December 19th, 2025
כאן אנו מציגים פרוטוקול לאוטומציה של ניתוח שינוי פוסט-תרגומי של היסטונים חד-תאיים באמצעות אסטרטגיית תיוג איזוטופי דו-פלקס ועיכול ArgC. תהליך עבודה זה מאפשר פרופילינג כמותי, שכפול ורגיש מאוד של הטרוגניות כרומטין ותגובות אפיגנטיות ברזולוציה של תא יחיד.
אנו מקדמים פרוטאומיקה חד-תאית באמצעות שיטת מולטיפלקס אוטומטית לחקר הטרוגניות כרומטין גלובלית לשינויים פוסט-תרגומיים. מה שמאתגר את הפרוטוקול הזה הוא הכנת הפרוטאומית בקנה מידה פיקוגרמה, תיוג מולטיפלקס, וכן פתרון פפטידי היסטונים מורכבים שעברו שינוי קומבינטורי. כדי להתחיל, לשחזר תאי קרצינומה כבדית של Hep G2/C3A בריכוז סופי של 200 עד 500 תאים למיקרוליטר ב-PBS קר מאוד.
הגדר את רוחב הפולס ומתח ההנעה של כל פיה לערכים שמספק היצרן. ליעילות איסוף מקסימלית, ודא שהסטייה של ה-Z בין שתי הפיות שונה בפחות מ-50 מיקרומטר. זהה את מיקום המגע האופטימלי לכל פיה והשווה את קריאות גובה ה-Z בלשונית הגדרת הפיה.
בתכנית מולטי-פלקס של טופלקס, טעין סלייד יחיד על מחזיק הסלייד שבמכסה המנוע ואז מעביר אותו למכשיר. באמצעות פיפטה, מחברים 150 מיקרוליטר DMSO בדרגת LCMS לצינור PCR חדש. הניחו אותו במיקום השני של תחנת הכביסה עם פקק הצינור מול דלת המכשירים.
תתחיל את הריצה ל-DMSO. קבל דרופ יציב לאחר ש-DMSO עבר שאיפה. שימו לב לשינוי בשקיפות ה-PDC.
ייתכן שיהיה צורך להעלות את המתח. בדוק יציבות על ידי בדיקת נפילה בעוצמת הקול. בצע את הגדרת אשף מצלמת הראש כדי ליישר את המצלמה.
יש לחלק DMSO ולאפשר למכשיר לשטוף אוטומטית את הפיות ולצלם תמונות בכל השקופיות לבקרת איכות. בדוק את התמונות הללו כדי לוודא טיפה אחידה של DMSO בכל שקופית ולבדוק אם טיפות חסרות או לא במטרה. לאחר שאיפת תליית התא, פתח את התא במודול אחד, בצע לכידת רקע ואז הרץ את שגרת המיפוי כדי להגדיר את אזור הפליטה.
הרץ את הניתוח ואז פתח את החלקיקים כדי לבחור תאים לפי גודל והארכה. כעת, הכינו תערובת עיכול טרייה במים בדרגת LCMS. נקה גזים מהתמיסה עם משאבת ואקום למשך 10 דקות על הקרח.
לאחר שפיזור תערובת העיכול על השקופיות, תן לכלי לשטוף אוטומטית את הפיות ולצלם כל שקופית. בדוק את התמונות כדי לוודא שכל טיפה מקבלת את תערובת העיכול באופן אחיד. דגרו את המגלשות בטמפרטורת החדר למשך הלילה לביצוע עיכול.
לאחר תחילת ריצת האידוי והעיכול הלילי, בדוק את התמונות. אם הטיפות יבשות מספיק, עצור את הריצה. אם לא, לחץ המשך וייבש עוד חמש דקות.
לצורך תיוג, תחילה הכן פתרונות מלאי לגזירת היסטונים מרוב-פלקס. לאחר הפינוי, אפשר למכשיר לשטוף אוטומטית את הפיות ולצלם כל שקופה. בדוק את התמונות כדי לוודא התפלגות אחידה ומיקום נכון של הטיפות בכל השקופיות.
