Name: בעזרת פינצטה לייזר עבור מניפולציה נוירונים מבודד במבחנה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-09-11T00:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 45 s
Description: למד כיצד לבצע מניפולציה של נוירונים בתרבית באמצעות פינצטת לייזר. השיטה מאפשרת לכוד ולהזיז תאים עצביים בדייקנות גבוהה במיקרוסקופ, ומספקת כלי רב עוצמה למחקר בתחום הנוירוביולוגיה והביולוגיה התאית.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחקר נתמך על ידי NIH מענקים EY012031 ו EY0182175 ואת קירבי FM קרן.

פינצטה אופטית עבור מניפולציה בתאים מבודדים בתרבות כוחות השמנה של פינצטה אופטית מופקות מן המומנטום של אור (Ashkin, 1991;. Ashkin et al, 1986). למרות הכוחות האלה בקלות למלכודת תאים ההשעיה, הם אינם מסוגלים לנוע התאים להיצמד למשטח. לכן, כדי להפחית הידבקות התבשיל תרבות בנקודה שבה תאים לכודים, coverslip מצופה פולי-2-hydroxyethylmethacrylate (poly-המה) מתחם (סיגמא כימית ושות&#39;, סנט לואיס, מיזורי), רעילים עם תא דוחה מאפייני המועסקים קודם לכן לתאי אנדותל (מוסקונה פולקמן ו, 1978) ללימודי הידבקות. בעוד מרובה המה מכסה מחצית המנה תרבות, החצי השני מצופה המצע התומך צמיחת תאים. במעבדה שלנו, סאל-1 משמש המצע של סלמנדרה culturing תאים ברשתית. הליך בודה סאל-1 ו-Poly-המה הכלים מצופה מתואר להלן: ייצור של מאכלים תרבות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Coverglasses נקי (# 1 VWR מדעי Inc, מדיה, PA) בחומצה. Coverglass זה נבחר עובי של 0.1mm פשוט, הכרחי עבור מטרות גבוהות הצמצם המספרי הנדרש למיקוד הלייזר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי ליצור אזור דוחה התא, להמיס 20 מ&quot;ג מרובה המה (סיגמא כימית ושות&#39;, סנט לואיס, מיזורי) ב 1ml של אתנול 95% במשך הלילה בטמפרטורת החדר. רצוי, פתרון זה יש להשתמש בתוך חודש 1 של הכנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנכס את coverglasses במיקום אנכי ליד בסביבת אבק חופשי כמו ברדס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום אחד או שניים טיפות של תמיסת מרובה המה בסמוך לחלקו העליון של coverglass מקצה פלסטיק של micropipette 200μl. טיפות (כ 50-100μl כל אחד) יש להגביל את מחצית coverglass. המדרון התלול מבטיח הנוזל זורם מטה השטח של coverglass לתחתית, מתן ציפוי אפילו דקה של פולי-המה. אפשר מרובה המה coverglasses מצופה לייבוש למכסה המנוע של 30-60 דקות בטמפרטורת החדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סמן את הצד מרובה המה של coverglass עם עט טיפ מצוין קרוב לקצה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקדוח חור 1 ס&quot;מ בתחתית צלחת תרבות 35 מ&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דבק coverglass מרובה המה מצופה לתחתית צלחת עם תרבות Sylgard 184 (Dow Corning ושות&#39; Midland, MI) כך שהצד מרובה המה מצופה הפנים כלפי החלק הפנימי של המנה. ודא את הקצה של ציפוי מרובה המה רץ לאורך מרכז החור. המנות אפשר להתייבש במשך 1-3 ימים בטמפרטורת החדר בסביבה נטולת אבק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Scratch קו בצד החיצוני של coverglass עם עט יהלום טיפ הבאה בקצה ציפוי מרובה המה. ואז, שריטה שני קווים חוצים בזווית ישרה הוא כ 2 מ&quot;מ זה מזה. שתי נקודות של הצומת לשמש כנקודת התייחסות או נקודות fiducial לשמש לשחזר את האוריינטציה של אותו מאכל התרבות על הבמה מיקרוסקופ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעקר את הכלים באור אולטרה סגול לילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי ליצור חצי התא חסיד של המנה תרבות, מעיל החצי הלא מרובה המה עם סאל-1, אשר מכיל אנטי סלמנדרה עכבר נוגדנים נגד העלה קרום התא רשתית (בתנאי בנדיבות על ידי ד&quot;ר פיטר מק &#39;ליש, בית הספר לרפואה של מורהאוס , Atlanta, GA; לראות מקליש et al (1983)).. ראשית, המעיל בצד-1 מ&quot;ג סאל עם כ 100μl של 0.1 / מ&quot;ל ​​סטרילי אנטי עכבר עז IgG נוגדנים (Boehringer מנהיים Corporation, באינדיאנפוליס IN), נזהרת לא לשפוך את הנוזל על הצד מרובה המה. השאירו למשך שלוש שעות, ולאחר מכן להסיר אותה. לשטוף את האזור אותו עם פתרון Ringer של סטרילית פעם או פעמיים, אז במקום 100μl סאל-1 supernatant, נזהרת