Tutte le procedure che coinvolgono modelli animali sono state esaminate dal comitato locale istituzionale per la cura degli animali e dal comitato veterinario JoVE.
1. Protocollo modello CAUTI (Infezione delle vie urinarie associata al catetere), Preparazione dell'ago del catetere per il modello CAUTI
- Rimuovi il tappo dell'ago da 30 G. Taglia un pezzo di tubo in PE10 da 7 mm (polietilene 10) e un pezzo di tubo in silicone da 5 mm come RenaSIL. Infila l'ago con tubi in PE10 finché il tubo non tocca la base dell'ago.
- Poi alimenta il pezzo da 5 mm sull'ago contenente PE10. Sterilizza gli insiemi di aghi con i raghi UV durante la notte.
NOTA: Quando si carica il tubo in silicone, lascia circa 1 mm del tubo che si estenda oltre la punta dell'ago.
2. Preparazione dell'inoculo batterico E. faecalis OG1RF
- Prepara l'inoculo OG1RF a partire da 48 ore prima del giorno dell'inoculazione. Striscia OG1RF su una piastra BHI (brain heart infusion) da un calcio congelato.
- Scegli una colonia e inoculala in 10 ml di BHI e coltivala staticamente per 18 ore a 37 °C. Centrifuga la coltura e lava la pellet (3 volte) in volumi da 1 ml di PBS sterile 1x.
- Risospendi la pellet batterica in 1x PBS (soluzione salina tamponata con fosfato). Misura la densità ottica batterica e regola la concentrazione alla dimensione desiderata dell'inoculo. La concentrazione standard dell'inoculo utilizzato è10,7; Tuttavia, questo può variare a causa del design dello studio
3. Impianto di catetere
- Pulisci la postazione con etanolo al 70% e copri l'area con un copricapo assorbente (oppure usa una cappa a flusso sterile).
- Attaccare un ago del catetere a una siringa vuota da 1 ml (TB o tubercina). Taglia un pezzo quadrato di parafilm da 1 pollice e metti una punta di lubrificante chirurgico (circa della dimensione di una moneta da dieci centesimi) sopra.
NOTA: Due aghi diversi vengono utilizzati per la deposizione del catetere e per l'inoculo, al fine di minimizzare l'inoculazione accidentale dovuta alla manipolazione meccanica necessaria per l'impianto del catetere. Questo consente anche la comodità di preparare meno aghi da inoculazione. - Anestetizzare i topi C57BL/6 mettendoli in un barattolo di vetro da 32 once contenente una pallina infusa per tè con palline di cotone imbevute in 3 ml di isoflurano o in una camera vaporizzatore (seguendo il protocollo del produttore) fino a svenire ma respirare normalmente (1 respiro al secondo).
- Poi metti il topo sulla schiena su un tovagliolo di carta e allarga le zampe. Copri il naso del topo con un cono nasale o un tubo conico da 50 ml con palline di cotone contenenti una piccola quantità (circa 1-2 ml) di isoflurano.
ATTENZIONE: L'isoflurano è un anestetico inalatorio. Da utilizzare in un'area ben ventilata e ridurre al minimo l'inalazione da parte del ricercatore. - Palpa delicatamente la vescica per indurre la minzione e assicurarti di evacuare la vescica. Pulisci l'area periuretrale con una salvietta al 100% etanolo.
- Disinfettare l'area periuretrale con una soluzione al 10% di povidone-iodio utilizzando un applicatore a punta di cotone. Tampona l'ago/siringa di inoculazione, punta prima, nel lubrificante chirurgico.
NOTA: Il povidone-iodio viene utilizzato per l'impianto del catetere, che è una soluzione asettica più potente rispetto all'alcol. L'impianto del catetere richiede una maggiore manipolazione meccanica per inserire il catetere e quindi ha un potenziale maggiore di contaminazione. - Inserisci il catetere nell'apertura uretrale. Una volta dentro, usa una pinzetta per spingere il pezzo lungo 7 mm PE10 verso la vescica, spingendo così il piccolo catetere (silicone da 5 mm) e depositandolo nella vescica. Rimuovi immediatamente l'ago, con il tubo da 7 mm ancora attaccato.