Name: בדיקות בקיעת ביצים פשוטות ונגישות ב-Caenorhabditis elegans: פורמטים מותאמים לסקר סמים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-07-03T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: למדו שיטות פשוטות ונגישות לבדיקות בקיעת ביצים ב-Caenorhabditis elegans. הפרוטוקולים המותאמים מספקים פלטפורמה גמישה לסקר תרופות, טוקסיקולוגיה ומחקר התפתחותי.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

<ol>
	<li>Bizimenyera ES, Githiori JB, Eloff JN, Swan GE. In vitro activity of Peltophorum africanum Sond. (Fabaceae) extracts on the egg hatching and larval development of the parasitic nematode Trichostrongylus colubriformis. Vet Parasitol. 2006;142(3&#8211;4):336-43.</li>
	<li>Demeler J et al. Phylogenetic characterization of &#946;-tubulins and development of pyrosequencing assays for benzimidazole resistance in cattle nematodes. PLoS One. 2013;8(8):e70212.</li>
	<li>von Samson-Himmelstjerna G et al. Standardization of the egg hatch test for the detection of benzimidazole resistance in parasitic nematodes. Parasitol Res. 2009;105(3):825-34.</li>
	<li>Easland E, Biendl S, Keiser J. Development of a hookworm egg hatching assay to&#160;determine the&#160;ovicidal effects of anthelminthics. Parasit Vectors. 2023;16(1):157.</li>
	<li>Abriola L et al. Development and optimization of a high-throughput screening method utilizing Ancylostoma ceylanicum egg hatching to identify novel anthelmintics. Moraes J de, editor. PLoS One. 2019;14(6):e0217019.</li>
	<li>Zaj&#237;&#269;kov&#225; M, Nguyen LT, Sk&#225;lov&#225; L, Raisov&#225; Stuchl&#237;kov&#225; L, Matou&#353;kov&#225; P. Anthelmintics in the future: current trends in the discovery and development of new drugs against gastrointestinal nematodes. Drug Discov Today. 2020;25(2):430-7.</li>
	<li>Banerjee T et al. Ovicidal and larvicidal effects of extracts from leaves of Andrographis paniculata (Burm. f.) Wall.ex Nees against field isolates of human hookworm (Ancylostoma duodenale). J Ethnopharmacol. 2019;235:489-500.</li>
	<li>Mickiewicz M et al. Inhibitory effect of dimethyl sulfoxide on the development of gastrointestinal nematode larvae in the larval development test. J Vet Res. 2025;69(1):83-90.</li>
	<li>Lanusse CE, Alvarez LI, Lifschitz AL. Gaining Insights Into the Pharmacology of Anthelmintics Using Haemonchus contortus as a Model Nematode. In: Advances in Parasitology. Vol. 93. Academic Press; England; 2016:465-518.</li>
	<li>Mir&#243; MV et al. Phytochemical-Mediated Modulation of Doramectin Pharmacology in Sheep: Exploring the Cinnamaldehyde&#8211;Pink Grapefruit Combination. Animals. 2025;15(17):2539.</li>
	<li>Kaewintajuk K et al. Anthelmintic activity of KSI-4088 against Caenorhabditis elegans. Parasitol Res. 2010;107(1):27-30.</li>
	<li>Oliveira JG et al. Chemical profile and antiparasitic effects of Lippia origanoides essential oil against Rhipicephalus microplus, Haemonchus contortus, and Caenorhabditis elegans. Revista Brasileira de Parasitologia Veterin&#225;ria. 2025;34(4):e014825.</li>
	<li>Liu C, Chen Y, Li Z, Xu X. Design, Synthesis, Nematicidal Activity Evaluation, and Mode of Action Study of Novel Trifluorobutene Ester Derivatives as Potential Nematicides. J Agric Food Chem. 2025;73(18):10736-50.</li>
	<li>Zain MM, Zary Yahaya ZS, Him NAIIN. The Effect of Macrocyclic Lactones-Ivermectin Exposure on Egg Hatching and Larval Development of Caenorhabditis elegans. Trop Life Sci Res. 2016;27(Supp. 1):3-8.</li>
	<li>Harlow PH et al. The nematode Caenorhabditis elegans as a tool to predict chemical activity on mammalian development and identify mechanisms influencing toxicological outcome. Sci Rep. 2016;6(1):22965.</li>
	<li>do Nascimento PM et al. Activity of essential oils against Caenorhabditis elegans: Showing anthelmintic potential for new products. Vet Parasitol. 2026;344:110766.</li>
	<li>AlOkda A, Van Raamsdonk JM. Effect of DMSO on lifespan and physiology in C. elegans: Implications for use of&#160;DMSO as a solvent for compound delivery. MicroPubl Biol. 2022;2022.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Caenorhabditis elegans neuromuscular junction: GABA receptors and ivermectin action. Phillips W, editor. PLoS One. 2014;9(4):e95072.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Pulido Carrasquero A, Bouzat C. Unraveling anthelmintic targets and mechanisms of action of trans-cinnamaldehyde from cinnamon essential oil. Sci Rep. 2025;15(1):5422.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Rodriguez Araujo N, Bouzat C. The diverse family of Cys-loop receptors in Caenorhabditis elegans: insights from electrophysiological studies. Biophys Rev. 2023;15(4):733-50.</li>
