1. Preparato di batteri bioluminescenti EHEC ( Escherichia coli enteroemorragico) per l'inoculazione orale
NOTA: Il diagramma di flusso della sequenza temporale delle procedure sperimentali per la preparazione EHEC e la sonda sonda orale nel topo è presentato nella Figura 1 per facilitare la preparazione sperimentale.
- Stria dei batteri E. coli O157:H7 EDL933 che ospitano il plasmide luciferasi su una piastra di agar LB (Luria-Bertani) con 50 μg/mL di kanamicina da -80 °C. Far crescere i batteri per 16 - 18 ore a 37 °C.
- Prelevare una singola colonia dalla piastra notturna e coltivare in un terreno da 3 mL LB con 50 μg/mL di kanamicina per 16 - 18 ore in un incubatore a 37 °C a 220 giri/min.
- Subcoltura dei batteri (diluizione 1:100) in kanamicina (50 μg/mL) contenente brodo LB per 2,5 - 3 ore in un incubatore a 37 °C a 200 giri/min. (Ad esempio, aggiungere 2 mL di batteri coltivati durante la notte a 200 mL di terreno LB con kanamicina (50 μg/mL) integrata.)
- Incubare i batteri per 2,5 - 3 ore e misurare il valore di densità ottica (OD) a 600 nm (OD600) fino a quando il valore è compreso tra 0,9 e 1. Il numero di cellule batteriche ha una densità di circa10-8 unità formanti colonie (CFU)/mL.
- Centrifugare i batteri ricoltivati a 8.000 x g per 30 min, 4 °C.
- Scartare il surnatante senza agitare il pellet batterico e lavare il pellet con 100 mL di soluzione fisiologica sterile allo 0,9% agitando delicatamente.
- Ripetere i passaggi 1.5 e 1.6 una volta.
- Dopo il lavaggio, centrifugare la coltura batterica a 8.000 x g per 30 minuti, 4 °C, ed eliminare delicatamente il surnatante.
- Condensare il pellet 100 volte con soluzione fisiologica sterile allo 0,9%. Ad esempio, se vengono centrifugati 200 mL di batteri, aggiungere 2 mL di soluzione fisiologica normale per sospendere il pellet.
- Confermare la CFU dei batteri (dovrebbe essere di circa10-9 UFC/100 μL dopo la condensazione in soluzione fisiologica normale) placcando i batteri concentrati attraverso una diluizione seriale di 10 volte.