Name: שיטה להתאמת Euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-06-12T14:40:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: למדו שיטה להתאמת Euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי. הפרוטוקול מאפשר התאמה לתרכובות ציאנוגניות ולקהילות מיקרוביאליות, ותומך בייצור ביומסה עשירה בחלבון ממוצרי לוואי חקלאיים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<table><tbody><tr><td>אוטוקלב - 533LS סטריליזציה באדים </td><td>Getinge</td><td>533LS</td><td>סטריליזציה בקיטור של מדיה קסאבה. סטריליזציה של מדיה באמצעות מחזור נוזלי.</td></tr><tr><td>Bright-Line&trade; המצית החלפה מכסה מגע</td><td>Millipore Sigma</td><td>BR723015- 100EA</td><td>מכסי זכוכית עבים מיוחדים המיועדים לשימוש בהמצית.</td></tr><tr><td>קסאבה מיובשת עיסה</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>סובסטראט קסאבה מסופק</td></tr><tr><td>גלולה קסאבה</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>סובסטראט קסאבה מסופק</td></tr><tr><td>קליפות קסאבה</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>סובסטראט קסאבה מסופק</td></tr><tr><td>קסאבה סובסטראט (גארי)</td><td>ספק מקומי</td><td>N/A</td><td>גארי מקסאבה חומר גלם לפחמימות מקור; הוכן עם מים מודחים.</td></tr><tr><td>צנטריפוגה Thermo Scientific Sorvall ST16 צנטריפוגה</td><td>Thermo Scientific Sorvall ST16 צנטריפוגה</td><td>75004241</td><td>מסוגל ל- &ge;3,500 &times; g, משמש לקצירת ביומסה.</td></tr><tr><td>צינורות צנטריפוגה למשל Axygen (A מותג Corning)</td><td>Corning</td><td>MCT-150-C-S</td><td>סטרילי, נפח מינימלי 1.5 מ"ל</td></tr><tr><td>מים נקיים למשל UltraPure&trade; DNase/RNase- Free Distilled Water</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10977035</td><td>מים מודחים או מזוקקים. משמש להכנת מדיה</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ אור מורכב</td><td>Olympus</td><td>N/A</td><td>מיקרוסקופ מורכב סטנדרטי המתאים לתצפית וספירת תאים שגרתית.</td></tr><tr><td>רצועת ציאניד בדיקה, צבעונית. CN- 10-30 מ"ג/ל</td><td>MQuant</td><td>110044</td><td>גילוי ציאניד חצי כמותי. יש להשליך כפסולת מסוכנת</td></tr><tr><td>סירת שקילה סטנדרטית סטרילית</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-549-750</td><td>משמש לשקילה של סובסטראטים קסאבה וביומאסה יבשה.</td></tr><tr><td>Euglena gracilis (קו מותאם )</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>זן קסאבה מותאם שנוצר במחקר זה</td></tr><tr><td>Euglena gracilis (סוג בר)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>זן ייחוס לא מותאם. לשמור על אותם תנאי סטנדרט.</td></tr><tr><td>רכיבים של מדיום גידול Euglena</td><td>שונים</td><td>N/A</td><td>מדיום Euglena בסיסי שהוכן על פי פורמולות תקן המעבדה.</td></tr><tr><td>מייבש הקפאה 6 ליטר FreeZone Console</td><td>Labconco</td><td>70061xxxx</td><td>משמש להתייבשות ביומסה</td></tr><tr><td>המצית עם קווים סטנדרטיים</td><td>Weber Scientific</td><td>NC1587539</td><td>משמש לספירת תאים ידנית.</td></tr><tr><td>מתגרר מגנטי עם צלחת חמה</td><td>IKA</td><td>N/A</td><td>אופציונלי; משפר עקביות במהלך הכנת מדיה ושעיית סובסטראט.</td></tr><tr><td>מיקרופיפטות (P20, P200, P1000)</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>פיפטות נפח מתכווננות המשמשות להעברת נוזלים אספטיים.</td></tr><tr><td>מיני-צנטריפוגה</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>אופציונלי; מקל על פלטית מהירה במהלך קצירת ביומסה.</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Bemis</td><td>PM996</td><td>משמש לאיטום זמני של בקבוקים או צלחות כאשר אין מכסי הזרמה.</td></tr><tr><td>רצועות מד pH </td><td>Fisher Scientific</td><td>13-640-520</td><td>חלופה למד pH להערכה איכותית מהירה של מדיה תרבות.</td></tr><tr><td>מד pH עם חריט Thermo Scientific Orion Star A211 מד pH שולחני</td><td>Thermo Scientific Orion Star A211 מד pH שולחני</td><td>13-645-519</td><td>מכויל לפני השימוש. למדידת pH של הסופרנט התרבות</td></tr><tr><td>אחסון מקורר (4&deg;C)</td><td>Frigidaire</td><td>FRT18S6JW7</td><td>אחסון קצר טווח של מדיה</td></tr><tr><td>חממה רועדת (חשוכה)</td><td>Thermolyne</td><td>M49235</td><td>חממה רועדת מסלולית שיכולה ל- 100&ndash;150 RPM, טווח טמפרטורה 24&ndash;28 &deg;C; משמשת בתנאים חשוכים לתמיכה בגידול Euglena הטרוטרופי.</td></tr><tr><td>בקבוק ריסוס (32oz)</td><td>Boardwalk</td><td>BWK03010</td><td>משמש לסטריליזציה על שולחן העבודה ולטיפול אספטי שגרתי (תמיסת 70% אתנול)</td></tr><tr><td>תוכנת

