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1. Preparazione delle cellule batteriche e tamponi di inoculazione
- Misurare la densità ottica, OD600, di ciascuna sottocoltura e diluire Pseudomonas aeruginosa aOD 600 = 0,03 e Staphylococcus aureus aOD 600 = 0,10 in M8T (Minimum Medium 8 + triptone) preriscaldato a 37 °C. Mescolare P. aeruginosa e S. aureus in un rapporto 1:1 e vortex.
NOTA: Se i ceppi richiedono antibiotici, possono essere aggiunti alla notte e alla sottocoltura, ma non devono essere aggiunti quando si mescolano le specie per l'imaging se influenzano le altre specie nella cocoltura. La stabilità del plasmide e gli effetti degli antibiotici su tutte le specie nella cocoltura dovranno essere determinati per ogni organismo/plasmide utilizzato. - Pipettare uniformemente 1 μL di cocoltura sul fondo di un vetrino coprioggetti sterile e preriscaldato da 35 mm.
- Rimuovere il ritaglio in silicone dallo stampo utilizzando una pinzetta sterile.
- Rimuovere il tampone dal piatto utilizzando spatole sterili.
- Infilare la spatola leggermente piegata sotto il bordo del tampone tenendo lo stampo capovolto per farlo cadere su un coperchio sterile della piastra di Petri.
NOTA: Non forzare l'estrazione del tampone, altrimenti si strapperà. Tieni traccia di quale lato del pad è il fondo.
- Trasferire il tampone nel piatto con le cellule batteriche, con il lato inferiore rivolto verso il basso, facendo scorrere la spatola angolata a 90° sotto il tampone e posizionandola sopra il vetrino coprioggetti inoculato. Utilizzare la spatola angolata a 90° per fare in modo che il tampone sia a filo contro il vetrino coprioggetti e spingere delicatamente fuori eventuali bolle d'aria.
- Rimuovere l'umidità in eccesso dalle salviettine umidificate e posizionarle attorno al bordo del piatto, assicurandosi che non tocchino il pad. Il campione è ora pronto per l'imaging.