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Articolo metodologico

Isolamento e di espansione su vasta scala di umano adulto cellule progenitrici endoteliali che formano colonie

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DOI:

10.3791/1524

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28 ottobre 2009

 ,  , 

Autori corrispondenti: Nicole A. Hofmann <nicole.hofmann@klinikum-graz.at>

In questo articolo

Sommario

Cellule progenitrici endoteliali formanti colonia (ECFCs) sono uno strumento promettente per studiare l'omeostasi vascolare e la riparazione. 1,2 Questo documento introduce un nuovo metodo di siero animale libero per l'isolamento e l'espansione del ECFC da eparinizzato adulti sangue umano periferico con un pool di lisato piastrinico umano (pHPL) diminuendo il rischio di immunizzazione anti-bovino.

Abstract

Questo lavoro introduce una nuova strategia di recupero per le cellule progenitrici endoteliali formanti colonia (ECFCs) da eparinato ma per il resto non manipolata adulto periferici umani all'interno di una media di 12 giorni. Dopo l'espansione su larga scala> 1x10 8 ECFCs può essere ottenuto per ulteriori test. Vantaggiosamente utilizzando pHPL il contatto delle cellule umane con antigeni siero bovino può essere escluso. Mediante citometria di flusso ed immunoistochimica delle cellule isolate può essere caratterizzato come ECFC e la loro funzionalità in vitro per formare strutture di tipo vascolare possono essere testati in un test di Matrigel. Inoltre queste cellule possono essere iniettati per via sottocutanea in un modello murino di forma funzionale, vasi perfusi in vivo. Dopo un lungo periodo di espansione e la proliferazione crioconservazione, la funzione e la stabilità genomica sembrano essere conservati. 3,4

Questo animale-proteina isolamento libero e il metodo di espansione è facilmente applicabile a generare una grande quantità di ECFCs.

Protocollo

A.) ECFC ISOLATON

GIORNO 1:

  1. Prima di iniziare con l'esperimento preparare la cultura della crescita delle cellule endoteliali medio a medio-2 (EGM-2). Supplemento 500ml endoteliale basale medio-2 con eparina (1 ml di 1000 U / ml), 5 ml soluzione 100x di penicillina / streptomicina (tutti Sigma, St. Louis, MO, www.sigmaaldrich.com ), L-glutamina (concentrazione 2 mM finale ), e 50 ml pool lisato piastrinico umano (pHPL). Quindi aggiungere 0,2 ml di idrocortisone, 2 ml hFGF-B, 0,5 ml di VEGF, EGF 0,5 ml, 0,5 ml di IGF-1 e 0,5 ml di acido ascorbico (fornito come SingleQuots, tutti Lonza,....

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Discussione

Questo isolamento romanzo e il metodo di espansione è un processo semplice ed efficiente che è più efficiente e meno che richiede tempo, evitando qualsiasi separazione cellulare (gradiente di densità non necessario) e meno costoso rispetto alle tecniche convenzionali. Usando contatto pHPL agli antigeni della specie bovina e putativo xenoimmunization successivo è esclusa. Durante il periodo di cultura piccoli coaguli si possono formare, causata dal pHPL. Sulla base della nostra esperienza di questi coaguli di non effetto.......

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Ringraziamenti

Gli autori ringraziano il Dott. Katharina Schallmoser per la fornitura di pHPL e Margaretha Frühwirth e Daniela Thaler per un'eccellente assistenza tecnica.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Mezzo basale per endoteliali-2Lonza Inc.500 ml
SingleQuots EGM-2Lonza Inc.EGF, hFGF-B, VEGF, IGF-1, idrocortisone, acido ascorbico
Eparina senza conservantiBiochrom AG10 U/ml per EGM-2
L-GlutamminaSigma-Aldrich2 mM per EGM-2
Penicillina e StreptomicinaSigma-Aldrich100 U/mL di penicillina e
100μg/mL di streptomicina per
EGM-2
Tripsina/EDTA 1 mMInvitrogen7 ml per fiala T75
70 ml per CF-4
PBS
Cell factory a quattro strati (CF-4)Corning
Imbuto sterileCorning
Fiala da coltura T75cm2 (con tappo ventilato)Corning
Tubi vacutainer da 6 mL (eparina sodica senza conservanti)BD Biosciencesprecaricati con 108 UI/6 ml di
eparina sodica senza conservanti
Tubi Falcon da 50 mlFalcon BD
Stripette da 5 mlCostar
Stripette da 25 mlCostar
SqueezerCostar
Filtro sterile con pori da 0,2EMD Millipore2x 500 ml per EGM-2

Riferimenti

  1. Solovey, A., Lin, Y., Browne, P., Choong, S., Wayner, E., Hebbel, R. P. Circulating activated endothelial cells in sickle cell anemia. N Engl J Med. 337, 1584-1590 (1997).
  2. Yoder, M. C., Mead, L. E., Prater, D. Redefining endothelial progenitor cells vi....

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Ristampe e permessi

Tag

Isolamento di ECFCcultura del sangue perifericoterreno privo di siero animalefrazione vascolare stromalecitometria a flussoimmunoistochimicasaggio con Matrigeliniezione in modello murino