שיטה להתאמת euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי

A Method for Adapting Euglena gracilis to Cassava-Based Substrates for Heterotrophic Cultivation

התוצאות המייצגות הבאות ממחישות את התוצאות הצפויות כאשר הפרוטוקול המתואר מיושם בהצלחה, וכן את טווח התוצאות שנצפו בתנאים תת-אופטימליים. הנתונים המייצגים התואמים לתוצאות אלו מוצגים באיור 1, איור 2, איור 3, איור 4, איור 5, איור 6, איור 7. יחד, תוצאות אלו מספקות הנחיות מעשיות לפרשנות דינמיקות גדילה, חיות, מורפולוגיה ותוצאות חלבונים בעת התאמת E. gracilis למצעי קסאבה בתנאי גידול הטרוטרופיים וחשוכים לחלוטין. יתרה מזאת, תוצאות אלו מאשרות תוצאות ביולוגיות מרכזיות של הפרוטוקול, כולל התאמה מוצלחת, צמיחה מתמשכת, חיוניות גבוהה, מורפולוגיה יציבה, ביצועים עקביים בין הסובסטרטים וייצור חלבונים מדיד.
במהלך הניסויים, נעשה שימוש בשלושה שכפולים בכל טיפול (כל סוגי מדיום הקסאבה). אנו מכירים בכך שמספר השכפולים תלוי בשיקול הדעת ובמגבלות הלוגיסטיות של כל קבוצה הפועלת לפי הפרוטוקולים הנ״ל. יישום מוצלח של פרוטוקול זה מוביל לצמיחה הטרוטרופית מתמשכת של E. gracilis במדיה מבוססת גארי בתנאים חשוכים לחלוטין. תוצאות חיוביות מאופיינות במסלולי גדילה חלקים וסיגמואידיים, סטייה מוגבלת בין השכפולים, וצפיפויות תאים יציבות בשלב מאוחר. תכונות מורפולוגיות שסימנו תוצאות חיוביות ונצפו בעקביות באוכלוסיות מותאמות כללו עגלגלות תאים וממברנות תא עבה. לעומת זאת, תאים לא בריאים שהתמוטטו נראים בדרך כלל לא סדירים, מפורקים או פגומים מבניים וקשורים לירידה בחיוניות, מה שמבדיל אותם מצורות מעוגלות או חצי-אנסיסטיות שלמות שנצפו בתרביות מותאמות. לשם השוואה, נכללות תמונות מייצגות של E . gracilis מסוג בר עם מורפולוגיה מוארכת אופיינית (איור 8) כדי להבחין בין מבנה תאי בסיסי לבין צורות מותאמות או משותפות. תרביות שגודלו ב-30 גרם L-1 גארי הציגו צמיחה משולבת גבוהה יותר, כפי שנמדד על ידי שטח מתחת לעקומת הגדילה (AUC), בהשוואה לריכוזים נמוכים יותר, מה שמרמז על ניצול יעיל יותר של מצע הקסאווה והסתגלות פיזיולוגית מוצלחת (איור 1).
תוצאות תת-אופטימליות נצפות לעיתים קרובות בריכוזי גארי נמוכים יותר (10–20 גרם L-1), שם הגידול ניתן לזיהוי אך מופחת בעוצמה ומשתנה יותר בין השכפולים. בריכוזים גבוהים יותר (40–50 גרם L-1), התרביות עשויות להגיע לצפיפות תאים גבוהה יותר; עם זאת, מצבים אלו מציגים לעיתים קרובות התעכבות בייצוב או שינוי זמני מוגבר (איור 2).
בניסויים מוצלחים, עמידות התאים נשארת גבוהה לאורך כל תקופת התרבית, עם תנודות קלות בלבד באמצע הניסוי. בדיקות החרגה של Trypan Blue מצביעות על כך שתרביות שנשמרות ב-30 גרם L-1 גארי שומרות על אחוז גבוה של תאים חיים (לא מוצבעים) ביחס לתאים לא קיימים (עם צבע כחול) לאורך נקודות זמן שנדגמו (איור 3). סטיות מדפוס זה, כולל עלייה בשיעור התאים המוכתמים, ירידה בתנועתיות, או שינויים לעבר מורפולוגיות מעוגלות או מקורסות, עשויות להצביע על תנאים לא אופטימליים ולשמש כטריגרים מוקדמים לפתרון תקלות. הערכות הקיימות והמורפולוגיות התבססו על קריטריונים תצפיתיים עקביים, כולל שלמות התא, תנועתיות כיוונית, והנפוצה היחסית של צורות מוארכות לעומת מעוגלות או מקורסות.
