Il seguente protocollo è un estratto da Prior et al, A Rapid and Facile Pipeline for Generating Genomic Point Mutants in C. elegans Using CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins, J. Vis. Exp. (2018).
PCR e genotipizzazione a verme singolo
- Dopo 1 - 2 giorni di deposizione delle uova, trasferire gli F1in singoli tappi di provette per PCR contenenti 7 μL di tampone per lisi dei vermi utilizzando un plettro (Tabella 1, Figura 1D, giorni 4 - 5).
- Centrifugare le provette per PCR alla massima velocità per 1 minuto a temperatura ambiente per portare gli animali sul fondo della provetta e congelare le provette a -80 °C per 1 h.
NOTA: I vermi possono essere conservati a -80 °C a tempo indeterminato.
- Lizzare i vermi congelati in un termociclatore utilizzando il seguente programma: 60 °C per 60 min, 95 °C per 15 min, 4 °C hold.
- Impostare la mastermix PCR come mostrato nella Tabella 2.
- Aggiungere 21 μl di mastermix per PCR in provette per PCR pulite, quindi aggiungere 4 μl di lisi a vite senza fine dalla fase 3. Mescolare bene utilizzando una pipetta ed eseguire il programma PCR seguendo le linee guida del produttore (vedere la tabella dei materiali).
- Purificare le reazioni PCR utilizzando un kit DNA Clean and Concentrate, seguendo le istruzioni del produttore (vedere la tabella dei materiali). Eluire il DNA aggiungendo 10 μL di acqua alla colonna di centrifuga.
- Mastermix enzimatico di restrizione all'impostazione come mostrato nella Tabella 3.
- Aggiungere 10 μl di mastermix dell'enzima di restrizione a ciascuna reazione PCR pulita e incubare per 1 - 2 ore a 37 °C.
- I prodotti PCR digeriti separati su un gel di agarosio all'1,5% vengono eseguiti a 120 V utilizzando 1 tampone Tris-acetato-EDTA (TAE).