1. Preparazione dell'attrezzatura
- Procurarsi un barattolo chemostat (150-250 ml) o una fiaschetta Erlenmeyer (250 ml) contenente una presa di ingresso e una porta di uscita. Collegare le porte con tubi di silicio, permettendo portate di 10-100 ml/ora. Opzionalmente, utilizza una bocchetta d'aria, una presa di uscita aria e prese di ingresso e uscita dell'acqua a temperatura controllata.
- Procurati un dispositivo adatto al barattolo chemostato che permetta agitazione e controllo della temperatura (oppure usa un incubatore rotativo a scuotere).
- Procurarsi due pompe peristaltiche per fornire il mezzo fresco e raccogliere la coltura.
- Procurarsi un barattolo serbatoio (10-20 L) contenente una porta di uscita media e una presa di ingresso aria.
- Ottenere tubi di silicio adatti al tasso di diluizione (cioè, diametro diametrale 0,8 mm, intervallo di flusso 0,06-36 ml/min; L/S 13 tubi).
2. Preparazione e sterilizzazione del mezzo
- Medium iniziale
- Sciogliere 0,3 g di glucosio, 0,08 g di cloruro di ammonio (NH4Cl), 0,05 g di cloruro di sodio (NaCl), 0,75 g di fosfato di idrogeno disodio diidrato (Na2HPO4,2H 2O) e 0,3 g di fosfato di idrogeno disodio (KH2PO4) in 90 mL di acqua distillata (D.W.) in un barattolo chemostato.
- Sigilla il barattolo del chemostat insieme ai tubi usando delle pinze. Non sigillare la bocchetta dell'aria.
- Sterilizza il barattolo del chemostat in un'autoclave a 121 °C per 15 minuti. Dopo la sterilizzazione, conserva il barattolo del chemostat a temperatura ambiente.
- Sciogliere 0,02 g di solfato di magnesio eptaidrato (MgSO4,7H 2O), 0,01 g di cloruro di calcio (CaCl2) e 0,1 mg di tiamina in 10 mL di d.w. (soluzione A).
- Soluzione filtrante A utilizzando una siringa e un filtro per siringa pre-sterilizzato (un filtro per pori da 0,45 μm).
- Aggiungi il filtrato A della soluzione al barattolo del chemostrato.
- Mezzo di sollecitazione
- Dissolvere 30 g di glucosio, 8 g di NH4Cl, 5 g di NaCl, 75 g diNa 2HPO4·2H2O, 30 g diKH 2PO4 e 300 g di succinato disodio esaidrato (Na2·succinate·6H 2O; lo stressore utilizzato in questo esperimento) in 9,9 L D.W. in un barattolo di riserva.
- Sigilla il barattolo del serbatoio insieme al tubo usando delle morsette. Non sigillare la bocchetta dell'aria.
- Sterilizza il barattolo serbatoio in un'autoclave a 121 °C per 15 minuti. Dopo la sterilizzazione, conserva il barattolo a temperatura ambiente.
- Sciogliere 2 g di MgSO4,7H 2O, 1 g diCaCl 2 e 10 mg di tiamina in 100 ml di D.W. (soluzione A).
- Soluzione filtrante A con una siringa e un filtro per siringa pre-sterilizzato (un filtro per pori da 0,45 μm).
- Aggiungi il filtrato A della soluzione al barattolo del serbatoio.
- Collega asepticamente il tubo di silicio sterilizzato al barattolo del serbatoio e collega le pompe peristaltiche.
- Medio ad alta sollecitazione
- Prepara il mezzo come nella sezione 2.2, ma con una concentrazione maggiore di fattore di stress (cioè 3-5 g/L più alta nell'adattamento della succinata).
Nota: Questo protocollo serve per l'adattamento a uno stress che può essere trasmesso tramite il mezzo. Nel caso di fattori di stress fisici come temperatura, agitazione o illuminazione, la coltivazione dovrebbe essere progettata di conseguenza.
3. Coltivazione iniziale
- Inoculare una singola colonia di Escherichia coli di tipo selvatico (E. coli) in un provetto da 15 ml contenente 4 ml di mezzo iniziale.
- Incubare la provetta in un incubatore agitante per 12 ore a 37 °C e 220 giri/min.
- Trasferire asepticamente 1 ml di precoltura nel barattolo del chemostato.
- Incubare il barattolo del chemostatico, fornendo aerazione (aria 50 ml/min) e agitazione (200 giri/min), a 37 °C per 6 ore.
4. Adattamento allo stress
- Collega asepticamente l'estremità del tubo di silicio dalle pompe al barattolo del chemostrato.
- Avvia la pompa di uscita (10 ml/ora o più) e raccogli la coltura. Nota: La coltura dovrebbe essere in fase esponenziale, tipicamente 4-8 ore dopo la coltivazione iniziale.
- Controlla la densità ottica (600 nm) della coltura dal tubo di uscita.
- Avvia la pompa di ingresso (10 ml/ora, corrispondente a una velocità di diluizione di 0,1 ora-1).
- Controlla la densità ottica della coltura a 600 nm dal tubo di uscita ogni 24 ore.
- Usa il chemostat per 96 ore (ricambio di 9,6 volte) o più. Se la densità ottica è stabile, si scambia il serbatoio contenente il mezzo ad alta sollecitazione. Se la densità ottica è inferiore a 0,2, fermare la pompa di ingresso per 6 ore. Riavvia la pompa di ingresso e controlla che la densità ottica sia superiore a 0,2.
- Aumentare gradualmente la concentrazione dello stressore passando a un serbatoio con una concentrazione di stressore più elevata.
- Prelevare campioni della coltura adattata ogni volta che raggiunge un traguardo (ad esempio, un ceppo adattato a uno stress succinato di 100 g/L) e conservarli per ulteriori analisi genomiche.
- Per la conservazione del campione, miscela il campione di coltura (0,5 ml) con una soluzione sterilizzata all'80% di glicerolo (0,5 ml) e conservalo a -80 °C. Nota: Se il microrganismo acquisisce la capacità di degradare lo stressore durante il processo di ALE, la concentrazione dello stressore nel barattolo di fermentazione non è la stessa di quella nel serbatoio fresco.
5. Isolamento a singola colonia della deformazione adattata allo stress
- Prepara un medio in lamiera di agar (1,6% agar) contenente lo stesso stressore e alla stessa concentrazione del mezzo.
- Impiattare la coltura di uscita (0,1 ml) dal chemostato e incubare a 37 °C per 16 ore.
- Prendere singole colonie dalla piastra usando uno stuzzicadenti sterile e inocularle in provette da 15 ml contenenti lo stesso fattore di stress e alla stessa concentrazione media del chemostato, e incubare per 6 ore.
- Trasferire 1 ml di brodo di coltura in una fiaschetta Erlenmeyer da 250 ml contenente 50 ml di substrato. Raccogli 0,5 ml del brodo di coltura ogni 1 ora e misura la dose a 600 nm. Confrontare il tasso di crescita della deformazione adattata a quello della deformazione di tipo selvatico dato lo stressore.