27 בפברואר 2026
מטרת הפרוטוקול היא לספק גישה סטנדרטית להערכה כמותית של שלמות מחסום האפיתל החניכיים בעכברים על ידי יישום מקומי של דקסטרנים מסומנים בפלואורסצנציה בגדלים מולקולריים משתנים על פני החניכיים ב-vivo, ואחריהם הדמיה אקס-ביבו באמצעות מערכת מיקרוסקופיה של פוטון יחיד.
זהו פרוטוקול סטנדרטי להערכה כמותית של שלמות מחסום אפיתל חניכי. פרוטוקול זה שימושי לחקר מחלות תפקוד לקוי של מחסום ולבדיקת תרופות לשיקום מחסום בחניכיים. בתחילה, חלקו עכברים זכרים מסוג C57BL/6J לשלוש קבוצות הכוללות קבוצת ביקורת לא מטופלת, קבוצת פריודונטיטיס המושרה על ידי קשירה, וקבוצת דלקת חניכיים מונעת מ-Porphyromonas gingivalis.
נבחרו מעקבים פלואורסצנטיים עם ספקטרום שאינו חופף, כגון דקסטרון המסומן על ידי FITC ורודמין B המסומן דקסטרון. כדי לדלל את המעקבים, ערבבו גרם אחד לליטר של FD40 ו-RD70 בג'ל 2% קרבוקסימתילצלולוז. שמרו את התערובת המוכנה על קרח.
לאחר אישור עומק ההרדמה באמצעות רפלקס צביטת האצבעות, השתמשו בפה כדי להחזיק את חלל הפה של העכבר המורדם פתוח. מרחו 50 מיקרוליטר מתערובת המעקב המוכנה באופן מקומי על פני החניכיים השפתיים באזור המולרי. השאירו את התערובת במקום למשך 30 דקות ומרחו אותה מחדש אם נבלעו.
לאחר 30 דקות של שימוש במעקב, מקבע את העכבר במצב שכיבה על גבו על קרטון ומקבע את הגפיים עם סרט דבק כדי להשתק את החיה. לאחר מכן, פתחו את חלל הפה של העכבר שנחתם ובודדו את הלסת העליונה. פנו בעדינות את הרקמות הסובבות ושטפו היטב את הדגימה עם PBS.
הנח את הלסת העליונה המבודדת על מגלשת זכוכית. לאחר מכן מניחים חימר מודלינג משני הצדדים כדי לייצב ולאבטח את הכיסוי מעל הדגימה. מקמו בזהירות את הלסת העליונה המנותקת על מחזיק הדגימה המעוצב בהתאמה אישית כדי להבטיח מיקום יציב להדמיה.
באמצעות מיקרוסקופ פוטון יחיד זקוף המצויד במטרה של טבילה במים של 25X. התמקד באזור התמיכה המותקן מתחת ללסת העליונה וצלם תמונות. בחרו את אזור העניין על פני השטח הבוקלי של הטוחנת השנייה בתוך הלסת העליונה והתחלו בהדמיה במהירות.
רכוש תמונות Z-stack בגודל שלב של מיקרומטר אחד, החל משטח החניכיים ועד עומק של 100 עד 200 מיקרומטר לשחזור תלת-ממדי. בתוכנה, לחץ על קובץ ובחר תיקייה חדשה כדי ליצור תיקייה חדשה למערך הנתונים ולהקצות שם תיאורי. בלשונית הרכישה, הגדר את פורמט XY ל-512 על 512 ברזולוציה של 0.99 מיקרומטר לפיקסל.
אחר כך הגדר את גורם הזום לאחד. לאחר מכן, כוון את אורכי הגל של העירור ל-488 ננומטר ו-561 ננומטר. הגדר חלונות פליטה ל-500 עד 550 ננומטר ו-570 עד 620 ננומטר בהתאמה.
עבור סדרת Z והדמיה תלת-ממדית, בחרו במצב רכישת ND. הגדר את שלב ה-Z למיקרומטר אחד וכיוון אם צריך. לאחר הגדרת הפרמטרים, בחר במצב חי כדי להמחיש את אזור החניכיים בתעלות פלואורסצנציה בודדות ומאוחדות.
ואז לחץ על הרצה עכשיו כדי להתחיל ברכישת תמונה. כדי למדוד חדירה, יש להפריד את עוצמת הפלואורסצנציה של FD40 ו-RD70 לערוצים שונים. ממזג את פרוסות ציר ה-Z ללא חיסור רקע.
לאחר מכן השתמשו בתוכנת ImageJ לכימות עוצמת הפלואורסצנציה ולהערכת חדירות מחסום אפיתליאלי. לחץ על קובץ ובחר לפתוח כדי לפתוח את תמונת המקסילה ב-ImageJ. לאחר מכן לחץ על תמונה ושנה את סוג התמונה לפורמט 8 ביט לניתוח.
