11 בספטמבר 2008
וידאו זה מתאר את המניפולציה של נוירונים בתרבית באמצעות לייזר פינצטה במבחנה.
Ashkin היה הראשון שהראה שפינצטות לייזר או מלכודות אופטיות הן כלי רב עוצמה למניפולציה של עצמים חיים ממוזערים במיקרון. בסרטון זה, נראה כיצד יישמנו טכנולוגיה זו כדי ללכוד ולהזיז נוירונים. זוהי תחנת העבודה של הפינצטות האופטיות.
החצים הירוקים מראים את הנתיב שעוברת קרן הלייזר דרך האופטיקה של המיקרוסקופ. כאשר קרן לייזר הממוקדת על ידי עדשת העדשה של המיקרוסקופ נשברת על ידי תא, הכוח המשנה את כיוון קרן האור פועל על התא ומזיז אותו לעבר מרכז המיקוד.
פעולה זו מייצרת כוחות של Pika Newton המספיקים כדי למשוך תא דרך תווך. בסרטון זה, נדון בייצור של צלחות, הכנה של תאי רשתית, זריעת תאים על צלחות תרבית, מניפולציה באמצעות פינצטה לייזרית ותצפית על צמיחת התאים. כיוון שתאים נדבקים לזכוכית, היינו צריכים ליצור אזור דוחה-תאים שבו ניתן ללכוד תאים בקלות באמצעות הפינצטות.
חצי מהצלחת ציפו ב-poly hema, פולימר דוחה תאים. החצי השני צופה ב-cell one, תשתית התומכת בצמיחת התאים שלנו. תחילה, מזהים תא בצד הדביק לתאים של הצלחת.
לאחר מכן, תא נוסף נלכד בצד הפולימר ומועבר לצד הדבקה, שם שני התאים מוצמדים זה לזה. להכנת הצלחונות, אנו משתמשים בצלחוני תרבית סטריליים של Polystar בקוטר 35 מילימטר, אשר עברו ניקוי מאבק. ראשית, אנו קודחים חור של סנטימטר אחד בתחתית באמצעות מחרטה קטנה או מקדחה שולחנית.
קחו זכוכית כיסוי נקייה מחומצה והניחו אותה במצב זקוף בסביבה נקייה מאבק, כגון מנדף. קחו את תמיסת ה-polyus המומסת ב-95%alcohol והניחו מספר טיפות ליד החלק העליון של זכוכית הכיסוי בחצי אחד בלבד. הניחו ל-poly hema להתייבש. סמנו את צד ה-polyus של זכוכית הכיסוי.
הניחו S guard מסביב לחור בתחתית צלחת הטיפוח. הדביקו את זכוכית הכיסוי לצלחת באמצעות ה-S guard. ודאו שהפוליאמיד נמצא בצד הפנימי וכן ודאו שאין דליפות דרך רווחי ה-sill guard.
הניחו את כיסוי הזכוכית כך ששפת ציפוי ה-poly hema תעבור במרכז הפיתה. הניחו לפיתה להתייבש למשך יומיים עד שלושה ימים, ולאחר מכן שרטטו את תחתית הפיתה בעזרת עט עם חוד יהלום כדי ליצור סימנים שישמשו כנקודות ייחוס למיקום הפיתה על במה המיקרוסקופ. הניחו את הפיתות במנדף ועקרו אותן תחת אור ultraviolet.
טפטפו טיפה אחת או שתיים של תמיסת נוגדן goat anti-US על הצד שאינו מצופה ב-polyus של הצלחת, תוך הקפדה שלא לשפוך אותה על הציפוי ה-poly hemic, והמתינו למשך כשלוש שעות. הסירו את התמיסה ושטפו עם ringer סטרילי. הניחו תמיסת נוגדן ראשוני לתאים באותו אזור והדגרימו למשך הלילה, כדי שהמדגם יהיה מוכן לניסוי למחרת.
התאים במעבדה שלנו מופקים מרשתית של סלמנדרה בוגרת בשלב המימי. הרשתית מבודלת ומוצאת, מעובדת בעיכול אנזימטי. לאחר מכן ניתן לזרוע את הצלחת התרבית עם התאים המבודדים.
העיניים מוסרות. הקרנית מבודלת ומוסרת. גביע העין מונח בתמיסת רינגר סטרילית.