	<li>Olson SK et al. Hierarchical assembly of the eggshell and permeability barrier in C. elegans. J Cell Biol. 2012;198(4):731-48.</li>
	<li>Stein KK, Golden A. The C. elegans eggshell. WormBook. 2018 Aug;2018:1-36.</li>
	<li>Hernando G, Turani O, Bouzat C. Caenorhabditis elegans muscle Cys-loop receptors as novel targets of terpenoids with potential anthelmintic activity. Greenberg RM, editor. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(11):e0007895.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Evaluating anthelmintic activity through Caenorhabditis elegans egg hatching assay. MethodsX. 2024;12:102743.</li>
	<li>Bianchi L, Driscoll M. Culture of embryonic C. elegans cells for electrophysiological and pharmacological analyses. WormBook. 2006;1-15.</li>
	<li>Stiernagle T. Maintenance of C. elegans. WormBook. 2006;1-11.</li>
	<li>Fire A et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 1998;391(6669):806-11.</li>
	<li>Hernando G, Bouzat C. Drug combination assays using Caenorhabditis elegans as a model system. J Pharmacol Toxicol Methods. 2025;131:107583.</li>
	<li>Christensen M et al. A primary culture system for functional analysis of C. elegans neurons and muscle cells. Neuron. 2002;33(4):503-14.</li>
	<li>G&#252;rel G et al. Receptors and other signaling proteins required for serotonin control of locomotion in Caenorhabditis elegans. Genetics. 2012;192(4):1359-71.</li>
	<li>Rodriguez Araujo N, Hernando G, Corradi J, Bouzat C. The nematode serotonin-gated chloride channel MOD-1: A novel target for anthelmintic therapy. J Biol Chem. 2022;298(9):102356.</li>
	<li>Porta-de-la-Riva M, Fontrodona L, Villanueva A, Cer&#243;n J. Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation. JoVE. 2012;(64):e4019.</li>
	<li>Baugh LR. To grow or not to grow: nutritional control of development during Caenorhabditis&#160;elegans L1 arrest. Genetics. 2013;194(3):539-55.</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Agar בקטריולוגי</td><td>בריטניה&nbsp;</td><td>B0101406</td><td>יש להכין טרי (1.7 גרם ב-100 מ"ל&nbsp;H2O)</td></tr><tr><td>תמיסת חומר הלבנה</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>1.2% (v/v) NaOH ו-0.5 M NaOH</td></tr><tr><td>צנטריפוגה</td><td>ThermoScientific. </td><td>Sorvall ST16R. &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>צנטריפוגה</td><td>BiofugePICO לאפנדורף צינורית</td><td>Heraeus 75003235&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>מצלמה דיגיטלית</td><td>ToupCam&nbsp;</td><td>TP605100A</td><td>מצלמה דיגיטלית תעשייתית. אורך מוקד מתכוונן USB 2.0</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>BioBasic&nbsp;</td><td>RAS#7-68-5</td><td>MW: 78,13</td></tr><tr><td>Linalil אצטט&nbsp;</td><td>SIGMA</td><td>מספר CAS: 115-95-7</td><td>יש להכין טרי</td></tr><tr><td>מדיום מרק ליזוגני (LB)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>10 גרם Bacto-tryptone, 5 גרם תמצית שמרים, 10 גרם NaCl ל-1 ליטר מים מזוקקים&nbsp;</td></tr><tr><td>חיץ M9&nbsp;</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 גרם KH2PO4, 6 גרם Na2HPO4, 5 גרם&nbsp; NaCl, 0,25 גרם MgSO4 ל-1 ליטר מים מזוקקים</td></tr><tr><td>מסובב רוטטור מיני&nbsp;</td><td>BioSan</td><td>Bio RS-24</td><td></td></tr><tr><td>מדיום גידול נמטודות (NGM)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>3 גרם NaCl, 17 גרם אגר, 2.5 גרם&nbsp; Bacto-Peptone ל-1 ליטר מים מזוקקים. לעקר באמצעות חיטוי. יש להוסיף 1 מ"ל כולסטרול (5 מ"ג/מ"ל),&nbsp; 1 מ"ל CaCl2 (1 M), 25 מ"ל חיץ אשלגן פוספט (1 M, pH 6.0) ו-1 מ"ל&nbsp; MgSO4 (1 M)</td></tr><tr><td>צלחת פטרי (3 - 5 מ"מ)</td><td>ThermoScientific. Nunclon DeltaSurface&nbsp;</td><td>153066</td><td></td></tr><tr><td>צלחת פטרי (90 מ"מ x 15 מ"מ)</td><td>ExtraGene&nbsp;</td><td>1026160305</td><td>לשימוש מעבדתי בלבד, פוליסטירן.&nbsp;</td></tr><tr><td>פיפטה</td><td>Fisherbrand</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>SigmaPlot 12.0</td><td>Systat Software</td><td>N/A</td><td>גרסה 12.0</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ סטריאוסקופי</td><td>ARCANO</td><td>ZTX-T 1:4 LED</td><td>מיקרוסקופ סטריאוסקופי טרינוקולרי (הגדלה כוללת 10x&ndash;40x; תאורת LED חודרת ומוחזרת)</td></tr><tr><td>סוכרוז&nbsp;</td><td>Laboratorio Cicarelli&nbsp;</td><td>Art 841</td><td>60% (v/v) סוכרוז&nbsp;</td></tr><tr><td>צלחת תרבות רקמות 96 באר&nbsp;</td><td>Biofil&nbsp;</td><td>TCP 012096</td><td>פוליסטירן, מכסה אידוי נמוך.&nbsp;</td></tr><tr><td>ToupView&nbsp;</td><td>ToupTek Photonics</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>טרנסצינמאלדהיד (TCA)</td><td>Santa Cruz Biotechnology&nbsp;</td><td>J1712</td><td>יש להכין טרי</td></tr></tbody></table>

