פצעים, להארי קירייזס על בניית מיכלי הפסאודו-קרייזל, ולאליזבת באלדו על שמירת בית הגידול של קליטיה. איור 1B נוצר באמצעות BioRender.com.

אין מה לחשוף.

כאן, המתודולוגיה מוצגת עבור הדמיה פצעים in vivo ב Clytia, אורגניזם מודל חדש יחסית של חסרי חוליות40,43,58. ישנם מספר גורמים שהופכים מערכת זו לכלי מחקר ייחודי ורב עוצמה, להבדיל ממודלים אחרים המשמשים לחקר ריפוי פצעים ואפיתל מחדש. ראשית, האפיתל החד-שכבתי מחובר ל-ECM שקוף, ולכן דומה למבחני תרביות רקמה חוץ גופית (איור 1, איור 2, איור 3, איור 4). כמו במבחני מבחנה, ניתן לצלם תאים ברזולוציה גבוהה. עם זאת, שלא כמו בתרבית רקמות, קיימת סביבה תאית אותנטית ו- ECM, כך שניתן לראות ריפוי פצעים בהקשר של אירועי איתות מורכבים המתרחשים בחיה פצועה חיה. שנית, Clytia חסר תגובות דלקתיות, פיברובלסטים נודדים, כלי דם ודם. זה מאפשר את תהליך אפיתל מחדש להיחקר in vivo בהיעדר אירועים חופפים המתרחשים בבעלי חיים בוגרים מורכבים יותר במהלך ריפוי פצעים59. שלישית, ה-ECM הוא אצלולרי (סרט משלים 1) וגדול, ומאפשר גישה נוחה באמצעות מחט מיקרו-הזרקה (איור 5 ואיור 6). באמצעות גישה זו, חוקרים יכולים לבחון את ההשפעה של ריאגנטים פרמקולוגיים המפריעים למבנה ECM או איתות על ריפוי פצעים in vivo. ריאגנטים יכולים גם להיות הציג לתוך תאי אפיתל, ואת ההשפעות שלהם על ריפוי פצע in vivo ניתן להעריך. רביעית, קיימים פרוטוקולים ליצירת מוטנטים ובעלי חיים טרנסגניים במערכת קליטיה42,43,44,45. לכן ניתן לראות ריפוי פצעים In vivo בבעלי חיים עם ביטוי מוגבר/מופחת של גנים מעניינים.
ישנם מספר שלבים קריטיים בטכניקה זו. ראשית, כפי שמוצג באיור 3, יש צורך להשתמש במיקרוסקופ שמוגדר כראוי למיקרוסקופ DIC מאחר שתאי האפיתל השטוחים והשקופים כמעט בלתי נראים במיקרוסקופ אור סטנדרטי. חשוב גם לפתח את המיומנות לפצוע בעלי חיים בעדינות, כך שהאפיתל ייפגע מבלי לעקור את ה- ECM. מגע עדין דומה נחוץ להזרקה זעירה של חומרים לתוך ה-ECM, מכיוון שנזק נרחב לבעל החיים במהלך ההזרקה עלול לפגוע בניתוח מאוחר יותר של ריפוי פצעים. אמנם יש עקומת למידה לטכניקות אלה, אפילו תלמידים מתחילים שולטים בהן במהירות במעבדת מלאמי. ואכן, פרוטוקולים אלה שימשו להדגמת נדידת תאים בקורסי מעבדה לתואר ראשון באוניברסיטת שיקגו.
להדמיה אופטימלית, חשוב שהחיה לא תזוז ואזור הפצע הנבחר לא ייסחף משדה הראייה. אם בעלי חיים פועמים, הטיפול בטריקאין כמתואר יעיל מאוד. עבור היסחפות, לעתים קרובות יש צורך למקם מחדש את הדגימה באופן ידני. ניתן לבטל תנועות אלה מהסרט הסופי באמצעות פונקציית הרישום ב- FIJI/ImageJ.
מגבלה במערכת זו היא שלא ניתן ליצור פצעים זהים, שכן פצעים משתנים הן בצורתם והן בגודלם בשיטות המתוארות כאן. לכן, זה יכול להיות קשה לכמת את הקצב המדויק של סגירת פצע או נדידת תאים. סמני מיקום כגון גרגרי פחמן נדבקים ל-ECM החשוף בחיה פצועה וניתן להשתמש בהם כדי למדוד את קצב נדידת התאים הקולקטיבית בפצעים גדולים (לא מוצג). עבור ניתוח סגירת פצעים קטנים, אפילו עם גודל וצורה משתנים של פצע, קיים טווח מוגבל של שיעורי סגירה בקרב פצעים בגודל זה (איור 4). לכן ניתן לזהות כמותית את ההשפעות של ריאגנטים פרמקולוגיים מניעים או דכאניים.
בעוד שעבודה זו מתארת אפיון ריפוי פצעים באמצעות מיקרוסקופ DIC בלבד, ניתן להשתמש באותן גישות כדי לדמיין ריפוי באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי או קונפוקלי. כדי לסייע בכך, קיימים פרוטוקולים ליצירת בעלי חיים טרנסגניים שבהם חלבונים תאיים וחוץ-תאיים שונים מסומנים באופן פלואורסצנטי. הדמיה במקביל עם DIC ופלואורסצנציה, בשילוב עם הפרעה של ריפוי פצעים באמצעות חומרים פרמקולוגיים או קווים מוטנטיים, תהיה גישה רבת עוצמה להבנת מנגנונים העומדים בבסיס תהליך ריפוי הפצע באפיתל.

