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Articolo metodologico

Stabilimento dell'infezione batterica nelle larve di Drosophila

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31 marzo 2026

In questo articolo

Abstract

Fonte: Hiroyasu, A., D et al., Estrazione di emociti dalle larve di Drosophila melanogaster per infezioni e analisi microbiche. J. Vis. Esp. (2018)

Questo video mostra la procedura per stabilire un'infezione batterica nelle larve di Drosophila inserendole in una goccia batterica e pungendola con un ago di tungsteno. Le larve vengono poi incubate su una piastra agar scanalata e ricca di nutrienti per studiare le interazioni ospite-patogeno.

Protocollo

1. Infezione in vivo

  1. Riscalda il piatto di agar di succo di frutta Drosophila a temperatura ambiente per 15 minuti.
    1. Aggiungi 30 g di agar a 700 mL d'acqua e autoclava per 40 minuti.
    2. Sciogliere 0,5 g di parabene metilico in 10 mL di etanolo assoluto.
    3. Aggiungi la soluzione di paraben di metile a 300 mL di concentrato di succo di frutta.
    4. Mescola rapidamente il concentrato di succo nella soluzione di agar autoclavato e distribuisci 5 mL in piastre di Petri da 10 × 35 mm.
    5. Dopo che i piatti si sono raffreddati per 15 minuti, conservali a 4 °C.
  2. Prepara le larve di terzo stadio.
  3. Metti la pasta di lievito su una piastra di agaro. Effettuare un taglio sottile nella piastra di agar dove le larve possono migrare per evitare l'asciugatura (Figura 1A). Assemblare un ago di tungsteno appuntito da 0,001 mm con pinze di fissaggio usando pellicola di paraffina (Figura 1B, C).
  4. Pipetta 50 μL di Coxiella burnetii espressora ad alto titolo mCherry (5,95×109 GE/mL) sul film di paraffina sotto il microscopio stereo e posiziona le larve nella piscina di batteri.
  5. Posizionare le larve nella piscina di batteri, pungerle con un ago di tungsteno (Figura 3D) e trasferirle su una piastra di agar (Figura 1E).
  6. Trasferire il residuo del mezzo patogeno sulla piastra di agar e sigillare la lastra con una pellicola di paraffina.
  7. Mantenere le larve sul piatto nell'aria umida fino al tempo desiderato dopo l'infezione (Figura 1F). In questo esperimento, larve infette da C. burnetii sono presenti sulla piastra per 24 ore.

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Risultati

24519_Figure1.jpg

Figura 1: Infezione in vivo. A) Piastre di succo di frutta di Drosophila e pasta di lievito vengono utilizzate per l'incubazione delle larve infette in vivo . I tagli vengono effettuati nella piastra di agar per...

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Microscopio stereoAmscopeSM-1BSZ-L6W 
PinzaVWR82027-402 
Coxiella burnetii - mCherryDottor Heinzen, R.  
Piatti di succo di frutta di Drosophila Protocolli di Cold Spring Harbor http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/9/pdb.rec11113.full
AgarBioreagenti FisherBP1423-500 
Parabene metilicoAmresco0572-500G 
Etanolo assolutoBioreagenti FisherBP2818-500 
Concentrato congelato di succo d'uva 100% Welch's, 340 mLAmazonB0025UJVGM 
Piastre di Petri, 10 x 35 mmFisher Scientific08-757-100A 
Lievito, fornificazioni secche attiveMP Biomedici210140001Aggiungi 2 parti d'acqua a 1 parte di lievito (v/v)
Ago di tungstenoStrumenti scientifici di qualità10130-20 
Tenere le pinzeVWRHS8313 
Listeria monocytogenesATCCdeformazione: 10403SIl ceppo 10403S di Listeria monocytogenes (Bishop e Hinrichs, 1987) è stato coltivato in brodo Difco Brain-heart infusion (BHI) (BD Biosciences) contenente 50 μg/ml di streptomicina a 30 °C.

Tag

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