29 במאי 2026
פרוטוקול סטנדרטי להשראת הזדקנות מוקדמת ב-HNM באמצעות tBHP, פרוטוקולים סטנדרטיים לניתוח סמנים מרכזיים של הזדקנות, כולל עצירת גדילה, פעילות SA-β-גלקטוזידאז וגורמי SASP.
המחקר שלנו מתמקד בחקירת הפנוטיפ של הזדקנות (senescence) במלנוציטים ותרומתו להזדקנות חיצונית של העור. מודלים מבוססי הזדקנות מקובלים משתמשים בפיברובלסטים ואינם מצליחים ללכוד את הביולוגיה הספציפית של המלנוציטים. פרוטוקול זה משרה עקה חמצונית המתווכת על ידי tBHP במלנוציטים אנושיים ראשוניים.
ראשית, יש להכין את الريאגנטים הדרושים. לאחר הפשרת המלנוציטים ומתן זמן התאוששות של שלושה ימים, ודא שהתאים מגיעים ל-80 עד 90% confluency ביום הזריעה. שאב את המצע מהבקתלה.
שטפו את התאים פעמיים עם DPBS. הוסיפו שני מיליליטר של תמיסת trypsin EDTA כדי לנתק את התאים. הניחו את הבקבוק באינקובטור למשך חמש דקות ב-37 °C עם 5% carbon dioxide.
הקישו בעדינות על הבקבוק. תחת המיקרוסקופ, בחנו את התאים כדי לוודא שהם התנתקו לחלוטין. הוסיפו נפח של 1.5 פעמים מכמות מעכב ה-trypsin כדי להפסיק את התגובה.
העבר את תגית התאים למבחנה קונוית של 15 מיליליטר. דלל את התגית באמצעות DPBS לנפח סופי של 10 מיליליטר. סבב את תגית התאים בצנטריפוגה בכוח צנטריפוגלי יחסי של 100 למשך חמש דקות.
שאבו את הנוזל העליון (supernatant) והשעיקו מחדש את משקע התאים במצע לנפח הרצוי. זרעו 600,000 תאים לכל צלחת בקוטר 10 סנטימטר עבור הצלחות המטופלות ב-tert-Butyl hydroperoxide, או tBHP. זרעו 400,000 תאים לכל צלחת עבור צלחות הביקורת.
הכינו תמיסת עבודה בריכוז 10 millimolar ממלאי ה-tBHP באמצעות DPBS או מצע גידול. הוסיפו 100 micromolar tBHP לתאים למשך שעה אחת לכל טיפול. הניעו את הפלטה קדימה ואחורה כדי לפזר את ה-tBHP באופן שווה בכל המצע.
העבירו את התאים לאינקובטור למשך שעה אחת בדיוק בטמפרטורה של 37 °C עם 5% carbon dioxide. שאבו את המצע כדי להפסיק את הטיפול ב-tBHP. שטפו את הפלטות פעמיים באמצעות DPBS שחומם מראש ל-37 °C.
הוסיפו את הנפח המתאים של מצע טרי לצלחות. הכניסו את הצלחות לאינקובטור ואפשרו לתאים להתאושש במשך ארבע שעות לפחות לפני הטיפול הבא. חזרו על הליך הטיפול מאוחר יותר באותו היום עבור הטיפול השני.
המשיכו במשטר הטיפול עד היום הרביעי, ולאחר מכן תחזיקו את התאים בתרבית עד היום התשיעי כדי להעריך סממני דעיכה תאית (senescence). ספרו את התאים שטופלו ב-tBHP ואת תאי הבקרה. זרעו אותם מחדש באותה צפיפות התחלתית, או אם התקבלו פחות מ-600,000 תאים מהצלחות שטופלו ב-tBHP, זרעו מחדש את כל התאים שנאספו.
ספרו את התאים בימים 4, 9 ו-15 של התרביות. ביום התשיעי, שטפו את התאים פעמיים עם PBS. קבעו את התאים באמצעות 2% formaldehyde ו-0.4% glutaraldehyde.
שטפו את התאים המקובעים פעמיים עם PBS. דגרו את התאים המקובעים בתמיסת צביעה ב-pH 6. כסו את הפלטה כדי להגן עליה מהאור, ולאחר מכן דגרו אותם למשך 18 שעות ב-37 degrees Celsius ללא carbon dioxide.
שטפו את התאים פעמיים עם PBS. באמצעות מיקרוסקופיה של אור, צלמו וספרו את מספר התאים הצבועים בכחול. חלקו מספר זה במספר התאים הכולל באותו שדה ראייה.