יריעות של תאי אפיתל מכסות את פני השטח החיצוניים של כל המטזואנים, מרפדות איברים פנימיים ומחלקות את גוף החיה לתאים נפרדים. האפיתל גם מפריד את הגוף הפנימי מהסביבה החיצונית ומגן עליו מפני נזק וזיהום. לפיכך, הופעתן של שכבות אפיתל הייתה חלק מהותי באבולוציה של בעלי חיים רב-תאיים, ושכבות אפיתל נראות בכל בעלי החיים, החל מבעלי חוליות וכלה במטזואנים הבסיסיים ביותר1. האפיתל של איברים מסוימים הוא חד-שכבתי יחיד, כגון בשקי האוויר של הריאה, בכלי הדם ובמעיים2, כמו גם באפידרמיס של חסרי חוליות כגון פלנריה וקנידריאן3. ברקמות אחרות, כגון עור4 וקרנית5 של בעלי חוליות, האפיתל מרובד, כלומר יש שכבות מרובות של תאי אפיתל2. בכל המקרים, שכבת האפיתל הבסיסית ביותר מוצמדת לקרום המרתף, יריעת חלבון היוצרת אזור מיוחד של המטריצה החוץ תאית (ECM)6,7,8.
פרצות באפיתל חייבות להיות מתוקנות במהירות כדי ליצור מחדש יריעת אפיתל רציפה. נזק לאפיתל מתרחש במהלך תהליכים טבעיים, כגון שפיכת תאי אפיתל במעיים,9,10 וכתוצאה מדלקת או טראומה פיזית. כאשר תא אפיתל יחיד ניזוק, הוא חייב לתקן את עצמו או להיות מסולק כדי לאפשר לתאים הסובבים אותו להיצמד זה לזה ולסגור את החור11,12. בפצעים הגדולים מגודלו של תא בודד, תאי אפיתל חייבים לנוע כדי להגיע זה לזה ולתקן את היריעה13. זה יכול להיות מושג על ידי התפשטות תאים אם הפערים קטנים או עשוי לדרוש נדידה של תאי אפיתל משולי הפצע כדי לסגור את פער הפצע; תהליך אחרון זה נקרא אפיתל מחדש14,15. ברקמות עובריות, תאי אפיתל מתפשטים ונודדים לסגור פצעים או נמשכים על פני הרווח על ידי התכווצות של כבלי אקטומיוזין הנוצרים בין התאים בשולי הפצע, במנגנון הדומה לחוט ארנק16. ברקמות בוגרות רבות, אפיתל מחדש כרוך בנדידה של יריעות תאים קוהרנטיות, שם התאים שומרים על הצמתים שלהם עם תאים שכנים14,17,18. ברקמות אחרות, קשרי תאים:תאים מפורקים ותאי אפיתל מתנהגים יותר כמו תאים מזנכימליים, נעים באופן מתואם אך עצמאי לאזור הפצע במהלך אפיתל מחדש 14,19,20,21.
תנועות תאי אפיתל מווסתות על ידי אינטראקציות מורכבות בין התאים הנודדים ובין התאים לבין ECM. בעוד שיש כמות עצומה של ספרות ניסיונית העוסקת במנגנונים של הפעלת פצעים של תאי אפיתל ונדידה לאחר מכן, הרבה עדיין נותר לגלות. לדוגמה, האות הראשוני שמפעיל תאי אפיתל לנדוד בתגובה לפצע לא זוהה בוודאות 22, וגם לא לגמרי מובן כיצד אקטין נפרס מחדש כדי ליצור למליפודיה בצד תאי האפיתל הקרוב ביותר לפצע 22,23,24,25,26,27. נדידת תאים קולקטיבית דורשת שיתוף מידע מתאים בפצע עם תאים דיסטליים לפצע, ומסלול התקשורת עדיין אינו ברור28. Cell:cell junctions and cell:ECM attachments חייבים להיות מפורקים ומתוקנים כאשר תאים בגיליון מסדרים את עצמם מחדש, אך רגולציה של תהליך זה אינה מובנת היטב 14,29. התקדמות בשאלות אלה ואחרות חשובה לא רק כבעיה ביולוגית בסיסית, אלא גם בגלל המשמעות הקלינית של ריפוי פצעים נכון. מחלות הפוגעות ביכולתם של תאי אפיתל לנדוד כראוי גורמות לפצעים כרוניים; דוגמה לכך היא המחלה הגנטית Epidermolysis bullosa, שבה גנים המעורבים בחיבור תאי האפיתל ל- ECM עוברים מוטציה, וכתוצאה מכך עור שביר שמתקלף ושלפוחיות. אפיתל מחדש נפגע גם ברקמות הזדקנות טבעית30,31. לכן הבנה טובה יותר חיונית לפיתוח התערבויות לשיפור תוצאות ריפוי הפצעים.
