Slice Cultura organotipica di GFP che esprimono embrioni di topo per imaging in tempo reale della crescita degli nervi periferici

Sommario

Vi presentiamo un metodo per preparare le fette di organotipica metà gestazione embrioni di topo per l'imaging coltivazione e time-lapse di escrescenza dei nervi periferici.

Abstract

Per molti scopi, la coltivazione di embrioni di topo ex vivo come fette organotipica è auspicabile. Per esempio, impieghiamo una linea di topo transgenico (tauGFP) in cui la versione migliorata della proteina verde fluorescente (EGFP) è esclusivamente espressa in tutti i neuroni del sistema di sviluppo nervoso centrale e periferico ^1, ammettendo la possibilità ad entrambi film di innervazione del la zampa anteriore e di manipolare questo processo con tecniche farmacologiche e genetiche ^2. Il parametro più critico di successo nella coltivazione di culture fetta tale è il metodo con cui vengono preparate le fette. Dopo un'ampia sperimentazione di una varietà di metodi, abbiamo scoperto che una vibratome è il dispositivo migliore per affettare gli embrioni in modo tale da risultare in routine di una cultura che dimostra la vitalità in un periodo di diversi giorni e, soprattutto, si sviluppa in un'epoca specifico modo. Per la metà della gestazione gli embrioni, questo include la conseguenza normale di nervi spinali dal midollo spinale e gangli delle radici dorsali ai loro obiettivi in ​​periferia e alla corretta decisione del tessuto scheletrico e muscolare.

In questo lavoro, presentiamo un metodo per l'elaborazione di embrioni intero del giorno embrionale (E) E10 a E12 in 300-400 fette micrometro per la coltivazione in una cultura incubatore standard di tessuto, che può essere studiato per un massimo di due giorni dopo la preparazione fetta. Critico per il successo di questo approccio è l'uso di un vibratome per tagliare ogni agarosio-embedded embrione. Questa è seguita dalla coltivazione delle fette su inserti cultura membrana Millicell posti sopra un piccolo volume di media, risultando in una tecnica cultura interfaccia. Una cucciolata con una media di 7 embrioni produce regolarmente almeno 14 fette (2-3 fette della regione degli arti anteriori per embrione), che varia leggermente a causa dell'età degli embrioni e allo spessore delle fette. Circa l'80% delle fette colta spettacolo escrescenza del nervo, che può essere misurato througout i ² periodo coltura. Risultati rappresentativi utilizzando la linea del mouse tauGFP sono dimostrati.

Protocollo

Parte 1: Preparazione per affettare e coltura.

1. Preparare 10 cm piastre di coltura di tessuto con taglio medio (DMEM, 25% 1x HBSS, il 25% di siero fetale bovino, 0,5% di glucosio, 1 mM glutammina, 2,5 HEPES mM, pH 7,3) e di 3 cm Millicell-CM 0.4-micron cultura inserti in membrana e di tenere incubatore a 37 ° C e 5% di CO _2.
2. Riscaldare il 4% agarosio a basso punto di fusione in PBS nel forno a microonde e tenerlo a piastra di riscaldamento in modo che rimanga a circa 37 ° C.
3. Riempi i piatti batteriologico 10 cm di Petri con PBS (140 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na ₂ HPO _4, 1,8 KH ₂ PO ₄₎ e posto sul ghiaccio.
4. Imposta dispositivo di raffreddamento microtomo o garantire che vassoio di buffer e raffreddamento elementi sono memorizzati in freezer per pre-raffreddare.

Parte 2: embedding Embryo.

1. Sezionare embrioni dall'utero ed esaminarle con un microscopio invertito a fluorescenza per verificare l'espressione della GFP.
2. Embrioni posto su una rovesciata di 10 cm piastra di Petri e orientarli con strisce di carta Whatman per rimuovere eccessivo PBS.
3. Applicare agarosio sull'embrione per risolvere il problema in questa posizione. Lasciate solidificare agarosio.
4. Limitare l'area che circonda l'embrione da taglio con una lama di rasoio.
5. Ruotare l'embrione embedded sul suo lato.
6. Applicare ulteriori agarosio sul tessuto embrionale per assicurare che l'embrione sia completamente incorporato.
7. Preparare blocco agarosio con bordi puliti e montata sul mandrino vibratome utilizzando Loctite 406, una speciale colla simile a "Glue Krazy".

Parte 3: Sfogliatrici procedura.

