Articolo metodologico

Sincronizzazione delle colture cianobatteriche e compattazione del DNA guidate da cicli luce-buio

30 ottobre 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Murata, K. et. al., Visualizzazione della compattazione del DNA nei cianobatteri mediante tomografia crioelettronica ad alta tensione. J. Vis. Exp. (2018)

Questo video mostra la coltivazione sincrona di cianobatteri in cicli luce-buio per studiare la compattazione del DNA regolata circadiana. La microscopia a fluorescenza rivela il DNA condensato in punti temporali definiti, confermando l'allineamento del ciclo cellulare in tutta la popolazione.

Protocollo

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1. Coltura sincrona di cianobatteri

  1. Coltura di Synechococcus elongatus PCC 7942 su una piastra sterilizzata di terreno blu-verde 11 (BG 11) (in una capsula di Petri di plastica sterile da 9 cm) contenente l'1,5% (p/v) di agar e lo 0,3% (p/v) di tiosolfato di sodio.
  2. Porre le piastre in una camera di crescita a 23 °C con un'intensità luminosa di 50 μE/m2/s e sottoporle a cicli di 12 ore di luce/12 ore di buio.
  3. Trasferire le cellule su piastre di agar BG11 fresche una volta alla settimana.
    NOTA: Le colture sull'agar appariranno come bande verdi di cellule in proliferazione attiva dopo una settimana in queste condizioni di coltura.
  4. Prelevare ciuffi verdi di cellule con un anello di filo sterilizzato a fiamma e striare le cellule su una nuova piastra di agar BG11. Fallo su una panchina pulita.

2. Monitoraggio mediante microscopia a fluorescenza

  1. Utilizzare le cellule coltivate sulla piastra di agar per 6 giorni per osservare la compattazione del DNA. Raccogliere le cellule dalla piastra al termine del periodo di luce versando 1 mL di soluzione di saccarosio 0,2 M sulle cellule. Ripetere versando la soluzione sulle cellule in modo che la maggior parte delle cellule venga raccolta. Trasferire la soluzione di cellule sospese in una microprovetta per la colorazione del DNA.
  2. Aggiungere la soluzione di colorante per la colorazione del DNA (ad es. Hoechst 33342) a 500 μL della soluzione cellulare sospesa in una microprovetta fino a una concentrazione finale di 1 μg/mL. Quindi, tenere il tubo al buio per 10 minuti.
  3. Centrifugare per 1 minuto a 2.000 x g per sedimentare le cellule. Scartare il surnatante e aggiungere 10 μl di soluzione di saccarosio 0,2 M per ottenere una sospensione cellulare densa.
  4. Trasferire 1 μl della soluzione contenente le cellule colorate in un vetrino, applicare un vetrino coprioggetti e osservare con un microscopio a fluorescenza dotato di filtro ultravioletto (UV) utilizzando una lente dell'obiettivo con un ingrandimento di 100X e olio da immersione.
  5. Verificare che la compattazione del DNA sia osservata a questo punto nella maggior parte delle cellule.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Soluzione Hoechst 33342Dojindo346-079511 mg/mL in acqua
Agar in polvere (per colture vegetali)Wako016-11875 
Acido boricoWako027-02192 
Cloruro di manganese tetraidratoWako139-00722 
Solfato di zinco eptaidratoWako264-00405 
Molibdato di sodioWako196-02472 
Solfato di rame pentaidratoWako039-04412 
Nitrato di cobalto esaidratoWako031-03752 
Nitrato di sodioWako191-02542 
Solfato di magnesio eptaidratoWako131-00405 
Cloruro di calcio disidratatoWako031-00435 
Acido citricoWako036-05522 
EDTA-2NaDojindo343-01861 
SodaWako197-01581 
Fosfato di potassio bibasicoWako164-04295 
TES (Buffer del buono)Dojindo344-02653 
Citrato ferrico di ammonioWako092-00802 
Tiosolfato di sodio pentaidratoWako197-03585 
Microscopio a fluorescenzaNikonECLISSI 50i 

Ristampe e permessi

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Tag

Microscopia a fluorescenzaregolazione circadianasincronizzazione cellularesupplementazione con tiosolfatocolorazione Hoechstsoluzione di saccarosioobiettivo a immersione in olio

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