בדיקות בקיעת ביצים פשוטות ונגישות ב-caenorhabditis elegans: פורמטים מותאמים לסקר סמים

Simple and Accessible Egg-Hatching Assays in Caenorhabditis elegans: Adaptable Formats for Drug Screening

בדיקות בקיעת ביצים פשוטות ונגישות ב-Caenorhabditis elegans: פורמטים מותאמים לסקר סמים

Egg-hatching assays (EHA) are widely used to evaluate the effects of chemical compounds on early developmental stages of nematodes, particularly in ...

פיתחנו בדיקות בקע פשוטות וניתנות להרחבה של ביצי *C. elegans* להערכת השפעות של תרכובות על התפתחות עוברית. בשיטות הקיימות חסר תהליך עבודה סטנדרטי וניתן להתאמה. פרוטוקול זה מספק גישה סטנדרטית וניתנת להרחבה המתאימה לסריקות בעתקת נתונים נמוכה וגבוהה כאחד.התחילו עם שלוש עד חמש צלחות מצע גידול לנמטודות המכילות תרביות צפופות (confluent) של בוגרים עם ביצים (gravid adults). בחרו צלחות המכילות מספר רב של תולעים עם ביצים וביצים נראות לעין המעידות על רבייה פעילה. הוסיפו מים מזוקקים לכל צלחת והעבירו בעדינות את התולעים לשפופרת קונית של 15 מיליליטר. הימנעו מקשירה של פני השטח של האגר כדי לצמצם את כמות השאריות. סובבו בצנטריפוגה ב-266 g למשך שלוש דקות כדי להשקיע את התולעים, הסירו את העלייה (supernatant) המכילה את החיידקים וחזרו על שלב השטיפה שלוש פעמים. כדי לבודד את הביצים, השהו מחדש את משקע התולעים בתמיסת הלבנה שהוכנה טרי. נערו את השפופרת בעוצמה כדי לעודד את פירוק גופי הבוגרים ושחרור הביצים. אין לחרוג מחמש דקות של דגירה. ודאו תחת מיקרוסקופ שגופי הבוגרים פורקו ברובם בעוד שהביצים נותרו שלמות. עקבו אחר התגובה ועצרו אותה לאחר חמש דקות על ידי הוספת מים מזוקקים סטריליים קרים לנפח סופי של 14 מיליליטר כדי למנוע נזק לביצים. סגרו את השפופרת והפכו אותה בעדינות מספר פעמים כדי לדלל במהירות את תמיסת ההלבנה ולשמר

simple-accessible-egg-hatching-assays-caenorhabditis-elegans

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

הליך culturing נוזלי מבוסס מחלק...

תפוקה גבוהה הקרנת ו biosensing עם פלורסנט ג elegans מתחים

C. התנהגות הטלת ביצים של elegans יכולה לספק מידע חשוב במחקרים התפתחותיים, פוריותיים ואנטומיים. סרטון זה מציג את השלבים החשובים של בדיקת הטלת ביצים ומציג ניסוי לדוגמה שבו תרופה נבדקת לרעילות רבייה.