לא לשפוך את הנוזל לתוך הצד מרובה המה של המנה. הנוגדן first מבטיח סאל-1 הוא מצופה בריכוז ידוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה את הכלים עם סאל-1 לילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הפתרון סאל-1 נוגדן ולשטוף את האזור בתמיסת רינגר של סטרילית. הציגו 2 בינוני מ&quot;ל למנה קצר לפני ציפוי התא. </li></ol> הרכב של הפתרון Ringer של דוחי, סרום ללא בינוני דוחי, והפתרון של רינגר לעיכול האנזים נמצאים מקליש ו-Townes אנדרסון (1988) ו מנדל et al. (1993). הכנת תרביות תאים התאים המשמשים וידאו זה נגזרו אור מותאם, בוגר מימיים שלב נמר סלמנדרות (Ambystoma tigrinum), מדידת 17-22 ס&quot;מ אורך (צ&#39;רלס סאליבן Inc, בנשוויל, טנסי), נשמר על 5 מעלות צלזיוס על 12 שעות: 12 שעות אור כהה מחזור. הפרוטוקולים אושרו על ידי טיפול בבעלי חיים מוסדיים השתמש הוועדה (IACUC) באוניברסיטה לרפואה ורפואת שיניים של ניו ג&#39;רזי בהתאם קפדנית עם ההנחיות של המכון הלאומי לבריאות. הנהלים להכנת תרביות תאים ברשתית מתוארים על ידי נחמן-Clewner ו-Townes אנדרסון (1996) הם כדלקמן: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לערוף ומוח החיות. הסר את העיניים לנתח את קרניות ו איריס. הרשתיות צריך לנתק קצת בתוך עיינית. על ידי הצבת מלקחיים מעוקל מתחת הרשתית, לגרוף את הרשתיות. אין זה חשוב אם העדשה מחוברת הרשתית בשלב זה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקציר הרשתיות ב papain 14 U / ml (וורטינגטון, לפריהולד, NJ) בתמיסה סלמנדרה רינגר במשך 40 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני השימוש, הפתרון Ringer של papain צריך להיות מבעבע עם 95% O 2 / 5% גז CO 2 למשך 30 דקות., מעוקרים אז דרך 0.22 מיקרון המסנן (Millipore, Carrigtwohill, אירלנד) על ידי מעבר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שוטפים את הרשתית עם פתרון סטרילי סלמנדרה רינגר שלוש פעמים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את העדשות מפתרון רינגר, אז בעדינות triturate רקמת הרשתית עם 3 מ&quot;מ משעמם פיפטה להניב ההשעיה התא. </li></ol> לייזר פינצטה מניפולציה של נוירונים בודדים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את צלחת התרבות על הבמה מיקרוסקופ, המכוונת את המנה על ידי יישור סימן על צלחת עם נקודת התייחסות על הבמה. שמור את הקואורדינטות של נקודות fiducial במחשב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צלחת התאים על שניהם סאל-1 ו-Poly-המה חצאים של המנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר התאים להסתפק בערך 20 דקות, וזה זמן מספיק תאים בצד חסיד של המנה לצרף למצע נוגדן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר תא בצד סאל-1 חסיד של המנה. סמן את x ו-y הבמה עמדה קרוב לתא. במקרה שלנו, הנקודה היתה כ 10μm מן דנדריטים העיקרי של התא הנבחר. שמור קואורדינטות במחשב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר הנוירון השני, במקרה שלנו photoreceptor, בצד מרובה המה המנה ולהשתמש בכלי פינצטה לייזר כדי ללכוד אותו. השמנה יכולה להיות מושגת על פני טווח רחב של רמות הספק. עם זאת, אנו קובעים את הכוח של הלייזר ב 10% -20%, שהיא נמוכה מספיק כדי למנוע השמנה, יחד עם פסולת התא, אבל מספיק כדי להוביל את התא דרך המדיום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעוד מחזיק את התא במלכודת, מנמיכים את הבמה כך התא היטב מעל פני השטח של צלחת תרבות מעל כל הנוירונים המצורפת. הזז את הבמה תחת שליטה במחשב כדי להביא את התא אל x ו-y שנשמרו בעבר קואורדינטות בצד סאל-1. התנועה השלב נקבע על 8-20μm / s, אך המהירות המרבית צריך להיקבע באופן אמפירי. ההגעה לנקודת היעד בצד סאל-1, להעלות את הבמה כדי להביא את התא לכודים על פני השטח של המנה. מיקום התא יכול להתבצע עם דיוק של מיקרונים אחדים. אפשר התא להיצמד למצע סאל-1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קבלת תמונות דיגיטציה של תאים הן צמד לפני ואחרי הקמת הצמד מספק שיא שימושי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמירה על זוגות תא באינקובטור. עבור תאים סלמנדרה, במקום מנות בתא humidified על 10 ° C. תאים יכול להיות פיקוח על ידי זמן לשגות וידאו בשימוש עם טכניקה כל תא ביולוגי הנדרש. </li></ol>