נדידת תאי אפיתל בריפוי פצעים נחקרה הן בגישות מבחנה והן באורגניזמים מודל. רוב המחקרים על ריפוי פצעים ומנגנוני נדידת תאים בוצעו בתרבית רקמה, שבה מונושכבות מסוג תא אפיתל יחיד גדלות על מצע המחליף את ECM. חד-שכבות תאים נשרטות או גדלות עם שבלונות כדי ליצור רווחים של צורות וגדלים ספציפיים ולאחר מכן נצפו32,33,34. מודל המבחנה מאפשר הדמיה אידיאלית של התנהגות התא, כמו גם הזדמנות לשנות את איכויות המצע, לחשוף תאים לתרופות ולגורמים אביוטיים וביוטיים ולהדביק תאים במבנים המבטאים או מדכאים גנים שונים בעלי עניין. עם זאת, גישה רדוקציוניסטית זו עלולה להיכשל בללכוד כמה מהפרמטרים החשובים המעורבים בהתנהגות תאי אפיתל בהקשר in vivo, כולל תקשורת בין סוגי תאים שונים ואירועי איתות המתרחשים ב- ECM11. מודלים In vivo מספקים את ההקשר האותנטי של פצע, עם סוגי תאים מרובים, מסלולי איתות חופפים ו- ECM35 מורכב. מודל אחד כזה למחקרי ריפוי פצעים הוא עכבר19, שבו ההתקדמות האחרונה אפשרה לחוקרים לצפות בתאי אפידרמיס במהלך ריפוי פצעים בעובי מלא בבעלי חיים36. עם זאת, העכבר ומערכות in vivo אחרות מציבות אתגרים לחקר אפיתל מחדש. ראשית, היתרון הגדול של התבוננות בהתנהגות התא בהקשר טבעי מאוזן על ידי המורכבות של האירועים החופפים זמנית המתרחשים במהלך ריפוי פצעים בחוליות, כולל קרישת דם, גיוס תאי חיסון ודלקת, גיוס פיברובלסטים ודה-התמיינות תאים, וסקולריזציה מחדש ועיצוב מחדש של ECM. יתר על כן, רקמות אטומות מקשות על הדמיה. מערכות האפידרמיס של זחלי דרוזופילה ודגי זברה 37,38 התגברו על חלק מהקשיים הללו בגלל פשטותם היחסית 39.
המעבדה שלנו הציגה לאחרונה מודל חדש לחקר ריפוי פצעי אפיתל: צורת המדוזה (מדוזות) של Clytia hemisphaerica (Clytia)40. קליטיה היא אורגניזם מודל מתפתח עם גנום 41 מרוצף ומבואר במלואו, תעתיק RNAseq42 של תא בודד, ופרוטוקולים לשינוי גנום (מוטגנזה וטרנסגנזה)43,44,45. קנידארים הם אחת השושלות העתיקות ביותר שקיימות שיש להם שכבות אפיתל, כך שהבנת ריפוי פצעים קנידאריים מספקת תובנות לגבי מסלולי האבות שהבטיחו שלמות אפיתל. עבור אותם מסלולים שנשמרו לאורך עץ החיים, Clytia מציעה מערכת חדשה ומלהיבה לחקר דינמיקה של תאי אפיתל והרגולציה התפקודית של ריפוי פצעים in vivo.
האפיתל המכסה את פני השטח העליונים של Clytia medusa (exumbrella) הוא חד-שכבה של תאי אפיתל שקופים וקשקשיים שרוחבם כ-50 מיקרומטר ועובי 1-2 מיקרומטר (איור 1). הם מחוברים ל-ECM שנקרא mesoglea – ה"מדוזה" של המדוזות. המזוגליאה דומה בהרכבה ל-ECM שנמצא אצל בעלי חיים אחרים 46,47,48 כולל בעלי חוליות, יש לו קרום מרתף 40, והוא שקוף לחלוטין. שכבת האפיתל במדוזה Clytia ניתנת לשריטה או לפציעה בקלות (ראה להלן). הפשטות והשקיפות של האפיתל וה-ECM מאפשרת הדמיה ברזולוציה גבוהה של התאים ותנועותיהם במהלך הריפוי. לאחרונה, Kamran et al. אפיינו את ריפוי פצעים קטנים באפיתל Clytia בפירוט40. הוכח כי ריפוי בקליטיה מתרחש באמצעות זחילת תאים מבוססת למליפודיה, התפשטות תאים ונדידת תאים קולקטיבית, כמו גם סגירת חוט ארנק האופיינית יותר למערכות עובריות (אם כי נראתה בעבר במבנים של בעלי חיים בוגרים כגון הקרנית49). ריפוי פצעי קליטיה הוא מהיר ביותר, כפי שנראה במערכות אחרות שאין בהן תגובה דלקתית40,50. הריפוי ב-Clytia exumbrella תלוי לחלוטין בתנועות של תאי האפיתל הקיימים – אין תאים שמתרבים או נודדים דרך ה-ECM לאתר הפצע (סרט משלים 1). כל הממצאים הללו מצביעים על כך שקליטיה היא מערכת מודל שימושית לחקר ריפוי פצעי אפיתל. ואכן, קלות ההדמיה של תאי אפיתל בקליטיה במהלך ריפוי פצעים הובילה לגילוי כי למליפודיה של תאי אפיתל מתרחבת ומתפשטת על פני אזורים של ECM חשוף כל עוד יש קרום מרתף שלם; אם קרום המרתף ניזוק, ריפוי אפיתל עובר למנגנון מיתרי ארנק40. זו הייתה ההדגמה הראשונה של מנגנון העומד בבסיס ההחלטה לסגור על ידי זחילה מבוססת למליפודיה לעומת סגירת חוט ארנק, תוך הדגשת החשיבות של אינטראקציות ספציפיות בין תאים ל-ECM בריפוי ובהתבוננות בתאים בהקשר הטבעי שלהם.
להלן מתוארים פרוטוקולים ליצירה והדמיה של מיקרו-פצעים חד-תאיים, פצעים קטנים שנסגרים בעיקר על-ידי התפשטות תאים, ופצעים גדולים שדורשים נדידת תאים קולקטיבית כדי להיסגר. יתר על כן, מתואר פרוטוקול להחדרת מולקולות קטנות לתאי ECM ואפיתל, המאפשר הפרעות ניסיוניות של מסלולי בקרה משוערים של ריפוי פצעים.

