È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Preparazione del cuore di Drosophila: una tecnica per studiare la fisiologia del cuore nel moscerino adulto

3.3K visualizzazioni

30 aprile 2023

In questo articolo

Abstract

Source: Vogler, G., Ocorr, K. Visualizzare il cuore pulsante in Drosophila. J. Vis. Exp. (2009).

Questo video descrive il cuore adulto della mosca, o altrimenti chiamato il vaso dorsale della Drosophila. Il protocollo presentato dimostra una procedura di dissezione per preparazioni cardiache vive.

Protocollo

Questo protocollo è un estratto da Vogler e Ocorr, Visualizing the Beating Heart in Drosophila, J. Vis. Exp. (2009).

1. Prima di iniziare

  1. Preparare una soluzione di emolinfa artificiale (AH) appena preparata contenente 108mM Na+, 5mM K+, 2mM Ca2+, 8mM MgCl2, 1mM NaH2PO4, 4mM NaHCO3, 10mM saccarosio, 5mM trealosio, 5mM HEPES (pH 7,1, tutti i reagenti di Sigma Chemicals). Il saccarosio e il trealosio devono essere aggiunti all'AH da soluzioni madre refrigerate appena prima dell'uso per prevenire la contaminazione batterica.
  2. Portare l'AH a temperatura ambiente e ossigenare la soluzione facendo gorgogliare all'aria per almeno 15 minuti.
  3. Estrarre diversi capillari sottili (ad es. capillari in vetro, 100ul, VWR) necessari per la rimozione del grasso.

2. Cuore di Drosophila semi-intatto dalla mosca adulta

  1. Le mosche adulte di Drosophila vengono anestetizzate con Fly Nap (Carolina Biological Supply Co.) per 2-5 minuti. Bisogna fare attenzione a non lasciare le mosche nel Fly Nap per esposizioni più lunghe. L'esposizione a breve termine al freddo può essere utilizzata anche per anestetizzare le mosche, ma la CO2 non è raccomandata in quanto ha effetti più duraturi sulla frequenza cardiaca e sulla ritmicità.
  2. Le mosche anestetizzate vengono posizionate, con la parte dorsale rivolta verso il basso, in una capsula di Petri rivestita con un sottile strato di vaselina. La cuticola idrofobica nelle ali e nel corpo si "attacca" in modo reversibile alla gelatina, ma la mosca può essere riposizionata se necessario. Ciò diventa particolarmente importante durante le manipolazioni successive.
  3. Un taglio iniziale viene effettuato utilizzando un paio di forbici a molla curve (Roboz #5611). Le lame delle forbici sono posizionate sotto le gambe e inclinate verso il basso verso la superficie dorsale del torace vicino al collo. La testa, il cordone nervoso ventrale e le gambe vengono rimossi con un unico taglio. Il preparato viene quindi immerso in una soluzione di emolinfa artificiale ossigenata (AH).
  4. Utilizzando le forbici a molla, la punta posteriore dell'addome (composta dai segmenti addominali 7 e 8) viene rimossa con un unico taglio. Questo fornisce l'accesso per eseguire tagli laterali lungo entrambi i bordi dell'addome e serve a recidere la connessione tra l'intestino posteriore e la cuticola addominale. Il lembo liberato della cuticola addominale ventrale viene quindi rimosso.
  5. Nelle fasi 3 e 4 le connessioni anteriore e posteriore dell'intestino vengono recise in modo che gli organi addominali siano ora tenuti in posizione solo da tracheoli. L'intestino e altri organi addominali di solito possono essere rimossi come un'unica massa usando una pinza da gioielliere (Roboz, #55) e uno strattone delicato. La rimozione degli organi interni rivela il tubo cardiaco pulsante ancora attaccato alla cuticola dorsale circondato da corpi adiposi.
  6. I corpi adiposi sono abbastanza opachi al microscopio ottico, di conseguenza è spesso necessario rimuovere parte di questo grasso per vedere chiaramente il tubo cardiaco. Ciò si ottiene con una tecnica di liposuzione che utilizza capillari di vetro finemente disegnati. I capillari vengono realizzati utilizzando un estrattore per pipette standard (ad es. estrattore per pipette Sutter P-97) e vengono quindi inseriti in un tubo di plastica (Tygon, 1/16") collegato a una fonte di vuoto. Questo sistema viene utilizzato per aspirare il grasso in eccesso intorno al tubo cardiaco. La forza di aspirazione è proporzionale al diametro del puntale, pertanto non è necessario utilizzare pipette con puntali di diametro superiore a 40 micron. Bisogna prestare la massima attenzione per evitare di toccare il cuore stesso e poiché la parte posteriore del cuore è molto fragile, quella regione dovrebbe essere evitata del tutto.
  7. Il tubo cardiaco adulto di Drosophila è ora esposto e dovrebbe battere. Se necessario, la cuticola e il cuore attaccato possono essere riposizionati sollevando delicatamente la cuticola dalla vaselina e pressandola con cura, evitando nuovamente qualsiasi contatto con il tessuto cardiaco. A questo punto la soluzione che bagna il preparato deve essere sostituita con AHL fresco. Questo preparato deve essere lasciato equilibrare per 20-30 minuti con ossigenazione prima di qualsiasi manipolazione. Se il preparato deve essere mantenuto per più di 60 minuti, deve essere perfuso con AHL fresco.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Forbici a molla per micro dissezione (curve)Roboz Strumenti Chirurgici Co.RS-5611Buono per tagli grossolani (Passaggio 2)
Forbici a molla per micro dissezione (dritte)Roboz Strumenti Chirurgici Co.RS-5620
Pinze Dumont #55Strumenti per la scienzaCodice: 11295-51
Pinze Dumont #5Strumenti per la scienzaCodice 11295-10
Capillari di vetro, finiProdotti scientificiGB100T8P
Estrattore per pipetteAttrezzatura SutterP-97Funzioneranno sia gli estrattori di pipette orizzontali che verticali
Tubi in plasticaTygonDiametro interno 1/16"per capillari da 100 μl
Adesivo tissutale istoacrilico®B. Braun Medical

Tag

Dissezione del cuoreemolinfa artificialepreparazione del cuore ex vivoregistrazione otticaregistrazione elettrofisiologicasistema di aspirazione a vuototrazione capillare