<ol><li>Ashkin, A., Dziedzic, J. M., Bjorkholm, J. E., Chu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observation+of+a+Single-Beam+Gradient+Force+Optical+Trap+for+Dielectric+Particles%5BTitle%5D)+AND+%22Opt.+Lett%22%5BJournal%5D)">Observation of a Single-Beam Gradient Force Optical Trap for Dielectric Particles.</a> Opt. Lett. 11, 288-290 (1986).</li>
<li>Clarke, R. J., Hoegnason, K., Brimacombe, M., Townes-Anderson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cone+and+rod+cells+have+different+target+preferences+in+vitro+as+revealed+by+optical+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Vision%22%5BJournal%5D)">Cone and rod cells have different target preferences in vitro as revealed by optical tweezers.</a> Mol. Vision. 14, 706-720 (2008).</li>
<li>Folkman, J., Moscona, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+cell+shape+in+growth+control%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Role of cell shape in growth control.</a> Nature. 273, 345-349 (1978).</li>
<li>Liu, Y., Cheng, D. K., Soneck, G. J., Berns, M. W., Chapman, C. F., Tromberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+of+localized+cell+heating+induced+by+infrared+optical+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Evidence of localized cell heating induced by infrared optical tweezers.</a> Biophysical Journal. 68, 2137-2144 (1995).</li>
<li>MacLeish, P. R., Barnstable, C. J., Townes-Anderson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+monoclonal+antibody+as+a+substrate+for+mature+neurons+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Use of a monoclonal antibody as a substrate for mature neurons in vitro.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 80, 7014-7018 (1983).</li>
<li>MacLeish, P. R., Townes-Anderson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+and+synapse+formation+among+major+classes+of+adult+salamander+retinal+neurons+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Growth and synapse formation among major classes of adult salamander retinal neurons in vitro.</a> Neuron. 1, 751-760 (1988).</li>
<li>Mandell, J. W., MacLeish, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Townes-Anderson+E.+Process+outgrowth+and+synaptic+varicosity+formation+by+adult+photoreceptors+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Townes-Anderson E. Process outgrowth and synaptic varicosity formation by adult photoreceptors in vitro.</a> J. Neurosci. 13, 3533-3548 (1993).</li>
<li>Nachman-Clewner, M., Townes-Anderson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injury-induced+remodelling+and+regeneration+of+the+ribbon+presynaptic+terminal+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurocytol%22%5BJournal%5D)">Injury-induced remodelling and regeneration of the ribbon presynaptic terminal in vitro.</a> J. Neurocytol. 25, 597-613 (1996).</li>
<li>Townes-Anderson, E., St Jules, R. S., Sherry, D. M., Lichtenberger, J., Hassanain, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micromanipulation+of+retinal+neurons+by+optical+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Vis.%22%5BJournal%5D)">Micromanipulation of retinal neurons by optical tweezers.</a> Mol. Vis.. 4, (1998).</li>
</ol>