תוצאות לא אופטימליות מאופיינות בירידות חולפות בחיוניות, הנפוצות ביותר בריכוזי גארי גבוהים. ניתן להבחין בהתאוששות חלקית בנקודות זמן מאוחרות יותר; עם זאת, תנאים אלו מציגים שונות מוגברת ביכולת הקיימות לאורך תקופת התרבות (איור 4). דפוסי גידול אלו מראים שריכוזי תת-יסוד ביניים (למשל, 30 גרם L-1) מספקים איזון בין זמינות חומרים מזינים ללחץ, מה שמוביל לצמיחה יציבה יותר. מגמות אלו משקפות את השפעת תנאי העיבוד המוקדם וההתאמה המדורגת על ביצועי התרבית, שכן חשיפה הדרגתית למורכבות גוברת של המצע תומכת ביציבות פיזיולוגית משופרת ובהתנהגות גדילה שניתנת לשחזור. ריכוזים נמוכים מגבילים את ייצור הביומאסה, בעוד שריכוזים גבוהים מובילים לשונות גדולה יותר ולייצוב מאוחר.
הערכה מורפולוגית מספקת אינדיקטור איכותי למצב ההסתגלות. תוצאות חיוביות כוללות הופעת והתמדה של תאים מעוגלים או חצי-אנסיסטיים עם תנועתיות מופחתת שנשארים שלמים לאורך תת-גידול חוזר (איור 5).
לעומת זאת, תרביות תת-אופטימליות, המזוהות בעיקר עם זנים מסוג פרא או הסתגלות בשלבים מוקדמים, מציגות מעברים פתאומיים מתאים מוארכים וניידים למורפולוגיות לא סדירות או קרוסות, המקבילות לירידה ביציבות הצמיחה.
כאשר הפרוטוקול מיושם על סובסטרטים נוספים שמקורם בקאסבה, כולל עיסת, כדורים וקילפים, תרביות E. gracilis מותאמות מציגות צמיחה ניתנת לשחזור בין סוגי תת-קרקע שונים. תוצאות חיוביות מאופיינות בייצוב מוקדם יותר של עקומות הצמיחה ובהפחתת ירידה בשלבים מאוחרים יחסית לתרביות מסוג בר (איור 6).
תוצאות לא אופטימליות כוללות עיכוב בתחילת צמיחה או הגדלת שונות השכפול, במיוחד בסובסטרטים עם הטרוגניות פיזית גבוהה יותר.
יישום מוצלח של הפרוטוקול מניב ביומסה של E. gracilis עם תכולת חלבון גולמי מדידה, כפי שמוגדר בניתוח מעבדה חיצוני בשיטת הבעירה (Dumas). אחוזי החלבון שנצפו בתרביות מותאמות דומים לאלו שנמדדו בתרביות מסוג פראי, כאשר תפוקת חלבון כוללת גבוהה יותר תואמת לעלייה בהצטברות ביומסה (איור 7).
ניטור כימיה של מדיה תמך באינטראקציות בין תרבית למצע במהלך ההסתגלות ואימת את הכללת מדידות pH וציאניד בפרוטוקול. ערכי ה-pH הצביעו על שינויים הדרגתיים לאורך זמן, מה שמעיד על פעילות מטבולית וניצול הסובסטרטים, עם מגמות יציבות יותר בתרביות מותאמות. מדידות ציאניד תמכו בכך עוד יותר, שכן תרביות מותאמות הראו ירידה ברמות הניתנות לזיהוי, בעוד שתרביות מסוג בר נותרו משתנות יותר. יחד, תוצאות אלו מראות שצעדי המעקב הללו לוכדים ביעילות שינויים בכימיה של המדיה הקשורים להסתגלות ותומכים בפרשנות של ביצועי תרבות. למרות שהמנגנונים הבסיסיים לא נחקרו, זהו תחום חשוב למחקר עתידי, במיוחד ליישומים תעשייתיים.
תהליך התחזוקה והאיחוד לטווח ארוך תמך בהמשך הקיימות של שושלת Euglena gracilis המותאמת לאורך תקופות תרבות ממושכות. תרביות שנשמרו באמצעות מעבר חוזר שמרו בעקביות על תנועתיות, מורפולוגיה אופיינית והתנהגות צמיחה יציבה לאורך מחזורי התחזוקה. למרות שהביצועים ארוכי הטווח לא הוערכו כמותית, תצפיות אלו מספקות ראיות מייצגות לכך שהשושלת המותאמת ניתנת לשמירה אמינה תחת התנאים שנקבעו.
יחד, תוצאות אלו מאשרות כי פרוטוקול ההסתגלות תומך בצמיחה איתנה, בחיוניות ובייצור ביומסה של E. gracilis על פני מצעים מבוססי קסאווה, עם ביצועים עקביים ורמות ציאניד מופחתתות לאורך זמן.
כל האיורים והטבלאות מסופקים כקבצים נפרדים ואינם מוטמעים במסמך כתב היד. העדפות מיקום האיורים והטבלאות מסומנות בתוך טקסט כתב היד באמצעות הערות מסודרות בסוגריים (למשל, (איור 1)). אלא אם צוין אחרת, כל הנתונים והטבלאות מיועדים להופיע מתחת לסעיף התוצאות הייצוגיות בפרסום הסופי.