<table><tbody><tr><td>20500 ACE EKE מיקרוסקופ סיבים אופטיים מקור אור</td><td>Kramer Scientific Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AxioCam 506 mono</td><td>ZEISS</td><td>426557-0000-000-MA285</td><td></td></tr><tr><td>צינורות נימיים</td><td>World Precision Instruments</td><td>TW1004</td><td></td></tr><tr><td>Cytochalasin B</td><td>Abcam</td><td>ab143482</td><td></td></tr><tr><td>שקופיות דיכאון</td><td>Amscope</td><td>BS-C12</td><td></td></tr><tr><td>DMR עם אפשרויות DIC ומנורת הלוגן פלואורסצנטית</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E10521-10G</td><td></td></tr><tr><td>Fast Green FCF</td><td>Thermo Scientific</td><td>A16520-06</td><td></td></tr><tr><td>FM1-43</td><td>Biotium</td><td>70022</td><td>עירור/פליטה: 480/598 ננומטר&nbsp;</td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Thermo Scientific</td><td>62249</td><td>עירור/פליטה: 361/497 ננומטר&nbsp;</td></tr><tr><td>טיפים ל-imageJ</td><td>NIH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microloader (0.5-10 &mu; L /2-20 &mu; L)</td> <td>Eppendorf</td><td>930001007</td><td></td></tr><tr><td>מיקרומניפולטור</td><td>מכשירי דיוק עולמיים</td><td>3301R / M3301L</td><td></td></tr><tr><td>כיסוי מיקרוסקופ זכוכית (22X40-1.5)</td><td>Fisherbrand</td><td>12-544-BP</td><td></td></tr><tr><td>צלחת פטרי (60 מ"מ x 15 מ"מ)</td><td>Fisherbrand</td><td>FB085713A</td><td></td></tr><tr><td>PicoNozzle v2</td><td>World Precision Instruments</td><td>5430-ALL</td><td></td></tr><tr><td>חולץ פיפטה</td><td>Sutter Instrument Co</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>פנאומטי PicoPump</td><td>World Precision Instruments</td><td>PV820</td><td></td></tr><tr><td>שואב פוליקרבונט, מייבש</td><td>Bel-art</td><td>F42025-0000</td><td></td></tr><tr><td>פריזמה 9</td><td>GraphPad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>STEMI Sv11 היקף דיסקציה</td><td>ZEISS</td><td>STEMI SV11</td><td></td></tr><tr><td>SYLGARD 184</td><td>Dow Silicones</td><td>1024001</td><td></td></tr><tr><td>העברת פיפטות</td><td>פישרברנד</td><td>13-711-7M</td><td></td></tr><tr><td>Z-Hab מיני מערכת</td><td>Pentair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ZEN מיקרוסקופיה תוכנה</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

אפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות אורגניזם המודל הקנידרי clytia hemisphaerica

Characterizing Epithelial Wound Healing In Vivo Using the Cnidarian Model Organism Clytia hemisphaerica

כל איברי בעלי החיים, מהעור, דרך העיניים ועד המעיים, מכוסים ביריעות של תאי אפיתל המאפשרים להם לשמור על הומאוסטזיס תוך הגנה עליהם מפני זיהום. לכן, אין זה מפתיע כי היכולת לתקן פצעים אפיתל הוא קריטי לכל metazoans. ריפוי פצעי אפיתל בבעלי חוליות כרוך בתהליכים חופפים, כולל תגובות דלקתיות, וסקולריזציה ואפיתל מחדש. ויסות תהליכים אלה כרוך באינטראקציות מורכבות בין תאי אפיתל, תאים שכנים והמטריצה החוץ תאית (ECM); ה-ECM מכיל חלבונים מבניים, חלבוני בקרה ומולקולות קטנות פעילות. מורכבות זו, יחד עם העובדה שלרוב בעלי החיים יש רקמות אטומות ואק"מ בלתי נגיש, מקשה על ריפוי פצעים בבעלי חיים חיים. עבודה רבה על ריפוי פצעי אפיתל מתבצעת אפוא במערכות תרבית רקמה, עם סוג תא אפיתל יחיד מצופה כשכבה אחת על מטריצה מלאכותית. Clytia hemisphaerica (Clytia ) מספק השלמה ייחודית ומרגשת למחקרים אלה, ומאפשר ריפוי פצע אפיתל להיחקר בחיה שלמה עם ECM אותנטי. אפיתל אקטודרמלי של Clytia הוא שכבה אחת של תאי אפיתל קשקשיים גדולים, המאפשר הדמיה ברזולוציה גבוהה באמצעות מיקרוסקופ ניגוד מפריע דיפרנציאלי (DIC) בבעלי חיים חיים. היעדר פיברובלסטים נודדים, כלי דם או תגובות דלקתיות מאפשר לנתח את האירועים הקריטיים באפיתל מחדש in vivo. ניתן לנתח ריפוי של סוגים שונים של פצעים, כולל מיקרו-פצעים חד-תאיים, פצעי אפיתל קטנים וגדולים ופצעים הפוגעים בקרום המרתף. במערכת זו ניתן לראות היווצרות למליפודיה, התכווצות מיתרי ארנק, מתיחת תאים ונדידת תאים קולקטיבית. יתר על כן, סוכנים פרמקולוגיים ניתן להציג באמצעות ECM כדי לשנות אינטראקציות תא:ECM ותהליכים תאיים in vivo. עבודה זו מציגה שיטות ליצירת פצעים בקליטיה חיה, לכידת סרטי ריפוי, וחקירת מנגנוני ריפוי על ידי מיקרו-הזרקת ריאגנטים לתוך ECM.