Light יש מומנטום, וכאשר קרן האור נשבר כשהוא עובר דרך תא, כוח נדרש כדי לשנות את כיוון המומנטום. בגלל חוק שימור התנע, כוח בכיוון ההפוך חייב, בתורו, להגיב בחזרה לתא. Ashkin (1991) הראה כי הכוח שנוצר על ידי קרן לייזר ממוקדת על ידי עדשה מיקרוסקופ המטרה יעברו תא לעבר מרכז המיקוד. אף על פי קרן לייזר מייצר רק piconewtons כמה כוח, כוח זה מספיק כדי למשוך תא דרך המדיום. גל אינפרא אדום הקרוב כי הוא נספג היטב על ידי מים משמש כדי למנוע נזק לתא (Liu et al 1995). תחנת עבודה לייזר פינצטה בשימוש במעבדה שלנו (Cell Robot...

<table><tbody><tr><td>זכוכית כיסוי מס' 1, עיגול 25mm</td><td>VWR international</td><td>48380 080</td><td></td></tr><tr><td>poly-2-hydroxyethylmethacrylate (poly-HEMA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-3932</td><td>המסה ב-95% ethanol</td></tr><tr><td>נוגדן Goat anti-mouse IgG</td><td>Chemicon International</td><td>AP181</td><td> 1mg ב-1ml, לדלל פי 10 לשימוש</td></tr><tr><td>עליון Sal-1 המכיל נוגדן mouse anti-salamander</td><td>נתרם בנדיבות על ידי Dr. Peter MacLeish</td><td></td><td>Dr. Peter MacLeish, Morehouse School of Medicine, Atlanta, GA</td></tr><tr><td>פיפטות pyrex חד-פעמיות 5ml, קוטר פתח 3 mm</td><td>Corning</td><td>7078A-5</td><td></td></tr><tr><td>צלוחיות לתרבית תאים 35mm x 10mm</td><td>Corning</td><td>430165</td><td></td></tr><tr><td>ערכה לאלסטומר סיליקון Sylgard 184</td><td>Dow Corning</td><td></td><td></td></tr><tr><td>פינצטה אופטית-מיקרו-כלי או פינצטה לייזר</td><td>Cell Robotics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>לייזר דיודה בגל רציף 1 W באורך גל של 980nm</td><td>Cell Robotics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ אור הפוך Axiovert 100</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>עדשת אובייקטיב plan neofluor עם טבילת שמן 40x</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td>ממספר צמצם (N.A. 1.3)</td></tr><tr><td>מצלמת CCD בשחור לבן</td><td>Sony Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מחשב וג'ויסטיק עם תוכנה</td><td>Cell Robotics Inc.</td><td></td><td>לשליטה בבמה ממוטרת</td></tr></tbody></table>

בעזרת פינצטה לייזר עבור מניפולציה נוירונים מבודד במבחנה

Using Laser Tweezers For Manipulating Isolated Neurons In Vitro

במאמר זה ווידאו, אנו מתארים את הפרוטוקולים המשמשים במעבדה שלנו ללמוד את העדפות המיקוד של תהליכי התחדשות התא של הנוירונים ברשתית מבוגר במבחנה. נהלים להכנת תרביות תאים ברשתית להתחיל עם לעיכול נתיחה, טחינה דקה של הרשתית, ולסיים עם ציפוי של תאים ברשתית מבודדת על הכלים שנעשו במיוחד לשימוש עם פינצטה לייזר. מאכלים אלה מחולקים חצי תא דבק וחצי דוחה התא. הצד דבק התא מצופה בשכבה של סאל-1 נוגדנים, המספקים המצע שעליו גדלים התאים שלנו. מצעים דבק אחר יוכל לשמש עבור סוגי תאים אחרים. הצד דוחה התא מצופה בשכבה דקה של פולי-המה. התאים מצופה בצד מרובה המה המנה לכודים עם פינצטה לייזר, מועבר ואז להציב סמוך לתא בצד סאל-1 כדי ליצור זוג. כינונה של קבוצות תאים בכל גודל צריך להיות אפשרי עם טכניקה זו. &quot;לייזר פינצטה שבשליטת המיקרומניפולציה&quot; אומר החוקר יכול לבחור אילו תאים להעביר את המרחק הרצוי בין תאים יכול להיות סטנדרטית. כיוון את קרן הלייזר עוברת משטחים שקופים של המנה תרבות, בחירת מיקום התא נעשים בסביבה, סגורה סטרילית. תאים יכול להיות פיקוח על ידי וידאו זמן לשגות בשימוש עם טכניקה כל תא ביולוגי הנדרש. טכניקה זו עשויה לסייע בחקירות של תאים תאים אינטראקציות.