1. Impostare il vassoio di buffer preraffreddato e l'elemento di raffreddamento.
2. Inserire il mandrino con il tessuto incollato e aggiungere 1x HBSS (Ca ^{2 +-Mg 2 +} senza HBSS, 10 mM tampone HEPES pH 7,3, 500 U / ml di penicillina / streptomicina) fino al coperto.
3. Inserire e fissare un predepurata (70% etanolo) lama microtomo.
4. Preparare 350-450 fette micron e trasferirli usando accorciato vetro pipette pasteur in piastre di coltura di tessuti conservati in ghiaccio.
5. Usando un paio di pinze, rimuovere con attenzione agarosio da ogni fetta e trasferimento Millicell membrane cultura. Circa 4 fette può essere coltivato su una membrana in un piatto di 10 cm di coltura tissutale pieno con 6 ml di terreno di coltura.
6. Incubare fette a 37 ° C e 5% di CO ₂ (Terreno di coltura: DMEM, 25% 1x HBSS, 25% siero fetale bovino, 0,5% di glucosio, 1MM glutammina, 2,5 HEPES mM, pH 7,3). Se si esegue time-lapse serie di immagini si deve mantenere costante il volume del mezzo. Nel caso di serie a tempo di imaging per un breve lasso di tempo è sufficiente lasciare il medium così com'è. Per le modifiche cultura periodi più lunghi, dopo 12-20 ore sono raccomandati.

Parte 4: escrescenza Imaging nervo spinale al microscopio.

1. Nervi spinali immagine mettendo una di 10 cm piastra di coltura dei tessuti, contenenti le membrane cultura Millicell con le fette, sotto un microscopio a fluorescenza in posizione verticale.
2. Etichetta l'orientamento delle membrane cultura Millicell sul palco microscopio per posizionare correttamente durante il punto successivo tempo di imaging.
3. Escrescenza del nervo spinale immagine usando 4x (apertura numerica [NA] 0,1), 10x (NA 0,3), o 20x (NA 0,5) obiettivi.

La figura 1 mostra una serie di immagini raffiguranti la conseguenza del nervo spinale durante 20 ore di cultura con obiettivi 4x e 10x.

Figura 1 serie Imaging di escrescenza nervo spinale in una fetta trasversale di un embrione omozigote tauGPF. * = Motoneuroni del midollo spinale ventrale, freccia = DRG. La dorsale (D)-ventrale (V) asse della fetta viene indicato. Scalebars: 200 micron.

Discussione

In un confronto di metodi per preparare culture fetta embrionale di metà gestazione embrioni di topo (E10 - E12), abbiamo osservato che una vibratome produce senza dubbio i risultati più attendibili rispetto sia alla viabilità complessiva della culture e la riproducibilità dei il nervo escrescenza modelli. Al contrario, fette preparati con un elicottero dei tessuti McIlwain ³ dimostrato di essere completamente non vitali. Inizialmente abbiamo utilizzato un metodo ghigliottina ^4, in cui un intera cu...

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
HBSS 10x	GIBCO, by Life Technologies	14180
Strumenti per dissezione	Fine Science Tools	vari
Agarosio L.M.P.	Invitrogen	15517-022
Carta Whatmann	Whatman, GE Healthcare	3030917
Pipette ritagliate e levigate al fuoco
DMEM	GIBCO, by Life Technologies	41966
FBS	GIBCO, by Life Technologies	10270-106
Pen Strep	GIBCO, by Life Technologies	15140
L-glutammina 100x	GIBCO, by Life Technologies	25030
Vibratomo	Microm International	HM 650 V
Microscopio a fluorescenza	Olympus Corporation	BX61WI
analySIS	Soft Imaging System
Inserti Millicell-CM	EMD Millipore	PICMORG 50
Piastre di coltura da 10 cm	Greiner Bio-One	633171
LOCTITE 406	Henkel Corp	142580
Lame da rasoio	Thermo Fisher Scientific, Inc.	nessuno
Microscopio stereoscopico	Nikon Instruments	SMZ800
HEPES	Carl Roth Gmbh	9105.2
Glucosio	Sigma-Aldrich	G7021
Obiettivo x4	Olympus Corporation	serie PL
Obiettivo x10	Olympus Corporation	serie UPLFL –PH
Filtro	Olympus Corporation	U-MNIBA2
Telecamera CCD	Soft Imaging System	SIS F-View II
Attrezzatura per camera riscaldata	Leica Microsystems	CTI-Controller 3700 e incubatore S #11531171