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Articolo metodologico

Whole-Cell Registrazione del calcio Release-Activated di calcio (CRAC) Correnti in Human Linfociti T

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DOI:

10.3791/2346

21 dicembre 2010

In questo articolo

Sommario

Forniamo un passo-passo protocollo per la cellula intera registrazione patch clamp di calcio Release-Activated di calcio (CRAC) correnti in cellule mononucleate del sangue periferico derivati ​​linfociti T umani.

Abstract

Nei linfociti T, l'esaurimento di Ca 2 + dal intracellulare Ca 2 + negozio porta all'attivazione di plasmalemmal Ca + 2 canali, chiamati Calcio Release-Activated di calcio (CRAC) canali. Canali CRAC un ruolo molto importante nella regolazione della proliferazione delle cellule T e l'espressione genica. Anormale funzione del canale CRAC nelle cellule T è stato collegato a gravi malattie autoimmuni immunodeficienza combinata e 1, 2. Studiare la funzione CRAC canale in cellule T possono scoprire nuovi meccanismi molecolari che regolano le normali risposte immunitarie e svelare le cause di malattie umane correlate. Le registrazioni elettrofisiologiche delle correnti di membrana forniscono la valutazione più accurata delle proprietà del canale funzionale e la loro regolamentazione. Valutazione elettrofisiologica CRAC correnti di canale in cellule Jurkat T, un essere umano linea di leucemia a cellule T, è stata eseguita più di 20 anni fa 3, tuttavia, le misurazioni CRAC corrente in normali cellule T umano rimane un compito impegnativo. Le difficoltà di registrazione dei canali CRAC correnti in normali cellule T sono aggravate dal fatto che i derivati ​​dal sangue i linfociti T sono molto più piccoli nelle dimensioni di cellule Jurkat T e, di conseguenza, l'intero endogeno delle cellule correnti CRAC sono molto bassi in ampiezza. Qui, diamo uno step-by-step procedura che abitualmente utilizzano per registrare il Ca 2 + o Na + correnti attraverso canali CRAC a riposo cellule T isolate dal sangue periferico di donatori sani. Il metodo qui descritto è stato adottato dalle procedure utilizzate per la registrazione delle correnti CRAC in cellule Jurkat T e cellule T attivate umane 4-8.

Protocollo

1. Preparazione di riposo linfociti T umani

  1. Utilizzando Cocktail RosetteSep umani arricchimento cellule T e Medium Density RosetteSep, purificare le cellule T da campioni di sangue umano secondo le istruzioni del produttore. La popolazione cellulare risultante dovrebbe contenere 95% di cellule T CD3 + riposo. Noi purificare i linfociti T umani da campioni di sangue periferico raccolti da volontari sani in conformità al protocollo approvato dal Consiglio di UC Davis interno Review.
  2. Dopo l'isolamento, risospendere riposo le cellule T ad una densità di 0,5 x 10 6 cellule / ml nel terreno di coltura contenente RPMI-1640 medium c....

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Discussione

Le indagini elettrofisiologiche delle correnti CRAC a riposo cellule T è un compito impegnativo perché la endogeno ampiezza CRAC corrente in queste cellule è di piccole dimensioni a causa delle dimensioni piccole cellule (il riposo umano diametro delle cellule T è nel range di 5-8 micron). Qui vi presentiamo uno step-by-step procedura affidabile per registrare le correnti CRAC a riposo linfociti T umane isolate da cellule mononucleari del sangue periferico. Questa tecnologia ci permette di studiare la fisiologia e l'.......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Siamo grati al Dipartimento di Fisiologia e membrana Biologia, Università di California Davis per averci fornito servizi e un ambiente eccellente per lo studio dei canali ionici.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Cocktail di arricchimento per linfociti T umani RosetteSepStem Cell Technologies15061
Mezzo di densità RosetteSepStem Cell Technologies15705
Mezzo RPMI 1640 con glutammina/HEPESFisher ScientificSH3025501
Serum fetale di vitelloOmega ScientificFB-01
GlutaMAX-I (soluzione 100X)Invitrogen35050
Soluzione vitaminica RPMI 1640 (100X)Sigma-Aldrich7256
Soluzione di aminoacidi 1640 (50X)Sigma-AldrichR7131
Piruvato di sodioSigma-AldrichS8636
β-Mercapt–etanoloSigma-AldrichM7522
Trifosfato di inositoloSigma-Aldrich19766
BAPTASigma-AldrichA4926
Cloridrato di poli-L-lisinaSigma-AldrichP2636
Cloruro di lantanioSigma-Aldrich262072
ThapsigarginaCalbiochem586005
Kit di elastomero siliconico Sylgard 184Dow Corning3097358-1004
Rivestimento protettivo per semiconduttori HIPEC R6101Dow Corning
Tavolo da laboratorio 63-500 Series ad alta prestazione per isolamento dalle vibrazioniTechnical Manufacturing Corp.63-540
Amplificatore per patch clamp EPC 10 con testaHEKA Instruments
MicromanipolatoreSutter Instrument Co.MP-285
Microscopio invertito Olympus 1X71 con obiettivo a immersione in olio 40xOlympus Corporation1X71
Computer WindowsDell
Software PulseHEKA Instruments
Software di analisi e grafica scientifica OriginOriginLab
Tiratore di pipette per patchSutter Instrument Co.P-97
Vetro borosilicato con filamento (diametro esterno: 1,5 mm e diametro interno: 1,10 mm)Sutter Instrument Co.BF150-110-7.5
Microfornace Narashige’sTritech Research, Inc.MF-830
Anelli O in siliconeMcMaster-Carr111 S70
Coverslip da 25 mmFisher Scientific12-545-102 25 mm 25CIR.-1

Riferimenti

  1. Parekh, A. B. Store-operated CRAC channels: function in health and disease. Nat Rev Drug Discov. 9, 399-410 (2010).
  2. Feske, S. CRAC channelopathies. Pflugers Arch. , (2010).
  3. Lewis, R. S., Cahalan,

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Ristampe e permessi

Tag

Canali CRACValutazione ElettrofisiologicaTecnica del Patch ClampConfigurazione Voltage ClampCorrenti di CalcioCorrenti di SodioIsolamento delle Cellule T