וידאו זה מתאר את המניפולציה של נוירונים בתרבית באמצעות לייזר פינצטה במבחנה.

במאמר ובסרטון זה, אנו מתארים את הפרוטוקולים המשמשים במעבדתנו לחקר העדפות היעד של שלוחות תאים מתחדשות בבוגרי...

Ashkin היה הראשון שהראה שפינצטות לייזר או מלכודות אופטיות הן כלי רב עוצמה למניפולציה של עצמים חיים ממוזערים במיקרון. בסרטון זה, נראה כיצד יישמנו טכנולוגיה זו כדי ללכוד ולהזיז נוירונים. זוהי תחנת העבודה של הפינצטות האופטיות.החצים הירוקים מראים את הנתיב שעוברת קרן הלייזר דרך האופטיקה של המיקרוסקופ. כאשר קרן לייזר הממוקדת על ידי עדשת העדשה של המיקרוסקופ נשברת על ידי תא, הכוח המשנה את כיוון קרן האור פועל על התא ומזיז אותו לעבר מרכז המיקוד.פעולה זו מייצרת כוחות של Pika Newton המספיקים כדי למשוך תא דרך תווך. בסרטון זה, נדון בייצור של צלחות, הכנה של תאי רשתית, זריעת תאים על צלחות תרבית, מניפולציה באמצעות פינצטה לייזרית ותצפית על צמיחת התאים. כיוון שתאים נדבקים לזכוכית, היינו צריכים ליצור אזור דוחה-תאים שבו ניתן ללכוד תאים בקלות באמצעות הפינצטות.חצי מהצלחת ציפו ב-poly hema, פולימר דוחה תאים. החצי השני צופה ב-cell one, תשתית התומכת בצמיחת התאים שלנו. תחילה, מזהים תא בצד הדביק לתאים של הצלחת.לאחר מכן, תא נוסף נלכד בצד הפולימר ומועבר לצד הדבקה, שם שני התאים מוצמדים זה לזה. להכנת הצלחונות, אנו משתמשים בצלחוני תרבית סטריליים של Polystar בקוטר 35 מילימטר, אשר עברו ניקוי מאבק. ראשית, אנו קודחים חור של סנטימטר אחד בתחתית באמצעות מחרטה קטנה או מקדחה שולחנית.קחו זכוכית כיסוי נקייה מחומצה והניחו אותה

using-laser-tweezers-for-manipulating-isolated-neurons-in-vitro

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

במאמר וידאו זה אנו מציגים שיטה לבידוד יחידים או...

לייזר Microdissection לכידה של תסיסנית נוירונים היקפיים

בשנת vivo לייזר Axotomy ב C. elegans

סרטון זה מדגים שיטה לבידוד תאי עצב המסומנים באופן פלואורסצנטי ממוח עכבר.

בידוד תאי עצב המסומנים באופן פלואורסצנטי ממוח מורין

מקור: Morsch, M.,  et. al., הפעלת מתח ומוות של תאים באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית של לייזר UV קונבנציונלית. J. Vis. Exp. (2017) בסרטון זה, אנו בוחנים את הטכניקה של אבלציה בלייזר UV בעוצמה גבוהה למיקוד מדויק ולימוד של נוירונים בודדים בדג זברה טרנסגני. אנו מדגימים כיצד להכין, לשתק ולדמיין תגובות עצביות, תוך הדגשת הדינמיקה התאית של פציעה והתאוששות.