בהתאם לפרוטוקולים לעיל, צולמו מיקרו-פצעים חד-תאיים, פצעים קטנים ופצעים גדולים. ערימות רשומות של קובצי תמונה נשמרו כקובצי .avi.
בסרט 1 אפשר לראות מיקרו-פצעים נסגרים בין התאים ובתוכם (איור 1 ואיור 2). Lamellipodia קטנים נצפים במהלך הסגירה, ואחריו התכווצות וריפוי. פסולת נשללת ומשוחררת למים. הריפוי מסתיים תוך דקה או פחות.
בסרטים 2 ו-3, פצעים קטנים בצורות שונות נרפאים באמצעות היווצרות למליפודיה, הרחבה של מגעים למליפודיאליים והתפשטות תאים בשולי הפצע, כפי שתואר קודם לכן40 (איור 1 ואיור 2). תאים בשכבות מאחורי תאי השוליים אינם משתתפים בריפוי פצעים בגודל כזה וגם אין נדידת תאים קולקטיבית. סגירה מהירה ומתקדמת של פערי אפיתל מלווה בהתכווצות רקמות לאורך תפר הפצע החדש שנוצר40. קצב הריפוי המנורמל של שני הפצעים האלה, המתבטא כאחוז מהשטח המקורי לאורך זמן, מוצג (איור 4C,D). בעוד שקיימת שונות מסוימת בדינמיקה של סגירת פצעים, ממוצע אחוזי סגירת השטח לאורך זמן עבור 14 פצעים בצורות שונות בטווח של 0.02-0.125 מ"מ2 מאפשר לבסס עקומה ממוצעת לריפוי פצעים בחיות שלא טופלו (איור 4E).
נזק לקרום המרתף נראה בבירור כאשר הוא מתרחש (איור 2). בסרט 4, תאים בשולי פצע קטן שבו יש נזק לקרום המרתף מתפשטים סביב האזור הפגוע, וסגירת הפער מסתיימת עם כיווץ חוט ארנק.
אם הרקמה מיובשת או פגומה מכדי לתקן, תנועות התאים יכולות להיפסק, או שכל גיליון התאים יכול להתפוצץ (סרט 5 וסרט 6). זה קורה בדרך כלל לאחר תקופות ארוכות של הדמיה (45 דקות או יותר). אם התפוצצות התא מתרחשת בשלב מוקדם של ההדמיה, הדגימה מושלכת.
כפי שניתן לראות בסרט 7, פצעים גדולים מחלימים בכמה שלבים. ראשית, קצה הפצע הופך חלק וסדיר עקב התכווצויות בשוליים, כפי שדווח קודם לכן57. לאחר מכן, נראה כי למליפודיה נוצרת מהתאים בשולי הפצע, כאשר למליפודיה נעה קדימה כדי למקסם את המגע עם למליפודיה סמוכה. מעקב אחר הגרעינים בתאים בשולי הפצע ובכמה שכבות מאחורי תאי השוליים מראה כי פערים גדולים נסגרים על ידי נדידת תאים קולקטיבית40. תאים לעולם אינם מתנתקים אלא נעים יחד כגיליון.
הכנסת צבעים וחומרים פרמקולוגיים יכולה להיות כלי רב עוצמה לניתוח מנגנונים ביולוגיים. חומרים רבים אינם נכללים בקליטיה (לא מוצג), כנראה בגלל שכבת הריר שמצפה את פני השטח של החיה. עם זאת, ניתן להשתמש במיקרו-הזרקה כדי להחדיר מולקולות ישירות לתוך ה-ECM, לשבש את מבנה ה-ECM או להפריע לפעילות הרגולטורית ב-ECM. בנוסף, צבעים ומולקולות אחרות מסוגלים להיכנס לתאי אפיתל מהצד הבסיסי. לדוגמה, איור 6 מראה צביעה גרעינית עם Hoechst, צביעת קרום עם FM1-43, ועיכוב של היווצרות למליפודיה על-ידי ציטוכלסין B לאחר שהריאגנטים האלה מוזרקים במיקרו לתוך ה-ECM. החדרת מולקולות אלה לתאי ה-ECM והאפיתל לפני הפציעה מאפשרת ניסויים הבודקים את השפעת הכלים הפרמקולוגיים על תהליך הריפוי.
<img alt="דינמיקה של קרום התא; ניגודיות הפרעות דיפרנציאליות, מיקרוסקופיה פלואורסצנטית; השוואה ניסיונית." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65081/65081fig06.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 6"> איור 6: תאי אפיתל של מדוזה לאחר מיקרו-הזרקה של צבעים או חומרים פרמקולוגיים. (A ) תאי אפיתל מוצגים בלוח העליון 5 דקות לאחר ההזרקה עם 20 μM Hoechst (גרעינים) ו-50 μM FM1-43 (ממברנות). (ב,ג) ריפוי פצעים לאחר הזרקה עם בקרת DMSO בקנ "מ 1:1,000 (B) או 100 מיקרומטר ציטוכלסין B (C). פצעים נעשו 15 דקות לאחר ההזרקה. התמונות צולמו 5 דקות לאחר הפציעה. היווצרות של lamellipodia מעוכב על ידי cytochalasin B. ה"סיבים" הנראים לעתים קרובות בין תאים באזור הפצע הם ככל הנראה תוצאה של מתח המותח את קרום המרתף - הם אינם מכתימים בפלואידין (לא מוצג). פסי קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/65081fig06large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
סרט 1: סרט קיטועי זמן של ריפוי מיקרו-פצעים בתא יחיד. הזמן שחלף: 20 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie1.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 2: סרט קיטועי זמן של ריפוי פצע אפיתל קטן. זמן שחלף: 9 דקות 54 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie2.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 3: סרט קיטועי זמן של ריפוי פצע אפיתל קטן. פצע זה גדול יותר וצורתו אינה סדירה יותר מהפצע בסרט 2. זמן שחלף: 20 דקות 54 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie3.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 4: סרט קיטועי זמן של פצע קטן ומיקרו-פצע המרפא עם קרע בקרום המרתף. Lamellipodia התפשט סביב קרע קרום המרתף, אם כי הם יכולים להתקדם על פני שאר ECM. ברגע שהאזור של הפצע עם הנזק לקרום המרתף מוקף, התכווצות חוט ארנק מושכת תאים מעל האזור. זמן שחלף: 19 דקות 4 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie4.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 5: תאים גוססים בפצע אפיתל קטן. מוות תאי נגרם ככל הנראה כתוצאה מהתייבשות החיה. זמן שחלף: 4 דקות 24 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 100 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie5.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 6: פצע אפיתל קטן לא מצליח להשלים את הריפוי. זמן שחלף: 42 דקות 32 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 50 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie6.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
סרט 7: ריפוי פצע אפיתל גדול. זמן שחלף: 25 דקות 29 שניות. קצב פריימים: 10 פריימים לשנייה. סרגל קנה מידה: 100 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/Movie7.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד סרט זה.</a>
איור משלים 1: סכמות ממד מיכל קליטיה. הדמיה תלת מימדית של מיכלי Clytia בהתאמה אישית. (A) מבט מלפנים ומאחור. (B) מבט מהצד. החיתוך ביצירה המוצגת בירוק מכוסה ברשת ניילון. מים נכנסים למיכל ישירות מעל הרשת, סוחפים את הרשת ויוצרים זרם מעגלי. מים יוצאים מהמערכת דרך החור בחלק הסופי המוצג בכחול. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/SupplementalFigure1.pdf" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להוריד קובץ זה.</a>
סרט משלים 1: מטריצה חוץ-תאית אצלולרית בקליטיה. Z-stack של Clytia נלקח באמצעות מיקרוסקופ קונפוקלי. המחסנית מתמקדת תחילה באקסמטריה ולאחר מכן סורקת כל 10 מיקרומטר דרך ה-ECM אל אנדודרם הצלחת ותת-המטריה. תמונות המשתמשות ב-DIC (משמאל) ובצביעה גרעינית Hoechst (מימין) מדגימות את המחסור בתאים ב-ECM. סרגל קנה מידה: 100 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65081/SupplementalMovie1.mp4" target="_blank">אנא לחץ כאן להורדת קובץ זה.</a>