לחץ על ניתוח, בחר מדידות סט. ואז בדוק שטח, ממוצע, וצפיפות משולבת, ולחץ על אישור כדי לאשר. לאחר מכן בחר את הערוץ הרצוי והתאמת הסף על ידי לחיצה על תמונה, בחירת התאמה, ובחירת סף.
הפעל את אפשרות הרקע הכהה כדי להתחשב ברקעים שחורים. לחץ על ניתוח ובחר מדידות סט. אחר כך בדוק את ערך האפור הממוצע ואת הגבלת הסף, ואשר על ידי לחיצה על אוקיי.
באמצעות כלי הבחירה החופשית, עקבו ידנית אחר קווי המתאר של אזור האות הפלואורסצנטי בצד רקמת החניכיים. לחץ על ניתוח ובחר מדידה לקבלת ערכי עוצמת פלואורסצנציה שבהם הצפיפות המשולבת מייצגת את עוצמת הפלואורסצנציה. העתק את תוצאות המדידה לגיליון אלקטרוני לחישובים וגרפים.
חשב את עוצמת הפלואורסצנציה הממוצעת של קבוצת הביקורת בגיליון האלקטרוני. חלק את ערך עוצמת הפלואורסצנציה של כל קבוצת ניסוי בממוצע קבוצת הביקורת כדי לקבל את עוצמת הפלואורסצנציה היחסית. בקבוצת הביקורת, שני המעקבים הפלואורסצנטיים היו מוגבלים בעיקר למשטח החניכיים.
בשתי הקבוצות שטופלו ב-Ligation ו-Porphyromonas gingivalis, נצפה אקסטרווסיה משמעותית של FD40 ו-RD70 לאפיתל החניכיים. ניתוח חצי-כמותי הראה עלייה משמעותית בעוצמת הפלואורסצנציה של FD40 ו-RD70 בקבוצות שטופלו בליגציה וב-Porphyromonas gingivalis. הדמיה תלת-ממדית גילתה התפלגות פלואורסצנציה נרחבת ומפוזרת יותר סביב כלי הדם החניכיים בקבוצות הטיפול בקשר ופורפירומונאס ג'ינגיבליס בהשוואה לקבוצת הביקורת.
פרוטוקול זה מכמת את החדירות והשלמות של מחסום פארא-תאי של חניכיים בעכברים. פרוטוקול זה יכול להיות משולב עם מיקרו-CT לניתוח תמונה רב-מודלי. מחקרים נוספים יכולים לחקור תרופות לתיקון מחסומים ומנגנונים מולקולריים במחלות הפה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחסום האפיתל החניכי (gingival epithelial barrier) משמש כקו הגנה קריטי בחסינות ובהומיאוסטזיס של חלל הפה. מחסום אפיתלי שלם מונע ביעילות חדירה של חומרים מזיקים מסביבת הפה, בעוד שפגיעה בו קשורה קשר הדוק לפתוגנזה של מצבים כגון דשת חניכיים (periodontitis) ולשנאי פה (oral lichen planus). כאן, ביססנו שיטה מבוססת יישום טופיקלי להערכת שלמות מחסום האפיתל החניכי בעכברים. ראשית, תערובת של דקסטרנים המסומנים פלואורסצנטית בעלי משקלים מולקולריים שונים (40 או 70 kDa) ב-2% sodium carboxymethylcellulose הוחלה באופן טופיקלי על פני השפה החניכית של אזור השיניים הטוחנות. לאחר תקופת דגירה של 30 דקות, הלסת העליונה נשחטה וקובעה במחזיק מותאם אישית לצילום מיידי באמצעות מערכת מיקרוסקופיה של פוטון בודד. גישה זו מאפשרת ויזואליזציה וכימות של חומרי מעקב בגדלים שונים לאורך שכבות האפיתל, ובכך מספקת מדד תפקודי לשלמות מחסום האפיתל החניכי השמיש למחקרי דלקת בחלל הפה, ריפוי פצעים ומודלים של מחלות.
מחסום האפיתל החניכי הוא קו הגנה ראשוני קריטי בחסינות הפה, ופגיעה בו קשורה למחלות דלקתיות בחלל הפה כגון פריודונטיטיס. שיטה זו מספקת מדד תפקודי וכמותי לשלמות המחסום באמצעות חדירת חומרי סמן תלויים-גודל, מה שמאפשר הפחתת סיכונים מכניסטית במודלים של מחלות פה. היא תומכת בתיקוף מטרות ובפיתוח בדיקות לטיפולים המכוונים לחסינות ריריות ולריפוי פצעים.
השיטה משתלבת ברצף שבין שלב הגילוי לשלב הפרה-קליני, ומאפשרת הערכה מוקדמת של תפקוד מחסום הרירית לפני המעבר למחקרי יעילות ובטיחות במודלים של מחלות פה.