אבלציה סלקטיבית של לייזר חד-נוירון בזחל דג זברה באמצעות מיקרוסקופ קונפוקלי

הפיתוח האחרון של כלים מדעי המוח המשלבים גנטיקה ואופטיקה, המכונה "optogenetics", מאפשר שליטה על פעילות מעגלים עצבית ברמה חסרת תקדים של רזולוציה מרחב ובזמן. כאן אנו מספקים פרוטוקול לשילוב בהקלטה vivo עם המניפולציה optogenetic של תת קבוצות גנטית מוגדרות של תאי עצב בקליפת המוח פירמידה וsubicular הקדם חזיתית.

שיטה לנאמנות גבוהה בקרת optogenetic של פרט פירמידת נוירונים<em&gt; בvivo</em

מדדנו את שחרור המתח באקסון שlesioned באופן חלקי עם מבתר לייזר על ידי מדידת ספקטרוסקופיה כוח בו זמנית מבוצעת על בדיקה אופטית-לכודה דבקה הממברנה של האקסון. פרוטוקול הניסוי פיתחה מעריך את האקסון ההידבקות למצע התרבות.

מדידה לשחרר מתח בנגע לייזר מושרה אקסון להעריך הידבקות axonal למצע בpiconewton והאלפית השני רזולוציה

תאים אנושיים neuroprogenitor (NPCs) הורחבו בתנאים מתרבים. NPCs היו מובחן לתרבויות נוירון, עשיר בנוכחות שילוב של neurotrophins. סמנים עצביים זוהו על ידי מכתים immunofluorescence. כדי לבודד אוכלוסייה טהורה של נוירונים, NPCs הובדל בשקופיות קרום PEN וmicrodissection ללכוד לייזר בוצע.

Microdissection לכידת לייזר של נוירונים מהתאים מובחנים Neuroprogenitor אדם בתרבות

אנו מתארים שיטה לאפיון הטופוגרפיה התפקודית והתכונות הסינפטיות של מעגלי המוח הקדמי באמצעות גישה אופטוגנטית לגירוי אוכלוסיות עצביות במבחנה.

Photostimulation לייזר לסריקת של מעגלים מוח קדמי ממוקדים Optogenetically

שני פוטונים הדמיה, מצמידים את nanodissection לייזר, הם כלים שימושיים ללמוד תהליכים ניווניים ומשובים במערכת העצבים המרכזית עם הרזולוציה subcellular. פרוטוקול זה מראה כיצד לתייג, תמונה, ולנתח סיבי טיפוס בודדים בקליפת המוח הקטן in vivo.

Nanosurgery הלייזר של האקסונים Cerebellar<em&gt; בVivo</em

הבידוד של נוירונים דופמין הבודדים או אזור tegmental הגחון עם אימונוהיסטוכימיה ישירה או עקיפה מודגם באמצעות microdissection ללכוד לייזר. פרמטרים לבידודה של רקמה משקופיות זכוכית באמצעות לייזר אינפרא אדום ומשקופיות קרום באמצעות השילוב של לייזר אינפרא אדום ואולטרא-סגול הם דנו.

Microdissection לכידת לייזר - הפגנה של הבידוד של פרט דופמין נוירונים ופינת הגחון tegmental השלם

אנו מתארים טכניקה לתייג נוירונים והתהליכים שלהם באמצעות זריקות אנטרוגרדית או נותב מדרדר לגרעיני מוח באמצעות הכנה במבחנה. אנחנו שונה בשיטה הקיימת שלי n המבחנה electroporation נותב על ידי ניצול של שכותרתו fluorescently מוטציות עכבר וציוד אופטי בסיסי כדי להגדיל את דיוק תיוג.

Explants מוח מונחי לייזר עצבי איתור ב

למד כיצד לבצע מניפולציה של נוירונים בתרבית באמצעות פינצטת לייזר. השיטה מאפשרת לכוד ולהזיז תאים עצביים בדייקנות גבוהה במיקרוסקופ, ומספקת כלי רב עוצמה למחקר בתחום הנוירוביולוגיה והביולוגיה התאית.

בעזרת פינצטה לייזר עבור מניפולציה נוירונים מבודד במבחנה

גלה סרטונים נוספים