August 2nd, 2024
פרוטוקול זה מתאר שיטה פשוטה וחסכונית לחקור ולכמת מוות תאי באורגנואידים אנושיים של המעי הגס בתגובה להפרעות ציטוטוקסיות כגון ציטוקינים. הגישה משתמשת בצבע מוות פלואורסצנטי של תאים (SYTOX Green Nucleic Acid Stain), במיקרוסקופ פלואורסצנטי חי ובתוכנת ניתוח תמונות בקוד פתוח כדי לכמת תגובות אורגנואיד יחיד לגירויים ציטוטוקסיים.
הציטוקינים הדלקתיים אינטרפרון-גמא ו-TNF קיימים כבר מאות מיליוני שנים והם קריטיים להגנה יעילה של המאכסן מפני פתוגנים בין-תאיים. קבוצת המחקר שלנו מנסה להבין כיצד הציטוקינים האלה פועלים כדי להרוג תאים, כגון תאי אפיתל במעיים ותאים סרטניים. מערכות נפוצות לחקר מנגנוני מוות של תאי אפיתל במעי כוללות מודלים של עכברים וקווי תאים סרטניים אימורטליים.
לאורגנואידים אנושיים יש יתרון מכיוון שהם מופקים ישירות מביופסיות של המטופל ושומרים על מאפיינים פיזיולוגיים ומורפולוגיים רבים של רקמת ההורה. משמעות הדבר היא שיש להם ערך תרגום מוגבר. למחקר איברים יש בעיות עם יכולת השחזור של ניסויים, ויש לו כמה אתגרים טכניים בהשוואה לתרבית תאים מסורתית.
גם לטכניקות הנוכחיות למדידת מוות של תאי אורגנואיד יש מגבלות. חלקם כמותיים למחצה בלבד, אינם מודדים מוות תאי ישירות, אינם יכולים למדוד תגובות אורגנואידים בודדות, או דורשים ציוד יקר ופרוטוקולים מורכבים. הפרוטוקול שלנו לניתוח כמותי של מוות תאי אורגנואיד הוא פשוט, חזק וזול.
השתמשנו בפרוטוקול שלנו כדי למדוד תגובות אורגנואידים בודדים לשילובי ציטוקינים ציטוטוקסיים, אך ניתן להתאים אותו בקלות לחקר כל סוג של פרטורבגן. שיטה זו שימושית למחקר על מוות תאי, תפקוד מחסום אפיתל, או אימונולוגיה רירית. לאחרונה דיווחנו כי אינטרפרון-גמא ו-TNF יוצרים סינרגיה כדי לגרום למוות של תאים דלקתיים בתאי אפיתל של המעי ובתאי סרטן המעי הגס.
הם עושים זאת באמצעות מסלול האיתות JAK1/2-STAT1. בעבודה עתידית נרצה להבין באיזה סוג של מוות תאי מדובר וכיצד JAK1 ו-JAK2 הורגים את התאים.
מחקר זה חוקר את מנגנוני מות התאים באורגנואידים קולוניים אנושיים בתגובה לציטוקינים דלקתיים כמו אינטרפרון גמא ו-TNF אלפא. על ידי שימוש בפרוטוקול חדשני הכולל צבעים פלואורסצנטיים ומיקרוסקופיה חיה, המחקר מספק שיטה חזקה לכימות מות תאים ברמת אורגנואיד יחיד.
Quantitative assessment of cytokine-induced cell death in patient-derived human colonic organoids addresses a critical gap in translational IBD research by enabling robust, reproducible measurement of epithelial barrier disruption. This workflow enhances predictive confidence for target validation and mechanistic de-risking at the intersection of discovery biology and preclinical modeling. The approach supports portfolio decisions by clarifying cytokine synergy and cytotoxicity in disease-relevant systems.
This protocol bridges early discovery and preclinical research by providing a quantitative, reproducible workflow for assessing cytokine cytotoxicity in human organoids.