כל הדמויות מוגשות כקבצים נפרדים, כאשר דמויות מרובות פאנלים מסופקות כתמונה משולבת אחת. תמונות מיקרוסקופיה כוללות פסי קנה מידה בכל פאנל. איורי הנתונים כוללים צירים מסומנים עם יחידות מדידה מוגדרות, וסרגלי השגיאה מוגדרים באגדות האיור המתאימים.
כל הטבלאות מוגשות כקבצי .xls או .xlsx נפרדים ומכילות נתונים מספריים גולמיים או מסוכמים ללא עיצוב דקורטיבי.
<img alt="איור 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig1.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 1"> 
איור 1: דינמיקת הצמיחה של E. gracilis שגודלה ב-10, 20 ו-30 gL-1 גארי בתנאים חשוכים לחלוטין. צפיפויות התאים הממוצעות מוצגות לאורך זמן עבור כל ריכוז סובסטרטי. פסי השגיאה מייצגים SEM על פני שכפולים ביולוגיים. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig2.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 2"> 
איור 2: ביצועי גדילה של E. gracilis בריכוזי גארי גבוהים (30–50 גרם L-1). מסלולי צפיפות התאים ממחישים הבדלים בצפיפות השיא, תזמון הייצוב והשונות בין ריכוזי סובסטרט גבוהים יותר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig3.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 3"> 
איור 3: מגמות החיות התאית של E. gracilis שנמדדה ב-30 gL-1 garri ונמדדה על ידי הדרת Trypan Blue. היחס של התאים הקיימים מוצג לאורך נקודות זמן שנדגמו. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig4.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 4"> 
איור 4: תנודות החיוניות של E. gracilis שגודלו בריכוזי גארי גבוהים יותר. שינויים חולפים בחיוניות התאים מוצגים לאורך תקופת הניסוי. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig5.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 5"> 
איור 5: מורפולוגיה מייצגת של אוכלוסיות E. gracilis מותאמות. תמונות מיקרוסקופיות אור הפוך מייצגות מציגות תאים מעוגלים וחצי-אנסיסטיים שנצפו לאחר ההסתגלות. פס קנה מידה = XX מיקרון. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="איור 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig6.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 6"> 
איור 6: ביצועי צמיחה של E. gracilis מותאם ופראי על פני מצעים שמקורם בקסאבה. מסלולי צמיחה מוצגים עבור תרביות מותאמות ופראיות המגודלות על מספר מוצרי קסאווה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig7.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 7"> 
איור 7: תכולת חלבון גולמית ותפוקת חלבון כוללת של ביומסה E. gracilis שגדלה בקסאבה. תכולת החלבון נמדדה באמצעות ניתוח חיצוני באמצעות שיטת SGS Combustion (Dumas). סך תפוקת החלבון מוצגת לצד הצטברות ביומסה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig7large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>
<img alt="איור 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig8.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 8"> 
איור 8: מורפולוגיה מייצגת של E. gracilis מסוג בר בתנאים סטנדרטיים (הגדלה של 40X). תמונה מייצגת של Euglena gracilis בריאה, לא מותאמת, המציגה מורפולוגיה מוארכת אופיינית תחת מיקרוסקופ אור. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig8large.jpg" target="_blank">אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.</a>