מאמר זה מתאר שיטה ליצירת פצעים באפיתל של מדוזה חיה של Clytia hemisphaerica וריפוי פצעים ברזולוציה גבוהה in vivo. בנוסף, מוצגת טכניקה להחדרת צבעים ותרופות להפרעות לתהליכי איתות בתאי האפיתל ובמטריצה החוץ תאית במהלך ריפוי פצעים.

אפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות אורגניזם המודל הקנידרי Clytia hemisphaerica

All animal organs, from the skin to eyes to intestines, are covered with sheets of epithelial cells that allow them to maintain homeostasis while ...

פרוטוקול זה מאפשר הדמיה של תאי אפיתל במהלך ריפוי פצעים בבעלי חיים חיים. זה מאפשר לנו לראות איך תאים מתנהגים בסביבה הטבעית המורכבת שלהם. טכניקה זו מציגה ריאגנטים לתוך המטריצה החוץ תאית וציטופלסמה התא כדי לחקור את ההשפעה של ריאגנטים אלה על התפשטות תאים ונדידה במהלך ריפוי פצעים בבעלי חיים חיים.ריפוי פצעי אפיתל וקליטיה דומה להפליא לריפוי בבעלי חיים מורכבים יותר. לכן, אנו יכולים ללמוד הרבה ממערכת זו על מנגנוני ריפוי הפצעים וכיצד הם נוצרו. מי שידגימו את הנהלים הללו יהיו אליזבת לי, וטכנאית המחקר אמילי וואטו.כדי להתחיל את תהליך הפציעה, להכין פיפטה העברה שונה על ידי חיתוך קצה פיפטה עם מספריים, יצירת פתח מוגדל בגודל של 0.5 עד 0.7 ס"מ קוטר. באמצעות פיפטת ההעברה המתוקנת, מניחים את המדוזה שנאספה ממושבות הפוליפ המבוססות על מגלשת שקע, כאשר מטריית מדוזה X פונה כלפי מעלה. ודא כי מספיק של מי ים מלאכותיים, או ASW, מכסה את החיה.כדי ליצור מיקרו פצעים בתוך ובין תאים, הניחו כיסוי מעל החיה. החלקת הכיסוי דוחסת את המזוגליאה, והריבאונד של הרקמה הדחוסה מאלץ את התאים להתרחק מעט. דמיינו את החיה מיד כדי להתבונן בפצעי המיקרו שנוצרו.כדי ליצור פצעי אפיתל קטנים, הניחו את המדוזה על מגלשת דיכאון כאשר מטריית מדוזה X פונה כלפי מעלה, באמצעות פיפטת העברה שונה, כפי שהודגם קודם לכן. בעזרת קצה פיפטה של 200 מיקרוליטר, מגרדים בעדינות את פני השטח של המדוזה. גירוד עדין עלול ליצור קרעים בקרום המרתף.כסו את בעל החיים בפתק כיסוי להדמיה. הנחת הכיסוי מספיקה לעיתים כדי ליצור פצעי אפיתל קטנים גם ללא שריטה. הכינו מחט מיקרו-הזרקה, באמצעות עמוד מיקרו פיפטה וצינור נימי זכוכית, בהתאם לשלבים המתוארים בטקסט.הכניסו את מחט המיקרו-הזרקה הריקה למחזיק מיקרו-הזרקה המודבק למיקרו-מניפולטור וחתכו את קצה המחט, כך שהפתח יהיה בגודל של כ-20 עד 40 מיקרון. הגדר את לחץ האחיזה על המזרק הזעיר לאפס, ואת לחץ הפליטה לכ -20 פאונד לאינץ 'מרובע. הגדר את המיקרו-מזרק כך שיספק פולס אוויר של שתי שניות.כדי ליצור פצעי אפיתל גדולים, הניחו את המדוזה על מגלשת דיכאון, כפי שהודגם קודם. באמצעות מניפולטור מיקרו, להתאים את קצה מחט מיקרו הזרקה להישאר ממש מעל המים, על ידי טבילה בזהירות את הקצה לתוך המים, ולאחר מכן למשוך אותו כך שהוא קרוב למשטח האפיתל של המדוזה. דופק אוויר על ידי לחיצה על התחל על המזרק.חזור על הדופק באותה נקודה פעמיים עד ארבע פעמים, בהתאם לרוחב הקצה. טיפים גדולים יותר דורשים פחות פולסים. כסו את בעל החיים הפצוע בתלוש כיסוי להדמיית פצעים גדולים.כוונן את המוקד למטריית x. תאים משושים צריכים להיות ברורים. זהה פצע באופן ידני כדי לדמות אותו.הפעל תוכנית שאוספת תמונות כסרט בזמן אמת, או תוכנית שאוספת סידרה של תמונות במרווחי זמן קבועים. עקוב אחר ההתקדמות כדי לוודא שאזור הפצע אינו נסחף אל מחוץ לשדה הראייה, ושהתאים המעניינים נשארים ממוקדים. להזרקת צבעים ותרופות, הכינו מחט מיקרו-הזרקה בהתאם לשלבים המתוארים בטקסט.מלאו את מחט המיקרו-הזרקה בעזרת קצה פיפטה ארוך עם נפח עודף של צבע או תרופה להזרקה למדוזה. בעזרת פיפטת העברה שעברה שינוי, הניחו מדוזה עם תת-מטריה הפונה כלפי מעלה לתוך פולידימתילסילוקסן, או צלחת הזרקת PDMS, עם מספיק ASW כדי לכסות את החיה. מניחים את המנה על במה של מיקרוסקופ מנתח.התמקדו בקצה מחט המיקרו-הזרקה, וקדמו אותה למים ליד המדוזה. עם מניפולטור מיקרו, לחץ על המחט לתוך הצלחת עד שהיא מתכופפת ונשברת. יצירת פתח חוד של כ-10 עד 20 מיקרון.באמצעות מניפולטור מיקרו, להחדיר את קצה המחט דרך מטריית המשנה לתוך mesoglea מבלי לנקב את מטריית X. במיקרו-מזרק, הגדר את לחץ האחיזה לאפס, ולחץ ההזרקה מתחת או שווה ל -20 פאונד לאינץ 'מרובע. יש להזריק לרביע אחד או שניים, ולמלא כל אחד מהם בכתם צבע או סם בערך רבע משטחו של אותו רביע.תלוי איזה צבע או סם מוזרקים, בעלי חיים מוכנסים לתוך של ASW טרי כדי לאפשר צבע או פיזור סמים ודגירה. להדמיה, הרכיבו את המדוזה על מגלשת שקע באמצעות פיפטת העברה שונה, והציבו את החיה עם מטריית X הפונה כלפי מעלה. בעלי חיים יכולים להיפצע בשלב זה כדי לבחון את ההשפעה של מגיב מוזרק.פצעי המיקרו בתוך ובין התאים יצרו למליפודיה קטנה במהלך סגירת הפצע. לאחר מכן הגיע התכווצות, והפצעים החלימו תוך פחות מדקה. פצעי האפיתל הקטנים נרפאו גם באמצעות היווצרות למליפודיה והרחבה של מגעי למליפודיה.סגירת פצע מהירה ומתקדמת קדמה להתכווצות הרקמה לאורך תפר הפצע שזה עתה נוצר. שיעור הריפוי המנורמל של שני פצעים קטנים המתבטא כאחוז משטח הפצע הכולל לאורך זמן הצביע על שונות מסוימת בדינמיקה של סגירת הפצע. נתונים מ-14 פצעים שונים שימשו לקביעת עקומת ריפוי פצעים ממוצעת בבעלי חיים שלא טופלו.בפצע קטן עם נזק לקרום המרתף, תאי השוליים התפזרו סביב האזור הפגוע, והפער נסגר בהתכווצות חוט ארנק. כאשר הרקמה הייתה מיובשת או פגומה מכדי לתקן, תנועות התאים יכלו להיפסק, או שכל יריעת התאים יכלה להתפוצץ. פצעים גדולים נרפאו בכמה שלבים.החלקת הקצה בעקבות התכווצויות בשוליים, היווצרות למליפודיה והארכת הלמליפודיה מגעים עם נדידת תאים קולקטיבית בשוליים ובמרחק של מספר שכבות תאים מהם, סגרו פערים גדולים. צביעת הגרעין והממברנה הושגו על ידי הזרקה זעירה של הריאגנטים לתוך ECM. מיקרו-הזרקה של ציטוכלסין B עיכבה היווצרות למליפודיה לאחר הפציעה.טפלו בבעלי החיים בעדינות. בעת הזרקת ריאגנטים, ודא שקצה מחט המיקרו-הזרקה נמצא במזוגליאה, ולא עבר את כל הדרך דרך החיה. כיום, בעלי חיים טרנסגניים מיוצרים עם חלבוני תג פלואורסצנטי, בשילוב פלואורסצנטיות ומיקרוסקופ ניגודיות מפריע דיפרנציאלי ייתן תמונה ברורה עוד יותר של האירועים התאיים בריפוי פצעי אפיתל.

characterizing-epithelial-wound-healing-vivo-using-cnidarian-model

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

העור הבוגר של C. elegans הוא מודל ניתן למעקב למחקרים על תגובות פצע אפיתל, כולל סגירת פצע, היווצרות צלקות וחסינות מולדת.