את הרשתית מפרידים מגביע העין על ידי הוצאתה באמצעות קצה של פינצטה מעוקלת. פחמן דו-חמצני וחמצן מבעבעים לתוך תמיסת רינגר המכילה פרופאן, ולאחר מכן עוברים סטריליזציה באמצעות מסנן עדין של 0.2 מיקרון. את הרשתיות מניחים בתמיסת האנזים ומעכלים למשך כ-40 דקות תוך כדי ערבוב כדי לפרק את הרקמה.
לאחר שטיפה של שלוש פעמים, הרשתיות מופרדות באמצעות tri. באמצעות פיפט עם קצה כדורי בקוטר שלושה מילימטרים, התאים המבודדים מוכנים לזריעה לפני הזריעה. את צלחת התרבית המכילה מצע גידול מניחים עלבמת המיקרוסקופ ומכוונים אותה כראוי באמצעות סימני השריטה בתחתית הצלחת.
פעולה זו מאפשרת לשחזר במדויק את מיקום הצלחת במועד מאוחר יותר. לאחר מכן, התאים נזרעים הן על הצד של ה-poly hema והן על הצד של ה-cell one של הצלחת. מיקום הצלחת על במה המיקרוסקופ, כמו גם עוצמת הלייזר, נשלטים באמצעות הג'ויסטיק.
ראשית, זיהינו תא הדבוק לאחד מצדדי הכלי. זהו תא רטינלי מולטיפולרי (multipolar cell) שניתן לזהות אותו לפי הדנדריטים שלו. קואורדינטות מיקום התא נשמרות.
זהו תא פוטורספטור מסוג קולב (rod) בצד של ה-polyus cell repellent בצלחת. הצלחת מורדת, התא נלכד על ידי הלייזר ומורם מהדופן התחתונה של הצלחת. כעת התא מועבר לצד השני של הצלחת, לקואורדינטות של התא הרב-קוטבי (multipolar cell).
בפועל, התא ניצב במקום. הצלחת היא זו שזזה. התא עובר כעת מעל קצה ציפוי ה-poly hemo.
הבליטה המשתרעת מהתא היא סוף העקשון (axon terminal). התא נמצא במרחק בטוח משאריות ותאים אחרים בתחתית הצלחת, שעלולים להפריע לתנועתו. תמונות מחוץ למיקוד (defocus) של תאים בתחתית הצלחת נראות ברקע.
תא המוט מגיע לתא הרב-קוטבי וניתן למקם אותו במדויק בנקודה ובמרחק הרצויים מאותו תא. הצלחת מורמת והתא נצמד למצע התא. היתרונות העיקריים של הליך זה הם שניתן לבחור אילו תאים להזיז ושהמניפולציות יכולות להתבצע בתוך ניסוי סטרילי סגור.
ניתן לנטר אינטראקציות בין תאים באמצעות צילום וידאו במרווחי זמן (time lapse) או באמצעות צילום דיגיטלי. ניתן להשתמש בפינצטות לייזר בשילוב עם כל טכניקה ביולוגית; כאן, לדוגמה, טכניקת פלואורסצנציה מדגימה נוכחות של חלבוני סינפסה בנקודות החיבור בין תאים שהוזזו באמצעות הפינצטות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
סרטון זה מתאר מניפולציה של נוירונים בתרבית באמצעות פינצטות לייזר (laser tweezers) in vitro. פינצטות לייזר מוצגות ככלי רב עוצמה ללכידה והזזה של נוירונים.
פינצטות לייזר מאפשרות מניפולציה מדויקת וללא מגע של נוירונים בודדים in vitro, ובכך תומכות במחקרים מכניסטיים של קישוריות סינפטית וצמיחת נוריטים. יכולת זו משפרת את תיקוף המטרה על ידי מתן אפשרות לבדיקה מבוקרת של אינטראקציות בין תאים בסביבה סטרילית וניתנת לצפייה. השיטה מספקת בקרה מרחבית כמותית המועילה להפחתת סיכונים בהשערות בשלבי הגילוי המוקדמים של מדעי העצבים.
פינצטות לייזר משתלבות בתהליכי עבודה של גילוי מוקדם על ידי כך שהן מאפשרות מניפולציה מונחית-היפותזה של נוירונים מבודדים לפני סריקת תרכובות או פרופיל פנוטיפי.