בדיקת הטלת ביצים: שיטה לכימות התנהגות הטלת הביצים של C. elegans

מקור: Anderson, Q. L. et al. C. elegans Pathosystem בעל תפוקה גבוהה, תכולה גבוהה, מבוסס נוזל. J. Vis. Exp. (2018)סרטון זה מדגים שיטת סינון בעלת תפוקה גבוהה המשתמשת ב-Caenorhabditis elegans כדי לחקור הפלות גנים במהלך אינטראקציות מארח-פתוגן. הוא מתאר את הנוהל להכנת תולעי נוקדאון והעברתן ללוחות בדיקה כדי להעריך את ההשפעות של הרג תולעים הנגרמת על ידי פתוגנים.

בדיקה מבוססת נוזל Multiwell לסינון C. elegans Knockdowns

שיטת הערכת כמותית תגובת chemotactic...

Assay Chemotaxis סי אלגנס

אנו מתארים את השלבים המפורטים של בדיקה כימית בעלת תפוקה גבוהה בנמטודה Caenorhabditis elegans המשמשת להערכת רעילות קו הנבט. בבדיקה זו, הפרעה בתפקוד קו הנבט בעקבות חשיפה לכימיקלים מנוטרת באמצעות מדווח פלואורסצנטי ספציפי לעוברים אנופלואידים.

הערכה מקיפה של תאי מין כימי רעילות שימוש נמטודות<em&gt; Elegans Caenorhabditis</em

אנו מציגים התנהגות הקלטה הקלטה ופרוטוקול המאפשר ניתוח אוטומטי של נמטודות, Caenorhabditis elegans 'העדפת תרכובות מסיסות באסאי מבוסס האוכלוסייה. מאמר זה מתאר את הבנייה של תא התנהגות, פרוטוקול assay התנהגותי, וניתוח וידאו השימוש בתוכנה.

ניתוח אוטומטי של אוכלוסיה מבוססת נמטודות מבוססי Assay העדפה

כאן נתאר פרוטוקול פשוט להפקת במהירות מאות צמיחה נמטודות מדיה אגר, 96-ובכן תרבות צלחות עם מספרים עקביים של Caenorhhabditis elegans לכל טוב. תרבויות אלה שימושיים להקרנה פנוטיפי של אורגניזם שלם. אנו מתמקדים כאן באמצעות תרבויות אלה לכימיקלים מסך עבור אפקטים פרו-אריכות ימים.

שיטה פשוטה להקרנה כימי תפוקה גבוהה ב Caenorhabditis Elegans

כדי לחקור אינטראקציות מלווה מלווה מלווה-מצע, אנו מבצעים מסכי אינטראקציה סינתטית ב elegans Caenorhabditis באמצעות הפרעות RNA בשילוב עם מוטציות קלות או ביטוי יתר של מלווים ולנטר תפקוד לקוי של חלבון ספציפי לרקמות ברמה האורגנית.

שימוש באלגנים של Caenorhabditis למסך עבור אינטראקציות ממלווים ספציפיות לרקמות

אלגנס נמטודה מתיחה גנטית Caenorhabditis יכול לשמש מודל פשוט וזול לגילוי תרופות. מתואר כאן פרוטוקול לזיהוי טיפולי נגדים המעכבים את האיתות במורד הזרם של חלבוני RAS ו- EGFR.

זיהוי מעכבי EGFR ו- RAS באמצעות אלגנים של Caenorhabditis

כאן, אנו מציגים שיטה כללית לקביעת הכדאיות העוברית והמספר הכולל של עוברים המיוצרים (brood) באמצעות אורגניזם המודל C. elegans.

מדידת כדאיות עוברית וגודל הברוד ב- Caenorhabditis elegans

פרוטוקול זה מספק הליך פשוט וזול לכימות שיעור המוות העוברי ב-Caenorhabditis elegans. הוא מאפשר זיהוי פשוט של חריגות עובריות באוכלוסיות שונות ללא ציוד מיוחד או מומחיות באיסוף תולעים. הפרוטוקול יכול לשמש לכימות השפעות של מוטציות גנטיות, הפלות גנים בתיווך RNA ותזונה.

כימות שיעור המוות העוברי ב-Caenorhabditis elegans

למדו שיטות פשוטות ונגישות לבדיקות בקיעת ביצים ב-Caenorhabditis elegans. הפרוטוקולים המותאמים מספקים פלטפורמה גמישה לסקר תרופות, טוקסיקולוגיה ומחקר התפתחותי.

בדיקות בקיעת ביצים פשוטות ונגישות ב-Caenorhabditis elegans: פורמטים מותאמים לסקר סמים

גלה סרטונים נוספים