שיטות לעור פציעה ומבחנים לתגובות פצע ב C. elegans

keratocytes דג הזברה להעביר בגיליונות תא מexplants ולספק מודל במבחנה לחקר המנגנונים של נדידת תאים קולקטיבית בהקשר של ריפוי פצע אפיתל. פרטים אלה פרוטוקולי דרך יעילה להקמת תרבויות explant עיקריות לשימוש במבחני נדידת תאים קולקטיביים.

Explants Keratocyte דג הזברה לחקר הגירה קולקטיבית סלולארי וReepithelialization בריפוי פצע עורית

מתואר כאן הקמת מודל ניתוח קטרקט מדומה ex vivo רלוונטי מבחינה קלינית שניתן להשתמש בו כדי לחקור מנגנונים של תגובת הפגיעה של רקמות אפיתל בתוך המיקרו-סביבה הטבעית שלהן.

הקמת קלינית רלוונטי<em&gt; Ex Vivo</em&gt; דגם ניתוח קטרקט מוק לחקירת תיקון פצע אפיתל במייקרו-סביבה של ילידים

כתב יד זה מתאר איך חתך דמוי נגעים על monolayers בתרבית תאים אפיתל בנוחות דגם פצע ריפוי במבחנה, ומאפשר הדמיה על ידי קונאפוקלית או סריקה מיקרוסקופ לייזר, אשר יכול לספק באיכות גבוהה נתונים כמותיים ואיכותיים ללמוד בהתנהגות התא והן את המנגנונים המעורבים בהעברה.

מיקרוסקופ המבוסס על שיטות להערכה של נדידת תאים אפיתל במהלך במבחנה ריפוי הפצע

פרוטוקול זה מתאר שיטה כדי לגרום של שחיקה השטח עינית של העכבר, בצע את לאחר מכן תהליך ריפוי הפצע. הפרוטוקול מנצל burr עינית חלקית להסרת האפיתל פני השטח של העין בעכברים מרדימים.

אפיתל שחיקה הקרנית עם עינית Burr כמודל עבור קרנית ריפוי פצעים

פוליפואידציה הנגרמת על-ידי פצע היא אסטרטגיה של תיקון רקמות שוחמרות שבה תאים גדלים בגודל במקום לחלק כדי לפצות על אובדן תאים. הנה פרוטוקול מפורט על איך להשתמש בזבוב הפירות כמודל למדוד תכסיסה ויסות גנטי שלה בתיקון פצעים אפיתל.

מודל Drosophila לחקר פוליפלואידים הנגרמים על ידי פצע

פרוטוקול זה מתאר כיצד ליצור פצעים דו-צדדיים בעובי מלא בעכברים וכיצד לעקוב אחר, לקצור ולהכין את הפצעים לניתוח מורפומטרי. כלול תיאור מעמיק של אופן השימוש בסעיפים היסטולוגיים טוריים כדי להגדיר, לכמת ולזהות פגמים מורפומטריים במדויק.

מודל ריפוי פצעים מרין וניתוח פצעים מורפומטריים היסטולוגיים

כאן מתואר פרוטוקול ליצירת פצע שחיקה מרכזי באפיתל הקרנית בעכבר באמצעות טרפין וספוד של מועדון גולף קהה. מודל זה של ריפוי פצעי הקרנית ניתן לשחזור רב ומשמש כיום להערכת ריפוי פצעי בקרנית שנפגעו בהקשר של מחלות.

מודל שחיקה אפיתליאלית לחקר ריפוי פצעי הקרנית

הפרוטוקול הנוכחי מדגים את השלבים השונים הכרוכים בפציעת הקרנית של אפרוח עוברי באובו. ניתן לנתח את הקרנית המתחדשת או המשוחזרת במלואה עבור פוטנציאל התחדשות באמצעות טכניקות תאיות ומולקולריות שונות לאחר הליך הפציעה.

חקר התחדשות רקמות ללא צלקות בקרנית אפרוח פצועה עוברית

פרוטוקול זה מתמקד בפגיעה במשטח העין של דגי הזברה באמצעות שחיקה כדי להעריך את סגירת הפצעים הבאים ברמה התאית. גישה זו מנצלת בר עיני כדי להסיר חלקית את אפיתל הקרנית ומשתמשת במיקרוסקופיית אלקטרונים סורקת כדי לעקוב אחר שינויים במורפולוגיה של התא במהלך סגירת הפצע.

ריפוי פצעים בקרנית דגי זברה: משחיקה לניתוח הדמיה לסגירת פצעים

כאן אנו מתארים פרוטוקול להדמיית תאים מתרבים דמויי גזע במדוזה Cladonema. הכלאה פלואורסצנטית שלמה באתרה עם סמן תאי גזע מאפשרת זיהוי של תאים דמויי גזע, ותיוג 5-אתיניל-2'-דאוקסיורידין מאפשר זיהוי של תאים מתרבים. יחד, ניתן לזהות תאים דמויי גזע המתרבים באופן פעיל.

הכלאה פלואורסצנטית באתרה ותיוג 5-אתיניל-2'-דאוקסיורידין לתאים דמויי גזע במדוזה הידרוזואנית Cladonema pacificum

למד שיטה לאפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות מדוזת Clytia hemisphaerica. הטכניקה כוללת יצירת פצעים, הזרקת צבעים ותרופות, ודימות תאי בזמן אמת לחקירת התנהגות תאית בסביבה טבעית.

אפיון ריפוי פצעי אפיתל in vivo באמצעות אורגניזם המודל הקנידרי Clytia hemisphaerica

גלה סרטונים נוספים