לאחר סיום הדגירה, מחלקים את תמיסת הידרוקסילאמין להקרבה. כדי לאסוף את הדגימה, בחר את הריצה בלשונית הראשית, ואז התחל את הריצה בלשונית הריצה. לאחר סיום האיסוף, בדוק את התמונות כדי לבדוק שגיאות.
לאחר סיום הפיקאפ, הסר את המכסה מפלטת האיסוף. לאחר מכן ייבשו את הדגימות בחום נמוך במרכז ואקום. לצורך רכישת נתונים, תכנתו את שיטת הכרומטוגרפיה הנוזלית בעלת ביצועים גבוהים.
הגדר את ניסוי MS 2 כך שיכלול חלונות בידוד עם עומס יתר של 50, התנגשות אנרגטית גבוהה של 27% ויעד שליטה אוטומטית ברווח של 1000%. כסה את הלוח במזרן אטם גומי והנח אותו בתוך הסמפלר האוטומטי. לאחר קבלת קבצים גולמיים, בדוק בקצרה את הכרומטוגרמה ואז הרץ את הנתונים הגולמיים בגרסה 2.1 של EpiProfile. בדוק את טבלת הפלט של שפע PTM היסטוני מנורמל והשתמש בה לניתוחים במורד הזרם.
20 הפפטידופורמים הראשונים של היסטון H3 נמדדו, והראו את השפע היחסי שלהם בתנאים שטופלו בבקרה ובנתרן בוטיראט. גם אצטילציה של H3 K9 וגם אצטילציה של H3 K 14 הציגו שפע יחסי גבוה יותר בטיפול בנתרן בוטיראט. בעוד אצטילציית K9 של H3, אצטילציה K14 נראתה מועשרת אף יותר בתאים מטופלים.
רמות האצטילציה הכוללות עלו לאחר טיפול בנתרן בוטיראט עם תאים מטופלים עם התפלגות שגיאה רחבה יותר בהשוואה לביקורת, מה שמשקף את ההטרוגניות הגבוהה יותר שנאספה ברמת התא היחיד. הכימות של שינויים היסטונים בודדים ומקבילים הראתה כי מצבי אצטילציה קומבינטוריים מושפעים בעיקר מבוטיראט נתרן. הפיזור הרחב יותר של תאי נתרן בוטיראט הצביע על הטרוגניות ביולוגית מוגברת בין תאים בודדים בתוך הספרואידים.
פרוטוקול זה סוגר את הפער במחקר אפיגנטי בכך שהוא מאפשר למדענים לחקור מצבי כרומטין בתמיסה חד-תאית. תהליך עבודה זה מאפשר הכנת דגימות בתפוקה גבוהה, ריבוב דגימות וספקטרומטריית מסה בלתי מוטה, כדי לייצר נתונים אפיגנטיים חד-תאיים רגישים וכמותיים. מחקר עתידי יחקור כיצד ויסות הכרומטין משנה מצבי מחלה כמו סרטן, מחלות מטבוליות והזדקנות.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
מאמר זה מציג פרוטוקול לאוטומציה של ניתוח שינוי היסטון פוסט-תרגום בודד-תא באמצעות אסטרטגיה של תיוג דו-פלקסי איזוטופי. זרימת העבודה מאפשרת פרופילים כמותיים ורגישים גבוהים של הטרוגניות כרומטין ברזולוציית תא בודד.
Automated single-cell histone PTM analysis addresses the critical challenge of resolving chromatin heterogeneity and epigenetic regulation at cellular resolution. This workflow enhances predictive confidence in early discovery by enabling quantitative, multiplexed profiling of histone modifications across individual cells. The approach supports risk-adjusted portfolio decisions by providing high-content, reproducible data on epigenetic states relevant to disease and therapeutic modulation.
This automated protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling high-content, quantitative analysis of histone PTMs at single-cell resolution.