שיטה להתאמת Euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי

Cassava processing generates nutrient-rich by-products that remain underutilized due to variable composition, cyanogenic compounds, and active microbial ...

a-method-for-adapting-euglena-gracilis-to-cassava-based-substrates

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

סרטון זה מציג שיטה לבידוד ותרבית סטרילית של תאי C. elegans עובריים  במבחנה.

עיכול אנזימטי ודיסוציאציה ידנית: שיטה להכנת עוברים מסוג C. elegans לתרבית תאים

אנו מתארים כאן פרוטוקול מתוקן לתרבות בקנה מידה גדולה של ג העוברי elegans תאים. עוברי ג elegans תאים בתרבית במבחנה באמצעות שיטה זו, מופיעים כדי לבדל ולשחזר את הביטוי של גנים באופן ספציפי בתא. טכניקות הדורשות גישה ישירה לתאים או בידוד של סוגי תאים ספציפיים מרקמות האחרות יכולות להיות מיושמות על ג elegans תאים בתרבית.

שיטה לCulturing עוברי<em&gt; ג elegans</em&gt; תאים

סי אלגנס בדרך כלל הוא גדל על צלחות אגר מוצקות או נוזליים בתרבויות זרע עם א ' coli. כדי למנוע תוצרי לוואי חיידקים מבלבול מחקרי טוקסיקולוגי ותזונתיים, אנו מנוצלים מדיום נוזלי axenic, CeHR, לגדול ולסנכרן מספר רב של תולעים עבור מגוון רחב של יישומים במורד הזרם.

