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Articolo metodologico

Ottenimento di amiloidi citotossici a seguito di infezione batterica delle cellule endoteliali polmonari di ratto

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⸱

26 settembre 2025

In questo articolo

Abstract

Fonte: Balczon, R., et al. Metodi per rilevare gli amiloidi citotossici a seguito di infezione delle cellule endoteliali polmonari da parte di Pseudomonas aeruginosa. J. Vis. Exp. (2018)

Questo video mostra la procedura per generare surnatante citotossico da cellule endoteliali polmonari in seguito all'infezione da Pseudomonas aeruginosa. Delinea come le proteine effettrici batteriche interrompono la struttura della cellula ospite e inducono il rilascio di oligomeri amiloidi citotossici nel surnatante.

Protocollo

  1. Generazione di surnatanti citotossici:

Le colture primarie di cellule endoteliali microvascolari polmonari di ratto (PMVEC) sono state ottenute dalla Cell Culture Core Facility presso il Center for Lung Biology dell'Università del Sud Alabama.

  1. Per la generazione di surnatanti citotossici, impiattare 2 x 106 cellule in singole piastre da 150 cm e far crescere per 3 - 4 giorni fino a raggiungere la confluenza. Usa due piastre per esperimento.
  2. Per produrre surnatante, lavare una delle due piastre da 150 cm di PMVEC con soluzione salina tamponata con fosfato, tripsinizzare e quindi contare le cellule. Lavare l'altro piatto di PMVEC con la soluzione salina bilanciata di Hank (HBSS) e quindi infettare con entrambi i ceppi di Pseudomonas aeruginosa a una molteplicità di infezione (MOI) di 20:1. Ciò si ottiene come segue:
    1. Per P. aeruginosa, OD540 0,25 = 2 x 108 CFU/mL. Per preparare questa diluizione, aggiungere 1 mL di HBSS a una cuvetta monouso da 1 mL. Raschiare una quantità sufficiente di batteri dalla piastra fino a raggiungere un OD540 di 0,25 quando misurato con uno spettrofotometro. Il prossimo passo fornirà un calcolo della quantità di batteri necessari.
    2. Una volta determinato il numero di PMVEC nella piastra di coltura, determinare il numero appropriato di batteri da aggiungere alla seconda piastra di coltura non tripsinizzata contenente le PMVEC. Ad esempio, se si determina che la piastra di coltura di PMVEC contiene 1,3 x 107 cellule, preparare 1,3 x 107 cellule x 20 batteri/cellula x 1 mL/2 x 108 CFU = 1,3 mL di batteri.
    3. Diluire 1,3 mL di batteri in HBSS fino a un volume finale di 20 mL, in modo che l'intera superficie di una piastra di 150 cm possa essere ricoperta di liquido, quindi aggiungere i batteri diluiti alla piastra di PMVEC.
    4. Incubare le PMVEC inoculate con i batteri a 37 °C in un incubatore al 5% di CO2 per 4 - 5 ore, fino a quando non si possono vedere le lacune formarsi nel monostrato cellulare quando la piastra viene osservata al microscopio (vedere la Figura 1 per il corretto livello di formazione delle lacune).
    5. Raccogliere il surnatante, quindi centrifugare per 10 minuti a 2.000 x g in una centrifuga da tavolo per rimuovere i detriti cellulari.
      Nota: Per questa fase è possibile utilizzare qualsiasi centrifuga da tavolo in grado di generare una forza g sufficiente per pellettare celle non lessete e frammenti di cellule di grandi dimensioni.
    6. Versare il surnatante in una siringa con un filtro da 0,2 μm attaccato all'estremità, quindi passare il surnatante attraverso il filtro per rimuovere i batteri.
    7. Utilizzare un'aliquota del surnatante sterile per testare la citotossicità e congelare il resto del surnatante a -80 °C per un uso futuro.

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Risultati

figure-results-1

Figura 1. Effetti dell'inoculazione di P. aeruginosa sulla morfologia del PMVEC. Un monostrato confluente di PMVEC prima (A) e quattro ore dopo l'aggiunta (B) del ceppo PA103 di P. aeruginosa. Le lacune possono essere chiaramente ...

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
S.b.B.Gibco14025-092 
PBSGibco10010-023 
Filtri per siringhe da 0,22 micronMilliporeSLGP033RS 
DMEMGibco11965-092 
Contacellule automatizzato CountessInvitrogenCodice C10277 
Concentratori di microcetrifugazione - cut-off da 10.000 MWMilliporeUFC801008 
Ceppi PA103 e ΔPcrV  Questi ceppi di P. aeruginosa sono stati ottenuti dal Dr. Dara Frank, University of Wisconsin Medical College, Milwaukee, WI
AgarPescatoreBP1423-500 
Siero fetale bovinoCloneSH30898.03IH 
PenStrepGibco15070063 

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