ATTENZIONE: Utilizzare guanti in lattice, occhiali protettivi e un camice da laboratorio per eseguire l'esperimento. Ogni volta che si utilizza la cabina di biosicurezza, accendere la ventola dell'armadio e tenere la porta dell'armadio semichiusa.
1. Preparazione delle perle di vetro
- Mettere 100 perle di vetro di 3 mm di diametro in un flacone da laboratorio da 100 ml, quindi tappare ermeticamente.
- Autoclavare il contenuto a 120 °C per 10 min.
- Lasciare raffreddare il flacone a temperatura ambiente, quindi riporlo nella cabina di biosicurezza.
2. Preparazione del brodo di lisogenesi (LB)
- Sciogliere 8 g di polvere di brodo LB-Lennox in un flacone da laboratorio da 500 ml con 400 ml di acqua.
- Mescolare il contenuto con una barra di agitazione magnetica in PTFE (politetrafluoroetilene) per 20 minuti, quindi tapparlo ermeticamente.
- Autoclavare il contenuto a 120 °C per 10 min.
- Lasciare raffreddare la soluzione a temperatura ambiente e posizionarla nella cabina di biosicurezza.
- Utilizzando una pipetta, aliquotare il brodo in otto provette da centrifuga da 15 ml (12,5 ml ciascuna) nella camera di biosicurezza.
- Aliquotare il brodo rimanente in tre flaconi da laboratorio da 100 ml (100 ml ciascuno) nella camera di biosicurezza. Tappare bene i tre flaconi e conservarli nella cabina di biosicurezza.
3. Coltura dell'alga Shewanella
- Utilizzare il ceppo crioconservato surgelato.
- Nella cappa di biosicurezza, prelevare 1 mL di materiale congelato dalla provetta congelata con una spatola di acciaio inossidabile e metterlo in una provetta da centrifuga preparata al punto 3.5.
- Incubare le colture per 24 ore in un'incubatrice a 37 °C.
4. Preparazione delle piastre di Petri LB-Lennox (brodo con agar)
- Sciogliere due compresse di LB-Lennox (brodo con agar) in un flacone da laboratorio da 100 ml con 100 ml di acqua.
- Mescolare il contenuto con un'ancoretta magnetica in PTFE per 20 minuti e poi tapparlo ermeticamente.
- Autoclavare il contenuto a 120 °C per 10 min.
- Nella cabina di biosicurezza, aliquotare a mano 100 mL di soluzione in 4 piastre di Petri, assicurandosi che ciascuna riceva ~25 mL. Lasciare raffreddare la soluzione a temperatura ambiente.
5. Preparazione di batteri monoclonali
- Nella cabina di biosicurezza, etichettare i tre flaconi preparati rispettivamente nei passaggi 2.6, #1, #2 e #3.
- Pipettare 0,1 mL della sospensione batterica risultante nella fase 3.3 nel flacone #1. Tappare la bottiglia e farla oscillare a mano per 1 minuto per ottenere una soluzione omogenea.
- Pipettare 0,1 mL del liquido batterico risultante nel passaggio 5.2 nel flacone #2. Tappare la bottiglia e farla oscillare a mano per 1 minuto per ottenere una soluzione omogenea.
- Pipettare 0,1 mL del liquido batterico risultante nel passaggio 5.3 nel flacone #3. Tappare il flacone e agitarlo a mano per 1 minuto per ottenere una soluzione omogenea.
- Pipettare il liquido nel flacone #3 nelle 4 piastre di Petri preparate al punto 4.4, utilizzando un volume di 0,02 ml ciascuna.
- Mettere le perle di vetro preparate al punto 1.3 nelle 4 piastre di Petri utilizzate, 4 perle in ogni piatto.
- Chiudere i coperchi delle piastre di Petri e scuoterle a mano per 1 minuto.
- Capovolgere le piastre di Petri e incubare in un'incubatrice a 37 °C per 24 ore.
6. Moltiplicazione dei batteri monoclonali
- Recupera 7 tubi preparati al punto 2.5.
- Prelevare i batteri monoclonali risultanti dalle 4 piastre di Petri preparate al punto 5.8 con una spatola in acciaio inossidabile e metterli in 7 provette separatamente.
- Lasciare le 7 provette in un'incubatrice a 37 °C per 24 ore.
- Scegli quello con la maggiore dispersione della luce utilizzando il metodo colorimetrico visivo.
7. Preparazione del brodo LB-Lennox con glucosio e sale
- Metti 10 g di brodo LB-Lennox, 10 g di NaCl e 10 g di glucosio in un flacone da laboratorio da 500 ml. Aggiungere acqua fino a quando il volume raggiunge i 450 ml.
- Mescolare il contenuto con un'ancoretta magnetica in PTFE per 20 minuti.
- Autoclavare il contenuto a 120 °C per 10 min.
8. Preparazione del tungstato di sodio
- Mettere 16,5 g di Sodium Tungstate Na2WO 4.2H 2O in un flacone da laboratorio da 100 ml con una spatola in acciaio inossidabile. Aggiungere acqua fino a quando il volume raggiunge i 50 ml.
- Mescolare il contenuto con un'ancoretta magnetica in PTFE per 20 minuti.
- Autoclavare il contenuto a 120 °C per 10 min.
- Nella cabina di biosicurezza, ottenere il filtrato attraverso un filtro sottovuoto in fibra di vetro con pori di 1 μm.
9. Preparazione di LB con glucosio, sale e tungstato di sodio
- Nella cabina di biosicurezza, versare a mano il filtrato acquisito al punto 8.4 nella soluzione con glucosio e sale preparata al punto 7.3.
- Nella camera di biosicurezza, aliquotare con una pipetta i 500 mL della soluzione risultante al passaggio 9.1 in 10 provette da centrifuga da 50 mL.
10. Coltura dei batteri
- Nella cabina di biosicurezza, prelevare il liquido preparato al punto 6.4 e aliquotarlo con una pipetta nelle 10 provette preparate al punto 9.2, ciascuna delle quali riceve 0,05 ml.
- Incubare le 10 provette in un'incubatrice a 37 °C per 120 ore.
11. Raccolta di minerali BME
- Ultrasuoni a ciascuno dei 10 tubi al passo 9.2 a 20 KHz con 150 W per 1 ora.
- Centrifugare le provette a 2,025 x g per 1 ora.
- Rimuovere il liquido limpido nelle provette con una pipetta, aggiungere acqua, quindi ripetere i passaggi 11.1 e 11.2 ancora una volta.
- Rimuovere il liquido limpido nelle provette con una pipetta, aggiungere l'alcol e quindi ecosuonarle a 20 KHz con 150 W per 1 ora.
- Centrifugare le provette a 2,025 x g per 1 ora.
- Ripetere i passaggi 11.4 e 11.5 ancora una volta
- Raccogliere i minerali BME rimuovendo il liquido limpido nelle provette con una pipetta; Successivamente, tappare immediatamente le provette senza eseguire alcun processo di asciugatura.