Articolo metodologico

Trasferimento genico mediato da AAV per la visualizzazione della compromissione dell'integrità della membrana retinica

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31 agosto 2026

In questo articolo

Abstract

Fonte: Vacca, O., et al. Utilizzo del virus adeno-associato come strumento per lo studio delle barriere retiniche in condizioni patologiche. J. Vis. Exp. (2015).

Questo video illustra il metodo di somministrazione genica mediata da AAV in una retina di topo transgenico, seguito da dissezione del tessuto e colorazione per valutare l'integrità della membrana limitante interna.

Protocollo

Tutte le procedure che coinvolgono campioni animali sono state esaminate e approvate dal comitato etico per gli animali competente.

1. Immunoistochimica

  1. Per preparati retinici in montaggio piatto (Figura 1), fissare gli occhi enucleati in paraformaldeide al 4% per 15 minuti per facilitare la dissezione.
    1. In 15-30 minuti, dissezionare gli occhi per rimuovere la cornea e il cristallino. Separare la retina dall'epitelio pigmentato retinico (RPE) e dalla sclera tagliando intorno all'ora serrata e al nervo ottico. Immergere nuovamente in paraformaldeide al 4% per altri 30 minuti per fissare la retina e la proteina fluorescente nelle cellule retiniche transdotte (la fissazione non deve superare le 24 ore). Lavare per 5 minuti in PBS sterile, pH 7,4.
    2. Sostituire il tampone salino fosfato (PBS) con il buffer di blocco (PBS contenente 1% di albumina sierica bovina (BSA), 2% di siero normale di capra o asino, 0,5% di Triton X-100) e incubare nel buffer di blocco per 4 ore a temperatura ambiente oppure a 4 °C durante la notte.
  2. Incubare i tessuti con gli anticorpi primari nel buffer di blocco per 4 ore a temperatura ambiente oppure a 4 °C durante la notte. Lavare 3 volte con PBS.
    NOTA: Gli anticorpi utilizzati sono i seguenti: anti-laminina (1/1.000) per etichettare la membrana limitante interna (ILM), anti-rodopsina clone 4D2 (1/500) per etichettare i bastoncelli, anti-glutamine sintetasi clone GS-6 (1/1.500) per etichettare le cellule di Müller, lectina di agglutinina di arachide (PNA) (1/40) per etichettare i coni.
  3. Incubare i tessuti con una diluizione 1:500 di anticorpi secondari coniugati con Alexa Fluor nel buffer di blocco per 1 ora (sezioni crioistologiche) o 2 ore (preparati in montaggio piatto) a temperatura ambiente e al riparo dalla luce. Lavare 3 volte con PBS.
  4. Eseguire incisioni di scarico sulla retina e montarla in piano su un vetrino con il lato dei fotoricettori o delle cellule gangliari retiniche (RGC) rivolto verso l'alto. Aggiungere un mezzo acquoso per il montaggio, applicare il coprioggetto e conservare a 4 °C.
  5. Eseguire la microscopia confocale su un microscopio confocale a scansione laser. Acquisire le immagini sequenzialmente, riga per riga, per ridurre l'interferenza tra eccitazione ed emissione. Definire l'intervallo di passo in base al teorema del campionamento di Nyquist-Shannon. Utilizzare impostazioni di esposizione che minimizzino i pixel sovrasaturi nelle immagini finali. Elaborare immagini a 12 bit con FIJI, proiettare le sezioni Z su un singolo piano utilizzando l'intensità massima nella funzione Z-project e convertire infine in modalità colore RGB a 8 bit.

Risultati

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Figura 1: Rappresentazione schematica del protocollo generale. Dopo la produzione dell'AAV, le particelle vengono iniettate nel vitreo o nella vena peniena per anestetizzare i topi adulti. Vengono eseguite immagini del fondo oculare con una camera Micron III per seguire l'espressione della GFP (proteina verde fluorescente). Il profilo di espressione della GFP viene analizzato su sezioni criostatiche retiniche e su preparati retinici in montaggio piatto grazie all'immunohistochimica e alle immagini confocali. Il passaggio dell'AAV attraverso la barriera emato-retinica (BRB) viene valutato mediante analisi PCR su campioni ematici provenienti da topi iniettati intravitrealmente o intrapenialmente, al fine di rilevare la presenza della sequenza GFP, un indicatore della presenza di particelle AAV nel circolo sanguigno.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Vetrini adesivi Superfrost PlusThermo Scientific10143352Vetrini
Anti-lamininaSigmaL9393Anticorpo
Anti-rhodopsina clone 4D2MilliporeMABN15Anticorpo
Anti-glutammato sintetasi clone GS-6MilliporeMAB302Anticorpo
Anti-proteina acida fibrillare glialeDako334Anticorpo
Lettina PNAInvitrogenL32459Sonda
anticorpi secondari coniugati con Alexa FluorInvitrogen Anticorpo
Fluorsave reagentCalbiochem345789Mezzo di montaggio
Colorante Evans BlueSigmaE2129Colorante
Spettrofotometria del formammideSigma295876-2L 
FluoresceinaSigmaF2456Colorante
Micron IIIPhoenix Research Labs Un sistema di microscopia basato su una telecamera a colori 3-CCD, un frame grabber e un software commerciale consente ai ricercatori di acquisire immagini delle retine di topo.
Binocolo ingranditore SZ76ADVILABADV-76B2Ingrandimento 0,66 x 5 x LED con supporto, illuminazione epiluminescenza e diascopia / Dissezione delle retine
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