הביעו את התוצאות כאחוז התאים החיוביים. בעקבות השראת עקה חמצונית, טיפול ב-tBHP הפחית באופן משמעותי את השגשוג של המלנוציטים בהשוואה לקבוצות הביקורת. התאים המטופלים הגיעו ל-1.4 הכפלות אוכלוסייה מצטברות, או cPDL, עד היום התשעה, בעוד שקבוצות הביקורת הגיעו ל-3.1 cPDL.
עד היום ה-15, התאים המטופלים הגיעו לרמימה של 1.9 cPDL, בעוד שתאי הביקורת התרחבו ל-5.1 cPDL. מלנוציטים שטופלו ב-tBHP הראו שטח פנים תאי מוגבר בהשוואה לביקורות בכל נקודות הזמן שנמדדו, כאשר ההגדלה התקדמה עד היום ה-15, באופן העולה בקנה אחד עם המורפולוגיה המוגדלת והשטוחה של תאים מזדקנים (senescent cells). מלנוציטים שטופלו ב-tBHP הראו עלייה בפעילות של בטא-גלקטוזידאז הקשורה להזדקנות, או פעילות SA-beta-galactosidase, עם 32% תאים חיוביים בהשוואה ל-3% בביקורות.
העלייה בחיוביות ל-SA-beta-galactosidase תאמה פנוטיפ של הזדקנות. ניתוח אימונופלואורסצנציה הראה רמות מוגברות של gamma-H2AX במלנוציטים שטופלו ב-tBHP בהשוואה לביקרות. התאים שטופלו הראו אות gamma-H2AX חזק יותר מאשר הביקרות.
ניתוח polymerase chain reaction כמותי בזמן אמת הדגים ביטוי מוגבר של גורמי פנוטיפ הפרשתי הקשור להזדקנות, כאשר interleukin-8 הראה את העלייה הגבוהה ביותר. בעוד ש-interleukin-6 ו-matrix metalloproteinase-1 הראו עליות מתונות. ניתוח Western blot אישר את השראת ההזדקנות.
Lamin B1 הראה הפחתה משמעותית במלנוציטים שטופלו ב-tBHP בהשוואה לקבוצות הביקורת. רמות של חלבון retinoblastoma מפוספורל פחתו במלנוציטים שטופלו ב-tBHP בהשוואה לקבוצות הביקורת. טיפול ב-tBHP הגביר את הביטוי השעתוקי של p16 ו-p21 במלנוציטים.
מודל זה מאפשר לחוקרים לבחון כיצד מלנוציטים שעברו סנצנציה (הזדקנות תאית) משפיעים על הפיגמנטציה ומתקשרים עם תאים סביבם באמצעות גורמים דלקתיים של SASP. האתגר בפרוטוקול זה הוא התזמון המדויק. יש להחיל tBHP פעמיים ביום במרווח של ארבע שעות לפחות.
בעקבות פרוטוקול זה, ניתן לאפיין סנסינציה (הזדקנות תאית) באמצעות צביעת בטא-גלקטוזידאז הקשורה לסנסינציה, אימונופלורסצנציה, RT-qPCR, ו-Western blotting של סממני סנסינציה מבוססים.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג מודל in vitro הניתן לשחזור של הזדקנות מלאנוציטים באמצעות מלאנוציטים עובריים של בני אדם (HNM) שנחשפו ל-tert-butyl hydroperoxide (tBHP), משרה של עקה חמצונית. המודל מאפשר לחקור הזדקנות מוקדמת מושרית-עקה במלאנוציטים, המהווים גורמים מרכזיים להזדקנות חיצונית של העור ולהפרעות בפיגמנטציה.
מודלים אמינים של דעיכה מוקדמת מושרית-מתח במלנוציטים אנושיים ראשוניים הם קריטיים להפחתת סיכונים בשלבים מוקדמים של פיתוח תרופות לדרמטולוגיה ולהפרעות פיגמנטציה. פרוטוקול סטנדרטי זה להשראת דעיכה באמצעות tBHP מאפשר הערכה חזויה של מנגנוני הזדקנות תאית, ותומך בתיקוף מטרות וברצף תרגומי במחקר ביולוגיה של העור. השחזוריות של המודל והתוצרים הכמותיים שלו ממיגות אותו ככלי בסיסי למיון תיקי פיתוח ולהפחתת סיכונים מכניסטיים במחקרי הזדקנות חיצונית של העור.
פרוטוקול זה משתלב ברצף שלב הגילוי ועד לשלב הפרה-קליני עבור תוכניות למחקר דרמטולוגיה והפרעות פיגמנטציה, ובכך מאפשר בדיקה חסונה של היפותזות ותיקוף של מטרות.