Culturing Elegans Caenorhabditis בAxenic נוזלית מדיה ובריאה של תולעים מהונדסים ידי microparticle הפצצה

כאן, אנו מציגים את תולעים נימיות Caenorhabditis elegans כמודל מארח רב-תכליתי ללמוד אינטראקציה מיקרוביאלי.

נמטודות. Caenorhabditis Elegans - מודל רב תכליתי In Vivo ללמוד אינטראקציות מארח-חיידק

כאן נתאר פרוטוקול פשוט להפקת במהירות מאות צמיחה נמטודות מדיה אגר, 96-ובכן תרבות צלחות עם מספרים עקביים של Caenorhhabditis elegans לכל טוב. תרבויות אלה שימושיים להקרנה פנוטיפי של אורגניזם שלם. אנו מתמקדים כאן באמצעות תרבויות אלה לכימיקלים מסך עבור אפקטים פרו-אריכות ימים.

שיטה פשוטה להקרנה כימי תפוקה גבוהה ב Caenorhabditis Elegans

פרוטוקול זה מתאר שיטה לגידול בקנה מידה גדול Caenorhabditis elegans במדיה מוצק. כחלופה תרבית נוזלית, פרוטוקול זה מאפשר קבלת הפרמטרים של סולמות שונים המעובדים המבוסס על צלחת. פעולה זו מגדילה את comparability של תוצאות על-ידי השמטת את ההבדלים מטבולית מורפולוגיים בין תרבות המדיה נוזלי ומוצק.

מבוסס על צלחת Large-scale טיפוח Caenorhabditis elegans: הכנת הדוגמא על המחקר של שינויים מטבוליים בחולי סוכרת

אלגנס נמטודה מתיחה גנטית Caenorhabditis יכול לשמש מודל פשוט וזול לגילוי תרופות. מתואר כאן פרוטוקול לזיהוי טיפולי נגדים המעכבים את האיתות במורד הזרם של חלבוני RAS ו- EGFR.

זיהוי מעכבי EGFR ו- RAS באמצעות אלגנים של Caenorhabditis

פרוטוקול זה מתאר את השימוש בטרנספורמציה בתיווך גידולים אגרובקטריום (AMT) לשילוב גנים בעלי עניין בגנום הגרעיני של המיקרו-אצות הירוקות Chlorella vulgaris, מה שמוביל לייצור טרנספורמנטים יציבים.

Agrobacterium tumefaciens-מתווך גנטי של מיקרו-אצות ירוקות, Chlorella vulgaris

כאן, אנו מציגים את הפרוטוקול הראשון לחדירת ואקום מקומית למחקרי in vivo של טרנספורמציה גנטית של צמחים גדולים. באמצעות מתודולוגיה זו, השגנו לראשונה את הטרנספורמציה הארעית של קקאו בתיווך אגרובקטריום בפלנטה .

חדירה חקלאית כפויה בוואקום עבור בצמח טרנספורמציה של צמחים סרבנים: קקאו כמקרה בוחן

פריצות דרך משמעותיות זיהוי בתאי גזע הם נעשים ללא הרף. כדי לתרגם תגליות אלה, לעומת זאת, שיטות הרומן למסירה הסלולר חייב להיות המציא. כאן אני מדווחים כי דרכי הנשימה לספק מסלול בטוח עבור השתלת תא גזע אל הריאות.

הקנה: שיטה להשתלת בתאי גזע כדי ריאות

למדו שיטה להתאמת Euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי. הפרוטוקול מאפשר התאמה לתרכובות ציאנוגניות ולקהילות מיקרוביאליות, ותומך בייצור ביומסה עשירה בחלבון ממוצרי לוואי חקלאיים.

שיטה להתאמת Euglena gracilis למצעי קסבה לגידול הטרוטרופי

גלה סרטונים נוספים